明 細 書 Specification
ェンドトキシン除去用組成物及び除去方法 技術分野 TECHNICAL FIELD The present invention relates to a composition for removing endotoxin and a method for removing endotoxin.
本発明は、 糖類を用いたエンドトキシンの除去技術に関し、 詳しくは、 糖類を 含有するェンドトキシンの除去用組成物ならびに該組成物を用いたェンドトキシ ンの除去方法および抽出方法に関し、 医療用具、 医薬品製造器具、 医薬品製造装 置などの固体表面からェンドトキシンを除去するために有用な技術に関する。 背景技術 The present invention relates to a technique for removing endotoxin using a saccharide, and more particularly to a composition for removing endotoxin containing a saccharide, and a method for removing and extracting endotoxin using the composition, and relates to a medical device and a pharmaceutical manufacturing method. The present invention relates to a technique useful for removing endotoxin from a solid surface such as a device or a pharmaceutical manufacturing device. Background art
ェンドトキシンは主としてグラム陰性菌の細胞壁の外膜に存在するリポ多糖の 一種であり、 発熱性物質 (Pyr o ge n) として一般によく知られている物質 である。 Endotoxin is a type of lipopolysaccharide that mainly exists in the outer membrane of the cell wall of Gram-negative bacteria, and is a substance generally well known as a pyrogen (Pyrogen).
注射剤やカテーテルなどのェンドトキシン汚染により体内へ発熱性物質が混入 すると、 発熱、 ショック、 広汎性血管内凝固 (D I C : D i s s emina t e d I nt r ava s cu l ar Co agu l at i on) などを発症する可 能性があるので、 注射剤等の医薬品、 注射器やカテーテル等の医療用具、 さらに は医薬品製造器具及び装置等のェンドトキシン汚染は、 厳しく管理する必要があ る。 If pyrogenic substances enter the body due to endotoxin contamination of injections and catheters, fever, shock, and extensive intravascular coagulation (DIC: Disintegrated Intravaginal Coagulation) Severe control of endotoxin in pharmaceuticals such as injections, medical devices such as syringes and catheters, and endotoxin contamination in drug manufacturing equipment and devices is required.
多くの医療用具や医薬品製造器具及び装置等は、 種々の合成樹脂、 ガラス、 金 属及び天然繊維等から構成されており、 エンドトキシンの付着又は吸着により汚 染される可會 g性が高い。 Many medical tools and pharmaceutical manufacturing tools and devices are composed of various synthetic resins, glass, metals, natural fibers, and the like, and are highly contaminated by the attachment or adsorption of endotoxin.
通常、 ェンドトキシンは 250°Cで 30分以上または 1 Ί 0°Cで 1 20分以上 の加熱処理で不活性化できるので、 ガラスや金属などは、 このような加熱処理に よりエンドトキシンを除染できる。 また、 エンドトキシンは水酸化ナトリウム含 有エタノールまたはジメチルスルホキシドなどの有機溶媒中 30°Cにて不活性化 するので、 ガラスなどはこのような媒体で洗浄することによつてもエンドトキシ
ンを除去できる。 しかし、 このような加熱処理または有機溶媒処理が適用できな い材質で構成された医療用具や医薬品製造器具及び装置等またはこのような加熱 処理が不可能な構造の医療用具や医薬品製造器具及び装置等については、 他の除 染方法によらなければならない。 In general, endotoxin can be inactivated by heat treatment at 250 ° C for 30 minutes or more or at 100 ° C for 120 minutes or more, so that glass and metals are decontaminated by such heat treatment. it can. In addition, endotoxin is inactivated at 30 ° C in an organic solvent such as ethanol containing sodium hydroxide or dimethyl sulfoxide, so that glass and the like can also be washed by washing with such a medium. Can be removed. However, medical tools and pharmaceutical manufacturing instruments and devices made of materials to which such heat treatment or organic solvent treatment cannot be applied, or medical tools and pharmaceutical manufacturing instruments and devices having such a structure that cannot be heated. Etc. must be based on other decontamination methods.
これらの医療用具や医薬品製造器具及び装置等に含まれるェンドトキシンの除 去には、 例えば、 エンドトキシンを含まない水や生理食塩水で洗浄する方法が考 えられるが、 この洗浄方法では、 水や生理食塩水を大量に必要とし、 しかも医療 器具や医薬品製造器具及び装置に付着又は吸着したェンドトキシンの除去が不完 全である可能性が危惧されていた。 To remove endotoxin contained in these medical devices, pharmaceutical manufacturing tools and equipment, etc., for example, a method of washing with water or physiological saline not containing endotoxin can be considered. There was a concern that a large amount of physiological saline was required, and that the removal of endotoxin adhering or adsorbed to medical equipment and pharmaceutical manufacturing equipment and equipment could be incomplete.
特許第 2884975号公報には、 容器、 器具等の固体表面に付着または吸着 されたエンドトキシンを効率よく抽出する方法として、 水や生理食塩水などの代 わりにアルブミン、 ヒ卜血清アルブミン、 グロブリンなどのタンパク溶液を用い て、 容器、 器具等を洗浄して溶液中にエンドトキシンを抽出する方法が記載され ている。 Japanese Patent No. 2884975 discloses a method for efficiently extracting endotoxin adhering or adsorbed on a solid surface of a container, device, or the like, in place of water or saline, instead of albumin, human serum albumin, globulin, and other proteins. A method for extracting endotoxin into a solution by washing a container, equipment, and the like using the solution is described.
しかし、 血液タンパクは生体由来成分であるので、 医療用具や医薬品製造器具 及び装置等に存在するェンドトキシンを除去するための洗浄には望ましくない。 このような用途には、 上記のような生体由来成分を含む溶液を用いるのではなく、 調製や使用がより簡便な組成物を用いることが望ましい。 However, blood proteins are biological components and are therefore not desirable for washing to remove endotoxin present in medical devices, pharmaceutical manufacturing tools and equipment, and the like. For such uses, it is desirable to use a composition that is easier to prepare and use, rather than using a solution containing a biological component as described above.
このような調製や使用がより簡便な組成物を用いたエンドトキシンの洗浄また は除去技術は、 例えば、 有効期限が短いために需要に応じた高頻度の製造が要求 される医薬品、 例えば短半減期放射性核種を用いた放射性医薬品の製造に好適で ある。 特に、 半減期が数時間以内の超短半減期陽電子放出核種を用いる陽電子放 射断層画像 (Po s i t r on Emi s s i on T omo graphy、 以 下 PETという) 診断法に用いられる薬剤の製造にはより適した技術である。 本発明は、 医療用具や医薬品製造器具及び装置等の固体表面に付着又は吸着し
たェンドトキシンを除去する技術であって、 生体由来でない化学的な試薬であつ て且つ滅菌処理できる成分を用い、 水や生理食塩水よりも効率良くェンドトキシ ンを除去可能な方法を提供することを目的とする。 Techniques for washing or removing endotoxins using compositions that are easier to prepare and use include, for example, drugs that have a short shelf life and require frequent production on demand, such as a short half-life It is suitable for producing radiopharmaceuticals using radionuclides. In particular, the manufacture of drugs used in diagnostic methods for positron emission tomography (hereinafter referred to as PET) using ultrashort half-life positron-emitting nuclides with a half-life of several hours or less is more important. It is a suitable technique. The present invention is intended to adhere to or adsorb to solid surfaces To provide a method for removing endotoxin, which is a non-living chemical reagent that can be sterilized, and that can remove endotoxin more efficiently than water or saline. Aim.
