WO2009041858A1 - Procédé de fabrication de c-petide recombinante de la proinsuline humaine - Google Patents

Procédé de fabrication de c-petide recombinante de la proinsuline humaine Download PDF

Info

Publication number
WO2009041858A1
WO2009041858A1 PCT/RU2008/000615 RU2008000615W WO2009041858A1 WO 2009041858 A1 WO2009041858 A1 WO 2009041858A1 RU 2008000615 W RU2008000615 W RU 2008000615W WO 2009041858 A1 WO2009041858 A1 WO 2009041858A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
peptide
protein
purification
buffer
hybrid protein
Prior art date
Application number
PCT/RU2008/000615
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Petr Ivanovich Rodionov
Petr Petrovich Rodionov
Vadim Vasilievich Shmatchenko
Alexey Vyacheslavovich Stepanov
Alexandr Nikolaevich Baidus
Nikolai Viktorovich Borisov
Original Assignee
Obschestvo S Ogranichennoi Otvetstvennostyu 'gerofarm'
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Obschestvo S Ogranichennoi Otvetstvennostyu 'gerofarm' filed Critical Obschestvo S Ogranichennoi Otvetstvennostyu 'gerofarm'
Priority to EA201070372A priority Critical patent/EA201070372A1/ru
Publication of WO2009041858A1 publication Critical patent/WO2009041858A1/ru

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575—Hormones
    • C07K14/62—Insulins

