WO2008019573A1 - Dispositifs et procédés permettant de faire adhérer différents types de cellules sur un même substrat. - Google Patents

Dispositifs et procédés permettant de faire adhérer différents types de cellules sur un même substrat. Download PDF

Info

Publication number
WO2008019573A1
WO2008019573A1 PCT/CN2007/002264 CN2007002264W WO2008019573A1 WO 2008019573 A1 WO2008019573 A1 WO 2008019573A1 CN 2007002264 W CN2007002264 W CN 2007002264W WO 2008019573 A1 WO2008019573 A1 WO 2008019573A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
groove
cells
gold
substrate
linear
Prior art date
Application number
PCT/CN2007/002264
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Yong Li
Xingyu Jiang
Original Assignee
National Center For Nanoscience And Technology, China
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by National Center For Nanoscience And Technology, China filed Critical National Center For Nanoscience And Technology, China
Publication of WO2008019573A1 publication Critical patent/WO2008019573A1/zh

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/14—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an inorganic carrier
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0068—General culture methods using substrates
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/502—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing non-proliferative effects
    • G01N33/5032—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing non-proliferative effects on intercellular interactions
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/30—Synthetic polymers
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2610/00—Assays involving self-assembled monolayers [SAMs]

Definitions

  • the present invention relates to a device for adhering a plurality of cells to the same substrate and a method of adhering. Background technique
  • This method first prepares the "seal" of the three-dimensional structure of PDMS, and then, after the "seal” is combined with the cell culture plate substrate, different cells are introduced into the different tube inlets, 'the difference between the different cells being transported to the substrate Position, after a period of incubation, when the cells are full, the designed pattern can appear.
  • the substrate obtained by this method adheres to a variety of cells. If the "seal" of the PDMS containing the three-dimensional structure is removed during the experiment, the cells adhering to the tube will freely crawl, so that the fixed cells are fixed. The pattern is destroyed. On the other hand, if the "seal" cannot be removed at all times, the interaction between different kinds of cells is not conducive to further study of the interaction between cells.
  • this method requires complex micromachining methods when adhering multiple cells to a substrate.
  • the object of the present invention is to overcome the prior art in that when a plurality of cells are adhered to the same substrate surface, it is difficult to control the movement of the adhered cells, so that the fixed cell pattern is destroyed or does not interact at all, and complicated Micromachining methods or complex chemical synthesis defects provide a simple and easy to operate, and can control the movement between different kinds of cells, and study the interaction between different kinds of cells to adhere a variety of cells to the same substrate.
  • Device and adhesion method The object of the present invention is achieved by the following technical solutions:
  • the device for adhering a plurality of cells to the same substrate comprises: a substrate; a titanium adhesion layer and a gold layer are sequentially evaporated on the upper surface of the substrate, and the ethanol is passed through 1 to 5 mM thiol An inert monomolecular film layer self-assembled on the gold layer on the upper surface of the substrate in solution;
  • An oxidation-treated polydimethylenesiloxane stamp having a hydrophilic surface having at least one set of microgroove units on the surface;
  • the microgroove unit comprising: a linear intermediate groove at an intermediate position, And a first groove and a second groove respectively located on opposite sides of the linear intermediate groove;
  • the intermediate portion of the first groove and the second groove is parallel to the linear intermediate groove and has a spacing of 100 ⁇ 500 ⁇ ⁇ , both end portions other than the intermediate portion of the first groove and the second groove are inclined away from the linear intermediate groove;
  • the linear intermediate groove, the first groove and The length of the second groove is 1. 2 ⁇ : L. 5ciu, the width is 20 ⁇ 300 ⁇ ;
  • the linear intermediate groove, the first groove and the second groove are respectively provided at the groove ends a vertical through hole communicating with the corresponding groove;
  • the lower surface of the polydimethylene siloxane seal is attached to the inert monomolecular film layer of the substrate; and a negative electrode is connected to the substrate, and a positive electrode is connected to the polydimethylene siloxane
  • the power of the droplet at the entrance of the groove of the stamp is 1. 0 ⁇ 1. 4 V.
  • the inert monomolecular film layer self-assembled on the surface of the gold layer by a solution of 1 to 5 mM thiol in ethanol is a methyl mercaptan compound substituted by a hexamethylene glycol chain of 1 to 5 mM.
  • the inert monomolecular film layer self-assembled on the surface of the gold layer by a solution of 1 to 5 mM thiol in ethanol is passed through HS (CH 2 ) n (0CH 2 0CH 2 ) 6 0H at 1 to 5 mM. , HS (C3 ⁇ 4) radical (0CH 2 0CH 2 ) 5 0H or
  • the titanium adhesion layer has a thickness of 2 to 10 nm; and the gold layer has a thickness of 20 to 50 nm.
  • the method for adhering a plurality of cells to the same substrate provided by the present invention comprises the following steps:
  • step 2) Put the gold layer of the glass substrate of step 1) upward into the ethanol solution of l ⁇ 5raM thiol. After l ⁇ 10h, the thiol self-assembles on the gold surface and has a strong resistance to protein or cell adsorption. a monomolecular film layer; the substrate is taken out and dried with nitrogen for use;