発明の開示 Disclosure of the invention
PET診断法の代表的薬剤である 2— [ 18 F] —フルオロー 2—デォキシ— D—グルコース (以下 18 F— FDGという) は Hamache rらの方法 (H amache r, K. e t a 1. , J. Nuc l e ar Me d i c i ne, 27 : 235-238, 1986 ) により製造されることが多い力 本発明者らは、 この製造法にしばしば用いられるィォン遅滞樹脂に付着又は吸着 したエンドトキシンを除去する方法について鋭意研究した結果、 水や生理食塩水 では通常除去されないェンドトキシンが、 糖類を成分として含む溶液によって極 めて効率良く溶出または抽出等によって除去され、 医療用具や医薬品製造器具及 び装置等の固体表面に付着又は吸着したェンドトキシンの除去に利用できること を見出し、 本発明を完成するに至った。 2- [18 F] -Fluoro-2-deoxy-D-glucose (hereinafter referred to as 18 F-FDG), which is a representative drug for PET diagnosis, is based on the method of Hamacher et al. (Hamacher, K. eta 1., J Nucle ar Medicine, 27: 235-238, 1986) The present inventors have developed a method for removing endotoxin adhering or adsorbing to ion-retardant resin often used in this production method. As a result of intensive research on endotoxin, endotoxin, which is not normally removed with water or saline, is very efficiently removed by elution or extraction with a solution containing saccharides as a component. The present inventors have found that the present invention can be used for removing endotoxin adhering or adsorbed on a solid surface, and have completed the present invention.
かく して、 本発明の一局面によれば、 糖類を有効成分として含有することを特 徴とする、 固体表面に付着又は吸着したェンドトキシンの除去用組成物が提供さ れる。 Thus, according to one aspect of the present invention, there is provided a composition for removing endotoxin adhered or adsorbed on a solid surface, comprising a saccharide as an active ingredient.
したがって、 本発明の除去用組成物の溶液を、 エンドトキシンの除去が必要と される医療用具や医薬品製造器具及び装置の他、 各種の固体表面に接触せしめて 回収することにより、 エンドトキシンを効果的に除去することができる。 Therefore, endotoxin can be effectively removed by bringing the solution of the removing composition of the present invention into contact with and recovering various solid surfaces, in addition to medical tools and pharmaceutical manufacturing equipment and devices that require endotoxin removal. Can be removed.
したがって、 本発明の別の局面によれば、 エンドトキシンを除去すべき固体表 面と前記組成物の溶液とを接触せしめて、 該固体表面に付着又は吸着したェンド トキシンを除去することを特徴とするェンドトキシンの除去方法が提供される。 本発明の除去用組成物の溶液を上記固体表面に接触せしめる方法は、 当該固体 表面の種類に応じて適宜選択すればよく、 例えば、 本発明の除去用組成物の溶液
に固体表面を浸漬したり、 該溶液で固体表面を洗浄したり、 該溶液を適当な方法 で滅菌された布に含浸させ、 当該布で固体表面を拭うなどの方法が考えられる。 また、 本発明の組成物の溶液を用いて上記のような浸漬、 洗浄、 拭取操作等を 行なうことによって、 医療用具や医薬品製造器具または装置等の固体表面に付着 または吸着したェンドトキシンを上記溶液中に移行せしめ、 該溶液中にェンドト キシンを溶出もしくは抽出できるので、 本発明の組成物は、 該固体表面のエンド トキシンによる汚染の程度を検出および測定する際の検出液の獲得に有用であ る。 Therefore, according to another aspect of the present invention, a solid surface from which endotoxin is to be removed is brought into contact with a solution of the composition to remove endotoxin attached or adsorbed on the solid surface. A method for removing endotoxin is provided. The method for bringing the solution of the removing composition of the present invention into contact with the solid surface may be appropriately selected according to the type of the solid surface. For example, a solid surface may be immersed in the solution, the solid surface may be washed with the solution, or the solution may be impregnated in a sterilized cloth with an appropriate method, and the solid surface may be wiped with the cloth. In addition, the endotoxin adhering or adsorbed to the solid surface of a medical device, a pharmaceutical manufacturing tool or device, etc., by performing the above-described immersion, washing, wiping operations, etc. using the solution of the composition of the present invention, Since the endotoxin can be transferred into a solution and the endotoxin can be eluted or extracted into the solution, the composition of the present invention is useful for obtaining a detection liquid when detecting and measuring the degree of endotoxin contamination on the solid surface. is there.
したがって、 本発明のさらに別の局面によれば、 エンドトキシンが付着または 吸着した固体表面と前記組成物の溶液とを接触せしめて、 該固体表面から脱離ま たは脱着したェンドトキシンを含有する前記組成物を得ることを特徴とするェン ドトキシンの抽出方法が提供される。 Therefore, according to still another aspect of the present invention, a solid surface to which endotoxin is attached or adsorbed is brought into contact with a solution of the composition, and the endotoxin containing endotoxin detached or desorbed from the solid surface is contained. There is provided a method for extracting endotoxin, which comprises obtaining a composition.
以下、 本発明の実施の形態について説明する。 Hereinafter, embodiments of the present invention will be described.
本発明の組成物で使用される糖類は、 単糖類もしくはォリゴ糖類またはその誘 導体が挙げられる。 また、 これらの糖類は、 その塩または水和物でもよい。 また、 糖類は D体または L体のいずれでもよい。 具体的には、 単糖類は、 一般的には六 炭糖が好ましく、 例えば、 グルコース、 ガラクト一ス、 マンノース、 フルクトー スなどの他、 グルコサミン、 ガラクトサミン、 グルコサミン塩酸塩、 ガラクトサ ミン塩酸塩、 N—ァセチルグルコサミン、 N—ァセチルガラクトサミンなどのァ ミノ糖、 その誘導体および塩が挙げられる。 オリゴ糖としては、 二糖から六糖の 大きさのものが挙げられ、 好ましくは、 マルトース、 スクロース、 ラクト一スな どの二糖である。 このうち、 特に好ましい糖類はグルコース、 グルコサミン塩酸 塩、 N—ァセチル一 D—ガラクトサミンおよびマルト一スであり、 最も好ましく はグルコースである。 The saccharide used in the composition of the present invention includes a monosaccharide or an oligosaccharide or a derivative thereof. These saccharides may be salts or hydrates thereof. The saccharide may be either the D-form or the L-form. Specifically, the monosaccharide is generally preferably hexose. For example, in addition to glucose, galactose, mannose, fructose, etc., glucosamine, galactosamine, glucosamine hydrochloride, galactosamine hydrochloride, N— Amino sugars such as acetylglycosamine and N-acetylgalactosamine, derivatives and salts thereof. Oligosaccharides include disaccharides to hexasaccharides in size, preferably disaccharides such as maltose, sucrose and lactose. Of these, particularly preferred saccharides are glucose, glucosamine hydrochloride, N-acetyl-D-galactosamine and maltose, most preferably glucose.