Definitions

  • the invention relates to biotechnology, in particular to genetic and protein engineering, and can be used to obtain a recombinant c-peptide (proinsulin connecting peptide) of a person.
  • c-peptide with a length of 31 to 35 amino acid residues.
  • the forms differ in the content of arginine and lysine residues at the C and N ends of the polypeptide. These amino acids are not part of the molecule of mature human insulin and, according to some researchers, should belong to the c-peptide. However, only the mature c-peptide with a length of 31 amino acid residues that do not contain basic amino acids is secreted into the bloodstream.
  • the sequence of this form of c-peptide is given below.
  • the c-peptide precursor is synthesized in the islets of Langerhans by specialized pancreatic cells as part of the preprohormone
  • preproinsulin (preproinsulin).
  • the formation of the c-peptide occurs in the same place as a result of post-translational modifications.
  • the signal sequence is cleaved from preproinsulin - an N-terminal fragment containing
  • a well-known supplier of reagents - Sigma- ⁇ ldrivich Corporation - offers a c-peptide having a purity of 85% at a price of 371.5 euros per 250 micrograms of the drug [Sigma Catalog 2006-2007, p.706].
  • Another corporation is Rochepix Rharmaceutisals, Ips. - Offers 200 mcg of the drug for $ 75.00.
  • the c-peptide is secreted in an equimolar ratio with insulin.
  • the exact amount needed by patients with diabetes is currently undetermined. Assuming that patients require equimolar administration of insulin and c-peptide preparations, approximately 1.5 mg of c-peptide will be required with a daily dose of 3 mg insulin. Thus, when using the c-peptide available on the market, the cost of treating one patient for a month will be more than $ 15,000. However, its quality does not meet the requirements for pharmacological preparations.
  • a chimeric protein is created in which the leader fragment is followed by c-peptide sequences separated by amino acids providing hydrolysis with specific proteases.
  • microorganisms are cultured in fermenters, then synthesis of a recombinant polypeptide is induced in them; the cells are destroyed, and the recombinant protein is purified and processed with specific proteases, resulting in a c-peptide.
  • the c-peptide is purified from impurities.
  • This method can provide large volumes of production, but it requires the creation of producer strains, development of the conditions for the cultivation of microorganisms, methods for purification of recombinant protein, as well as the creation and validation of quality control methods.
  • This production method consists in introducing some modifications into the technology for producing recombinant insulin in order to optimize the production of a c-peptide formed at certain stages of production, which is based on the production of non-modifying proinsulin.
  • This method has several advantages. To obtain a c-peptide in this way, it is not necessary to create new producer strains, to refine the technology of protein purification and folding, to create new instrumental methods for controlling the production process.
  • the raw material for the production of the c-peptide in this case, is the waste generated by the production of recombinant insulin.
  • the method consists in cultivating a producer strain of E. coli producing proinsulin containing two synthetic IgG binding domains of staphylococcal protein A. The authors were able to achieve high productivity of the producer strain by using their developed rich nutrient medium. The proinsulin yield was 3 g / l of culture medium.
  • the isolation scheme consisted in the destruction of bacterial cells, obtaining “inclusion bodies)) containing proinsulin, dissolution of“ inclusion bodies)), oxidative sulfitolysis of proinsulin, its renaturation, purification of the renatured protein by affinity chromatography on IgG-sepharose, cleavage of proinsulin with proteolytic enzymes (trypsin and carboxypeptidase B) and final purification of insulin and c-peptide by high-performance liquid phase chromatography with reverse phase.
  • the disadvantages of this method are: A) the use of a rich nutrient medium for growing a microorganism, a long growing time (about 34 hours), the high cost of the target product due to the use of an affinity sorbent for cleaning, which is expensive to manufacture and short-lived in industrial use.
  • the disadvantage can also be considered the use of Tweep 20 detergent in the technology of insulin and c-peptide production. It is known that the use of detergents in the isolation of proteins leads to their sorption on the protein and the presence of detergent in the final product. Also, purification of the c-peptide only by reverse phase chromatography leads to a low yield at this stage, which is only 44%.
  • the present invention eliminates the disadvantages of the methods for producing the c-peptide.
  • the present invention describes a method for producing a recombinant c-peptide that is fully compatible with the existing technology for producing recombinant human insulin, disclosed in patent of the Russian Federation RU2144957, publication date January 27, 2000.
  • the essence of the invention consists in a method for producing a recombinant human c-peptide, which includes culturing the producer strain Escherichia coli, destroying bacterial cells by disintegration, separating “inclusion bodies”) containing a hybrid protein, dissolving them in a buffer containing urea and dithiothreitol, renaturation and renaturation and renaturation hybrid protein, its cleavage with trypsin and carboxypeptidase B, followed by purification and obtaining the target product.
  • the strain Escherichia coli JM109 / pPINS07 is used as the producer strain; the renatured hybrid protein is purified by precipitation of impurity compounds acidification to pH 4.0-6.0 followed by chromatography of the supernatant on KM-sepharose, cleavage of the fusion protein with trypsin and carboxypeptidase B is carried out simultaneously, while trypsinolysis products are separated by chromatography on CP-sepharose, equilibrated 0.03-0.1 M ammonium acetate buffer, pH 5.0-6.0, containing 3 M urea, with elution with a linear gradient of potassium chloride from 0 to 0.5 M in the starting buffer. Protein material that is not sorbed under these conditions and contains a c-peptide is collected and then the c-peptide is purified on anion-exchange sorbents and by reverse phase high-performance chromatography.
  • the main difference of this method of producing a c-peptide is that its production does not require expenses for the cultivation of the microorganism, isolation and purification of the hybrid protein, as well as for enzyme treatment, since under the selected conditions for the hydrolysis of the hybrid protein, the c-peptide does not break down and retains its structure.
  • a recombinant strain of the bacterium Escherichia coli JM109 / pPINS07 is used, a derivative of a hybrid polypeptide containing human proinsulin.
  • the strain was deposited in the Central collection of microorganisms of the Russian joint-stock company “BIOPEPAPAT” CCMC “B” under Ns CCM B-66IN.
  • the cultivation of the seed and main culture of the recombinant strain is carried out on a nutrient medium containing in g / l: hydrochloric acid casein hydrolyzate - 20, baker's yeast extract - 14, disubstituted potassium phosphate three-water - 6, monosubstituted potassium phosphate - 3, magnesium sulfate - 0.5, sodium chloride - 5, glucose - 10, ampicillin sodium salt - 0.05, water purified - the rest.
  • the seed is used for sowing a fermenter with a total capacity of 200-1500 liters.
  • 1-isopropyl-PBl-thiogalactopyranoside is introduced.
  • the concentration of dissolved oxygen is maintained at 40 ⁇ 15%, the amount of glucose introduced is regulated by the level of dissolved oxygen and pH.
  • the culture is concentrated on a separator and destroyed on a Gaulin homogenizer in 0.1 M Tris buffer containing 1.5 M urea and 1 mM EDTA. “Inclusion bodies)) are separated by centrifugation.
  • the selection of the hybrid protein from the granules is carried out according to the following scheme.
  • “Inclusion bodies)) is dissolved in a buffer containing 0.1 M Tris, 8 M urea, after which 5-10 mM dithiothreitol is added.