  • the convex linear microstructure units including: a linear intermediate convex line at an intermediate position, and respectively located at the straight line a first convex line and a second convex line on both sides of the intermediate convex line; the middle portion of the first convex line and the second convex line are parallel to the linear intermediate convex line and have a spacing of 100 ⁇ 500 ⁇ ⁇ , both ends of the first convex line and the second convex line are farther away
  • the length of the linear intermediate convex line, the first convex line, and the second convex line is 1. 2 ⁇ 1. 5cm, the width is 20 ⁇ 300 ⁇ Within the range of ⁇ ;
  • step 4) using at least one set of convex linear microstructure units obtained in step 3) with polydimethylene siloxane to obtain at least one set corresponding to the convex linear microstructure units.
  • the micro-groove unit of the polydimethylenesiloxane stamp comprises: a linear intermediate groove at an intermediate position, a first groove and a second groove on both sides of the linear intermediate groove;
  • the intermediate portion of the first groove and the second groove is parallel to the linear intermediate groove and has a pitch of 100 to 500 ⁇ m, and both ends of the first groove and the second groove are outside the middle portion
  • the width of the linear intermediate groove, the first groove and the second groove is in the range of 1. 2 ⁇ ; 1. 5cm, and the width is 20 ⁇ 300 ⁇ . a ⁇ range;
  • the linear intermediate groove, the first groove and the second groove are respectively provided with vertical through holes communicating with the corresponding grooves at the groove ends;
  • the surface of the polydimethylene siloxane seal having the micro concave type unit faces upward, and is oxidized in a plasma cleaner for 2 to 5 minutes to form a polydimethylidene siloxane seal having a hydrophilic surface;
  • the thiol of the step 2) is a hexapolyethylene glycol chain-substituted methyl mercaptan compound.
  • the mercaptan of the step 2) is HS (CH 2 ) n (0C3 ⁇ 40CH 2 ) ⁇ 0 ⁇ , HS (CH 2 ) u (0CH 2 0CH 2 ) 5 0H, or
  • the extracellular matrix protein of step 5 is fibronectin, collagen, or laminin.
  • the present invention provides a substrate to which a plurality of cells are adhered, which allows the adherent cells to interact by secreted soluble biomolecules.
  • the cell-adhered substrate of the present invention can be used for drug screening, in conditions of adherent cell culture Adding the drug to be screened, comparing with the sample without the drug, can know which drug can affect the interaction between the cells; or perform electrolysis, observe the cell movement, and provide a screening for new drugs.
  • the method provided by the present invention firstly forms a monolayer film terminated with oligoethylene glycol on the surface of the substrate with a gold surface, and the cells do not adhere anywhere on the surface.
  • an electrochemical reaction is performed to remove the adsorption of the monolayer film in the specified pattern on the gold surface, so that the cells can be adsorbed in the range of the specified pattern, while the other portions cannot adsorb the cells.
  • the PDMS is removed and several different cells are adsorbed onto the surface in an orderly manner.
  • the invention utilizes a combination of surface chemistry, electrochemistry and microfluidics to construct a complex cell culture system, which allows a plurality of cells to adhere to the surface in an orderly space and time, in order to: .
  • the substrate adhering to a variety of cells obtained by this method provides a platform for basic research in cell biology and tissue biology, and can analyze cell biology in time and space with high precision at a single cell level. At the same time, it can also be used as a drug detection based on the interaction between cells and cells, providing a new way to discover the analysis of drugs and toxic substances.
  • the density and interphase distance of these cells can be precisely regulated to detect reactions between several cells. Because the cell density and the spacing between several cells can be controlled, the accuracy of the analysis is unprecedented.
  • a second electroanalytical assay can also be performed to detect the effects of mutual crawling between several cells.
  • the invention allows different kinds of cells to interact only through substances in the solution (no direct contact between cells), and can also allow different species of cells to interact by direct contact.
  • Figure 1 is a schematic view showing the structure of a device for adhering various cells to the same substrate. detailed description
  • the apparatus for adhering a plurality of cells to the same substrate includes:
  • the upper surface of the substrate 1 is sequentially vapor-deposited with a titanium adhesion layer and a gold layer, and self-assembled on a gold layer on the upper surface of the substrate by a solution of 1 to 5 mM thiol in ethanol.
  • An oxidized polyhethylene siloxane seal 2 having a hydrophilic surface having at least one set of microgroove units on the surface;
  • the microgroove unit comprising: a linear intermediate groove at an intermediate position 21, and respectively located in the a first groove 22 and a second groove 23 on both sides of the linear intermediate groove; an intermediate portion of the first groove 22 and the second groove 23 is parallel to the linear intermediate groove 21 and has a pitch of 100 ⁇ 500 ⁇ m, both end portions of the first groove 22 and the intermediate portion of the second groove 23 are inclined away from the linear intermediate groove;
  • the linear intermediate groove 21, the first The length of the groove 22 and the second groove 23 is in the range of 1. 2 ⁇ 1. 5cm, and the width is in the range of 20 ⁇ 300 ⁇ m;
  • the groove ends of the groove 23 are respectively provided with vertical through holes communicating with the corresponding grooves;
  • the lower surface of the polydimethylenesiloxane stamp is attached to the inert monomolecular film layer of the substrate; and a negative electrode is connected to the substrate, and a positive electrode is connected to the polydimethylene siloxane
  • the power supply S of the droplet at the inlet of the stamp is 1. 0 ⁇ 1. 4 V.
