JPWO2003055533A1

JPWO2003055533A1 - Endotoxin removal composition and removal method

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Publication number: JPWO2003055533A1
Application number: JP2003556108A
Authority: JP
Inventors: 健二上村; 美奈子戸田
Original assignee: Nihon Medi Physics Co Ltd
Current assignee: Nihon Medi Physics Co Ltd
Priority date: 2001-12-26
Filing date: 2002-12-05
Publication date: 2005-04-28
Anticipated expiration: 2022-12-05
Also published as: NO20033772L; JP5296016B2; NO20033772D0; TW200301142A; JP2010284535A; AU2002349439A1; WO2003055533A1; JP4647911B2

Abstract

医療用具や医薬品製造器具及び装置等の固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンを除去する技術であって、生体由来でない化学的な試薬であって且つ滅菌処理できる成分を用い、水や生理食塩水よりも効率良くエンドトキシンを除去可能な方法を提供する。単糖類、オリゴ糖類およびそれらの誘導体ならびにそれらの水和物および塩などからなる群より選ばれる糖類を有効成分として含有することを特徴とする、固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンの除去用組成物、ならびに、前記組成物の溶液を固体表面に接触せしめて該固体表面からエンドトキシンを除去する方法。It is a technology that removes endotoxin adhering to or adsorbing to the solid surface of medical devices, pharmaceutical production equipment and devices, etc., and is a chemical reagent that is not derived from a living body and uses components that can be sterilized. Provide a method capable of efficiently removing endotoxin. A composition for removing endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface, comprising as an active ingredient a saccharide selected from the group consisting of monosaccharides, oligosaccharides and derivatives thereof, and hydrates and salts thereof. And a method of removing endotoxin from the solid surface by bringing the solution of the composition into contact with the solid surface.