  • the precipitate formed is separated by microfiltration.
  • Purification of the hybrid protein is carried out by chromatography on KM-Sepharose, balanced with 0.05 Tris-Hcl buffer, pH 7.0-7.5. Protein is eluted with a balancing buffer containing 0.25 M NaCl and 1.5 M urea. Enzymatic cleavage of the hybrid protein with trypsin and carboxypeptidase B is carried out at a ratio of carboxypeptidase: hybrid protein of 0.3: 1000. The ratio of trypsin: carboxypeptidase B is 0.75: 1. The reaction is started at a temperature of 8.5-9.5 0 C, then the reaction mixture is gradually heated to 17-20 0 C. After completion of the process, the reaction is stopped by acidification with trifluoroacetic acid to pH 3.3.
  • Trypsinolysis products are chromatographed on SP-Sepharose, equilibrated with 0.03 M ammonium acetate buffer, pH 3.6, containing 3 M urea. At this stage, insulin is adsorbed onto the carrier, and the c-peptide elutes in the breakthrough fractions.
  • the breakthrough fractions are diluted in the ratio of water: material - 3: 1 and the pH is adjusted to a value of 4.0-6.0. Then this material is subjected to chromatography on an anion-exchange sorbent. Elution is carried out in Tris Acetate pH buffer 5.0 increasing the gradient of potassium chloride to 0.5 M.
  • Fractions containing pure material are purified using standard preparative reverse phase chromatography equipment. Pure material is freeze dried and stored as such until use.
  • a nutrient medium of the following composition is used (g / l):
  • the experimental industrial line for growing producer biomass consists of a rocking-incubator for 12 shaking full-time flasks and fermenters with a capacity of 15, 150 and 1500 liters. Sowing crops are prepared in the amount of 1/10 of the volume of sown nutrient medium.
  • 2 flasks with a nutrient medium are inoculated with the contents of one ampoule with a working culture and incubated in a shaker at 37 ° C for 18 hours.
  • a grown culture is seeded with 10-12 flasks containing 100 ml of culture medium and grown to an optical density (OD) of 4-6 units. (wavelength - 540 nm, optical path length - 10 mm).
  • a custom-made fermenter chain has a consistent geometric, physical and mass transfer characteristics. Management of the preparation of culture media and cultivation is carried out according to the programs embedded in computers.
  • Structural-morphological analysis is carried out for all inoculum crops, in which not only the “purity” of the crops is evaluated, but also the morphological structure of the cells of the microorganism. Based on the results of the analysis, a decision is made on the possibility of further use of seed.
  • the cultivation of the main culture of the producer is carried out in a fermenter with a total capacity of 1500 liters.
  • the composition of the nutrient medium and the basic cultivation conditions are the same as for inoculum crops, however, to induce the biosynthesis of a hybrid protein at a certain stage of culture development, the inducer 1-isopropyl-pOl-thiogalactopyranoside is introduced into it.
  • the maximum accumulation of the hybrid protein occurs when the induction of the hybrid protein is provoked in the middle of the logarithmic growth phase. For our growing conditions, this corresponds to an accumulation of biomass of 7-10 units.
  • OP After the addition of the inducer, growth is continued until the formation of intracellular inclusions of the fusion protein “inclusion body)) in 90-95% of the cells.
  • Express- control of the accumulation process "inclusion body)) (TV) is carried out using phase-contrast microscopy of the" diluted drop "preparations.
  • the main process parameters are given in the table.
  • the growth of the culture in the fermenter is stopped by a sharp reduction in the intensity of mixing, including aeration, and cooling to 10-14 ° C.
  • the cooled culture is concentrated on the separator by 8-10 times. 100-125 L of suspension is obtained, into which a buffer concentrate is introduced (for 50 L of purified water - 15 kg of urea, 1.4 kg of sodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid and 0.9 kg Tris buffer)
  • the buffered suspension is passed twice through a Gaulin homogenizer at a pressure of 700-800 atm.
  • the temperature of the suspension should not be higher than 15-2O 0 C, which is achieved by cooling the feeder and receiver of the homogenizer.
  • the bulk of the inclusion body)) (not less than 90%) is deposited in the centrifuge rotor, and soluble proteins and cell wall residues are discharged from the centrifuge into the collection for inactivation.
  • Wet cake (inclusion body)) 8-10 kg, unloaded from the rotor of the centrifuge, packed in a plastic container, frozen and stored in a freezer at a temperature of minus 4O 0 C. Storage period - up to 6 months. Losses of the hybrid protein during the isolation of “inclusion bodies” do not exceed 15%.
  • 900 l of glycine-NaOH buffer, pH 9-11, are poured into a reactor with a 1200-liter jacket; it is cooled to a temperature of 10-14 ° C by feeding chilled water to the jacket. After the buffer is cooled, the hybrid protein solution with reduced disulfide bonds is pumped into the reactor. The hybrid protein solution is incubated for 20-24 hours, mixing and maintaining the temperature in the reactor 10-14 0 C.
  • the reaction medium is acidified in the reactor to a pH of 4.0-5.5 with hydrochloric acid solution. Stirring is stopped and after 4-5 hours the precipitate formed is separated on a microfiltration unit. A correctly folded fusion protein is sorbed from the filtrate onto a 20 L ion exchange column filled with KM Sepharose, previously equilibrated 0.05
  • Sorbed protein elute from the column, passing through it balancing buffer with the addition of 0.25 M NaCl and 1.5 M urea.
  • the GB solution in an amount of 100-150 l (protein content 1-1.2 kg) is introduced into the reactor, the mixing device is turned on and chilled water is supplied to the jacket at a temperature of 8-9 0 C. 30-40 minutes after the GB solution is cooled to a temperature of 10-12 0 C, measure the pH of the GB solution and with the help of a 1 M solution of tris- (oxymethyl) aminomethane adjust its value to pH 7.0-7.5. Then, a solution of carboxypeptidase B and trypsin is introduced into the reactor on the basis that the mass ratio of carboxypeptidase B and fusion protein introduced into the reactor is 0.3: 1000, and the mass ratio of trypsin and carboxypeptidase B is 0.75: 1. After 1000-1200 min, the reaction of cleavage of GB with trypsin was stopped by acidifying the contents of the reactor with trifluoroacetic acid to a pH of 3.3.
  • the resulting solution was applied to a 20 L chromatographic column filled with SP-Sepharose, previously equilibrated with 0.03 M ammonium acetate buffer, pH 3.6 with 3 M urea, and fractions containing c-peptide were collected. At this stage, insulin is adsorbed on the CP-sepharose, and the c-peptide does not interact with the sorbent and leaves in the breakthrough fractions.
  • the fractions containing c-peptide are combined, diluted with water in a volume ratio of material: water of 3: 1, and after adjusting the pH to 4-6, apply to the column.
  • the column is then washed with 20 mM Tris-Acetate buffer, pH 5.0, until the baseline of the control flow densitometer is reached.
  • the sorbed c-peptide is eluted with a linear gradient of potassium chloride from 0 to 0.5 M in the same buffer.
  • control is carried out by analytical reverse-phase high-performance liquid chromatography - RP HPLC), and transfer to the preparative RP HPLC step. Then the pH of the solution is adjusted to a value of 6.3-6.5
  • control unit double-head high-pressure diaphragm pump, high-pressure pump for injecting separation samples, variable-wavelength ultraviolet detector, preparative column with radial compression device, pneumatically controlled outlet flow valves, control computer and data processing.
  • the preparation of the chromatographic setup for operation is carried out according to the manufacturer's instructions for the individual units and the entire installation.