本発明の除去用組成物は、 使用時には適当な溶媒に溶解した溶液として調製さ
れるが、 溶媒に予め溶解させた溶液の形態で提供してもよく、 また、 使用時に溶 媒中に溶解して使用できるように凍結乾燥させた形態で提供してもよい。 また、 本発明の組成物の凍結乾燥品と溶媒とを組み合わせたキットとして提供してもよ い。 When used, the removal composition of the present invention is prepared as a solution dissolved in an appropriate solvent. However, it may be provided in the form of a solution previously dissolved in a solvent, or may be provided in a lyophilized form so that it can be used after being dissolved in a solvent at the time of use. Further, the composition of the present invention may be provided as a kit in which a freeze-dried product and a solvent are combined.
溶媒としては、 生理学的、 薬学的または化学的に許容可能なものであれば特に 限定されず、 例えば水、 生理食塩水、 リンゲル液のような電解質の組成物、 注射 用液の他、 各種緩衝液が挙げられる。 緩衝液としては、 リン酸緩衝液、 クェン酸 緩衝液等の他、 フ夕ル酸、 リン酸、 ホウ酸、 クェン酸、 コハク酸、 酒石酸、 乳酸、 酢酸、 塩化アンモニゥム、 炭酸、 トリス (ヒドロキシメチル) ァミノメタンおよ びこれらの塩より構成される緩衝液が挙げられる。 The solvent is not particularly limited as long as it is physiologically, pharmaceutically or chemically acceptable. For example, water, physiological saline, electrolyte compositions such as Ringer's solution, injection solutions, and various buffer solutions Is mentioned. Buffers include phosphate buffer, citrate buffer, etc., as well as fluoric acid, phosphoric acid, boric acid, citric acid, succinic acid, tartaric acid, lactic acid, acetic acid, ammonium chloride, carbonic acid, tris (hydroxymethyl ) Buffers composed of aminomethane and their salts.
また、 本発明の組成物は、 必要に応じて、 生理学的、 薬学的または化学的に許 容可能な各種の添加剤を含有することができる。 添加剤としては、 例えば、 酸、 塩基などの各種 p H調製剤、 各種緩衝溶液、 デキス トラン 1 0、 デキストラン 4 0、 デキストリン、 シクロデキストリン、 乳酸ナトリウム、 各種アミノ酸、 メタ ノール、 エタノール、 ジメチルスルホキシド、 N, N—ジメチルホルムアミ ド、 ァセトニトリル、 テトラヒドロフラン等などが挙げられる。 Further, the composition of the present invention can contain various physiologically, pharmaceutically or chemically acceptable additives as necessary. Examples of additives include various pH adjusting agents such as acids and bases, various buffer solutions, dextran 10 and dextran 40, dextrin, cyclodextrin, sodium lactate, various amino acids, methanol, ethanol, dimethyl sulfoxide, N, N-dimethylformamide, acetonitrile, tetrahydrofuran and the like can be mentioned.
本発明において、 溶液中の糖類の濃度は、 糖および溶媒等の種類、 または固体 表面へのェンドトキシンの付着や吸着の程度等によって異なり必ずしも一定とす ることはできないが、 通常は、 0 . 1〜1 5 g/ 1 0 0 m l (以下、 w/v % と記す) 、 好ましくは 0 . 5〜1 0 w/v %程度である。 濃度が低すぎるとェン ドトキシンの除去効果が低下し、 濃度が高すぎると除去操作後に残留した糖類を 洗浄するために多量の洗浄液が必要となり、 操作が煩雑になる。 In the present invention, the concentration of the saccharide in the solution depends on the type of the saccharide and the solvent, etc., or the degree of endotoxin attachment or adsorption on the solid surface, and cannot be necessarily constant. It is about 1 to 15 g / 100 ml (hereinafter referred to as w / v%), preferably about 0.5 to 10 w / v%. If the concentration is too low, the effect of removing endotoxin decreases, and if the concentration is too high, a large amount of washing solution is required to wash saccharides remaining after the removal operation, and the operation becomes complicated.
本発明の組成物の溶液は、 糖類を必要に応じて添加剤とともに溶媒に溶解する ことによって調製できるが、 その性質上、 エンドトキシンを含まないか失活させ たものとして調製しなければならない。 本発明の組成物からエンドトキシンを除
く方法としては、 糖類溶液から限外ろ過膜またはェンドトキシン吸着体などによ りェンドトキシンを除去する方法や、 限外ろ過膜などによりェンドトキシンを予 め除去した水を用いて糖類溶液を調製する方法などが挙げられる。 また、 滅菌さ れた市販の糖類溶液、 例えば、 日本薬局方ブドウ糖注射液 (5 w/v %、 1 0 w /v %等) をそのまま用いることもでき、 この場合、 特別な調製を要さないので 好都合である。 また、 かかる市販の糖類溶液を、 適宜、 上記溶媒を用いて無菌的 に希釈して用いてもよい。 The solution of the composition of the present invention can be prepared by dissolving a saccharide together with an additive as necessary in a solvent. However, due to its properties, it must be prepared without endotoxin or inactivated. Endotoxin is removed from the composition of the present invention. Examples of the method include removing endotoxin from a saccharide solution using an ultrafiltration membrane or endotoxin adsorbent, or preparing a saccharide solution using water from which endotoxin has been removed in advance using an ultrafiltration membrane. And the like. Alternatively, a sterilized commercially available saccharide solution, for example, Japanese Pharmacopoeia Glucose Injection (5 w / v%, 10 w / v%, etc.) can be used as it is, in which case special preparation is required. Not convenient. Further, such a commercially available saccharide solution may be appropriately aseptically diluted using the above-mentioned solvent and used.
