WO2009093367A1 - エタノールの製造方法 - Google Patents
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Definitions
- the present invention is a reaction in which a solid-liquid mixture containing sugar is fermented with yeast to produce ethanol, and carbon dioxide generated during the fermentation is photo-synthesized by light irradiation of a plant chloroplast and a light-emitting diode to produce sugar.
- the reaction and the reaction of fermenting the sugar obtained in the reaction with yeast to produce ethanol proceed in parallel in the same container.
- the present invention relates to a method for producing ethanol.
- Japanese Patent Application Laid-Open No. 07-087986 discloses “microalgae culture means 1” for culturing microalgae that accumulate starch in cells by photosynthesis, and “microalgae concentration” for concentrating a culture solution containing algal bodies cultured by this means.
- a method for producing ethanol comprising means 2 ”and“ holding means 3 ”for producing ethanol by maintaining the slurry obtained by the means in a dark and anaerobic atmosphere while maintaining the pH in the range of 6.0 to 9.0 is described.
- “microalgae culture means 1” and “holding means 3” are completely independent separate processes, and a separate process of “microalgae concentration means 2” is required between the two processes.
- the operation is complicated, and it cannot be said that the ethanol production method is always highly efficient.
- the “holding means 3” for generating ethanol needs to be kept in a dark and anaerobic atmosphere, it can be performed in parallel with the “microalgae culture means 1” that requires light irradiation in the same container. It was impossible.
- Japanese Patent Laid-Open No. 2007-325564 discloses a method for inoculating koji mold and saccharifying a raw material subjected to a specific treatment to produce ethanol using rice as a cereal as a starting material and adding yeast to perform ethanol fermentation.
- a method of synthesizing and utilizing industrial methanol or the like by simply reusing carbon dioxide generated as a by-product during ethanol fermentation without letting it escape to the atmosphere is described.
- the above method describes the reuse of carbon dioxide generated during ethanol fermentation, the carbon dioxide is converted into a sugar that is a raw material for ethanol fermentation by photosynthesis, and the sugar is converted into the above ethanol fermentation. There was no suggestion or description about performing in parallel in the same container.
- the present invention is a reaction in which a solid-liquid mixture containing sugar is fermented with yeast to produce ethanol, and carbon dioxide generated during the fermentation is photo-synthesized by light irradiation of a plant chloroplast and a light-emitting diode to produce sugar.
- the reaction and the reaction of fermenting the sugar obtained in the reaction with yeast to produce ethanol proceed in parallel in the same container.
- An object is to provide a method for producing ethanol.
- the present inventors have performed a simple operation of irradiating light from a light-emitting diode in a closed system containing a solid-liquid mixture containing sugar, yeast and plant chloroplasts.
- a reaction in which a solid-liquid mixture containing sugar is fermented with yeast to produce ethanol b) Reaction of photosynthesis of carbon dioxide generated during fermentation in a) by light irradiation of plant chloroplasts and light emitting diodes to sugar, and c) fermentation of sugar obtained in b) with yeast.
- the present inventors have found that the reaction for producing ethanol proceeds in parallel. Moreover, it discovered that ethanol was efficiently manufactured by irradiating the light of a specific wavelength range in this case.
- the present invention (1) A production process for producing ethanol by irradiating light from a light-emitting diode in a sealed system containing a solid-liquid mixture containing sugar, yeast and plant chloroplasts, and ethanol produced from the system.
- a method for producing ethanol comprising a recovery step of recovering outside, In the generating step, a) a reaction in which a solid-liquid mixture containing sugar is fermented with yeast to produce ethanol; b) Reaction of photosynthesis of carbon dioxide generated during fermentation in a) by light irradiation of plant chloroplasts and light emitting diodes to sugar, and c) fermentation of sugar obtained in b) with yeast.
- the reaction for producing ethanol proceeds in parallel, and the solid-liquid mixture containing sugar is saccharified by pyrolysis or hydrolysis of cellulose or hemicellulose, or rice, wheat, straw or corn containing starch Saccharify with koji, malt or enzyme, crush vegetables and / or fruits, or crush vegetables and / or fruits, then heat concentration method, freeze concentration method, reverse osmosis
- the plant chloroplast is prepared by concentrating by one or more concentration methods selected from a concentration method and a vacuum concentration method, and the plant chloroplast is a seed plant, a fern plant, an algae, a moss plant, a bacterium Or a mixture of these
- the method of producing ethanol is a plant chloroplast things, (2)
- the light of the light emitting diode is light whose total light emission amount in the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm is 70% or more of the light emission amount over the entire wavelength region.
- Production method (3) The method for producing ethanol according
- the total light emission amount in the wavelength range of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm is 70% or more of the light emission amount over the entire wavelength region means that the light emission spectrum of the light emitting diode used is measured and recorded. It means that a value indicating the sum of the spectrum areas in the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectrum area as a percentage is 70% or more.
- the ethanol production method of the present invention produces sugar by a photosynthesis reaction using carbon dioxide generated in a sugar fermentation reaction as a raw material, and therefore does not discharge carbon dioxide. It can be said that this is a manufacturing method.
- ethanol is produced using sugar produced by the photosynthesis reaction as a raw material, the ethanol recovery rate is high compared to normal ethanol fermentation, and three reactions are simultaneously performed in one container. Since it can be performed, it is a very excellent ethanol production method that is simple and efficient in operation.
- additional carbon dioxide is added into the reaction system, whereby ethanol can be produced more efficiently.
- the method for producing ethanol of the present invention comprises a production step of producing ethanol by irradiating light from a light-emitting diode in a sealed system containing a solid-liquid mixture containing sugar, yeast and plant chloroplasts, and from the system. A recovery step of recovering the produced ethanol out of the system.
- the solid-liquid mixture containing sugar used in the present invention is saccharified by pyrolyzing or hydrolyzing cellulose or hemicellulose, or rice, wheat, straw or corn containing starch is saccharified using straw, malt or an enzyme agent.
- cellulose or hemicellulose include cellulose or hemicellulose obtained from a plant body such as wood.
- Saccharification of cellulose by thermal decomposition can be performed by a known method, for example, a method described in Japanese Patent No. 1400009.
- the saccharification of cellulose or hemicellulose by hydrolysis can be carried out by a known method, for example, a method of hydrolysis using dilute sulfuric acid described in JP-B 61-0444479.
- the solid-liquid mixture containing sugar is made of rice, wheat, straw or corn containing starch, and if necessary, subjected to a step of removing the hull, pulverization or pulverization, and the like. It can be prepared by adding.
- the enzyme agent include amylase.
- a solid-liquid mixture containing sugar is obtained by crushing vegetables and / or fruits, or crushing vegetables and / or fruits, followed by a heat concentration method, a freeze concentration method, a reverse osmosis concentration method, and a vacuum. It can prepare by concentrating by the 1 type (s) or 2 or more types of concentration method chosen from the concentration method.
- the vegetables are not limited as long as they contain sugar, but specific examples include radish, sugar beet, cabbage, lettuce, Chinese cabbage, sugar cane, tomato, carrot, onion, leek and the like.
- Fruits are not limited as long as they contain sugar, but specific examples include apples, tangerines, grapes, white peaches, yellow peaches, pears, pineapples, mangoes, bananas, melons, cherries, loquats, and blueberries. , Strawberry, kiwi, raspberry, blackberry, apricot, oyster, watermelon and the like.
- the vegetables and fruits are preferably washed before pulverization.
- a pulverization method a method usually used for pulverizing vegetables and / or fruits can be used, and examples thereof include pulverization using a mixer (for home use and business use).