  • a solution of c-peptide from the previous step in the amount of 35-40 g of protein is supplied to the prepared column using a pump for supplying a sample from the container. They turn on the programming device and carry out the division according to the following program:
  • the separation process is recorded at 220 nm on a flow spectrophotometer with a sensitivity of 2.0. Protein fractions are collected using a chromatograph collector or manually. The collected fractions of the main peak of the c-peptide are analyzed for impurities by analytical reverse phase high performance liquid chromatography. The yield of c-peptide at this stage exceeds 80%. Thus, the total yield of the two stages of chromatographic purification is more than 70%, which is more than 1.5 times higher than the obtained Nilssop et al.
  • Fractions containing at least 95% c-peptide are combined in a jacketed glass reactor with temperature and pH sensors. Then the pH of the solution is adjusted to a value of 6.3-6.5 with 10% ammonia solution. The material undergoes sterilizing filtration and is poured into vials under sterile conditions. Then freeze-drying of the preparation and capping of the vials under sterile conditions are carried out.
  • this method allows to obtain in high yield human proinsulin c-peptide with a purity of at least 95% from waste generated in the process of producing recombinant human insulin.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО с-ПЕПТИДА ПРОИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА
Область техники, к которой относится изобретение.
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генной и белковой инженерии, и может быть использовано для получения рекомбинантного с-пептида (соединительного пептида проинсулина) человека.
Предшествующий уровень техники
Различают несколько форм с-пептида длиной от 31 до 35 аминокислотных остатков. Формы различаются содержанием остатков аргинина и лизина на С- и N- концах полипептида. Эти аминокислоты не входят в состав молекулы зрелого инсулина человека и, по мнению некоторых исследователей, должны относиться к с-пептиду. Однако в кровеносное русло секретируется только зрелый с-пептид длиной 31 аминокислотный остаток, не содержащий основных аминокислот. Последовательность этой формы с-пептида приведена ниже. GIu AIa GIu Аsр Lеи GIn VaI GIy GIn VaI GIu Lеи GIy GIy GIy
Рrо GIy AIa GIy Sеr Lеи GIn Рrо Lеи AIa Lеи GIu GIy Sеr Lеи GIn
Предшественник с-пептида синтезируется в островках Лангерганса специализированными клетками поджелудочной железы в составе препрогормона
(препроинсулина). Образование с-пептида происходит там же в результате посттрансляционных модификаций. На первом этапе от препроинсулина отщепляется сигнальная последовательность - N-концевой фрагмент, содержащий
23 аминокислотных остатка. Из образовавшегося проинсулина (86 аминокислотных остатков) в комплексе Гольджи, при участии специфических пептидаз, происходит образование зрелого с-пептида (31 аминокислотный остаток). Впоследствии он секретируется в кровеносное русло в эквимолярном соотношении с инсулином. с-Пептид проинсулина человека был описан в 60-х годах XX века. Первоначальные исследования не обнаружили существование у него специфической биологической функции. Долгое время считалось, что он необходим только для образования правильной конформации белковой молекулы инсулина. В начале 90-х годов XX века [Jоhапssоп еt аl., 1992] появилось много сведений о применении с-пептида для профилактики и лечения осложнений, связанных с диабетом. с-Пептид с успехом применялся для улучшения состояния пациентов, страдающих от ретинопатии, ангиопатии и нефропатии - основных факторов инвалидизации и смертности при диабете [Idо, Sсiепсе, 1997, 277, 563- 566; Fоrst, 1998, Ехр. CHn. Епdосriпоl. Diаbеtеs, 106, 270-276 и др.]. Однако в настоящее время крупномасштабные исследования и применение в клиниках затруднены из-за недостатка с-пептида на рынке, его высокой стоимости и низкого качества. Так, например, известный поставщик реактивов - корпорация Sigmа- Аldriсh - предлагает с-пептид, имеющий чистоту 85% по цене 371,5 евро за 250 мкг препарата [Каталог Sigmа 2006-2007, c.706]. Другая корпорация - Рhоепiх Рhаrmасеutiсаls, Iпс. - предлагает 200 мкг препарата по цене 75,00 долларов.
При этом компания не указывает никаких данных относительно качества продаваемого пептида.
В организме здорового человека с-пептид секретируется в эквимолярном соотношении с инсулином. Точное количество, необходимое пациентам, страдающим диабетом, в настоящее время не определено. Если допустить, что больным необходимо эквимолярное введение препаратов инсулина и с-пептида, то при суточной дозе инсулина 3 мг потребуется введение приблизительно 1,5 мг с- пептида. Таким образом, при применении с-пептида, имеющегося на рынке, стоимость терапии одного пациента в течение месяца будет составлять более 15000 долларов. При этом его качество не удовлетворяет требованиям, предъявляемым к фармакологическим препаратам.
В отличие от инсулина аминокислотная последовательность с-пептида сильно отличается у разных видов млекопитающих, что делает невозможным получение его из животного сырья. Существующие способы получения с-пептида, можно разделить на три категории:
1) Получение с-пептида химическим синтезом. Этим способом получено большинство препарата, представленного на рынке в настоящее время [Sigmа- Аldriсh, Рhоепiх Рhаrmасеutiсаls, Iпс. и др.].
2) Получение с-пептида биосинтетическими методами в составе слитых белков [Нuапg, Асtа Вiосhim. Вiорhуs. Siп. 2006, 38: 586-592; Jопаssоп, Jоumаl оf
Вiоtесhпоlоgу 76 (2000) 215-226]. Для получения с-пептида этим способом создается химерный белок, в котором за лидерным фрагментом следуют несколько последовательностей с-пептида, разделенных аминокислотами, обеспечивающих гидролиз специфическими протеазами. На первом этапе происходит культивирование микроорганизмов в ферментерах, затем в них индуцируется синтез рекомбинантного полипептида; клетки разрушаются, и рекомбинантный белок очищается и обрабатывается специфическими протеазами, приводящими к получению с-пептида. На заключительном этапе происходит очистка с-пептида от примесей. Данный способ может обеспечить большие объемы производства, но требует создания штаммов-продуцентов, отработки условий культивирования микроорганизмов, способов очистки рекомбинантного белка, а также создания и валидации методов контроля качества.
3) Получение с-пептида биосинтетическими методами совместно с инсулином. Этот способ производства заключается во введении некоторых модификаций в технологию получения рекомбинантного инсулина с целью оптимизации получения с-пептида, образующегося на определенных этапах производства, в основе которого лежит получение проинсулина, не подвергающегося модификациям. Данный способ имеет ряд преимуществ. Для получения с-пептида этим способом не требуется создания новых штаммов- продуцентов, отработки технологии очистки и сворачивания белка, создания новых инструментальных методов контроля производственного процесса. Кроме того, сырьем для получения с-пептида, в данном случае, являются отходы, образующиеся при производстве рекомбинантного инсулина. Наиболее близким по технической сущности к заявляемому изобретению является способ получения с-пептида, предложенный J. Nilssоп с соавторами (1). Способ заключается в культивировании штамма-продуцента Е.соli, продуцирующего проинсулин, содержащий два синтетических IgG связывающих домена стафилококкового белка А. Авторам удалось добиться высокой продуктивности штамма-продуцента за счет использования ими разработанной богатой питательной среды. Выход проинсулина составлял 3 г/л питательной среды. Схема выделения заключалась в разрушении бактериальных клеток, получении «тeлeц включения)), содержащих проинсулин, растворении «тeлeц включения)), окислительного сульфитолиза проинсулина, его ренатурации, очистке ренатурированного белка аффинной хроматографией на IgG-сефарозе, расщеплении проинсулина протеолитическими ферментами (трипсином и карбоксипептидазой В) и заключительной очистке инсулина и с-пептида высокоэффективной жидкостной хроматографией с обращенной фазой. Недостатками данного способа являются: А) использование богатой питательной среды для выращивания микроорганизма, длительное время выращивания (около 34 час), высокая себестоимость целевого продукта, обусловленная использованием для очистки аффинного сорбента, дорогого в производстве и недолговечного при промышленном использовании. Недостатком также можно считать использование в технологии получения инсулина и с-пептида детергента Тwееп 20. Известно, что использование детергентов при выделении белков приводит к их сорбции на белок и присутствию детергента в конечном продукте. Также очистка с-пептида только методом хроматографии с обращенной фазой приводит к низкому выходу на данной стадии, которая составляет всего 44%. Б) Выделение и очистка проинсулина как промежуточного продукта усложняет процесс и снижает выход целевых продуктов.