かくして、 適当な固体を本発明の組成物の溶液中に浸漬させたり、 該固体の表 面を該溶液で洗浄することにより、 該固体の表面に付着または吸着したエンドト キシンは該表面から脱離または脱着して該溶液中に移行するため、 効果的に除去 される。 また、 浸漬または洗浄に用いた溶液を回収することによって、 固体表面 に付着していたェンドトキシン量を検出又は測定することもできる。 すなわち、 本発明の組成物は、 ェンドトキシン検出液としても用いることができる。 Thus, by immersing a suitable solid in the solution of the composition of the present invention or washing the surface of the solid with the solution, endotoxin adhering to or adsorbing to the surface of the solid is desorbed from the surface. Alternatively, it is desorbed and moves into the solution, so that it is effectively removed. Also, by collecting the solution used for immersion or washing, the amount of endotoxin adhering to the solid surface can be detected or measured. That is, the composition of the present invention can also be used as an endotoxin detection solution.
上記のようにして回収された溶液を、 自体公知のエンドトキシン測定法、 例え ば、 カブトガ二の血球成分抽出液 (以下、 A L溶液と略記する。 ) を用いるリム ルステス卜法等に測定用サンプルとして供することにより、 固体表面のェンドト キシンによる汚染の度合を正確に測定できる。 A L溶液としては、 例えば、 リム ルス属 (L i mu 1 u s ) 、 夕キプレウス属 (T a c h y p l e u s ) などの力 ブトガ二の血球から抽出されたもので、 エンドトキシン又は/?一 1, 3—グルカ ンとの反応により凝固が生じるものを使用できる。 一般には、 生化学工業 (株) 及び和光純薬工業 (株) 等から市販されている凍結乾燥品をもとに調製したもの が使用可能である。 リムルステスト法によってサンプル中のェンドトキシン濃度 を測定する方法としては、 日本薬局方に記載されているような通常用いられる方 法であれば特に限定されることなく使用可能である。 The solution recovered as described above is used as a sample for measurement by a per se known endotoxin measurement method, for example, the Limulustest method using a blood cell component extract of Limulus aegypti (hereinafter abbreviated as AL solution). By doing so, the degree of contamination of the solid surface by endotoxin can be accurately measured. Examples of the AL solution include those extracted from the blood cells of the genus Butogani, such as the genus Limulus (Limus 1 us) and the genus Tachypleus, and are endotoxin or / 1,3-glucan. Those which cause coagulation due to the reaction with can be used. Generally, those prepared from freeze-dried products commercially available from Seikagaku Corporation and Wako Pure Chemical Industries, Ltd. can be used. As a method for measuring the endotoxin concentration in a sample by the Limulus test method, any method commonly used as described in the Japanese Pharmacopoeia can be used without any particular limitation.
本発明のェンドトキシン除去または抽出方法の対象となる固体表面としては、
医療用具、 医薬品製造器具、 医薬品製造装置などの表面が挙げられる。 医療用具 としては、 例えば、 デイスポーザブル注射針、 デイスポーザブル注射筒、 デイス ポ一ザブル輸血器具及び輸液器具、 ディスポ一サブル採血用器具、 人工心肺用デ イスポーサブルセッ ト、 医療用人工血管、 人工心臓弁、 心臓ペースメーカー、 透 析型人工腎臓装置のほか、 ェンドトキシン試験に使用するデイスポーサブル実験 器具 (滅菌済みピぺット、 滅菌済み試験管、 滅菌済みピぺッ トチップ等) などが 含まれる。 医薬品製造器具および医薬品製造装置としては、 例えば、 イオン交換 樹脂等の精製や分離に用いる樹脂、 逆浸透膜、 ナノろ過膜、 限外ろ過膜、 精密ろ 過膜、 電気透析膜などの精製や分離に用いる膜などが挙げられる。 また、 本発明 は、 有効期限が短いために需要に応じた高頻度の製造が要求される医薬品の製造 器具および装置からエンドトキシンを除去するために有用であり、 特に、 2— [ 1 8 F ] —フルオロー 2—デォキシ— D—グルコースの合成装置及び/または器具 に付着または吸着したェンドトキシンを効果的に除去するために好都合である。 実施例 The solid surface to be subjected to the endotoxin removal or extraction method of the present invention includes: Examples include surfaces of medical equipment, pharmaceutical manufacturing equipment, and pharmaceutical manufacturing equipment. Examples of medical devices include disposable injection needles, disposable syringes, disposable blood transfusion devices and infusion devices, disposable blood collection devices, cardiopulmonary bypass devices, medical artificial blood vessels, Includes artificial heart valves, cardiac pacemakers, dialysis artificial kidney devices, and disposable laboratory equipment (sterile pipes, sterile test tubes, sterile pipe tips, etc.) used for endotoxin testing. It is. Pharmaceutical manufacturing equipment and equipment include, for example, purification and separation of resins used for purification and separation of ion exchange resins, reverse osmosis membranes, nanofiltration membranes, ultrafiltration membranes, precision filtration membranes, electrodialysis membranes, etc. For example. In addition, the present invention is useful for removing endotoxin from manufacturing equipment and devices for pharmaceuticals requiring short-lived expiration and requiring frequent production according to demand. In particular, 2- [18F] This is convenient for effectively removing endotoxin adhering or adsorbed to a device and / or device for synthesizing fluoro-2-dexoxy-D-glucose. Example
以下に、 実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、 本発明はこれら実 施例により何ら限定されるものではない。 なお、 以下の実施例において、 特に断 らない限り、 糖類溶液の濃度表示は 「w/v %」 とする。 Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to Examples, but the present invention is not limited to these Examples. In the following examples, unless otherwise specified, the concentration of the saccharide solution is expressed as “w / v%”.
試験に用いた試薬および器具 Reagents and equipment used for testing
注射筒、 三方活栓及びカラム等は市販の滅菌済使い捨て器具を用いた。 ガラス 器具は洗浄後注射用水を通し、 2 5 0 °C、 9 0分乾熱滅菌処理したものを用いた。 糖類の溶液については市販品を適宜希釈するか、 市販品特級試薬を注射用水に 溶解し、 下記実施例でイオン遅滞樹脂に通過させるエンドトキシン除去用溶液と して用いた。 これらの溶液の調製はすべて無菌的な操作によって行った。 A commercially available sterilized disposable device was used for the syringe, stopcock and column. After washing, the glassware was passed through water for injection and sterilized by dry heat at 250 ° C for 90 minutes. For the saccharide solution, a commercially available product was appropriately diluted, or a commercially available special-grade reagent was dissolved in water for injection, and used as an endotoxin removal solution to be passed through an ion-retarding resin in the following Examples. All of these solutions were prepared by aseptic operation.