- the solid-liquid mixture containing sugar prepared by pulverizing vegetables and / or fruits can be further concentrated.
- Concentration is particularly effective when the sugar content in the solid-liquid mixture is low.
- concentration method include a heat concentration method, a freezing concentration method, a reverse osmosis concentration method, a vacuum concentration method, and a concentration method in which two or more of these are performed simultaneously or continuously.
- concentration methods heat concentration method, freeze concentration method, reverse osmosis concentration method, vacuum concentration method
- concentration method are usually methods known in the technical field (heat concentration method, freeze concentration method, reverse osmosis concentration method, vacuum concentration method). Can be done.
- the solid-liquid mixture containing the saccharide prepared above can be sterilized as necessary.
- the yeast used in the present invention is not particularly limited as long as it can produce ethanol, and specific examples include wine yeast, sake yeast, whiskey yeast, beer yeast and the like.
- Plant chloroplasts used in the present invention include plant chloroplasts of seed plants, ferns, algae, moss plants, bacteria, or mixtures thereof. Although it does not specifically limit as a seed plant, For example, a ginkgo, rice, etc. are preferable. Although it does not specifically limit as a fern plant, For example, a cycad etc. are preferable. Although it does not specifically limit as algae, For example, kawamozuku, gray algae, crypt algae, wakame, euglena algae, chloracunion algae, cyanobacteria, uremo etc. are preferable.
- a moss plant For example, a sphagnum moss, a black moss, a scallop, a scale moss, a sphagnum, a hornbill, etc. are preferable.
- bacteria For example, cyanobacteria (extracted from a sea lion) etc. are preferable.
- Preferred plant chloroplasts include bacterial plant chloroplasts and cyanobacterial plant chloroplasts.
- the plant chloroplast used in the present invention preferably destroys the plant cell membrane so that the sugar produced by photosynthesis is efficiently fermented by the yeast in the solution.
- the destruction of the cell membrane of the plant can be performed, for example, by crushing the plant.
- the produced sugar is efficiently fermented without destroying the cell membrane, it is not necessary to destroy the cell membrane.
- the sealed system is not particularly limited as long as it is a sealed container that can be irradiated with light and can cope with a volume change caused by the generated gas (carbon dioxide, oxygen).
- a container etc. are mentioned.
- light irradiation can be performed from the outside and / or the inside of the glass container, and in the case of a metal container, light irradiation can be performed from the inside of the container.
- the said container is equipped with the expansion-contraction site
- the system is preferably stirrable.
- the glass container is, for example, a glass tube installed around a light emitting diode, and a solid-liquid mixture containing sugar, a solution containing yeast and plant chloroplasts are allowed to flow at a rate capable of an ethanol production reaction. It can also be a container capable of continuous reaction.
- the glass container is composed of, for example, two glass plates capable of irradiating light from a light-emitting diode from both the front and back surfaces, a solid-liquid mixture containing sugar between the glass plates, yeast and plant chloroplasts. It may also be a container capable of continuous reaction by flowing a solution containing
- the production step for producing ethanol is performed by irradiating the light of the light-emitting diode into the above-described sealed system.
- Three reactions of producing ethanol proceed in parallel in the closed system.
- Ethanol and carbon dioxide are produced by the fermentation of yeast in a) above.
- the produced carbon dioxide is converted to sugar by photosynthesis b) of the light of the plant chloroplast and the light emitting diode, and oxygen is generated at this time.
- the sugar is not particularly limited as long as it can be used for ethanol fermentation, and examples thereof include sucrose and glucose.
- the sugar produced in b) is fermented by yeast (reaction c)) to produce ethanol and carbon dioxide.
- the produced carbon dioxide is again ethanol through the photosynthesis of b) and alcohol fermentation of c). By repeating this cycle, almost all of the carbon dioxide is finally converted into ethanol and oxygen. Therefore, the progress of the reaction can be grasped by measuring the oxygen concentration in the gas present in the system.
- the reaction is preferably carried out until the oxygen concentration in the gas present in the system reaches 90% or more, and more preferably the reaction is carried out until the concentration reaches 95% or more.
- the light emitted from the light emitting diode used in the photosynthetic reaction is preferably light in which the total light emission amount in the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm is 70% or more of the light emission amount over the entire wavelength region, and more preferably , 80% or more of the light, and more preferably 90% or more of the light.
- the above% is less than 70, ethanol production efficiency tends to decrease.
- light having a wavelength shorter than 380 nm is not substantially contained, that is, the light emission amount is 5% or less, preferably 3% or less, and preferably 0%.
- the total light emission amount in the wavelength range of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm is 70% or more of the light emission amount over the entire wavelength region means that the light emission spectrum of the light emitting diode used is measured and recorded. It means that a value indicating the sum of the spectrum areas in the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectrum area as a percentage is 70% or more.
- the manufacturing method of ethanol of this invention includes the collection
- the recovery step is not particularly limited as long as it is a method capable of separating ethanol from the reaction system.
- a known method such as a distillation method or a membrane separation method can be used.
- the container used for the distillation operation can be used as it is, and the reaction liquid can be transferred to another container for use.
- a preferred embodiment of the present invention is a method for producing ethanol in which additional carbon dioxide is added into the sealed system. By further adding carbon dioxide, the production efficiency of ethanol can be further improved.
- the additional addition of carbon dioxide is achieved, for example, by connecting a carbon dioxide introduction tube to the reaction vessel or placing it in an atmosphere of carbon dioxide. When adding carbon dioxide, the entire system is sealed so that the carbon dioxide does not flow out.
- the recovery step is achieved by distillation.
- the distillation method any of simple distillation, azeotropic distillation, azeotropic distillation with addition of benzene, and the like can be selected according to the required purity of ethanol.
- Production Example 1 Production of a solid-liquid mixture containing sugar (rice) 6 g of amylase and 315 g of water were added to 330 g of rice flour purchased from a food store, stirred with a mixer, boiled and kept at 70 ° C. to 80 ° C. for 12 hours. By saccharifying the rice flour, 651 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar was prepared.
- Production Example 2 Production of sugar-containing solid-liquid mixture (wheat) Add 6 g of amylase and 315 g of water to 330 g of flour purchased from a food store, stir with a mixer, boil in water and keep at 70 ° C. to 80 ° C. for 12 hours. By saccharifying the wheat flour, 651 g of a solid-liquid mixture (wheat) containing sugar was prepared.
- Production Example 3 Production of Solid-Liquid Mixture Containing Sugar (Corn) 6 g of amylase and 315 g of water are added to 330 g of corn flour purchased from a food store, stirred with a mixer, boiled and kept at 70 ° C. to 80 ° C. for 12 hours. By saccharifying the corn flour, 651 g of a solid-liquid mixture (corn) containing sugar was prepared.
- Examples 1 to 10 and Comparative Example 1 217 g of the solid-liquid mixture (rice) containing sugar produced in Production Example 1 and 3 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 220 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast is divided into 11 100 mL beakers of 20 g each, and 10 types of different plant pulverized products are added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 11 to 20 and Comparative Example 2 217 g of the solid-liquid mixture (wheat) containing sugar produced in Production Example 2 and 3 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 220 g of a solid-liquid mixture (wheat) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (wheat) containing sugar containing yeast is divided into 11 100 mL beakers of 20 g each, and 10 types of different plant pulverized products are added to each beaker by 1 g and stirred, and then each solution is transparent glass.