Настоящее изобретение устраняет имеющиеся недостатки способов получения с-пептида.
Сущность изобретения В данном изобретении описывается способ получения рекомбинантного с- пептида, который полностью совместим с существующей технологией получения рекомбинантного инсулина человека, раскрытый в патенте Российской Федерации RU2144957, дата публикации 27 января 2000 г.
Сущность изобретения состоит в способе получения рекомбинантного с- пептида человека, включающем культивирование штамма-продуцента Еsсhеriсhiа соli, разрушение бактериальных клеток дезинтеграцией, отделение «тeлeц включения)), содержащих гибридный белок, их растворение в буфере, содержащем мочевину и дитиотреитол, ренатурацию и очистку ренатурированного гибридного белка, его расщепление трипсином и карбоксипептидазой В с последующей очисткой и получением целевого продукта. В качестве штамма-продуцента используют штамм Еsсhеriсhiа соli JM109/pPINS07, очистку ренатурированного гибридного белка осуществляют путем осаждения примесных соединений подкислением до рН 4,0-6,0 с последующей хроматографией надосадочной жидкости на КМ-сефарозе, расщепление гибридного белка трипсином и карбоксипептидазой В осуществляют одновременно, при этом продукты трипсинолиза разделяют хроматографией на SР-сефарозе, уравновешенной 0,03-0,1 M аммоний-ацетатным буфером, рН 5,0-6,0, содержащим 3 M мочевины, с элюцией линейным градиентом хлористого калия от 0 до 0,5 M в стартовом буфере. Белковый материал, не сорбирующийся при данных условиях и содержащий с-пептид, собирают и затем проводят очистку с-пептида на анионообменных сорбентах и методами обращенно-фазовой высокоэффективной хроматографии.
Основное отличие данного способа получения с-пептида заключается в том, что для его производства не требуется расходов на культивирование микроорганизма, выделение и очистку гибридного белка, а также на ферментную обработку, так как при выбранных условиях гидролиза гибридного белка с-пептид не разрушается и сохраняет свою структуру.
К числу непосредственных затрат на производство с-пептида относятся затраты, связанные с двумя стадиями хроматографической очистки и лиофилизацией. Причем за счет применения анионообменной хроматографии низкого давления удается существенно продлить ресурс сорбентов, применяемых для высокоэффективной хроматографии, и повысить выход с-пептида на стадии очистки.
Наилучший вариант осуществления настоящего изобретения Для получения рекомбинантного с-пептида человека используют рекомбинантный штамм бактерии Еsсhеriсhiа соli JM109/pPINS07-пpoдyцeнт гибридного полипептида, содержащего проинсулин человека. Штамм депонирован в Центральной коллекции микроорганизмов Российского акционерного общества «БИOПPEПAPAT» ЦКМК «Б» под Ns ЦКМ B-66ИH.
Выращивание посевной и основной культуры рекомбинантного штамма проводят на питательной среде, содержащей в г/л: гидролизат казеина солянокислый - 20, экстракт пекарских дрожжей - 14, двузамещенный фосфат калия трехводный - 6, однозамещенный фосфат калия - 3, сульфат магния - 0,5, натрий хлористый - 5, глюкозу - 10, ампициллина натриевую соль - 0,05, воду очищенную - остальное. Посевной материал используют для засева ферментера общей емкостью 200-1500 л. Для индукции синтеза гибридного белка в середине логарифмической фазы роста вносят 1-изoпpoпил-P-B-l-тиoгaлaктoпиpaнoзид. В процессе выращивания концентрацию растворенного кислорода поддерживают на уровне 40±15%, количество вводимой глюкозы регулируют по уровню растворенного кислорода и рН. После окончания выращивания культуру концентрируют на сепараторе и разрушают на гомогенизаторе Гаулина в 0,1 M Трис-буфере, содержащем 1,5 M мочевины и 1 мМ ЭДТА. «Teльцa включения)) отделяют центрифугированием. Выделение гибридного белка из гранул проводят по следующей схеме.
«Teльцa включения)) растворяют в буфере, содержащем 0,1 M Трис, 8 M мочевину, после чего добавляют 5-10 мМ дитиотреитола.
Гибридный белок ренатурируют путем инкубации в 5- 10-кратном объеме 0,1 M глицин-NаОН буфера, рН 9-11 при t = 10-140C. Кислотное осаждение проводят доведением рН до 4,0-6,0 раствором HCl.
Образовавшийся осадок отделяют микрофильтрацией.
Очистку гибридного белка проводят хроматографией на КМ-сефарозе, уравновешенной 0,05 трис-НСl буфером, рН 7,0-7,5. Белок элюируют уравновешивающим буфером, содержащим 0,25 M NaCl и 1,5 M мочевины. Ферментативное расщепление гибридного белка трипсином и карбоксипептидазой В проводят при соотношении кapбoкcипeптидaзa:гибpидный белок - 0,3:1000. Соотношение тpипcин:кapбoкcипeптидaзы В составляет 0,75:1. Реакцию начинают при температуре 8,5-9,50C, затем реакционную смесь постепенно нагревают до 17-200C. После завершения процесса реакцию останавливают подкислением трифторуксусной кислотой до рН 3,3.
Продукты трипсинолиза хроматографируют на SР-сефарозе, уравновешенной 0,03 M аммоний-ацетатным буфером, рН 3,6, содержащим 3 M мочевину. На этой стадии инсулин сорбируется на носитель, а с-пептид элюируется во фракциях проскока. Фракции проскока разводят в соотношении вoдa:мaтepиaл - 3:1 и доводят рН до величины 4,0-6,0. Затем этот материал подвергается хроматографии на анионообменном сорбенте. Элюция осуществляется в трис-ацетатном буфере рН 5,0 повышением градиента хлористого калия до 0,5 M.
Фракции, содержащие чистый материал, подвергают очистке на стандартном оборудовании для препаративной обращенно-фазной хроматографии. Чистый материал подвергается лиофильной сушке и хранится в таком виде до использования.
Пример получения с-пептида на опытно-промышленном оборудовании 1. Выращивание биомассы продуцента, содержащей гибридный белок Рабочую культуру клеток рекомбинантного штамма Еsсhеriсhiа соli JM109/pPINS07-пpoдyцeнтa гибридного полипептида (белка), содержащего проинсулин человека, хранят в водно-глицериновом растворе в стеклянных или полимерных ампулах при температуре минус 4O0C.
На всех стадиях размножения микробных культур используют питательную среду следующего состава (г/л):
Таблица 1
Figure imgf000009_0001
Опытно-промышленная линия для выращивания биомассы продуцента состоит из качалки-инкубатора на 12 качал очных колб и ферментеров вместимостью 15, 150 и 1500 л. Посевные культуры готовят в количестве 1/10 от объема засеваемой питательной среды. На первом этапе размножения 2 колбы с питательной средой засевают содержимым одной ампулы с рабочей культурой и инкубируют в качалке при 370C в течение 18 час. Выращенной культурой засевают 10-12 колб, содержащих по 100 мл питательной среды, и выращивают до оптической плотности (ОП) 4-6 ед. (длина волны - 540 нм, длина оптического пути - 10 мм).
Цепь ферментеров, изготовленная по индивидуальному заказу, имеет согласованные геометрические, физические и масс-обменные характеристики. Управление процессами подготовки питательных сред и проведения культивирования осуществляется по программам, заложенным в компьютеры.
Основные условия выращивания посевных культур
Таблица 2
Для всех посевных культур проводят структурно-морфологический анализ, при котором оценивается не только «чиcтoтa» культур, но и морфологическая структура клеток микроорганизма. По результатам анализа принимается решение о возможности дальнейшего использования посевного материала.
Выращивание основной культуры продуцента проводят в ферментере общей емкостью 1500 л. Состав питательной среды и основные условия культивирования такие же, как и для посевных культур, однако для индуцирования биосинтеза гибридного белка на определенной стадии развития культуры в нее вносится индуктор 1-изoпpoшш-p-O-l-тиoгaлaктoпиpaнoзид. Максимальное накопление гибридного белка происходит в том случае, когда индукцию гибридного белка провоцируют в середине логарифмической фазы роста. Для выбранных нами условий выращивания это соответствует накоплению биомассы 7-10 ед. ОП. После добавления индуктора выращивание продолжают до образования внутриклеточных включений гибридного белка «тeлeц включения)) у 90-95% клеток. Экспресс- контроль процесса накопления «тeлeц включения)) (ТВ) осуществляют с помощью фазово-контрастной микроскопии препаратов «paздaвлeннaя кaпля». Основные параметры процесса приведены в таблице.