日本薬局方に基づいたェンドトキシン試験用試薬は、 以下のものを用いた。 エンド トキシン標準溶液 ( 1 0 0 0 0 E U/m l ) :エンド トキシン 1 0 0 0
0標準品 (日本薬局方標準品) へエンドトキシン試験用水適量を加え溶解し、 ェ ンドトキシン標準溶液 ( 10000 EU/ml) を調製し、 これを原液とし、 適 宜希釈して用いた。 なお、 「EU」 はェンドトキシン単位を意味する。 The following endotoxin test reagents based on the Japanese Pharmacopoeia were used. Endotoxin standard solution (1000 EU / ml): Endotoxin 100 0 Endotoxin test solution (10000 EU / ml) was prepared by adding an appropriate amount of water for endotoxin test to a standard product (standard product of the Japanese Pharmacopoeia) and dissolved, and this was used as a stock solution, diluted appropriately, and used. “EU” means endotoxin unit.
ゲル化法: リムルス ES— I I テストヮコー (和光純薬製) Gelling method: Limulus ES-II Test Co. (Wako Pure Chemical Industries)
比濁法: リムルス E S— I I テストヮコーまたはリムルス E S— J テストヮ コー (和光純薬製) Turbidimetry: Limulus E S-II Test I Co. or Limulus E S J Test II Co. (Wako Pure Chemical Industries)
イオン遅滞樹脂はバイオラッド製イオン遅滞樹脂 AG 1 1A8を用いた。 The ion retardation resin used was an ion retardation resin AG11A8 manufactured by Bio-Rad.
実施例 1 Example 1
グルコース溶液によるイオン遅滞樹脂の洗浄— 1 Washing of ion-retardant resin with glucose solution— 1
オートクレープ滅菌 ( 120°C、 20分) したカラムに、 イオン遅滞樹脂を無 菌的に充填した。 カラムは 2本作成した。 The column that had been autoclaved (120 ° C, 20 minutes) was aseptically packed with the ion-delay resin. Two columns were created.
2本のカラムに注射用水 10 Omlを通し、 コンディショニングを行なった。 その後、 1本のカラム (以下カラム 1とする) には注射用水 1 Omlを通し、 も う一本のカラム (以下カラム 2とする) には 0. 175 w,v%グルコース溶液 1 Omlを通した。 それそれのカラムからの各溶出液についてェンドトキシン試 験 (ゲル化法) を行なった。 ゲル化法は日本薬局方の方法に従い実施した。 結果 を表 1に示す。 Conditioning was performed by passing 10 Oml of water for injection through the two columns. Then, 1 Oml of water for injection is passed through one column (hereinafter referred to as column 1) and 1 Oml of 0.175 w, v% glucose solution is passed through the other column (hereinafter referred to as column 2). did. An endotoxin test (gelation method) was performed on each eluate from each column. The gelation method was performed according to the method of the Japanese Pharmacopoeia. Table 1 shows the results.
表 1のカラム 2の結果から、 0. 175 w/v%グルコース溶液をカラムに通 すことによって、 エンドトキシンが溶出されていることが確認された。 一方、 注 射用水を通したカラム 1の溶出液からはェンドトキシンは検出されなかった。 こ のことから、 注射用水 10 Omlを用いたコンディショニングではカラムから溶 出されなかったエンドトキシンが、 この後に 0. 175 w/v%グルコース溶液 1 Omlを通すことによって溶出されたといえる。
注射用水、 0.175w/v%グルコース溶液をィオン遅滞樹脂 From the results of column 2 in Table 1, it was confirmed that endotoxin was eluted by passing a 0.175 w / v% glucose solution through the column. On the other hand, endotoxin was not detected in the eluate of column 1 through the injection water. From this, it can be said that endotoxin which was not eluted from the column in the conditioning using 10 Oml of water for injection was eluted by passing 1 Oml of the 0.175 w / v% glucose solution thereafter. Water for injection, 0.175 w / v% glucose solution in ion-retarding resin
に通したときの各溶出液のェンド トキシン試験結果。
実施例 2 Endotoxin test results for each eluate when passed through Example 2
グルコース溶液によるィォン遅滞樹脂の洗浄— 2 Washing of Ion Delayed Resin with Glucose Solution—2
ォ一トクレーブ滅菌 ( 120° (:、 20分) したカラムに、 イオン遅滞樹脂を無 菌的に充填した。 カラムは 2本作成した。 Columns sterilized by autoclave (120 ° (:, 20 minutes)) were aseptically packed with ion-retarding resin.
1本のカラム (以下カラム 3とする) に注射用水を通し、 もう 1本のカラム (以 下カラム 4とする) に 0. 175 wZv%グルコース溶液を通した。 各溶出液は 100ml、 200ml, 500 m 1及び 1000 m 1溶出された時点でサンプ リングし、 それそれサンプリング番号 1, 2, 3及び 4とした。 サンプリングし た溶出液について比濁法によってエンドトキシン濃度の測定を行なった。 比濁法 は日本薬局方の方法に従い実施した。 結果を表 2に示す。 Water for injection was passed through one column (hereinafter referred to as column 3), and 0.175 wZv% glucose solution was passed through the other column (hereinafter referred to as column 4). Each eluate was sampled when 100 ml, 200 ml, 500 ml and 1000 ml were eluted, and the sampling numbers were 1, 2, 3 and 4, respectively. The endotoxin concentration of the sampled eluate was measured by turbidimetry. Nephelometry was performed according to the method of the Japanese Pharmacopoeia. Table 2 shows the results.
表 2に示すように、 カラム 4の結果から 0. 175 w/v%グルコース溶液を 流すことによって、 最初のフラクション中 (サンプリング番号 1) にエンドトキ シンが溶出されていることが確認された。 また、 エンドトキシンのカラムからの 抽出は比較的速く、 サンプリング番号 2から 4においては、 ほとんどエンドトキ シン濃度が認められないレベルになっていることが観察された。 一方、 カラム 3 の結果が示すように注射用水を流しても、 エンドトキシンは溶出されなかった。
表 2 As shown in Table 2, the results of column 4 confirmed that endotoxin was eluted in the first fraction (sampling number 1) by flowing the 0.175 w / v% glucose solution. In addition, the extraction of endotoxin from the column was relatively fast, and it was observed that almost no endotoxin concentration was observed in sampling numbers 2 to 4. On the other hand, endotoxin was not eluted when water for injection was used as shown in the results of column 3. Table 2
注射用水 (カラム 3) 及び 0.175w/v%グルコース溶液 (カラム 4) を Water for injection (column 3) and 0.175 w / v% glucose solution (column 4)
ェンドトキシン混入イオン遅滞樹脂カラムの作成 Preparation of endotoxin-contaminated ion-delay resin column
ビーカーにイオン遅滞樹脂 (AG 1 1A8) 20 gをとり、 注射用水適量を加 ぇ膨潤させ、 さらに、 上記の如く調製したエンドトキシン標準溶液 ( 10000 EU/ml) を 0. 4ml添加した。 これを一昼夜攪拌しながら 4 °Cで保管した。 このイオン遅滞樹脂適量をォ一トクレーブ滅菌 ( 120°C、 20分) したカラム に無菌的に充填した。 20 g of the ion-retarding resin (AG11A8) was placed in a beaker, an appropriate amount of water for injection was added to swell, and 0.4 ml of the endotoxin standard solution (10000 EU / ml) prepared as described above was added. This was stored at 4 ° C. with stirring overnight. An appropriate amount of this ion-retarded resin was aseptically packed into a column that had been autoclaved (120 ° C, 20 minutes).