  • the inert monomolecular film layer self-assembled on the surface of the gold layer by a solution of 1 to 5 raM of mercaptan in ethanol is a methyl mercaptan compound substituted by a hexamethylene glycol chain of 1 to 5 mM
  • An inert monomolecular film layer self-assembling on the surface of the gold layer in an ethanol solution is a methyl mercaptan compound substituted by a hexamethylene glycol chain of 1 to 5 mM
  • the inert monomolecular film layer self-assembled on the surface of the gold layer by a solution of 1 to 5 mM thiol in ethanol is passed through HS Hj OCftOCHj eOH at 1 to 5 mM, HS (C3 ⁇ 4) origin (0CH 2 0C3 ⁇ 4 ) 5 0H or An inert monomolecular film layer self-assembling on the surface of the gold layer in an ethanol solution.
  • the titanium adhesion layer has a thickness of 2 to 10 nm; and the gold layer has a thickness of 20 to 50 nm.
  • Example 1 The titanium adhesion layer has a thickness of 2 to 10 nm; and the gold layer has a thickness of 20 to 50 nm.
  • step 2) Cut the substrate of step 1) into small pieces of 2x2 cm 2 and then place 2 mM (1 ⁇ 5 mM) thiol in the gold layer upwards (Molecular formula: HS (C3 ⁇ 4) n (0CH 2 0CH 2 ) e 0H
  • HS (C3 ⁇ 4) n (0CH 2 0CH 2 ) e 0H In the ethanol solution, after 8h, the mercaptan self-assembles into a monomolecular film on the gold surface, forming an "inert" surface that strongly resists the adsorption of proteins and cells; the thiolated substrate is taken out from the solution and blown with nitrogen. Dry
  • the L-edit designed three convex lines along the side of the pattern.
  • the three side-by-side convex lines include: a linear intermediate convex line at the middle position, and a first convex type on both sides of the linear intermediate convex line. a line and a second convex line; the middle portion of the first convex line and the second convex line are parallel to the linear intermediate convex line and have a pitch of 100 (the line spacing is 100 to 500 ⁇ ⁇ ), the first convex type Both end portions of the line and the intermediate portion of the second convex line are inclined away from the linear intermediate convex line; the lengths of the linear intermediate convex line, the first convex line, and the second convex line are 1.
  • the convex line length is 1. 2 ⁇ 1. 5cm
  • the width is 100 ⁇ ⁇ (the convex line width is 20 ⁇ 300 ⁇ ⁇ ); then it is printed as a film with a resolution of 3600dpi.
  • the glue SU-8 series negative glue
  • the glue machine use the glue machine to evenly apply the photoresist to the silicon base.
  • the film is vertically placed on the photoresist-coated substrate, and after development exposure, the convex linear microstructure unit is formed on the photoresist-coated silicon wafer;
  • PDMS polydimethylene siloxane
  • step 4 After removing the stamp in step 4), the face of the concave pattern is brought into contact with the thiolated substrate of step 2) to form a closed lumen; then 100 g/ml extracellular matrix protein is placed in 10 min ( Fibronectin
  • the voltage is 1. 2 V.
  • the propylene phosphate buffer (pH 7.4) is introduced into the lumen; the positive electrode is passed through the inlet of the luminal substrate, and the voltage is 1. 2 V. , the energization time is 30 s, the thiol of the gold surface in the lumen is resolved, and it becomes a surface layer capable of adsorbing proteins and cells; the above extracellular matrix protein solution is again introduced for 2 hours, and the gold surface is adsorbed in the lumen.
  • Extracellular matrix protein
  • the same method and procedure can result in a substrate that adheres to a variety of cells.
  • step 2) Cut the substrate of step 1) into small pieces of 2x2 cm 2 and then place 3 mM (1 ⁇ 5 mM) thiol in the gold layer upwards (Molecular formula: HS (CH 2 ) u (0C3 ⁇ 40CH 2 ) 5 0H)
  • 3 mM (1 ⁇ 5 mM) thiol in the gold layer upwards
  • HS (CH 2 ) u (0C3 ⁇ 40CH 2 ) 5 0H
  • the mercaptan self-assembles into a monomolecular film on the gold surface, forming an "inert" surface that strongly resists the adsorption of proteins and cells; the thiolated substrate is removed from the solution and dried with nitrogen. Standby
  • the slanting line is 1. 2 ⁇ 1.
  • the length of the first convex line, the first convex line and the second convex line is 1. 4cm (the convex line length is 1. 2 ⁇ 1. 5cm can be)
  • the width is 150 ⁇ ⁇ wide (the convex line width is 20-300 ⁇ ⁇ ); then the resolution is 3600dpi
  • glue SU-8 series negative gel
  • the photoresist is evenly coated on the silicon substrate by a silicone machine. After high temperature bake hardening, the film is placed vertically on the photoresist.
  • the convex linear type micro-structure unit is formed on the photoresist-coated silicon wafer;
  • PDMS polydimethylene siloxane
  • step 4 After removing the stamp in step 4), the face of the concave pattern is brought into contact with the thiolated substrate of step 2) to form a closed lumen; then 80 g/ml extracellular matrix protein is placed in ⁇ ( Fibronectin
  • the voltage is 1. 2 V.
  • the propylene phosphate buffer (pH 7.4) is introduced into the lumen; the positive electrode is passed through the entrance of the luminal substrate, and the voltage is 1. 2 V. , the energization time is 30 s, the thiol of the gold surface in the lumen is resolved, and it becomes a surface layer capable of adsorbing proteins and cells; the above extracellular matrix protein solution is again introduced for 2 hours, and the gold surface is adsorbed in the lumen.
  • Extracellular matrix protein
  • the substrate obtained by adhering the various cells obtained in the examples was immersed in a common cell culture solution (10% fetal fetal serum concentration); a positive electrode was passed through the solution, and a negative electrode was passed through the gold surface of the thiolated substrate at a voltage of 1. 2 V, the energization time is 30 s, and the second electrochemical analysis is performed.
  • the thiol analysis of the gold surface region other than the specified pattern is re-applied to the surface layer capable of adsorbing proteins and cells, and adhered to the specified pattern.
  • the cells are free to move.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Description