Таблица 3
Figure imgf000011_0001
После образования ТВ у 90-95% клеток дальнейшее культивирование может привести к частичному лизису клеток и потере накопленного гибридного белка.
Согласно результатам ретроспективного анализа в культурах накапливается до 3 г/л гибридного белка.
2. Выделение «тeлeц включения))
Рост культуры в ферментере останавливают путем резкого сокращения интенсивности перемешивания, включая аэрацию, и охлаждение до 10-140C. Охлажденную культуру концентрируют на сепараторе в 8-10 раз. Получают 100- 125 л суспензии, в которую вводят концентрат буфера (на 50 л воды очищенной - 15 кг мочевины, 1,4 кг натриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты и 0,9 кг Трис-буфера)
Забуференную суспензию дважды пропускают через гомогенизатор Гаулина при давлении 700-800 атм. Температура суспензии не должна быть выше 15-2O0C, что достигается охлаждением питателя и приемника гомогенизатора. Гомогенат клеток пропускают через проточную центрифугу (g = 18000).
Основная масса «тeлeц включения)) (не менее 90%) осаждается в роторе центрифуги, а растворимые белки и остатки клеточных стенок сбрасываются из центрифуги в сборник для инактивации. Влажный осадок «тeлeц включения)), 8-10 кг, выгружают из ротора центрифуги, фасуют в полиэтиленовую тару, замораживают и хранят в морозильнике при температуре минус 4O0C. Срок хранения - до 6 месяцев. Потери гибридного белка при выделении «тeлeц включения » не превышают 15%.
3. Выделение гибридного белка
В реактор объемом 250 л заливают 100 л буферного раствора, содержащего 8M мочевины, загружают 10-12 кг пасты «тeлeц включения)) и включают перемешивающее устройство. После растворения «тeлeц включения)) добавляют в реактор 0,150 кг дитиотреитола и продолжают перемешивать в течение 10-12 час.
В реактор с рубашкой объемом 1200 л заливают 900 л глицин-NаОН буфера, рН 9-11 и охлаждают его до температуры 10-140C, подавая в рубашку охлажденную воду. После того как буфер охладится, начинают насосом подавать в реактор раствор гибридного белка с восстановленными дисульфидными связями, В течение 20-24 час инкубируют раствор гибридного белка, перемешивая и поддерживая температуру в реакторе 10-140C.
После того как 75-80% гибридного белка (ГБ) ренатурирует с образованием правильно замкнутых S-S связей (контроль методом ОФ ВЭЖХ), проводят подкисление реакционной среды в реакторе до рН 4,0-5,5 раствором соляной кислоты. Останавливают перемешивание и через 4-5 час отделяют сформировавшийся осадок на микрофильтрационной установке. Правильно свернутый гибридный белок сорбируют из фильтрата на ионообменную колонку объемом 20 л, заполненную КМ-сефарозой, предварительно уравновешенной 0,05
M трис-НСl буфером, рН 7,0-7,5.
Сорбированный белок элюируют с колонки, пропуская через нее уравновешивающий буфер с добавлением 0,25 M NaCl и 1,5 M мочевины.
Фракции, содержащие гибридный белок с чистотой не менее 95% (ОФ ВЭЖХ), объединяют и используют для дальнейшей работы.
4. Ферментативный гидролиз гибридного белка Расщепление ГБ трипсином и карбоксипептидазой В ведут в реакторе из нержавеющей стали, снабженном перемешивающим устройством и рубашкой.
Раствор ГБ в количестве 100-150 л (содержание белка 1-1,2 кг) вносят в реактор, включают перемешивающее устройство и подают в рубашку охлажденную воду с температурой 8-90C. Через 30-40 мин после того как раствор ГБ охладится до температуры 10-120C, измеряют показатель рН раствора ГБ и с помощью 1 M раствора тpиc-(oкcимeтил)aминoмeтaнa доводят его значение до рН 7,0-7,5. Затем в реактор вносят раствор карбоксипептидазы В и трипсина из расчета, что массовое соотношение внесенной в реактор карбоксипептидазы В и гибридного белка равно 0,3:1000, а массовое соотношение трипсина и карбоксипептидазы В составляет 0,75:1. Через 1000-1200 мин реакцию расщепления ГБ трипсином останавливают, подкисляя содержимое реактора трифторуксусной кислотой до рН 3,3.
Полученный раствор наносят на хроматографическую колонку объемом 20 л, заполненную SР-сефарозой, предварительно уравновешенной 0,03 M аммоний- ацетатным буфером, рН 3,6 с добавкой 3 M мочевины и собирают фракции, содержащие с-пептид. На данной стадии на SР-сефарозу сорбируется инсулин, а с- пептид не взаимодействует с сорбентом и выходит во фракциях проскока.
Фракции, содержащие с-пептид, объединяют, разводят водой в объемном соотношении материал :вoдa 3:1 и после подведения рН до 4-6 наносят на колонку. Затем колонку промывают 20 мМ трис-ацетатным буфером, рН 5,0 до достижения базовой линии контрольного проточного денситометра. Сорбированный с-пептид элюируют линейным градиентом хлористого калия от 0 до 0,5 M в том же буфере.
Объединяют фракции, содержащие с-пептид с чистотой не менее 90%
(контроль осуществляется методом аналитической обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии - ОФ ВЭЖХ), и передают на стадию препаративной ОФ ВЭЖХ. Затем доводят рН раствора до значения 6,3-6,5
10% раствором аммиака. Средний выход на данной стадии очистки превышает 85%.
5. Очистка с-пептида методом препаративной обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографией (ОФ ВЭЖХ)
Очистку с-пептида методом ОФ ВЭЖХ проводят на стандартном оборудовании Кilорrер 250 фирмы Wаtеrs, США или аналогичном оборудовании других фирм. Установка включает в свой состав следующие элементы: блок управления, двуголовочный мембранный насос высокого давления, насос высокого давления для закачки пробы на разделение, ультрафиолетовый детектор с переменной длиной волны, препаративная колонка с устройством для радиального сжатия, пневморегулируемые клапаны потока на выходе, компьютер для управления и обработки данных.
Подготовку хроматографической установки к работе проводят согласно инструкции фирмы-изготовителя для отдельных блоков и установки в целом.
Для проведения работ устанавливают картридж, заполненный силикагелем с привитой фазой C18 фирмы "Vidеk", США, в колонку и создают в рубашке колонки давление согласно прилагаемому к картриджу паспорту. Подключают колонку гибкими армированными шлангами к хроматографу. Промывают колонку последовательно раствором 0,1% ТФУ в количестве 2-3 объема колонки, затем 1-2 объемами ацетонитрила (В) и 1-2 объемами воды. Подготовленная таким образом колонка используется на стадии очистки.
В подготовленную колонку при помощи насоса для подачи пробы из емкости подают раствор с-пептида с предыдущей стадии в количестве 35-40 г белка. Включают программирующее устройство и ведут разделение по следующей программе:
Таблица 4
Figure imgf000014_0001
Figure imgf000015_0001
Регистрацию процесса разделения ведут при 220 нм на проточном спектрофотометре при чувствительности прибора 2,0. Сбор фракций белка ведут при помощи коллектора хроматографа или вручную. Собранные фракции основного пика с-пептида анализируются на содержание примесей методом аналитической обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии. Выход с-пептида на данной стадии превышает 80%. Таким образом, суммарный выход по двум стадиям хроматографической очистки составляет более 70%, что более чем в 1,5 раза превышает полученный Nilssоп еt аl.
6. Финишная очистка и лиофилизация с-пептида
Фракции, содержащие не менее 95% с-пептида, объединяют в стеклянном реакторе, снабженном рубашкой, датчиками температуры и рН. Затем доводят рН раствора до значения 6,3-6,5 10% раствором аммиака. Материал подвергается стерилизующей фильтрации и в стерильных условиях разливается по флаконам. Затем осуществляется лиофильное высушивание препарата и укупорка флаконов в стерильных условиях. Таким образом, применение данного способа позволяет с высоким выходом получать с-пептид проинсулина человека с чистотой не менее 95% из отходов, образующихся в процессе получения рекомбинантного инсулина человека.
Список литературы
1. Nilson J., Jопаssоп Р., Samuelsson E., StаЫ S., Uhlen M. Iпtеgrаtеd рrоduсtiоп оf human insulin апd its С-рерtidе. 1996, Jоuгааl оf biоtесhпоlоgу, v. 48, р. 241-250.
2. Патент РФ RU2144957, 27.01.2000. 3. Jоhапssоп еt аl., 1992.
4. Idо, Sсiепсе, 1997, 277, 563-566.
5. Fоrst, 1998, Ехр. CUn. Епdосгiпоl. Diаbеtеs, 106, 270-276.
6. Нuапg, Асtа Вiосhim. Вiорhуs. Siп. 2006, 38: 586-592.
7. Jопаssоп, Jоurпаl оf Biоtесhпоlоgу 76 (2000) 215-226].