- a solid-liquid mixture (wheat) containing sugar containing yeast without plant pulverized product was injected into a 100 mL syringe (Comparative Example 2).
- the eleven syringes prepared above contain light from a total of 600 light emitting diodes composed of 200 white light emitting diodes, 200 red light emitting diodes, 100 yellow light emitting diodes and 100 indigo light emitting diodes (36 watts in total). / Hour) for 24 hours.
- the oxygen concentration of the gas collected from each syringe was measured with an oxygen concentration meter.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was determined to be 77%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 2.
- symbols a to j represent the same plants as shown above, and “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 21 to 30 and Comparative Example 3 217 g of the solid-liquid mixture (corn) containing saccharide produced in Production Example 3 and 3 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 220 g of a solid-liquid mixture (corn) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (corn) containing sugar containing yeast is divided into 11 100 mL beakers of 20 g each, 10 g of different plant pulverized products are added to each beaker by 1 g and stirred, and then each solution is transparent glass. It was injected into a 100 mL syringe, which is a manufactured container (Examples 21 to 30).
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 85%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured.
- the above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 3.
- symbols a to j represent the same plants as shown above, and “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 31 to 40 and Comparative Example 4 217 g of the solid-liquid mixture (corn) containing saccharide produced in Production Example 3 and 3 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 220 g of a solid-liquid mixture (corn) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (corn) containing sugar containing yeast was divided into 11 100 mL beakers of 20 g each, 10 g of different plant pulverized products were added to each beaker by 1 g and stirred, and then each beaker was sealed. I put it in the box.
- a fermentation experiment was conducted separately from the above experiment, and carbon dioxide released from the fermentation experiment was introduced into each beaker through a tube so as to be mixed at the liquid level of each beaker in the sealed box (Examples 31 to 40). ).
- a beaker containing 20 g of a solid-liquid mixture (corn) containing sugar containing yeast and not containing plant pulverized material was placed in the sealed box (Comparative Example 4).
- light of a total of 600 light emitting diodes composed of 200 white light emitting diodes, 200 red light emitting diodes, 100 orange light emitting diodes, and 100 purple light emitting diodes (36 watts / hour in total) 24 Irradiated for hours.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas in the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 85%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured.
- the above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 4.
- symbols a to j represent the same plants as shown above, and “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Production Example 4 Production of a solid-liquid mixture containing sugar (rice) 10 g of amylase (mixture of alpha amylase and glucoamylase) and 525 g of water were added to 530 g of rice flour purchased from a food store, stirred with a mixer, hot water roasted, and 70 ° C. Furthermore, 1065 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar was prepared by saccharifying the rice flour over 12 hours while maintaining at 80 ° C.
- amylase mixture of alpha amylase and glucoamylase
- Examples 41 to 57 and Comparative Example 5 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 58 to 74 and Comparative Example 6 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 74%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 6.
- the symbols a to q represent the same plants as shown above, and the “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 75 to 91 and Comparative Example 7 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 100%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 7.
- the symbols a to q represent the same plants as shown above, and the “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 92 to 108 and Comparative Example 8 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 60%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured.
- the above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 8.
- the symbols a to q represent the same plants as shown above, and the “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 109 to 125 and Comparative Example 9 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 60%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured.
- the above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 9.
- the symbols a to q represent the same plants as shown above, and the “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- Examples 126 to 142 and Comparative Example 10 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 143 to 159 and Comparative Example 11 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 160 to 176 and Comparative Example 12 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred. It was injected into a 100 mL syringe, which is a manufactured container (Examples 160 to 176).
- Examples 177 to 193 and Comparative Example 13 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 194 to 210 and Comparative Example 14 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 211 to 227 and Comparative Example 15 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred.
- Examples 228 to 244 and Comparative Example 16 355 g of the solid-liquid mixture (rice) containing saccharide produced in Production Example 4 and 5 g of yeast were stirred with a mixer to prepare 360 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast.
- the prepared solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast was divided into 18 100 mL beakers of 20 g each, and 17 types of pulverized products of different plants were added to each beaker by 1 g and stirred, and then each beaker was sealed. I put it in the box.
- a fermentation experiment was conducted separately from the above experiment, and carbon dioxide released from the fermentation experiment was introduced into each beaker through a tube so as to be mixed at the liquid level of each beaker in the sealed box (Examples 228 to 244). ).
- a beaker containing 20 g of a solid-liquid mixture (rice) containing sugar containing yeast without adding plant ground was placed in the sealed box (Comparative Example 16).
- Each beaker was irradiated with light from a light emitting diode composed of 600 white light emitting diodes (36 watts / hour in total) for 24 hours.
- the emission spectrum of the light-emitting diode was measured, and the ratio of the spectral area in the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm to the total recorded spectral area was determined to be 80%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 16.
- symbols a to j represent the same plants as shown above, and “area ratio” is the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectral area recorded in the emission spectrum. Represents the ratio (%).
- the yield increased by 7 times, and the yield increased by about 1.4 times compared to Examples 41 to 57 in which no additional carbon dioxide was added. Further, in the case of q cyanobacteria (Example 244), the yield was increased about twice as compared with Example 57 in which no additional carbon dioxide was added.
- Production Example 5 Production of a solid-liquid mixture containing sugar (sugar cane)
- Sugar cane was purchased from a food store and washed. The liquid obtained by removing the sugar from the sugar cane juice was stirred to prepare 2000 g of molasses (a solid-liquid mixture containing sugar (sugar cane)).
- Production Example 6 Production of solid-liquid mixture containing sugar (yellow peach) Yellow peach was purchased from a food store and washed. Yellow peach was pulverized to prepare a solid-liquid mixture (yellow peach) containing sugar without adding 2000 g of water.
- Examples 245 to 254 and Comparative Example 17 660 g of the molasses produced in Production Example 5 (solid-liquid mixture containing sugar (sugar cane)) and 10 g of yeast and 870 g of water were stirred with a mixer, and the molasses containing sugar (solid-liquid mixture containing sugar (sugar cane)) 1540 was prepared.
- the prepared molasses containing yeast (solid-liquid mixture (sugar cane) containing sugar) was divided into 11 300 mL beakers of 140 g each, and 10 g of different plant pulverized products were added to each beaker by 5 g and stirred.
- Example 17 The solution was poured into a 300 mL syringe, a clear glass container (Examples 245 to 254).
- the 11 syringes prepared above were irradiated with light from a total of 600 light-emitting diodes composed of 200 white light-emitting diodes, 200 red light-emitting diodes and 200 blue light-emitting diodes (36 watts / hour in total) for 24 hours. did.
- the oxygen concentration of the gas collected from each syringe was measured with an oxygen concentration meter. Further, the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 93%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors. The results are summarized in Table 17.
- symbols a to j represent the following plants, and “area ratio” is the ratio (%) of the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectrum area recorded in the emission spectrum. Represents.
- Examples 255 to 264 and Comparative Example 18 A solid-liquid mixture (yellow peach) 1540 containing sugar containing yeast was prepared by stirring 660 g of the solid-liquid mixture (yellow peach) containing sugar produced in Production Example 6 and 10 g of yeast and 870 g of water with a mixer. The prepared solid-liquid mixture (yellow peach) containing sugar containing yeast is divided into 11 300 mL beakers of 140 g each, 10 g of different plant pulverized products are added to each beaker by 5 g and stirred, and then each solution is transparent. A 300 mL syringe, a glass container, was injected (Examples 255 to 264).
- the emission spectrum of the light emitting diode was measured, and the ratio of the spectral areas of the wavelength regions of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total recorded spectrum area was found to be 73%.