将多种细胞粘附到同一基底上的装置及粘附方法 技术领域
本发明涉及一种将多种细胞粘附到同一基底上的装置及粘附方法。 背景技术
在药物筛选和基础的细胞生物学的研究中， 往往需要在同一表面固定两种或多种细 胞。 为此， 人们已经研究出了一些方法。
例如在文献 1: Chiu， D. T.； Jeon, N. L.； Huang, S.； Kane, R. S.； Wargo, C. ' J.； Choi, I. S.； Ingber, D. E.； Whitesides, G. M. , Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2000, 97, (6)， 2408- 2413中， Whitesides 实验小组公幵了一种运用三维结构的微流管 道在同一表面固定多种细胞， 而且可以形成由多种细胞组成的复杂图案的方法。 这种方 法首先制备出三维结构的 PDMS的 "印章"， 然后在 "印章"与细胞培养盘基底结合后， 往不同的管道入口通入不同的细胞， '这样不同种细胞被运送到基底的不同位置， 待培养 一段时间后， 细胞长满， 就可以出现设计好的图案。 但是， 这种方法得到的粘附了多种 细胞的基底， 在实验过程中如果把含有三维结构的 PDMS的 "印章"拿开， 粘附在管道中 的细胞会自由爬动，使得固定的细胞图案被破坏。另一方面，如果始终不能去掉"印章"， 不同种细胞间不能够相互作用， 不利于进一步研究细胞间的相互作用。 此外， 这种方法 将多种细胞粘附到基底上时， 需要复杂的微加工方法。
在文献 2: Yousaf, M. N.； Houseman, B. T.； Mrksich, M. , Proc. Natl. Acad. Sci.
U. S. A. 2001, 98， （11)， 5992-5996中， Mrksich实验小组公开了一种非接触式、 在 同一表面固定两种不同细胞的方法。 此方法首先运用微接触印刷技术把一种细胞固定在 表面， 然后运用电化学技术改变表面没有粘附细胞的区域化学组成， 从而可以固定第二 种细胞。 这种方法的优点是需要很少的物理操作， 缺点是需要复杂的化学合成， 并且限 制在两种细胞， 不可能进行大于两种细胞的操纵。 发明内容
本发明的目的在于克服现有技术在将多种细胞粘附到同一基底表面时， 不好控制粘 附的细胞的运动， 使得固定的细胞图案被破坏或是根本不能相互作用， 以及需要复杂的 微加工方法或是复杂的化学合成的缺陷， 从而提供一种简单和易操作、 并且可以控制不 同种细胞间的运动， 以及研究不同种细胞间相互作用的将多种细胞粘附到同一基底上的 装置及粘附方法。 本发明的目的是通过如下的技术方案实现的：
本发明提供的将多种细胞粘附到同一基底上的装置， 包括- 一基底；所述基底上表面上依次蒸镀有钛粘附层和金层，及通过在 l〜5mM硫醇的乙 醇溶液中自组装于所述基底上表面上的金层上的惰性单分子膜层；
一下表面上具有至少一组微凹槽单元的经氧化处理后的具亲水表面的聚二亚甲基硅氧 烷印章； 所述微凹槽单元包括： 位于中间位置的直线型中间凹槽， 和分别位于所述直线 型中间凹槽两侧的第一凹槽和第二凹槽； 所述第一凹槽和第二凹槽的中间段与所述直线 型中间凹槽平行且间距为 100〜500 μ ιη，所述第一凹槽和第二凹槽的中间段之外的两端部 段向远离直线型中间凹槽的方向倾斜； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和第二凹槽的长 度在 1. 2〜： L. 5ciu范围内 ， 宽度在 20〜300 μ ιη; 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和第二 凹槽的槽端处分别设有与相应的凹槽相通的垂向通孔；
所述聚二亚甲基硅氧垸印章的下表面贴覆于所述基底的惰性单分子膜层上；和一负极 连通于所述基底， 正极连通于所述聚二亚甲基硅氧垸印章的凹槽入口处液滴电压为 1. 0〜 1. 4 V的电源。
所述通过在 1〜5 mM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层 为是通过在 1〜5 mM六聚聚乙二醇链取代的甲硫醇化合物的乙醇溶液中自组装在所述金 层表面上的惰性单分子膜层。
所述通过在 1〜5 mM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层 为通过在 l〜5mM的 HS (CH2) n (0CH20CH2) 60H、 HS (C¾)„ (0CH20CH2) 50H或
HS (CH2) u (0C¾0C ) 30H的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层。
所述的钛粘附层的厚度为 2〜10nm; 金层的厚度为 20〜50nm。 本发明提供的将多种细胞粘附到同一基底的方法， 包括如下的步骤：
1 )在干净的玻璃基底上表面上先蒸鍍 2〜10nm厚的钛粘附层， 然后再在其上蒸镀 20〜50nm厚的金层；
2)把步骤 1 )的玻璃基底的金层朝上地放入 l〜5raM硫醇的乙醇溶液里， l〜10h后， 硫醇在金表面上自组装一具有强抗拒蛋白质或细胞吸附的惰性单分子膜层；将基底取出， 用氮气吹干备用；
3)使用光刻技术， 在硅片上制备至少一组凸型线型微结构单元， 该凸型线型微结构 单元包括： 位于中间位置的直线型中间凸型线， 和分别位于所述直线型中间凸型线两侧的 第一凸型线和第二凸型线;所述第一凸型线和第二凸型线的中间段与所述直线型中间凸型线 平行且间距为 100〜500 μ πι， 所述第一凸型线和第二凸型线的中间段之外的两端部段向远 离直线型中间凸型线的方向倾斜； 所述直线型中间凸型线、第一凸型线和第二凸型线的长 度在 1. 2〜1. 5cm 围内 ， 宽度在 20〜300 μ πι范围内；
4)用聚二亚甲基硅氧烷对步骤 3)得到的至少一组凸型线型微结构单元进行翻膜， 得到一与所述凸型线型微结构单元相对应的具有至少一组微凹型单元的聚二亚甲基硅氧 烷印章；
所述聚二亚甲基硅氧烷印章的微凹槽单元包括：位于中间位置的直线型中间凹槽，位于 所述直线型中间凹槽两侧的第一凹槽和第二凹槽;所述第一凹槽和第二凹槽的中间段与所述 直线型中间凹槽平行且间距为 100〜500 μ ιη,所述第一凹槽和第二凹槽的中间段之外的两端 部段向远离直线型中间凹槽的方向倾斜； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和第二凹槽的长 度在 1. 2〜； 1. 5cm范围内， 宽度在 20〜300 μ πι范围内； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和 第二凹槽的槽端处分别设有与相应的凹槽相通的垂向通孔；