Claims

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ
1, Способ получения рекомбинантного с-пептида человека, включающий культивирование штамма-продуцента Еsсhеriсhiа соli, разрушение бактериальных клеток дезинтеграцией, отделение «тeлeц включения)), содержащих гибридный белок, их растворение в буфере, содержащем мочевину и дитиотреитол, ренатурацию и очистку ренатурированного гибридного белка, его расщепление трипсином и карбоксипептидазой В с последующей очисткой и получением целевого продукта.
2. Способ по п.l, отличающийся тем, что штаммом-продуцентом является Е.соli JM109/pPINS07, ренатурацию и очистку ренатурированного гибридного белка проводят путем осаждения примесных соединений подкислением до рН 4,0- 6,0 с последующей хроматографией на КМ-сефарозе, продукты трипсинолиза разделяют на SР-сефарозе, уравновешенной 0,03 -0,1 M аммоний-ацетатным буфером рН 5,0-6,0, содержащим ЗМ мочевину, элюируя линейным градиентом хлористого калия от 0 до 0,5M в стартовом буфере.
PCT/RU2008/000615 2007-09-24 2008-09-23 Procédé de fabrication de c-petide recombinante de la proinsuline humaine WO2009041858A1 (fr)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EA201070372A EA201070372A1 (ru) 2007-09-24 2008-09-23 СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО с-ПЕПТИДА ПРОИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007135323 2007-09-24
RU2007135323/10A RU2451750C2 (ru) 2007-09-24 2007-09-24 Способ получения рекомбинантного с-пептида проинсулина человека

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2009041858A1 true WO2009041858A1 (fr) 2009-04-02

Family

ID=40511663

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/RU2008/000615 WO2009041858A1 (fr) 2007-09-24 2008-09-23 Procédé de fabrication de c-petide recombinante de la proinsuline humaine

Country Status (4)

Country Link
EA (1) EA201070372A1 (ru)
RU (1) RU2451750C2 (ru)
UA (1) UA99481C2 (ru)
WO (1) WO2009041858A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150315259A1 (en) * 2012-03-19 2015-11-05 Madeleine Phamaceuticals Pty Ltd Method of producing a recombinant peptide

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2590781C1 (ru) * 2015-03-04 2016-07-10 Открытое акционерное общество "Уралэлектромедь" Способ извлечения сурьмы и свинца