実施例 3 Example 3
イオン遅滞樹脂中に含まれるェンドトキシンの除去効果の測定:イオン遅滞樹脂 からのェンドトキシンの除去操作一 1 Measurement of endotoxin removal effect in ion-retardant resin: Removal of endotoxin from ion-retardant resin 1
参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを 2本用意し、 1本のカラ ム (以下カラム 5とする) には注射用水 5mlを、 もう一本のカラム (以下カラ ム 6とする) には 1 Ow/v%グルコース溶液 5 mlを通過させた。 それそれの カラムからの各溶出液を滅菌済みのビーカ一に 0. 5 mlずつ合計 10フラクシ ョン分取した。 これらのフラクションのそれそれをフラクション番号 1から 10 とした。 Prepare two ion-delay resin columns prepared according to the reference example. One column (hereinafter referred to as column 5) contains 5 ml of water for injection and the other column (hereinafter referred to as column 6). 5 ml of a 1 Ow / v% glucose solution was passed. Each eluate from each column was dispensed in 0.5 ml aliquots into sterile beakers for a total of 10 fractions. These fractions were designated as fraction numbers 1 to 10.
カラム中に残留したエンドトキシンを確認するための洗浄操作 Washing operation to confirm endotoxin remaining in column
次いで、 前記カラム 5および 6に 10 w/v%グルコース溶液 7. 5mlを通 過させた。 それそれのカラムからの各溶出液を滅菌済みの試験管に 0. 5mlず
つ合計 15フラクション分取した。 これらのフラクションのそれそれをフラクシ ヨン番号 11から 25とした。 Next, 7.5 ml of a 10 w / v% glucose solution was passed through the columns 5 and 6. Add 0.5 ml of each eluate from each column to a sterile tube. A total of 15 fractions were collected. Each of these fractions was designated fraction number 11 to 25.
各フラクションのェンドトキシン濃度測定 Endotoxin concentration measurement of each fraction
カラム 5及び 6から上記のように得られたフラクション番号 4, 5, 6 , 7 , 10, 13, 16, 19, 22及び 25の溶液について、 それそれエンドトキシ ン濃度の測定を実施した。 エンドトキシン試験は日本薬局方の方法に従い比濁法 にて行った。 The endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7, 10, 13, 16, 19, 22 and 25 obtained from columns 5 and 6 as described above. The endotoxin test was performed by turbidimetry according to the method of the Japanese Pharmacopoeia.
エンドトキシン濃度測定値の補正 Correction of endotoxin concentration measurement
溶出液についてのエンドトキシン試験の測定値は、 阻害補正を行った。 阻害補 正は以下のようにして行った。 各々の糖類溶液にェンドトキシン標準溶液希釈液 (0. 5 EU/ml) をサンプル液が 0. 25 EU/mlとなるように添加し、 この溶液のエンドトキシン濃度を測定した。 一方、 注射用水にもエンドトキシン 標準溶液希釈液 (0. 5EUZml) を同様に添加し、 この溶液のエンドトキシ ン濃度を測定した。 エンドトキシン標準溶液希釈液 (0. 5 EU/ml) を加え た各糖類溶液のェンドトキシン濃度のそれそれについて、 ェンドトキシン標準溶 液希釈液 (0. 5 EU/ml) を加えた注射用水のェンドトキシン濃度を百とし たときの割合を百分率 (%) を求め、 これを阻害率 (%) とした。 各フラクショ ンのェンドトキシン濃度をこの阻害率で補正した。 注射用水のェンドトキシン試 験の測定値については、 補正は行なわなかった。 The measured values of the endotoxin test on the eluate were corrected for inhibition. Inhibition correction was performed as follows. An endotoxin standard solution dilution (0.5 EU / ml) was added to each saccharide solution so that the sample solution became 0.25 EU / ml, and the endotoxin concentration of this solution was measured. On the other hand, an endotoxin standard solution diluent (0.5 EUZml) was similarly added to water for injection, and the endotoxin concentration of this solution was measured. For each endotoxin concentration of each saccharide solution to which the endotoxin standard solution diluent (0.5 EU / ml) was added, add the endotoxin standard solution diluent (0.5 EU / ml) to the injection water. Percentage (%) was calculated assuming the concentration of undotoxin as 100, and this was defined as the inhibition rate (%). The endotoxin concentration of each fraction was corrected for this inhibition rate. No correction was made for endotoxin measurements in water for injection.
表 3に、 カラム 5および 6のそれそれの各フラクション 4、 5、 6、 7および 10中に含まれるエンドトキシン濃度 (補正後の値) を示す。
表 3 Table 3 shows the concentrations (corrected values) of endotoxin contained in fractions 4, 5, 6, 7 and 10 in columns 5 and 6, respectively. Table 3
10w/v%グルコース溶液及び注射用水によるィォン遅滞樹脂カラム中の ェンド トキシン除去におけるェン ド トキシン濃度の変化。
Changes in endotoxin concentration during removal of endotoxin from an ion lag resin column by 10 w / v% glucose solution and water for injection.
(EU/ml) 表 3から、 1 0 w/v %グルコース溶液をカラムに通した場合、 溶出するェン ドトキシン量はフラクション 4から 7までのェンドトキシン濃度の変化が示すよ うに、 フラクションごとに急速に減少していった。 このことから 1 0
%グ ルコース溶液によって、 速やかにエンドトキシンが除去されてゆく様相が観察さ れた。 (EU / ml) From Table 3, when 10 w / v% glucose solution was passed through the column, the amount of endotoxin eluted was different for each fraction, as indicated by the change in endotoxin concentration from fractions 4 to 7. It decreased rapidly. From this, 1 0 It was observed that the endotoxin was rapidly removed by the% glucose solution.
この結果より、 注射用水を用いるよりも 1 0 w/v %グルコース溶液を用いて カラム中のェンドトキシンを溶出させるほうが、 より速やかにェンドトキシンを 溶出できることが確認された。 From these results, it was confirmed that endotoxin in the column can be eluted more quickly by eluting endotoxin in the column using a 10 w / v% glucose solution than by using water for injection.
カラム内になお残留しているエンドトキシンの有無を示すために、 表 4に、 力 ラム 5および 6のそれそれの各フラクション 1 3, 1 6 , 1 9 , 2 2及び 2 5中 に含まれるエンドトキシン濃度 (補正後の値) を示す。 To show the presence or absence of endotoxin still remaining in the column, Table 4 lists the endotoxins contained in each of fractions 13, 16, 19, 22, and 25 of columns 5 and 6. Indicates the density (value after correction).