- the solution in each syringe was distilled and the amount of alcohol recovered was measured. The above operation was performed three times in consideration of measurement errors.
- the results are summarized in Table 18.
- symbols a to j represent the following plants, and “area ratio” is the ratio (%) of the spectral area of the wavelength region of 380 to 520 nm and 620 to 780 nm with respect to the total spectrum area recorded in the emission spectrum. Represents.
- the ethanol production method of the present invention does not emit carbon dioxide, and thus is said to be a useful method in terms of CO 2 reduction. Moreover, since the manufacturing method of ethanol of this invention can obtain oxygen as a by-product, this can also be utilized as an effective resource. In addition, since the ethanol production method of the present invention can take in carbon dioxide from the outside and convert it into ethanol, it can also be a useful ethanol production method from the viewpoint of fixing carbon dioxide. .
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Abstract
【課題】操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法を提供する。
【解決手段】 糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とするエタノールの製造方法。
Description
本発明は、糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、該発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び該反応で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応の３つの反応が同一容器内で並行して進行することを特徴とする、操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法に関する。
特開平０７－０８７９８６号公報には、光合成により細胞内にデンプンを蓄積する微細藻を培養する“微細藻培養手段１”、該手段により培養した藻体を含む培養液を濃縮する“微細藻濃縮手段２”、該手段で得られるスラリーを、ｐＨ６．０～９．０の範囲に保ちながら暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持してエタノールを生成させる“保持手段３”を含むエタノールの製造方法が記載されている。
上記製造方法において、“微細藻培養手段１”及び“保持手段３”は、完全に独立した別工程であり、また、該２工程間には“微細藻濃縮手段２”という別工程を必要とするため、操作が煩雑であり、また、エタノールの製造方法として必ずしも効率が高いものとはいえなかった。
特に、エタノールを生成させる“保持手段３”は、暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持する必要があるため、光照射を必要とする“微細藻培養手段１”と同一容器内で並行して行うことはできないものであった。
上記製造方法において、“微細藻培養手段１”及び“保持手段３”は、完全に独立した別工程であり、また、該２工程間には“微細藻濃縮手段２”という別工程を必要とするため、操作が煩雑であり、また、エタノールの製造方法として必ずしも効率が高いものとはいえなかった。
特に、エタノールを生成させる“保持手段３”は、暗黒かつ嫌気性雰囲気に保持する必要があるため、光照射を必要とする“微細藻培養手段１”と同一容器内で並行して行うことはできないものであった。
特開２００７－３２５５６４号公報には、穀物として米を出発原料としてエタノールを製造するために、特定処理を施した原料に対して麹菌を接種し糖化させると共に酵母を添加してエタノール発酵させる方法が記載されており、また、エタノール発酵の際、副産物として発生する二酸化炭素を単に大気に逃すことなく再利用して工業用メタノール等を合成して活用する方法が記載されている。
上記方法は、エタノール発酵の際に発生する二酸化炭素の再利用について記載するものの、該二酸化炭素を光合成によりエタノール発酵の原料である糖に変換すること、及び、該糖を上記のエタノール発酵とを同一容器内で並行して行うことに付いては何らの示唆も記載もなされていなかった。
上記方法は、エタノール発酵の際に発生する二酸化炭素の再利用について記載するものの、該二酸化炭素を光合成によりエタノール発酵の原料である糖に変換すること、及び、該糖を上記のエタノール発酵とを同一容器内で並行して行うことに付いては何らの示唆も記載もなされていなかった。
また、光合成の光源として発光ダイオードを用いて各種光合成生物に光合成を行わせ、これにより有用な有機物を製造する方法が報告されている（例えば、特開平１０－１１３１６４号公報、特開２００４－１４７６４１号公報、特開２００２－３１５５６９号公報、登録実用新案第３０７３９０８号公報、勝田知尚、フォトバイオリアクターによる有用物質生産のための生物化学工学的検討、第５９回日本生物工学会大会講演要旨集、２００７年８月２日、ｐ．１０７（講演番号：３Ｄ０９－１）、参照）。
しかし、上記方法は何れも、光合成により二酸化炭素から糖を生成する具体的な方法を記載するものではなかった。
特開平０７－０８７９８６号公報
特開２００７－３２５５６４号公報
特開平１０－１１３１６４号公報
特開２００４－１４７６４１号公報
特開２００２－３１５５６９号公報
登録実用新案第３０７３９０８号公報
勝田知尚、フォトバイオリアクターによる有用物質生産のための生物化学工学的検討、第５９回日本生物工学会大会講演要旨集、２００７年８月２日、ｐ．１０７（講演番号：３Ｄ０９－１）
しかし、上記方法は何れも、光合成により二酸化炭素から糖を生成する具体的な方法を記載するものではなかった。
本発明は、糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、該発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び該反応で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応の３つの反応が同一容器内で並行して進行することを特徴とする、操作が簡単で且つ製造効率に優れるエタノールの製造方法の提供を課題とする。
本発明者等は、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射するという簡単な操作により、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを見出し、本発明を完成させた。
また、この際、特定の波長領域の光を照射することにより効率良くエタノールが製造されることも見出した。
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを見出し、本発明を完成させた。
また、この際、特定の波長領域の光を照射することにより効率良くエタノールが製造されることも見出した。
即ち、本発明は、
（１）糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖を含む固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化するか、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であるエタノールの製造方法、
（２）前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光である前記（１）記載のエタノールの製造方法、
（３）前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する前記（１）又は（２）記載のエタノールの製造方法、
（４）前記回収工程が、蒸留によるものである前記（１）ないし（３）の何れか１つに記載のエタノールの製造方法、
に関する。
（１）糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖を含む固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化するか、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であるエタノールの製造方法、
（２）前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光である前記（１）記載のエタノールの製造方法、
（３）前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する前記（１）又は（２）記載のエタノールの製造方法、
（４）前記回収工程が、蒸留によるものである前記（１）ないし（３）の何れか１つに記載のエタノールの製造方法、
に関する。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
本発明のエタノールの製造方法は、糖の発酵反応で発生する二酸化炭素を原料として光合成反応により糖を産生するものであるため、二酸化炭素を排出せず、そのため、地球温暖化対策がなされたエタノールの製造方法といえる。
加えて、光合成反応により産生された糖を原料としてエタノールが製造されるため、通常のエタノール発酵と比べると、エタノールの回収割合が高いものであり、更に、１つの容器内で３つの反応を同時に行えるため、操作が簡便で且つ効率的である、非常に優れたエタノールの製造方法である。
また、本発明の好ましい態様においては、上記反応系内に、更なる二酸化炭素が添加されるが、それにより、更に効率よくエタノールを製造することができる。
加えて、光合成反応により産生された糖を原料としてエタノールが製造されるため、通常のエタノール発酵と比べると、エタノールの回収割合が高いものであり、更に、１つの容器内で３つの反応を同時に行えるため、操作が簡便で且つ効率的である、非常に優れたエタノールの製造方法である。
また、本発明の好ましい態様においては、上記反応系内に、更なる二酸化炭素が添加されるが、それにより、更に効率よくエタノールを製造することができる。
本発明のエタノールの製造方法は、糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含む。
本発明に使用する糖を含む固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化するか、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製される。
セルロース又はヘミセルロースとしては、木材等の植物体から得られるセルロース又はヘミセルロースが挙げられる。
熱分解によるセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特許第１４００００９号公報に記載の方法により行うことができる。
また、加水分解によるセルロース又はヘミセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特公昭６１－０４４４７９号公報に記載の希硫酸を用いて加水分解する方法により行うことができる。
また、糖を含む固液混合物は、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを用い、必要に応じて外皮を取り除く工程、粉末化又は粉砕工程等を施し、これに麹、麦芽又は酵素剤を添加することにより調製することができる。
上記酵素剤としては、アミラーゼが挙げられる。
また、糖を含む固液混合物は、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製することができる。
野菜類としては、糖を含む限りにおいて何ら限定されるものではないが、具体例としては、ダイコン、甜菜、キャベツ、レタス、白菜、サトウキビ、トマト、ニンジン、タマネギ、ネギ等が挙げられる。
果実類としては、糖を含む限りにおいて何ら限定されるものではないが、具体例としては、リンゴ、ミカン、ブドウ、白桃、黄桃、梨、パイナップル、マンゴー、バナナ、メロン、サクランボ、ビワ、ブルーベリー、イチゴ、キーウィ、ラズベリー、ブラックベリー、アンズ、カキ、スイカ等が挙げられる。
上記野菜類及び果実類は、粉砕する前に洗浄するのが好ましい。
粉砕方法としては、野菜類及び／又は果実類を粉砕するために通常使用されている方法を用いることができ、例えば、ミキサー（家庭用、業務用）による粉砕等が挙げられる。
野菜類及び／又は果実類の粉砕により調製された糖を含む固液混合物は、更に、濃縮を行うことができる。
濃縮は、固液混合物に含まれる糖の含有量が少ない場合に特に有効である。
濃縮方法としては、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法或いはこれらの２種以上を同時に又は連続的に行う濃縮法が挙げられる。
上記濃縮法（加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法）は、通常、該技術分野において既知の方法（加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法）で行うことができる。
尚、上記で調製された糖を含む固液混合物は、必要に応じて滅菌工程等を行うことができる。
セルロース又はヘミセルロースとしては、木材等の植物体から得られるセルロース又はヘミセルロースが挙げられる。
熱分解によるセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特許第１４００００９号公報に記載の方法により行うことができる。
また、加水分解によるセルロース又はヘミセルロースの糖化は、既知の方法、例えば、特公昭６１－０４４４７９号公報に記載の希硫酸を用いて加水分解する方法により行うことができる。