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2141531C1 (ru) * 1999-05-26 1999-11-20 Российское акционерное общество открытого типа "Биопрепарат" Способ получения рекомбинантного инсулина человека
RU2144082C1 (ru) * 1998-07-23 2000-01-10 Навашин Петр Сергеевич Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок-предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка-предшественника инсулина человека (варианты) и способ получения инсулина человека
RU2144957C1 (ru) * 1999-02-26 2000-01-27 Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pPINS07, КОДИРУЮЩАЯ ГИБРИДНЫЙ ПОЛИПЕПТИД, СОДЕРЖАЩИЙ ПРОИНСУЛИН ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ БАКТЕРИЙ Escherichia coli - ПРОДУЦЕНТ ГИБРИДНОГО ПОЛИПЕПТИДА, СОДЕРЖАЩЕГО ПРОИНСУЛИН ЧЕЛОВЕКА
RU2208637C1 (ru) * 2002-04-16 2003-07-20 Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Способ получения генно-инженерного инсулина человека
US6727346B2 (en) * 1997-08-18 2004-04-27 Aventis Pharma Deutschland Gmbh Process for obtaining insulin precursors having correctly bonded cystine bridges
RU2232813C1 (ru) * 2003-02-18 2004-07-20 Открытое акционерное общество "Национальные биотехнологии" Способ промышленного получения рекомбинантного инсулина человека

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6727346B2 (en) * 1997-08-18 2004-04-27 Aventis Pharma Deutschland Gmbh Process for obtaining insulin precursors having correctly bonded cystine bridges
RU2144082C1 (ru) * 1998-07-23 2000-01-10 Навашин Петр Сергеевич Рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный белок-предшественник инсулина человека (варианты), штамм бактерий e.coli - продуцент гибридного белка-предшественника инсулина человека (варианты) и способ получения инсулина человека
RU2144957C1 (ru) * 1999-02-26 2000-01-27 Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pPINS07, КОДИРУЮЩАЯ ГИБРИДНЫЙ ПОЛИПЕПТИД, СОДЕРЖАЩИЙ ПРОИНСУЛИН ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ БАКТЕРИЙ Escherichia coli - ПРОДУЦЕНТ ГИБРИДНОГО ПОЛИПЕПТИДА, СОДЕРЖАЩЕГО ПРОИНСУЛИН ЧЕЛОВЕКА
RU2141531C1 (ru) * 1999-05-26 1999-11-20 Российское акционерное общество открытого типа "Биопрепарат" Способ получения рекомбинантного инсулина человека
RU2208637C1 (ru) * 2002-04-16 2003-07-20 Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Способ получения генно-инженерного инсулина человека
RU2232813C1 (ru) * 2003-02-18 2004-07-20 Открытое акционерное общество "Национальные биотехнологии" Способ промышленного получения рекомбинантного инсулина человека

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20150315259A1 (en) * 2012-03-19 2015-11-05 Madeleine Phamaceuticals Pty Ltd Method of producing a recombinant peptide

Also Published As

Publication number Publication date
RU2007135323A (ru) 2009-03-27
EA201070372A1 (ru) 2010-10-29
UA99481C2 (ru) 2012-08-27
RU2451750C2 (ru) 2012-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1157034B1 (en) Process for production of diphtheria toxin
CN109879970A (zh) 一种融合蛋白及其制备利拉鲁肽中间体多肽的方法
CN102482332A (zh) 用于获得肉毒杆菌神经毒素的方法和系统
Shin et al. High-level production of human growth hormone in Escherichia coli by a simple recombinant process
CN113105536B (zh) 一种新甘精胰岛素原及其制备甘精胰岛素的方法
WO2003040179A1 (en) High level constitutive production of anthrax protective antigen
CN104098702B (zh) 一种利用mfh融合蛋白制备glp‑1多肽或其类似物方法和应用
CN112584853A (zh) 一种新型门冬胰岛素原的结构和制备门冬胰岛素的方法
WO2010062279A1 (ru) Способ получения рекомбинантного инсулина человека
RU2354702C2 (ru) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pHINS11, КОДИРУЮЩАЯ ГИБРИДНЫЙ БЕЛОК-ПРЕДШЕСТВЕННИК ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА, КЛЕТКА Escherichia coli, ТРАНСФОРМИРОВАННАЯ РЕКОМБИНАНТНОЙ ПЛАЗМИДНОЙ ДНК pHINS11, ШТАММ БАКТЕРИЙ Escherichia coli JM109/pHINS11 - ПРОДУЦЕНТ ГИБРИДНОГО БЕЛКА-ПРЕДШЕСТВЕННИКА ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА
RU2451750C2 (ru) Способ получения рекомбинантного с-пептида проинсулина человека
RU2054044C1 (ru) Способ получения рекомбинантного человеческого свободного от метионина на n-конце гамма-интерферона
CN111363048B (zh) 一种具有穿膜活性的可溶性重组苦荞金属硫蛋白FtMT及其制备方法
RU2141531C1 (ru) Способ получения рекомбинантного инсулина человека
RU2447149C1 (ru) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДНАЯ ДНК pMSIN4, КОДИРУЮЩАЯ ГИБРИДНЫЙ ПОЛИПЕПТИД - ПРЕДШЕСТВЕННИК ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА, ШТАММ BL21(DE3)/pMSIN4-ПРОДУЦЕНТ РЕКОМБИНАНТНОГО ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА, СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ РЕКОМБИНАНТНОГО ИНСУЛИНА ЧЕЛОВЕКА
JP3005335B2 (ja) プレプロインスリンのインスリンへの酵素的変換方法
RU2208637C1 (ru) Способ получения генно-инженерного инсулина человека
RU2232813C1 (ru) Способ промышленного получения рекомбинантного инсулина человека
RU2122549C1 (ru) Способ хроматографического выделения и очистки белков, пептидов и их комплексов
CA2369973C (en) Preparation of pancreatic procarboxypeptidase b, isoforms and muteins thereof and their use
CN113025599A (zh) 一种重组溶组织梭菌i型胶原酶及其制备方法和应用
AU660421B2 (en) Growth factor compositions, preparation and use
KR100235315B1 (ko) 융합단백질을 이용한 인성장호르몬의 제조방법
RU2714114C1 (ru) Способ получения пептида, модулирующего активность пуринергических рецепторов
CN112142848A (zh) 一种重组人胰岛素及其纯化制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 08834471

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

DPE1 Request for preliminary examination filed after expiration of 19th month from priority date (pct application filed from 20040101)
DPE1 Request for preliminary examination filed after expiration of 19th month from priority date (pct application filed from 20040101)
NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 201070372

Country of ref document: EA

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: A201004806

Country of ref document: UA

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 08834471

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1