然后把聚二亚甲基硅氧垸印章的具有微凹型单元的面朝上， 在等离子清洗器中氧化 2〜5min, 制成具有亲水表面的聚二亚甲基硅氧烷印章；
5)将步骤 4) 中的具有亲水表面的聚二亚甲基硅氧烷印章取出后， 把具有微凹型单 元的面朝下与步骤 2)的所述基底的惰性单分子膜层进行接触性连接，形成封闭的流通管 腔;然后 lOmin内把 50〜200 μ g/ral细胞外基质蛋白的 PBS磷酸缓冲液通入流通管腔中； 在该流通管腔的入口处通正电极， 在金表面上通负电极， 电压为 1. 0〜1. 4 V， 通电时间 为 30〜60 s, 流通管腔内金表面上的硫醇解析附， 重新变为具有吸附蛋白质或细胞功能 的表面层；再次通入细胞外基质蛋白溶液 l〜3h，在流通管腔内金表面吸附有细胞外基质 蛋白；
6)制备不同种的粘附细胞的悬浮溶液， 细胞密度为 106个 /ml， 然后把不同种细胞通 入相应的流通管腔中， 再放入细胞培养箱， 在 37°C， 二氧化碳体积浓度 5%, 培养 30〜 60min, 细胞粘附在流通管腔内的金表面上； 揭掉聚二亚甲基硅氧烷印章， 将生长有细胞 的金表面放入普通细胞培养液中， 12〜24h后， 细胞在各自限定区域内生长， 以完成多种 细胞粘附于同一基底上。
所述步骤 2) 的硫醇是六聚聚乙二醇链取代的甲硫醇化合物。
所述步骤 2 ) 的硫醇是 HS (CH2) n (0C¾0CH2) β0Η、 HS (CH2) u (0CH20CH2) 50H、 或
Figure imgf000005_0001
所述步骤 5) 的细胞外基质蛋白为纤维结合蛋白、 胶原蛋白、 或层粘连蛋白。
本发明提供一种上述方法制得的粘附了多种细胞的基底， 其允许粘附的细胞间通过 分泌的可溶性生物分子相互作用。
本发明的这种粘附了多种细胞的基底可以用于药物筛选， 在粘附的细胞培养的条件 下加入待筛选的药物， 与没有加入药物的样品进行比较， 可以了解哪种药物可以影响这 几种细胞之间的相互作用； 或者进行电解吸， 观察细胞的移动， 从而为新药筛选， 提供 一种极为便利的方法。 本发明提供的方法首先是在基底表面先用金表面形成以寡乙二醇为末端的单层膜， 细胞不会在该表面任何地方粘附。 然后用 PDMS中的微流管道为掩膜， 进行电化学反应， 解除指定图案内的单层膜在金表面的吸附， 使得在指定图案的范围内可以吸附细胞， 而 其他部分不能吸附细胞。 最后， 把 PDMS拿开， 几种不同的细胞便有序的吸附在表面。
与现有技术相比， 本发明的优点在于：
1、 本发明利用表面化学、 电化学和微流控的结合， 来构筑复杂的细胞培养体系， 可以让多种细胞在可调控的空间和时间， 有序地在表面的粘附、 生^：。
2、在这种方法得到的粘附了多种细胞的基底为细胞生物学、组织生物学的基本研究 提供了平台， 可以单细胞水平高精度的在时间和空间上对细胞生物学进行分析， 同时， 还可以作为基于细胞和细胞之间作用的药物检测， 为发现药物和有毒物质的分析提供了 新的途径。
3、 这几种细胞的密度和相间的距离可以精确调控， 以便检测几种细胞之间的反应。 因为可以控制细胞密度、 几种细胞之间的间隔， 所以分析的精度是前所未有。
4、在不同种细胞有序固定在表面后，也可以进行第二次电解析检测几种细胞之间互 相爬动的影响。
5、该发明即可以让不同种细胞仅仅通过溶液中的物质进行相互作用（细胞间无直接 接触）， 也可以容不同种细胞通过直接接触进行相互作用。 附图说明
图 1为本发 的将多种细胞粘附到同一基底上的装置的结构示意图。 具体实施方式
图 1为本发明的将多种细胞粘附到同一基底上的装置的结构示意图， 由图 1可知， ' 本发明提供的将多种细胞粘附到同一基底上的装置， 包括：
一基底 1; 所述基底 1上表面上依次蒸镀有钛粘附层和金层， 及通过在 l〜5 mM硫醇 的乙醇溶液中自组装于所述基底上表面上的金层上的惰性单分子膜层；
一下表面上具有至少一组微凹槽单元的经氧化处理后的具亲水表面的聚二亚甲基硅氧 垸印章 2; 所述微凹槽单元包括： 位于中间位置的直线型中间凹槽 21， 和分别位于所述 直线型中间凹槽两侧的第一凹槽 22和第二凹槽 23;所述第一凹槽 22和第二凹槽 23的中 间段与所述直线型中间凹槽 21平行且间距为 100〜500 μ m，所述第一凹槽 22和第二凹槽 23的中间段之外的两端部段向远离直线型中间凹槽的方向倾斜;所述直线型中间凹槽 21、 第一凹槽 22和第二凹槽 23的长度在 1. 2〜1. 5cm范围内 ， 宽度在 20〜300 μ m范围内； 所述直线型中间凹槽 21、 第一凹槽 22和第二凹槽 23的槽端处分别设有与相应的凹槽相 通的垂向通孔；
所述聚二亚甲基硅氧烷印章的下表面贴覆于所述基底的惰性单分子膜层上； 和一负极 连通于所述基底， 正极连通于所述聚二亚甲基硅氧烧印章的凹槽入口处液滴电压为 1. 0〜 1. 4 V的电源 S。
所述通过在 l〜5raM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层为 是通过在 1〜5 mM六聚聚乙二醇链取代的甲硫醇化合物的乙醇溶液中自组装在所述金层 表面上的惰性单分子膜层。
所述通过在 1〜5 mM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层 为 通 过 在 1 〜 5mM 的 HS Hj OCftOCHj eOH 、 HS (C¾)„ (0CH20C¾) 50H 或
Figure imgf000007_0001
的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层。
所述的钛粘附层的厚度为 2〜10nm; 金层的厚度为 20〜50nm。 实施例 1、
1 )在一千净的玻璃载波片 （厚度 0. 15腿） 表面蒸镀 5nm (2〜10nm均可） 的钛作为 粘附层，然后再在其上蒸镀 30nm (20〜50ran均可）厚的金层，制得一实验所需要的基底；