また、糖を含む固液混合物は、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを用い、必要に応じて外皮を取り除く工程、粉末化又は粉砕工程等を施し、これに麹、麦芽又は酵素剤を添加することにより調製することができる。
上記酵素剤としては、アミラーゼが挙げられる。
また、糖を含む固液混合物は、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製することができる。
野菜類としては、糖を含む限りにおいて何ら限定されるものではないが、具体例としては、ダイコン、甜菜、キャベツ、レタス、白菜、サトウキビ、トマト、ニンジン、タマネギ、ネギ等が挙げられる。
果実類としては、糖を含む限りにおいて何ら限定されるものではないが、具体例としては、リンゴ、ミカン、ブドウ、白桃、黄桃、梨、パイナップル、マンゴー、バナナ、メロン、サクランボ、ビワ、ブルーベリー、イチゴ、キーウィ、ラズベリー、ブラックベリー、アンズ、カキ、スイカ等が挙げられる。
上記野菜類及び果実類は、粉砕する前に洗浄するのが好ましい。
粉砕方法としては、野菜類及び／又は果実類を粉砕するために通常使用されている方法を用いることができ、例えば、ミキサー（家庭用、業務用）による粉砕等が挙げられる。
野菜類及び／又は果実類の粉砕により調製された糖を含む固液混合物は、更に、濃縮を行うことができる。
濃縮は、固液混合物に含まれる糖の含有量が少ない場合に特に有効である。
濃縮方法としては、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法或いはこれらの２種以上を同時に又は連続的に行う濃縮法が挙げられる。
上記濃縮法（加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法）は、通常、該技術分野において既知の方法（加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法、真空濃縮法）で行うことができる。
尚、上記で調製された糖を含む固液混合物は、必要に応じて滅菌工程等を行うことができる。
本発明に使用する酵母としては、エタノールを生成し得るものであれば特に限定されないが、具体的には、ワイン酵母、清酒酵母、ウィスキー酵母、ビール酵母等が挙げられる。
本発明に使用する植物葉緑体としては、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体が挙げられる。
種子植物としては、特に限定されないが、例えば、イチョウ、稲等が好ましい。
シダ植物としては、特に限定されないが、例えば、ソテツ等が好ましい。
藻類としては、特に限定されないが、例えば、カワモズク、灰色藻、クリプト藻、ワカメ、ユーグレナ藻、クロララクニオン藻、藍藻、ユレモ等が好ましい。
コケ植物としては、特に限定されないが、例えば、ミズゴケ、クロゴケ、スギゴケ、ウロコゴケ、ゼニゴケ、ツノゴケ等が好ましい。
細菌類としては、特に限定されないが、例えば、シアノバクテリア（アオコから抽出）等が好ましい。
好ましい植物葉緑体としては、細菌類の植物葉緑体が挙げられ、また、シアノバクテリアの植物葉緑体が挙げられる。
種子植物としては、特に限定されないが、例えば、イチョウ、稲等が好ましい。
シダ植物としては、特に限定されないが、例えば、ソテツ等が好ましい。
藻類としては、特に限定されないが、例えば、カワモズク、灰色藻、クリプト藻、ワカメ、ユーグレナ藻、クロララクニオン藻、藍藻、ユレモ等が好ましい。
コケ植物としては、特に限定されないが、例えば、ミズゴケ、クロゴケ、スギゴケ、ウロコゴケ、ゼニゴケ、ツノゴケ等が好ましい。
細菌類としては、特に限定されないが、例えば、シアノバクテリア（アオコから抽出）等が好ましい。
好ましい植物葉緑体としては、細菌類の植物葉緑体が挙げられ、また、シアノバクテリアの植物葉緑体が挙げられる。
本発明に使用する植物葉緑体は、光合成により生成した糖が溶液中の酵母により効率よく発酵されるように、通常、植物の細胞膜を破壊しておくことが好ましい。植物の細胞膜の破壊は、例えば、植物を粉砕することにより行われ得る。
しかし、細胞膜を破壊しなくても生成した糖が効率よく発酵される場合には、細胞膜を破壊しておく必要は無い。
しかし、細胞膜を破壊しなくても生成した糖が効率よく発酵される場合には、細胞膜を破壊しておく必要は無い。
密閉された系としては、密閉され且つ光照射が可能で、且つ、発生した気体（二酸化炭素、酸素）による体積変化に対応可能な容器であれば、特に限定されないが、例えば、ガラス容器、金属容器等が挙げられる。
ガラス容器の場合、光照射は、ガラス容器の外側から及び／又は内側から行うことができ、金属容器の場合は、容器の内側から光照射を行うことができる。
また、上記容器は、発生する気体に対応できるよう、発生した気体を一時的に収容できる伸縮可能な部位を備えていることが好ましい。
また、上記系は、攪拌可能であることが好ましい。
ガラス容器の場合、光照射は、ガラス容器の外側から及び／又は内側から行うことができ、金属容器の場合は、容器の内側から光照射を行うことができる。
また、上記容器は、発生する気体に対応できるよう、発生した気体を一時的に収容できる伸縮可能な部位を備えていることが好ましい。
また、上記系は、攪拌可能であることが好ましい。
また、上記ガラス容器は、例えば、発光ダイオードの周りに設置されたガラス管であって、糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
また、上記ガラス容器は、例えば、裏と表の両面から発光ダイオードの光照射が可能な、２枚のガラス板から構成され、該ガラス板の間に糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
また、上記ガラス容器は、例えば、裏と表の両面から発光ダイオードの光照射が可能な、２枚のガラス板から構成され、該ガラス板の間に糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む溶液をエタノール生成反応が可能な速度で流すことによる連続反応が可能な容器でもあり得る。
本発明のエタノールの製造方法における、エタノールを生成する生成工程は、上述の密閉された系内に発光ダイオードの光を照射することにより行われが、該生成工程において、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
の３つの反応が、前記密閉された系中で、並行して進行する。
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
の３つの反応が、前記密閉された系中で、並行して進行する。
上記ａ）の酵母による発酵により、エタノールと二酸化炭素が生成する。
生成した二酸化炭素は、植物葉緑体と発光ダイオードの光による光合成ｂ）により、糖に変換され、またこの際、酸素が発生する。
上記糖は、エタノール発酵に使用可能な糖であれば、特に限定されず、例えば、ショ糖、ブドウ糖等が挙げられる。
上記ｂ）で生成した糖は、酵母により発酵され（反応ｃ））、エタノールと二酸化炭素が生成するが、生成した二酸化炭素は、再度ｂ）の光合成、ｃ）のアルコール発酵を経由してエタノールと酸素に変換され、このサイクルを繰り返すことにより最終的に二酸化炭素はその殆ど全てが、エタノールと酸素に変換されることとなる。
従って、系中に存在する気体中の酸素濃度を測定することによって、反応の進行状況を把握することができる。
系中に存在する気体中の酸素濃度が９０％以上になるまで反応させることが好ましく、また、該濃度が９５％以上になるまで反応させることがより好ましい。
生成した二酸化炭素は、植物葉緑体と発光ダイオードの光による光合成ｂ）により、糖に変換され、またこの際、酸素が発生する。
上記糖は、エタノール発酵に使用可能な糖であれば、特に限定されず、例えば、ショ糖、ブドウ糖等が挙げられる。
上記ｂ）で生成した糖は、酵母により発酵され（反応ｃ））、エタノールと二酸化炭素が生成するが、生成した二酸化炭素は、再度ｂ）の光合成、ｃ）のアルコール発酵を経由してエタノールと酸素に変換され、このサイクルを繰り返すことにより最終的に二酸化炭素はその殆ど全てが、エタノールと酸素に変換されることとなる。
従って、系中に存在する気体中の酸素濃度を測定することによって、反応の進行状況を把握することができる。
系中に存在する気体中の酸素濃度が９０％以上になるまで反応させることが好ましく、また、該濃度が９５％以上になるまで反応させることがより好ましい。
光合成反応で使用する発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光であるのが好ましく、より好ましくは、８０％以上となる光であり、更に好ましくは９０％以上となる光である。
上記％が７０未満である場合は、エタノールの製造効率が低下する傾向にある。
また、３８０ｎｍよりも短い波長の光は、実質的に含まれない、即ち、発光量が５％以下、また、３％以下が好ましく、また、０％であるのが望ましい。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
上記％が７０未満である場合は、エタノールの製造効率が低下する傾向にある。
また、３８０ｎｍよりも短い波長の光は、実質的に含まれない、即ち、発光量が５％以下、また、３％以下が好ましく、また、０％であるのが望ましい。
尚、“３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる”とは、使用する発光ダイオードの光の発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の合計を百分率で示した値が、７０％以上となることを意味する。
本発明のエタノールの製造方法は、エタノールを生成する生成工程に加えて、生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含む。
回収工程は、反応系中からエタノールを分離し得る方法であれば、特に限定はしないが、例えば、蒸留法、膜分離法等の既知の方法を用いることができる。
また、蒸留法でエタノールを回収する場合、蒸留操作に使用する容器は、生成工程を行った容器をそのまま使用することができ、また、別容器に反応液を移し変えて使用することもできる。
本発明の好ましい態様は、前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加するエタノールの製造方法である。
更なる二酸化炭素の添加により、エタノールの製造効率を更に向上することができる。
上記更なる二酸化炭素の添加は、例えば、反応容器に、二酸化炭素の導入管を接続したり、二酸化炭素の雰囲気下に置くこと等により達成される。
尚、二酸化炭素を添加する際、二酸化炭素が外部に流出しないように、系全体として密閉されるようにする。
回収工程は、反応系中からエタノールを分離し得る方法であれば、特に限定はしないが、例えば、蒸留法、膜分離法等の既知の方法を用いることができる。
また、蒸留法でエタノールを回収する場合、蒸留操作に使用する容器は、生成工程を行った容器をそのまま使用することができ、また、別容器に反応液を移し変えて使用することもできる。
本発明の好ましい態様は、前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加するエタノールの製造方法である。
更なる二酸化炭素の添加により、エタノールの製造効率を更に向上することができる。
上記更なる二酸化炭素の添加は、例えば、反応容器に、二酸化炭素の導入管を接続したり、二酸化炭素の雰囲気下に置くこと等により達成される。
尚、二酸化炭素を添加する際、二酸化炭素が外部に流出しないように、系全体として密閉されるようにする。
本発明の好ましい態様において、前記回収工程は、蒸留により達成される。
蒸留法としては、要求されるエタノールの純度に応じて、単蒸留、共沸蒸留、ベンゼンを加えた共沸蒸留等の何れを選択することもできる。
蒸留法としては、要求されるエタノールの純度に応じて、単蒸留、共沸蒸留、ベンゼンを加えた共沸蒸留等の何れを選択することもできる。
製造例１：糖を含む固液混合物（米）の製造
食品店より購入した米粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（米）６５１ｇを調製した。
食品店より購入した米粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（米）６５１ｇを調製した。
製造例２：糖を含む固液混合物（小麦）の製造
食品店より購入した小麦粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて小麦粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（小麦）６５１ｇを調製した。
食品店より購入した小麦粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて小麦粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（小麦）６５１ｇを調製した。
製造例３：糖を含む固液混合物（トウモロコシ）の製造
食品店より購入したトウモロコシ粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけてトウモロコシ粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（トウモロコシ）６５１ｇを調製した。
食品店より購入したトウモロコシ粉３３０ｇにアミラーゼ６ｇ及び水３１５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけてトウモロコシ粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（トウモロコシ）６５１ｇを調製した。
実施例１ないし１０及び比較例１
製造例１で製造した糖を含む固液混合物（米）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１ないし１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード１００個及び緑色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１ないし１０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例１で製造した糖を含む固液混合物（米）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１ないし１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード１００個及び緑色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１ないし１０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例１１ないし２０及び比較例２