表 4 Table 4
10w/v%グルコース溶液によるカラムの洗浄操作におけるエンド トキシン Endotoxin in washing operation of column with 10 w / v% glucose solution
(EU/ml)
フラクション 1〜 10の溶出液に注射用水を用いたカラム 5では、 その後の 1 0 w/v%グルコース溶液を溶出液としたフラクション 1 1〜25にェンド卜キ シンが溶出されたので、 フラクション 1〜 10の注射用水によるェンドトキシン 除去が充分でなかったといえる。 (EU / ml) In column 5 using water for injection as the eluate for fractions 1 to 10, endotoxin was eluted in fractions 1 to 25 using the subsequent 10 w / v% glucose solution as eluent. It can be said that endotoxin removal by ~ 10 water for injection was not sufficient.
一方、 フラクション 1〜 10の溶出液に 10w/v%グルコース溶液を用いた カラム 6では、 その後の 10 w/v%グルコース溶液を溶出液としたフラクショ ン 1 1以降にほとんどェンドトキシンが溶出されなかった。 On the other hand, in column 6, which used a 10 w / v% glucose solution as the eluate for fractions 1 to 10, almost no endotoxin was eluted after fraction 11 using the subsequent 10 w / v% glucose solution as the eluate. Was.
このように、 上記イオン遅滞樹脂中のェンドトキシンを除去するための溶液と して、 注射用水を用いるよりも、 10w/v%グルコース溶液を用いたほうが、 より有効にエンドトキシンを溶出できることが確認された。 Thus, it was confirmed that endotoxin could be more effectively eluted by using a 10 w / v% glucose solution as a solution for removing endotoxin in the ion-retardant resin than by using water for injection. Was.
実施例 4 Example 4
イオン遅滞樹脂中に含まれるェンドトキシンの除去効果の測定:イオン遅滞樹脂 からのェンドトキシンの除去操作— 2 Measurement of endotoxin removal effect in ion-retardant resin: Removal of endotoxin from ion-retardant resin— 2
参考例で作成したイオン遅滞樹脂カラム (以下カラム 7とする)へ、 lw/v% グルコース溶液 5 mlを通過させた。 このカラムからの溶出液を滅菌済みのビー カーに 0. 5 mlずつ合計 10フラクション分取した (フラクション番号 1から 10) o 5 ml of an lw / v% glucose solution was passed through the ion retardation resin column (hereinafter referred to as column 7) prepared in the reference example. The eluate from this column was dispensed in 0.5 ml aliquots into sterilized beakers for a total of 10 fractions (fraction numbers 1 to 10) .o
各フラクションのェンドトキシン濃度測定 Endotoxin concentration measurement of each fraction
得られたフラクションのうち、 フラクション番号 4, 5, 6, 7及び 10の溶 液について、 それそれェンドトキシン濃度の測定を実施した。 エンドトキシン試 験及び測定値の阻害補正は実施例 3の方法と同様に行った。 その結果を表 5に示 す。
表 5 Among the obtained fractions, solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7 and 10 were subjected to measurement of endotoxin concentration. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in Example 3. Table 5 shows the results. Table 5
lw/v%グルコース溶液によるィォン遅滞樹脂カラム中のエンド End in an ion retarding resin column with lw / v% glucose solution
トキシン除去におけるエンド トキシン濃度の変化。
Changes in endotoxin concentration during toxin removal.
(EU/ml) 表 5より、 l w/v %グルコース溶液をカラムに通すことによって、 イオン遅 滞樹脂カラム中のェンドトキシンが各フラクションへ溶出され、 その量はフラク シヨン 4から 7までのェンドトキシン濃度の変化が示すように、 フラクションご とに急速に減少してゆき、 上記イオン遅滞樹脂カラムから速やかにエンドトキシ ンが除去、 抽出されてゆく様相が観察された。 (EU / ml) As shown in Table 5, the endotoxin in the ion-delay resin column was eluted into each fraction by passing the lw / v% glucose solution through the column, and the amount of endotoxin in fractions 4 to 7 was increased. As shown by the change in the concentration, it was observed that the concentration rapidly decreased for each fraction, and endotoxin was rapidly removed and extracted from the ion-lagging resin column.
実施例 5 Example 5
イオン遅滞樹脂中に含まれるェンドトキシンの除去効果の測定:イオン遅滞樹脂 からのェンドトキシンの除去操作一 3 Measurement of endotoxin removal effect in ion-retardant resin: Removal of endotoxin from ion-retardant resin 1
参考例で作成したイオン遅滞樹脂カラム (以下カラム 8とする) へ、 l w/v % L w / v% to the ion retardation resin column (hereinafter referred to as column 8) created in Reference Example
D - ( + ) ダルコサミン塩酸塩溶液 5 m lを通過させた。 このカラムからの溶出 液を滅菌済みのビーカーに 0 . 5 m lずつ合計 1 0フラクション分取した (フラ クシヨン番号 1から 1 0 ) 。 5 ml of D-(+) darcosamine hydrochloride solution were passed through. The eluate from this column was collected in a sterilized beaker in 0.5 ml portions for a total of 10 fractions (fraction numbers 1 to 10).
各フラクションのェンドトキシン濃度測定 Endotoxin concentration measurement of each fraction
得られたフラクションのうち、 フラクション番号 4, 5 , 6 , 7及び 1 0の溶 液について、 それそれエンドトキシン濃度の測定を実施した。 エンドトキシン試 験及び測定値の阻害補正は実施例 3の方法と同様に行った。 その結果を表 6に示 す。
表 6 Among the obtained fractions, solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7, and 10 were subjected to endotoxin concentration measurement. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in Example 3. Table 6 shows the results. Table 6
lw/v%D-(+)-グルコサミ ン塩酸塩溶液によるイオン遅滞樹脂カラム中のェ ンド トキシン除去におけるエンド トキシン濃度の変化。
Changes in endotoxin concentration during removal of endotoxin from ion-retarded resin column by lw / v% D-(+)-glucosamine hydrochloride solution.
(EU/ml) (EU / ml)
実施例 6 イオン遅滞樹脂中に含まれるェンドトキシンの除去効果の測定:イオン遅滞樹脂 からのエンドトキシンの除去操作一 4 参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを 2本用意し、 一本のカラ ム (以下カラム 9とする) にはl w/v %マル卜一ス溶液5 m lを、 もう一本の カラム (以下カラム 1 0とする) には 1 0 w/v %マルト一ス溶液 5 m 1を通過 させた。 それそれのカラムからの各溶出液を滅菌済みのビーカ一に 0 . 5 m lず つ合計 1 0フラクション分取した。 これらのフラクションのそれそれをフラクシ ヨン番号 1から 1 0とした。 Example 6 Measurement of Endotoxin Removal Effect in Ion-Retardant Resin: Removal Procedure of Endotoxin from Ion-Retardant Resin 1 4 Prepare two ion-retardant resin columns prepared according to Reference Example, and use one column. 5 ml of lw / v% maltose solution for the other column (hereinafter referred to as column 9) and 5 ml of 10 w / v% maltose solution for the other column (hereinafter column 10). Was passed. Each eluate from each column was dispensed in 0.5 ml aliquots into sterile beakers for a total of 10 fractions. Each of these fractions was designated fraction number 1 to 10.