2)把步骤 1 ) 的基底切成 2x2 cm2的小块， 然后金层朝上地放入 2 mM ( l〜5mM)硫 醇（分子式： HS (C¾) n (0CH20CH2) e0H)的乙醇溶液里， 8h后， 硫醇在金表面自组装成单分 子膜， 形成强烈抗拒蛋白质和细胞的吸附的 "惰性"的表面； 从溶液中把该硫醇化的基 底取出， 用氮气吹干， 备用；
3 )使用光刻技术在硅片上制备出至少一组凸型线型微结构单元， 首先用作图软件
L-edit 设计出所要图形三条并排的凸型线， 该三条并排的凸型线包括： 位于中间位置的 直线型中间凸型线，和位于该直线型中间凸型线两侧的第一凸型线和第二凸型线；第一凸型 线和第二凸型线的中间段与直线型中间凸型线平行且间距为 100 (线间距 100〜500 μ ιιι 均可）， 第一凸型线和第二凸型线的中间段之外的两端部段向远离直线型中间凸型线的方向 倾斜； 直线型中间凸型线、 第一凸型线和第二凸型线的长度为 1. 4cm (凸型线长为 1. 2~ 1. 5cm均可） ， 宽度为宽 100 μ πι (凸型线宽为 20〜300 μ πι均可）； 然后打印为分辨率为 3600dpi的胶片； 接着再涂胶 (SU-8系列负胶)， 利用甩胶机均匀地将光刻胶， 涂在硅片基 底上，经高温烘烤硬化后，把胶片垂直放在涂有光刻胶的基板上，显影曝光后就在涂有光刻 胶的硅片上制成了所述的凸型线型微结构单元；
4)用聚二亚甲基硅氧烷 （PDMS)对步骤 3)得到的凸型线型微结构单元进行翻膜， 得到一与上述微结构相对应的、具有凹型图案的 PDMS印章； 然后把印章有凹型图案的面 向上， 在等离子清洗器中氧化 2min, 形成具有亲水表面的 PDMS印章；
5)将步骤 4) 中的印章取出后， 把有凹型图案的面向下与步骤 2) 的硫醇化的基底 接触， 形成封闭的管腔； 然后在 lOmin内把 100 g/ml细胞外基质蛋白 （纤维结合蛋白
(fibronection) ) 的 PBS磷酸缓冲液（pH 7. 4)通入管腔中； 在该管腔的入口处通正电 极， 在硫醇化的基底的金表面通负电极， 电压为 1. 2 V, 通电时间为 30 s, 管腔内的金 表面的硫醇解析附， 重新变为可以吸附蛋白质和细胞的表面层； 再次通入上述细胞外基 质蛋白溶液 2h， 在管腔内的金表面吸附了细胞外基质蛋白；
6)制备不同种的粘附细胞一 Hela细胞和 NIH 3T3细胞的悬浮溶液， 细胞密度均为 106个 /ml， 然后把 Hela细胞的悬浮溶液通入第一和三管腔中， 将 NIH 3T3细胞的悬浮溶 液通入第二管腔中，放入细胞培养箱，于 37°C、二氧化碳浓度 5% (体积浓度），培养 40rain， 细胞粘附在管腔内的金表面上； 把 PDMS印章揭掉，把长有细胞的金表面放入普通细胞培 养液（胎牛血清浓度 10% ) 中， 24h后， 细胞就会长满各自的限定区域， 得到一粘附了 两种细胞的基底。
同样的方法和步骤可以得到粘附多种细胞的基底。
实施例 2
1 )在一干净的玻璃载波片（厚度 0. 12醒）表面蒸镀 10皿（2〜10舰均可）的钛作为 粘附层， -然后再在其上蒸镀 20nm (20〜50nm均可）厚的金层，制得一实验所需要的基底；
2)把步骤 1 ) 的基底切成 2x2 cm2的小块， 然后金层朝上地放入 3 mM ( l〜5mM)硫 醇（分子式： HS (CH2) u (0C¾0CH2) 50H)的乙醇溶液里， 5h后， 硫醇在金表面自组装成单分 子膜， 形成强烈抗拒蛋白质和细胞的吸附的 "惰性"的表面； 从溶液中把该硫醇化的基 底取出， 用氮气吹干， 备用；
3) 使用光刻技术在硅片上制备出至少一组凸型线型微结构单元， 首先用作图软件 L - edit设计出所要图形三条并排的凸型线， 该三条并排的凸型线包括： 位于中间位置的 直线型中间凸型线，和位于该直线型中间凸型线两侧的第一凸型线和第二凸型线；第一凸型 线和第二凸型线的中间段与直线型中间凸型线平行且间距为 150 μ ιη (线间距 100- 500 μ ιιι均 可)， 第一凸型线和第二凸型线的中间段之外的两端部段向远离直线型中间凸型线的方向倾 斜；直线型中间凸型线、第一凸型线和第二凸型线的长度为 1. 4cm (凸型线长为 1. 2〜1. 5cm 均可） ， 宽度为宽 150 μ πι (凸型线宽为 20- 300 μ πι均可）； 然后打印为分辨率为 3600dpi 的胶片； 接着再涂胶（SU- 8系列负胶)， 利用甩胶机均匀地将光刻胶， 涂在硅片基底上， 经 高温烘烤硬化后，把胶片垂直放在涂有光刻胶的基板上，显影曝光后就在涂有光刻胶的硅片 上制成了所述的凸型线型'微结构单元；
4)用聚二亚甲基硅氧垸 （PDMS)对步骤 3)得到的凸型线型微结构单元进行翻膜， 得到一与上述微结构相对应的、具有凹型图案的 PDMS印章； 然后把印章有凹型图案的面 向上， 在等离子清洗器中氧化 3min， 形成具有亲水表面的 PDMS印章；
5)将步骤 4) 中的印章取出后， 把有凹型图案的面向下与步骤 2) 的硫醇化的基底 接触， 形成封闭的管腔； 然后在 ΙΟπάη内把 80 g/ml细胞外基质蛋白 （纤维结合蛋白
(fibronection)) 的 PBS磷酸缓冲液（pH 7. 4)通入管腔中； 在该管腔的入口处通正电 极， 在硫醇化的基底的金表面通负电极， 电压为 1. 2 V, 通电时间为 30 s, 管腔内的金 表面的硫醇解析附， 重新变为可以吸附蛋白质和细胞的表面层； 再次通入上述细胞外基 质蛋白溶液 2h， 在管腔内的金表面吸附了细胞外基质蛋白；
6)制备不同种的粘附细胞—— Hela细胞和 NIH 3T3细胞的悬浮溶液， 细胞密度均为 106个 /ml， 然后把 NIH 3T3细胞的悬浮溶液通入第一和三管腔中， 将 Hela细胞的悬浮溶 液通入第二管腔中，放入细胞培养箱，于 37°C、二氧化碳浓度 5% (体积浓度），培养 30min， 细胞粘附在管腔内的金表面上； 把 PDMS印章揭掉， 把长有细胞的金表面放入普通细胞培 养液（胎牛血清浓度 10% ) 中， 24h后， 细胞就会长满各自的限定区域， 得到一粘附了 两种细胞的基底。
同样的方法和步骤可以得到粘附多种细胞的基底。 实施例 3
将实施例得到的粘附了多种细胞的基底浸入普通细胞培养液 （胎牛血清浓度 10% ); 在溶液处通正电极，在硫醇化的基底的金表面通负电极， 电压为 1. 2 V，通电时间为 30 s， 进行第二次电化学解析附， 指定图案以外的金表面区域的硫醇解析附， 重新变为可以吸 附蛋白质和细胞的表面层， 粘附在指定图案内的细胞就可以自由移动了。
同理， 使用本发明的装置和方法可以将多种细胞粘附到同一基底上。