製造例２で製造した糖を含む固液混合物（小麦）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１１ないし２０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、黄色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７７％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む小麦を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７７％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１１ないし２０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例２で製造した糖を含む固液混合物（小麦）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１１ないし２０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（小麦）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例２）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、黄色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７７％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む小麦を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７７％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１１ないし２０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例２）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例２１ないし３０及び比較例３
製造例３で製造した糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１ないし３０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例３）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、４．３ないし４．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１ないし３０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例３）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例３で製造した糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１ないし３０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例３）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、４．３ないし４．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１ないし３０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例３）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例３１ないし４０及び比較例４
製造例３で製造した糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例３１ないし４０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例４）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．３ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例３１ないし４０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４）に比して、約１．６倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例２１ないし３０に比して、約１．２４倍の収量増であった。
製造例３で製造した糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２１７ｇ及び酵母３ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２２０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）を２０ｇづつ１１個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例３１ないし４０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（トウモロコシ）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例４）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個、橙色発光ダイオード１００個及び紫色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８５％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含むトウモロコシを糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８５％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．３ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例３１ないし４０）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例４）に比して、約１．６倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例２１ないし３０に比して、約１．２４倍の収量増であった。
製造例４：糖を含む固液混合物（米）の製造
食品店より購入した米粉５３０ｇにアミラーゼ（アルファアミラーゼとグルコアミラーゼの混合）１０ｇ及び水５２５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（米）１０６５ｇを調製した。
食品店より購入した米粉５３０ｇにアミラーゼ（アルファアミラーゼとグルコアミラーゼの混合）１０ｇ及び水５２５ｇを加え、ミキサーで攪拌し、湯煎して７０℃ないし８０℃に保ち、１２時間かけて米粉を糖化することにより、糖を含む固液混合物（米）１０６５ｇを調製した。
実施例４１ないし５７及び比較例５
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例４１ないし５７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例５）。
上記で用意した１８本の注射器に白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻、ｋ：ミズゴケ、ｌ：クロゴケ、ｍ：スギゴケ、ｎ：ウロコゴケ、ｏ：ゼニゴケ、ｐ：ツノゴケ、ｑ：シアノバクテリア（アオコから抽出）
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例４１ないし５７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例４１ないし５７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例５）。
上記で用意した１８本の注射器に白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻、ｋ：ミズゴケ、ｌ：クロゴケ、ｍ：スギゴケ、ｎ：ウロコゴケ、ｏ：ゼニゴケ、ｐ：ツノゴケ、ｑ：シアノバクテリア（アオコから抽出）
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例４１ないし５７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例５）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例５８ないし７４及び比較例６
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例５８ないし７４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード２００個及び緑色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７４％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７４％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例５８ないし７４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例５８ないし７４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例６）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、青色発光ダイオード２００個及び緑色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７４％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７４％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例５８ないし７４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例６）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例７５ないし９１及び比較例７
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例７５ないし９１）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例７）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び青色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例７５ないし９１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例７）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例７５ないし９１）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例７）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び青色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例７５ないし９１）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例７）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例９２ないし１０８及び比較例８
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例９２ないし１０８）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１０８）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例９２ないし１０７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８）に比して、約１．１倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１０８）は、比較例８に比して、約１．２３倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例９２ないし１０８）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例８）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１０８）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例９２ないし１０７）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例８）に比して、約１．１倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１０８）は、比較例８に比して、約１．２３倍の収量増があった。
実施例１０９ないし１２５及び比較例９