各フラクションのェンドトキシン濃度測定 得られたフラクションのうち、 フラクション番号 4, 5, 6 , 7及び 1 0の溶 液について、 それそれエンドトキシン濃度の測定を実施した。 エンドトキシン試 験及び測定値の阻害補正は実施例 3の方法と同様に行った。 その結果を表 7に示 す。 Endotoxin concentration measurement of each fraction Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7, and 10 respectively. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in Example 3. Table 7 shows the results.
表 7 Table 7
lw/v%および 10w/v%マルトース溶液によるィォン遅滞樹脂カラム中のェ ンド トキシン除去におけるエンド トキシン濃度の変化。
Changes in endotoxin concentration during removal of endotoxin from an ion-retarded resin column by lw / v% and 10w / v% maltose solutions.
(EU/ml)
実施例 7 (EU / ml) Example 7
イオン遅滞樹脂中に含まれるェンドトキシンの除去効果の測定:イオン遅滞樹脂 からのェンドトキシンの除去操作一 5 Measurement of endotoxin removal effect in ion-retardant resin: Removal of endotoxin from ion-retardant resin 1
参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを 2本用意し、 一本のカラ ム (以下カラム 11とする) には 1 w/v%N—ァセチル一D_ガラクトサミン 溶液 5mlを、 もう一本のカラム (以下カラム 12とする) には 10w/v%N —ァセチル一D_ガラクトサミン溶液 5 mlを通過させた。 それぞれのカラムか らの各溶出液を滅菌済みのビーカーに 0. 5 mlずつ合計 10フラクション分取 した。 これらのフラクションのそれそれをフラクション番号 1から 10とした。 各フラクションのエンドトキシン濃度測定 得られたフラクションのうち、 フラクション番号 4, 5, 6, 7及び 10の溶 液について、 それそれエンドトキシン濃度の測定を実施した。 エンドトキシン試 験及び測定値の阻害補正は実施例 3の方法と同様に行った。 その結果を表 8に示 す。 Prepare two ion-delay resin columns prepared according to the reference example. One column (hereinafter referred to as column 11) contains 5 ml of 1 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution and another column. A column (hereinafter referred to as column 12) was passed with 5 ml of a 10 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution. Each eluate from each column was dispensed in 0.5 ml aliquots into a sterilized beaker for a total of 10 fractions. These fractions were designated as fraction numbers 1 to 10. Endotoxin concentration measurement of each fraction Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7, and 10, respectively. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in Example 3. Table 8 shows the results.
表 8 Table 8
lw/v%および 10 w/v%N-ァセチル -D-ガラク トサミン溶液によるイオン遅滞 樹脂カラム中のェンド トキシン除去におけるェン ド トキシン濃度の変化。 Ion delay due to lw / v% and 10 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solutions Changes in endotoxin concentration during endotoxin removal from resin columns.
(EU/ml) (EU / ml)
表 6、 表 7および表 8より、 lw/v%D— ( + ) —グルコサミン塩酸塩溶液、 1 w/v%マルト一ス溶液、 10 w/v%マルトース溶液、 lw/v%N—ァセ チル— D—ガラクトサミン溶液及び 10 w/v%N—ァセチル一 D—ガラクトサ
ミン溶液をェンドトキシン除去用溶液として用いた場合でも、 表 1から表 5に示 したグルコース溶液と同様の結果が得られた。 即ち、 これらの溶液をカラムに流 すことによって、 各フラクションへイオン遅滞樹脂カラム中のェンドトキシンが 溶出され、 その量はフラクション 4から Ίまでのェンドトキシン濃度の変化が示 すように、 フラクションごとに急速に減少してゆき、 上記イオン遅滞樹脂カラム から速やかにエンドトキシンが除去、 抽出されてゆく様相が観察された。 From Table 6, Table 7 and Table 8, lw / v% D — (+) — glucosamine hydrochloride solution, 1 w / v% maltose solution, 10 w / v% maltose solution, lw / v% N— Cetyl-D-galactosamine solution and 10 w / v% N-acetyl-D-galactosa When the min solution was used as the endotoxin removing solution, the same results as those of the glucose solutions shown in Tables 1 to 5 were obtained. That is, by flowing these solutions through the column, the endotoxin in the ion-retarding resin column is eluted into each fraction, and the amount of endotoxin varies with the fraction as indicated by the change in endotoxin concentration from fraction 4 to Ί. The endotoxin was rapidly removed from the ion-lagging resin column and extracted.
さらに、 1 w/v %マルト一ス溶液よりも 1 O w/v %マルトース溶液を、 ま た、 1 w/v % N—ァセチル— D—ガラクトサミン溶液よりも 1 O w/v % N— ァセチル一 D—ガラクトサミン溶液をェンドトキシン除去用溶液として用いたと き、 エンドトキシンの溶出の様相は速やかであり、 濃度が高い溶液のほうが減少 の割合が速やかであることも認められた。 In addition, 1 O w / v% maltose solution was added over 1 w / v% maltose solution, and 1 O w / v% N-acetil was added over 1 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution. When 1-D-galactosamine solution was used as the endotoxin removal solution, the appearance of endotoxin elution was rapid, and it was also observed that the higher the concentration, the faster the rate of reduction.
産業上の利用の可能性 Industrial applicability
本発明によれば、 糖類の溶液を用いて固体表面に付着又は吸着したェンドトキ シンを除去できることが明らかとなった。 したがって、 滅菌処理された糖類の溶 液を医療用具や医薬品製造器具および装置の表面に接触させることにより、 該表 面に付着又は吸着したェンドトキシンを効率良く除去することができる。 本発明 によれば、 従来の除去方法では溶出もしくは抽出困難であったものまで、 効果的 にかつ簡便に除去でき、 さらに、 除去後の煩雑な後処理も不必要である点で、 医 薬品製造現場などで有用である。
According to the present invention, it has been clarified that endotoxin adhering or adsorbing to a solid surface can be removed using a saccharide solution. Therefore, the endotoxin adhering or adsorbed to the surface can be efficiently removed by bringing the sterilized saccharide solution into contact with the surface of a medical device, a pharmaceutical manufacturing device, or a device. ADVANTAGE OF THE INVENTION According to this invention, it can remove effectively and easily what was difficult to elute or extract with the conventional removal method, Furthermore, complicated post-processing after removal is unnecessary. Useful in the field.