Claims

权利要求
1、 一种将多种细胞粘附到同一基底上的装置， 包括- 一基底； 所述基底上表面上依次蒸镀有钛粘附层和金层， 及通过在 1〜5 mM硫醇的 乙醇溶液中自组装于所述基底上表面上的金层上的惰性单分子膜层；
一下表面上具有至少一组微凹槽单元的经氧化处理后的具亲水表面的聚二亚甲基硅氧 烷印章； 所述微凹槽单元包括： 位于中间位置的直线型中间凹槽， 和分别位于所述直线 型中间凹槽两侧的第一凹槽和第二凹槽； 所述第一凹槽和第二凹槽的中间段与所述直线 型中间凹槽平行且间距为 100〜500 μ πι，所述第一凹槽和第二凹槽的中间段之外的两端部 段向远离直线型中间凹槽的方向倾斜； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和第二凹槽的长 度在 1. 2〜； I. 5cm范围内 ， 宽度在 20〜300 μ ηι范围内； 所述直线型中间凹槽、第一凹槽 和第二凹槽的槽端处分别设有与相应的凹槽相通的垂向通孔；
所述聚二亚甲基硅氧烷印章的下表面贴覆于所述基底的惰性单分子膜层上； 和 一负极连通于所述基底， 正极连通于所述聚二亚甲基硅氧烷印章的电压为 1. 0〜1. 4V 的电源。
2、 如权利要求 1所述的将多种细胞粘附到同一基底的装置， 其特征在于： 所述通 过在 1-5 mM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层为通过在 1〜5 mM六聚聚乙二醇链取代的甲硫醇化合物的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单 分子膜层。
3、 如权利要求 1所述的将多种细胞粘附到同一基底的装置， 其特征在于： 所述通 过在 1-5 mM硫醇的乙醇溶液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层为通过在 1〜5 mM的 HS (CH2)„ (0CH20CH2) β0Η、 HS (CH2)„ (0CH20CH2) 50H或 HS (CH2) u (0CH20CH2) 30H的乙醇溶 液中自组装在所述金层表面上的惰性单分子膜层。
4、 如权利要求 1所述的将多种细胞粘附到同一基底的装置， 其特征在于： 所述的 钛粘附层的厚度为 2〜； !Onm; 金层的厚度为 20〜50rmi。
5、 一种将多种细胞粘附到同一基底的方法， 包括如下的步骤：
1 )在干净的玻璃基底上表面上先蒸镀 2〜10nm厚的钛粘附层， 然后再在其上蒸镀 20〜50nm厚的金层；
2)把步骤 1 )的玻璃基底的金层朝上地放入 l〜5 mM硫醇的乙醇溶液里， l〜10h后， 硫醇在金表面上自组装一具有强抗拒蛋白质或细胞吸附的惰性单分子膜层；将基底取出， 用氮气吹干备用；
3)使用光刻技术， 在硅片上制备至少一组凸型线型微结构单元， 该凸型线型微结构 单元包括： 位于中间位置的直线型中间凸型线， 和分别位于所述直线型中间凸型线两侧的 第一凸型线和第二凸型线;所述第一凸型线和第二凸型线的中间段与所述直线型中间凸型线 平行且间距为 100〜500 μ πι， 所述直线型中间凸型线、 第一凸型线和第二凸型线的长度在 1. 2〜1. 5cm范围内 ， 宽度在 20〜300 μ πι范围内；
4)用聚二亚甲基硅氧垸对步骤 3)得到的至少一组凸型线型微结构单元进行翻膜， 得到一与所述凸型线型微结构单元相对应的具有至少一组微凹型单元的聚二亚甲基硅氧 烷印章；
所述聚二亚甲基硅氧烷印章的微凹槽单元包括：位于中间位置的直线型中间凹槽，位于 所述直线型中间凹槽两侧的第一凹槽和第二凹槽;所述第一凹槽和第二凹槽的中间段与所述 直线型中间凹槽平行且间距为 100〜500 μ πι，所述第一凹槽和第二凹槽的中间段之外的两端 部段向远离直线型中间凹槽的方向倾斜； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽和第二凹槽的长 度在 1. 2〜1. 5CBI范围内， 宽度在 100〜300 μ πι范围内； 所述直线型中间凹槽、 第一凹槽 和第二凹槽的槽端处分别设有与相应的凹槽相通的垂向通孔；
然后把聚二亚甲基硅氧烷印章的具有微凹型单元的面朝上， 在等离子清洗器中氧化 2min, 制成具有亲水表面的聚二亚甲基硅氧烷印章；
5)将步骤 4) 中的具有亲水表面的聚二亚甲基硅氧烷印章取出后， 把具有微凹型单 元的面朝下与步骤 2)的所述基底的惰性单分子膜层进行接触性连接，形成封闭的流通管 腔;然后 lOmin内把 50〜200 μ g/ml细胞外基质蛋白的 PBS磷酸缓冲液通入流通管腔中； 在该流通管腔的入口处通正电极，在金表面上通负电极， 电压为 1. 0〜1. 4V，通电时间为 30〜60s， 流通管腔内金表面上的硫醇解析附， 重新变为具有吸附蛋白质或细胞功能的表 面层；再次通入细胞外基质蛋白溶液 l-3h，在流通管腔内金表面吸附有细胞外基质蛋白；
6)制备不同种的粘附细胞的悬浮溶液， 细胞密度为 106个 /ml， 然后把不同种细胞通 入相应的流通管腔中， 再放入细胞培养箱， 在 37Ό , 二氧化碳体积浓度 5%, 培养 30〜 60min, 细胞粘附在流通管腔内的金表面上； 揭掉聚二亚甲基硅氧烷印章， 将生长有细胞 的金表面放入普通细胞培养液中， 24h后， 细胞在各自限定区域内生长， 以完成多种细胞 粘附于同一基底上。
6、如权利要求 5所述的将多种细胞粘附到同一基底的方法， 其特征在于： 所述步骤 2) 的硫醇是六聚聚乙二醇链取代的甲硫醇化合物。
7、 如权利要求 5所述的将多种细胞粘附到同一基底的方法， 其特征在于： 所述步骤 2 ) 的硫醇是 HS (CH2) n (0C¾0CH2) 60H、 HS (CH2) u (0C¾0C¾) 50H、 或 HS (CH2) u (0CH20CH2) 30H。
8、如权利要求 5所述的将多种细胞粘附到同一基底的方法， 其特征在于： 所述步骤 5) 的细胞外基质蛋白为纤维结合蛋白、 胶原蛋白、 或层粘连蛋白。
PCT/CN2007/002264 2006-08-11 2007-07-26 Dispositifs et procédés permettant de faire adhérer différents types de cellules sur un même substrat. WO2008019573A1 (fr)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN200610089251.7 2006-08-11
CN200610089251 2006-08-11
CN 200710098280 CN101121930A (zh) 2006-08-11 2007-04-25 将多种细胞粘附到同一基底上的装置及粘附方法
CN200710098280.4 2007-04-25