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１０９ないし１２５）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例９）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表９に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１２５）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．３ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１０９ないし１２４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例９）に比して、約１．１倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１２５）は、比較例９に比して、約１．２２倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１０９ないし１２５）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例９）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード３００個及び緑色発光ダイオード３００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、６０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表９に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が６０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１２５）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．３ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１０９ないし１２４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例９）に比して、約１．１倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１２５）は、比較例９に比して、約１．２２倍の収量増があった。
実施例１２６ないし１４２及び比較例１０
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１２６ないし１４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１０）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１０に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１２６ないし１４２）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１０）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１２６ないし１４２）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１０）。
上記で用意した１８本の注射器に青色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１０に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１２６ないし１４２）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１０）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例１４３ないし１５９及び比較例１１
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１４３ないし１５９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１１）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１４３ないし１５９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１４３ないし１５９）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１１）。
上記で用意した１８本の注射器に赤色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１１に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１４３ないし１５９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１１）に比して、約１．３倍の収量増であった。
実施例１６０ないし１７６及び比較例１２
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１６０ないし１７６）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１２）。
上記で用意した１８本の注射器に緑色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、２０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が２０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１７６）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１６０ないし１７５）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１２）に比して、約１．１５倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１７６）は、比較例１２に比して、約１．２７倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１６０ないし１７６）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１２）。
上記で用意した１８本の注射器に緑色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、２０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１２に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が２０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１７６）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１６０ないし１７５）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１２）に比して、約１．１５倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１７６）は、比較例１２に比して、約１．２７倍の収量増があった。
実施例１７７ないし１９３及び比較例１３
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１７７ないし１９３）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１３）。
上記で用意した１８本の注射器に黄色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１９３）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１７７ないし１９２）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１３）に比して、約１．１倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１９３）は、比較例１３に比して、約１．２２倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１７７ないし１９３）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１３）。
上記で用意した１８本の注射器に黄色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１３に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１９３）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．２ないし３．４ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１７７ないし１９２）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１３）に比して、約１．１倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例１９３）は、比較例１３に比して、約１．２２倍の収量増があった。
実施例１９４ないし２１０及び比較例１４
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１９４ないし２１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１４）。
上記で用意した１８本の注射器に紫色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２１０）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし４．０ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１９４ないし２０９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１４）に比して、約１．３倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２１０）は、比較例１４に比して約１．４７倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例１９４ないし２１０）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１４）。
上記で用意した１８本の注射器に紫色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、１００％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１４に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が１００％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２１０）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．８ないし４．０ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例１９４ないし２０９）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１４）に比して、約１．３倍の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２１０）は、比較例１４に比して約１．４７倍の収量増であった。
実施例２１１ないし２２７及び比較例１５
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１１ないし２２７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１５）。
上記で用意した１８本の注射器に橙色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、５０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が５０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２２７）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１１ないし２２６）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１５）に比して、約１．１５倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２２７）は、比較例１５に比して、約１．２６倍の収量増があった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、１００ｍＬの注射器に注入した（実施例２１１ないし２２７）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇを１００ｍＬの注射器に注入した（比較例１５）。
上記で用意した１８本の注射器に橙色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、５０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１５に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｑは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が５０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２２７）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．４ないし３．５ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２１１ないし２２６）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１５）に比して、約１．１５倍程度の収量増であった。ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２２７）は、比較例１５に比して、約１．２６倍の収量増があった。
実施例２２８ないし２４４及び比較例１６
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例２２８ないし２４４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例１６）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
結果：
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２４４）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．５ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２２８ないし２４３）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１６）に比して、約１．７倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例４１ないし５７に比して、約１．４倍の収量増であった。また、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２４４）は、更なる二酸化炭素を添加していない実施例５７に比して約２倍の収量増であった。