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2008019573A1 true WO2008019573A1 (fr) 2008-02-21

Family

ID=39081922

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/CN2007/002264 WO2008019573A1 (fr) 2006-08-11 2007-07-26 Dispositifs et procédés permettant de faire adhérer différents types de cellules sur un même substrat.

Country Status (2)

Country Link
CN (1) CN101121930A (zh)
WO (1) WO2008019573A1 (zh)

Families Citing this family (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8735154B2 (en) * 2006-10-30 2014-05-27 The University Of Kansas Templated islet cells and small islet cell clusters for diabetes treatment
CN101624569B (zh) * 2008-07-07 2012-01-25 国家纳米科学中心 在同一基底操纵多种粘附细胞的装置和方法
CN101748060B (zh) * 2008-12-15 2012-04-18 国家纳米科学中心 将多种细胞排列于同一平面并对其进行操控的装置及方法
CN101870970B (zh) * 2009-04-23 2012-06-27 国家纳米科学中心 可逆地控制细胞在金层表面的自组装单层膜上黏附的方法
JP5527651B2 (ja) * 2009-10-30 2014-06-18 独立行政法人海洋研究開発機構 動物細胞をアレイ状に配置するための基板の調製方法及び動物細胞をアレイ状に配置した基板の調製方法
WO2012115334A1 (ko) * 2011-02-24 2012-08-30 Hong Kook-Sun 세포 배양용 지지체 성형장치
WO2016052769A1 (ko) * 2014-09-29 2016-04-07 (주) 마이크로핏 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법
NL2017705B1 (en) * 2016-11-02 2018-05-18 Lumicks Tech B V Method and system for studying biological cells
CN109081935A (zh) * 2018-06-13 2018-12-25 国家纳米科学中心 一种各向异性微趋结构材料及其制备方法与应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHIU D.T. ET AL.: "Patterned deposition of cells and proteins onto surfaces by using three-dimensional microfluidic systems", PROC. NATL. ACAD. SCI. U.S.A., vol. 97, no. 6, 2000, pages 2408 - 2413, XP002159237, DOI: doi:10.1073/pnas.040562297 *
MUHAMMAD N. ET AL.: "Using electroactive substrates to pattern the attachment of two different cell populations", PROC. NATL. ACAD. SCI. U.S.A., vol. 98, no. 11, 2001, pages 5992 - 5996, XP002350563, DOI: doi:10.1073/pnas.101112898 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN101121930A (zh) 2008-02-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2008019573A1 (fr) Dispositifs et procédés permettant de faire adhérer différents types de cellules sur un même substrat.
Folch et al. Microengineering of cellular interactions
Millet et al. Microfluidic devices for culturing primary mammalian neurons at low densities
Wright et al. Reusable, reversibly sealable parylene membranes for cell and protein patterning
Scholl et al. Ordered networks of rat hippocampal neurons attached to silicon oxide surfaces
Kim et al. Biomimetic nanopatterns as enabling tools for analysis and control of live cells
Revzin et al. Surface engineering with poly (ethylene glycol) photolithography to create high-density cell arrays on glass
Sniadecki et al. Nanotechnology for cell–substrate interactions
Shao et al. Integrated micro/nanoengineered functional biomaterials for cell mechanics and mechanobiology: a materials perspective
Yap et al. Protein and cell micropatterning and its integration with micro/nanoparticles assembly
Morin et al. Constraining the connectivity of neuronal networks cultured on microelectrode arrays with microfluidic techniques: a step towards neuron-based functional chips
Zhou et al. Chemically functionalized surface patterning
US7312046B2 (en) Method of screening compounds using a nanoporous silicon support containing macrowells for cells
Von Philipsborn et al. Microcontact printing of axon guidance molecules for generation of graded patterns
Kuddannaya et al. Enhanced in vitro biocompatibility of chemically modified poly (dimethylsiloxane) surfaces for stable adhesion and long-term investigation of brain cerebral cortex cells
US7659053B2 (en) Methods of alteration of surface affinities using non-chemical force-creating fields
Kwiat et al. Highly ordered large-scale neuronal networks of individual cells–Toward single cell to 3D nanowire intracellular interfaces
US20100129908A1 (en) Spaced projection substrates and devices for cell culture
Quist et al. Micropatterned surfaces: techniques and applications in cell biology
JP2003527615A (ja) 細胞パターニング技術
WO2004046337A2 (en) Multilayered microcultures
Turcu et al. Ink-jet printing for micropattern generation of laminin for neuronal adhesion
US20080241926A1 (en) Cell adhesion on surfaces of varying topographies
Shah et al. Micropatterning of proteins and mammalian cells on indium tin oxide
Yamaguchi et al. Cell patterning using a template of microstructured organosilane layer fabricated by vacuum ultraviolet light lithography

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 07785179

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: RU

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 07785179

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1