製造例４で製造した糖を含む固液混合物（米）３５５ｇ及び酵母５ｇをミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（米）３６０ｇを調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（米）を２０ｇづつ１８個の１００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１７種類を１ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各ビーカーを密閉した箱の中に置いた。
上記実験とは別に発酵実験を行い、該発酵実験から放出される二酸化炭素を、上記密閉した箱中の各ビーカーの液面で混ざるように、各ビーカーに管を通して導入した（実施例２２８ないし２４４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（米）２０ｇが入ったビーカーを上記密閉した箱中に入れた（比較例１６）。
上記の各ビーカーに白色発光ダイオード６００個から構成される発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、８０％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１６に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは上記で示したのと同じ植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
デンプンを含む米を糖化して調製された固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｑ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加して、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が８０％となる発光ダイオードの光を照射すると、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２４４）を除き、何れの植物葉緑体を用いた場合も、５．５ないし５．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２２８ないし２４３）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１６）に比して、約１．７倍の収量増であり、また、更なる二酸化炭素を添加していない実施例４１ないし５７に比して、約１．４倍の収量増であった。また、ｑのシアノバクテリアの場合（実施例２４４）は、更なる二酸化炭素を添加していない実施例５７に比して約２倍の収量増であった。
製造例５：糖を含む固液混合物（サトウキビ）の製造
食品店よりサトウキビを購入し洗浄した。サトウキビを絞った汁から砂糖を除いた液体を攪拌し、２０００ｇの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））を調製した。
食品店よりサトウキビを購入し洗浄した。サトウキビを絞った汁から砂糖を除いた液体を攪拌し、２０００ｇの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））を調製した。
製造例６：糖を含む固液混合物（黄桃）の製造
食品店より黄桃を購入し洗浄した。黄桃を粉砕し、２０００ｇの水を加えない糖を含む固液混合物（黄桃）を調製した。
食品店より黄桃を購入し洗浄した。黄桃を粉砕し、２０００ｇの水を加えない糖を含む固液混合物（黄桃）を調製した。
実施例２４５ないし２５４及び比較例１７
製造例５で製造した廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））６６０ｇ及び酵母１０ｇと８７０ｇの水をミキサーで攪拌し、酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））１５４０を調製した。
調製した酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））を１４０ｇづつ１１個の３００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を５ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、３００ｍＬの注射器に注入した（実施例２４５ないし２５４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））１４０ｇを３００ｍＬの注射器に注入した（比較例１７）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個及び青色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、９３％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
結果：
野菜類であるサトウキビを粉砕して調製された糖を含む固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が９３％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．０ないし３．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２４５ないし２５４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１７）に比して、約１．６５倍の収量増であった。
製造例５で製造した廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））６６０ｇ及び酵母１０ｇと８７０ｇの水をミキサーで攪拌し、酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））１５４０を調製した。
調製した酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））を１４０ｇづつ１１個の３００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を５ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、３００ｍＬの注射器に注入した（実施例２４５ないし２５４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの廃糖蜜（糖を含む固液混合物（サトウキビ））１４０ｇを３００ｍＬの注射器に注入した（比較例１７）。
上記で用意した１１本の注射器に白色発光ダイオード２００個、赤色発光ダイオード２００個及び青色発光ダイオード２００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、９３％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１７に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
野菜類であるサトウキビを粉砕して調製された糖を含む固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が９３％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．０ないし３．６ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２４５ないし２５４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１７）に比して、約１．６５倍の収量増であった。
実施例２５５ないし２６４及び比較例１８
製造例６で製造した糖を含む固液混合物（黄桃）６６０ｇ及び酵母１０ｇと８７０ｇの水をミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）１５４０を調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）を１４０ｇづつ１１個の３００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を５ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、３００ｍＬの注射器に注入した（実施例２５５ないし２６４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）１４０ｇを３００ｍＬの注射器に注入した（比較例１８）。
上記で用意した１１本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、緑色発光ダイオード２００個、紫色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７３％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
結果：
果実類である黄桃を粉砕して調製された糖を含む固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７３％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２５５ないし２６４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１８）に比して、約１．６４倍の収量増であった。
製造例６で製造した糖を含む固液混合物（黄桃）６６０ｇ及び酵母１０ｇと８７０ｇの水をミキサーで攪拌し、酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）１５４０を調製した。
調製した酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）を１４０ｇづつ１１個の３００ｍＬビーカーに分け、異なる植物の粉砕物１０種類を５ｇづつ各ビーカーに添加して攪拌した後、各溶液を透明ガラス製の容器である、３００ｍＬの注射器に注入した（実施例２５５ないし２６４）。
尚、比較として、植物の粉砕物を入れない酵母入りの糖を含む固液混合物（黄桃）１４０ｇを３００ｍＬの注射器に注入した（比較例１８）。
上記で用意した１１本の注射器に赤色発光ダイオード２００個、緑色発光ダイオード２００個、紫色発光ダイオード１００個及び藍色発光ダイオード１００個から構成される計６００個の発光ダイオードの光（合計で３６ワット／時）を２４時間照射した。各注射器から回収された気体の酸素濃度を酸素濃度測定器で測定した。また、発光ダイオードの発光スペクトルを測定し、記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率を求めたところ、７３％であった。
各注射器の中の溶液を蒸留し、アルコールの回収量を測定した。
測定誤差を考慮して上記操作を３回行った。
結果を表１８に纏めた。
尚、表中、記号ａないしｊは以下の植物を表わし、“面積比”は、発光スペクトルにおいて記録された全スペクトル面積に対する３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域のスペクトル面積の比率（％）を表わす。
ａ：イチョウの葉、ｂ：ソテツの葉、ｃ：稲の葉、ｄ：カワモズク、ｅ：灰色藻、ｆ：クリプト藻、ｇ：生ワカメ、ｈ：ユーグレナ藻、ｉ：クロララクニオン藻、ｊ：藍藻
果実類である黄桃を粉砕して調製された糖を含む固液混合物、酵母及び種々の植物（ａないしｊ）の植物葉緑体を含む密閉された系内に、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が７３％となる発光ダイオードの光を照射すると、何れの植物葉緑体を用いた場合も、３．３ないし３．９ｍＬ程度のエタノールが製造された（実施例２５５ないし２６４）が、これは、植物葉緑体を用いなかった場合（比較例１８）に比して、約１．６４倍の収量増であった。
本発明のエタノールの製造方法は、二酸化炭素を排出しないため、ＣＯ2削減の観点において有用な方法とえいる。また、本発明のエタノールの製造方法は、副生成物として酸素が得られるため、これを有効な資源として活用することもできる。
また、本発明のエタノールの製造方法は、外部からの二酸化炭素を取り込んでエタノールに変換し得るものであるため、二酸化炭素を固定化するという観点からも有用なエタノールの製造方法となり得るものである。
また、本発明のエタノールの製造方法は、外部からの二酸化炭素を取り込んでエタノールに変換し得るものであるため、二酸化炭素を固定化するという観点からも有用なエタノールの製造方法となり得るものである。
Claims (4)
- 糖を含む固液混合物、酵母及び植物葉緑体を含む密閉された系内において発光ダイオードの光を照射することによりエタノールを生成する生成工程と該系中から生成されたエタノールを系外に回収する回収工程とを含むエタノールの製造方法であって、
前記生成工程において、
ａ）糖を含む固液混合物を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応、
ｂ）ａ）の発酵の際に発生する二酸化炭素を、植物葉緑体と発光ダイオードの光照射により光合成させて糖とする反応、及び
ｃ）ｂ）で得られた糖を酵母により発酵させてエタノールを生成する反応
が並行して進行することを特徴とし、前記糖を含む固液混合物は、セルロース又はヘミセルロースを熱分解又は加水分解して糖化するか、デンプンを含む米、麦、芋又はトウモロコシを麹、麦芽又は酵素剤を用いて糖化するか、野菜類及び／又は果実類を粉砕するか、或いは、野菜類及び／又は果実類を粉砕した後に、加熱濃縮法、冷凍濃縮法、逆浸透濃縮法及び真空濃縮法から選ばれる１種又は２種以上の濃縮法で濃縮することにより調製されるものであり、前記植物葉緑体は、種子植物、シダ植物、藻類、コケ植物、細菌類又はこれらの混合物の植物葉緑体であるエタノールの製造方法。 - 前記発光ダイオードの光は、３８０ないし５２０ｎｍ及び６２０ないし７８０ｎｍの波長領域の発光量の合計が全波長領域に亘る発光量の７０％以上となる光である請求項１記載のエタノールの製造方法。
- 前記密閉された系内に、更なる二酸化炭素を添加する請求項１又は２記載のエタノールの製造方法。
- 前記回収工程が、蒸留によるものである請求項１ないし３の何れか１項に記載のエタノールの製造方法。
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