Description

技術分野
本発明は、糖類を用いたエンドトキシンの除去技術に関し、詳しくは、糖類を含有するエンドトキシンの除去用組成物ならびに該組成物を用いたエンドトキシンの除去方法および抽出方法に関し、医療用具、医薬品製造器具、医薬品製造装置などの固体表面からエンドトキシンを除去するために有用な技術に関する。
背景技術
エンドトキシンは主としてグラム陰性菌の細胞壁の外膜に存在するリポ多糖の一種であり、発熱性物質（Ｐｙｒｏｇｅｎ）として一般によく知られている物質である。
注射剤やカテーテルなどのエンドトキシン汚染により体内へ発熱性物質が混入すると、発熱、ショック、広汎性血管内凝固（ＤＩＣ：ＤｉｓｓｅｍｉｎａｔｅｄＩｎｔｒａｖａｓｃｕｌａｒＣｏａｇｕｌａｔｉｏｎ）などを発症する可能性があるので、注射剤等の医薬品、注射器やカテーテル等の医療用具、さらには医薬品製造器具及び装置等のエンドトキシン汚染は、厳しく管理する必要がある。
多くの医療用具や医薬品製造器具及び装置等は、種々の合成樹脂、ガラス、金属及び天然繊維等から構成されており、エンドトキシンの付着又は吸着により汚染される可能性が高い。
通常、エンドトキシンは２５０℃で３０分以上または１７０℃で１２０分以上の加熱処理で不活性化できるので、ガラスや金属などは、このような加熱処理によりエンドトキシンを除染できる。また、エンドトキシンは水酸化ナトリウム含有エタノールまたはジメチルスルホキシドなどの有機溶媒中３０℃にて不活性化するので、ガラスなどはこのような媒体で洗浄することによってもエンドトキシンを除去できる。しかし、このような加熱処理または有機溶媒処理が適用できない材質で構成された医療用具や医薬品製造器具及び装置等またはこのような加熱処理が不可能な構造の医療用具や医薬品製造器具及び装置等については、他の除染方法によらなければならない。
これらの医療用具や医薬品製造器具及び装置等に含まれるエンドトキシンの除去には、例えば、エンドトキシンを含まない水や生理食塩水で洗浄する方法が考えられるが、この洗浄方法では、水や生理食塩水を大量に必要とし、しかも医療器具や医薬品製造器具及び装置に付着又は吸着したエンドトキシンの除去が不完全である可能性が危惧されていた。
特許第２８８４９７５号公報には、容器、器具等の固体表面に付着または吸着されたエンドトキシンを効率よく抽出する方法として、水や生理食塩水などの代わりにアルブミン、ヒト血清アルブミン、グロブリンなどのタンパク溶液を用いて、容器、器具等を洗浄して溶液中にエンドトキシンを抽出する方法が記載されている。
しかし、血液タンパクは生体由来成分であるので、医療用具や医薬品製造器具及び装置等に存在するエンドトキシンを除去するための洗浄には望ましくない。このような用途には、上記のような生体由来成分を含む溶液を用いるのではなく、調製や使用がより簡便な組成物を用いることが望ましい。
このような調製や使用がより簡便な組成物を用いたエンドトキシンの洗浄または除去技術は、例えば、有効期限が短いために需要に応じた高頻度の製造が要求される医薬品、例えば短半減期放射性核種を用いた放射性医薬品の製造に好適である。特に、半減期が数時間以内の超短半減期陽電子放出核種を用いる陽電子放射断層画像（ＰｏｓｉｔｒｏｎＥｍｉｓｓｉｏｎＴｏｍｏｇｒａｐｈｙ、以下ＰＥＴという）診断法に用いられる薬剤の製造にはより適した技術である。
本発明は、医療用具や医薬品製造器具及び装置等の固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンを除去する技術であって、生体由来でない化学的な試薬であって且つ滅菌処理できる成分を用い、水や生理食塩水よりも効率良くエンドトキシンを除去可能な方法を提供することを目的とする。
発明の開示
ＰＥＴ診断法の代表的薬剤である２−［１８Ｆ］−フルオロ−２−デオキシ−Ｄ−グルコース（以下１８Ｆ−ＦＤＧという）はＨａｍａｃｈｅｒらの方法（Ｈａｍａｃｈｅｒ，Ｋ．ｅｔａｌ．，Ｊ．ＮｕｃｌｅａｒＭｅｄｉｃｉｎｅ，２７：２３５−２３８，１９８６）により製造されることが多いが、本発明者らは、この製造法にしばしば用いられるイオン遅滞樹脂に付着又は吸着したエンドトキシンを除去する方法について鋭意研究した結果、水や生理食塩水では通常除去されないエンドトキシンが、糖類を成分として含む溶液によって極めて効率良く溶出または抽出等によって除去され、医療用具や医薬品製造器具及び装置等の固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンの除去に利用できることを見出し、本発明を完成するに至った。
かくして、本発明の一局面によれば、糖類を有効成分として含有することを特徴とする、固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンの除去用組成物が提供される。
したがって、本発明の除去用組成物の溶液を、エンドトキシンの除去が必要とされる医療用具や医薬品製造器具及び装置の他、各種の固体表面に接触せしめて回収することにより、エンドトキシンを効果的に除去することができる。
したがって、本発明の別の局面によれば、エンドトキシンを除去すべき固体表面と前記組成物の溶液とを接触せしめて、該固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンを除去することを特徴とするエンドトキシンの除去方法が提供される。
本発明の除去用組成物の溶液を上記固体表面に接触せしめる方法は、当該固体表面の種類に応じて適宜選択すればよく、例えば、本発明の除去用組成物の溶液に固体表面を浸漬したり、該溶液で固体表面を洗浄したり、該溶液を適当な方法で滅菌された布に含浸させ、当該布で固体表面を拭うなどの方法が考えられる。
また、本発明の組成物の溶液を用いて上記のような浸漬、洗浄、拭取操作等を行なうことによって、医療用具や医薬品製造器具または装置等の固体表面に付着または吸着したエンドトキシンを上記溶液中に移行せしめ、該溶液中にエンドトキシンを溶出もしくは抽出できるので、本発明の組成物は、該固体表面のエンドトキシンによる汚染の程度を検出および測定する際の検出液の獲得に有用である。
したがって、本発明のさらに別の局面によれば、エンドトキシンが付着または吸着した固体表面と前記組成物の溶液とを接触せしめて、該固体表面から脱離または脱着したエンドトキシンを含有する前記組成物を得ることを特徴とするエンドトキシンの抽出方法が提供される。
以下、本発明の実施の形態について説明する。
本発明の組成物で使用される糖類は、単糖類もしくはオリゴ糖類またはその誘導体が挙げられる。また、これらの糖類は、その塩または水和物でもよい。また、糖類はＤ体またはＬ体のいずれでもよい。具体的には、単糖類は、一般的には六炭糖が好ましく、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトースなどの他、グルコサミン、ガラクトサミン、グルコサミン塩酸塩、ガラクトサミン塩酸塩、Ｎ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルガラクトサミンなどのアミノ糖、その誘導体および塩が挙げられる。オリゴ糖としては、二糖から六糖の大きさのものが挙げられ、好ましくは、マルトース、スクロース、ラクトースなどの二糖である。このうち、特に好ましい糖類はグルコース、グルコサミン塩酸塩、Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミンおよびマルトースであり、最も好ましくはグルコースである。
本発明の除去用組成物は、使用時には適当な溶媒に溶解した溶液として調製されるが、溶媒に予め溶解させた溶液の形態で提供してもよく、また、使用時に溶媒中に溶解して使用できるように凍結乾燥させた形態で提供してもよい。また、本発明の組成物の凍結乾燥品と溶媒とを組み合わせたキットとして提供してもよい。
溶媒としては、生理学的、薬学的または化学的に許容可能なものであれば特に限定されず、例えば水、生理食塩水、リンゲル液のような電解質の組成物、注射用液の他、各種緩衝液が挙げられる。緩衝液としては、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液等の他、フタル酸、リン酸、ホウ酸、クエン酸、コハク酸、酒石酸、乳酸、酢酸、塩化アンモニウム、炭酸、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンおよびこれらの塩より構成される緩衝液が挙げられる。
また、本発明の組成物は、必要に応じて、生理学的、薬学的または化学的に許容可能な各種の添加剤を含有することができる。添加剤としては、例えば、酸、塩基などの各種ｐＨ調製剤、各種緩衝溶液、デキストラン１０、デキストラン４０、デキストリン、シクロデキストリン、乳酸ナトリウム、各種アミノ酸、メタノール、エタノール、ジメチルスルホキシド、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、アセトニトリル、テトラヒドロフラン等などが挙げられる。
本発明において、溶液中の糖類の濃度は、糖および溶媒等の種類、または固体表面へのエンドトキシンの付着や吸着の程度等によって異なり必ずしも一定とすることはできないが、通常は、０．１〜１５ｇ／１００ｍｌ（以下、ｗ／ｖ％と記す）、好ましくは０．５〜１０ｗ／ｖ％程度である。濃度が低すぎるとエンドトキシンの除去効果が低下し、濃度が高すぎると除去操作後に残留した糖類を洗浄するために多量の洗浄液が必要となり、操作が煩雑になる。
本発明の組成物の溶液は、糖類を必要に応じて添加剤とともに溶媒に溶解することによって調製できるが、その性質上、エンドトキシンを含まないか失活させたものとして調製しなければならない。本発明の組成物からエンドトキシンを除く方法としては、糖類溶液から限外ろ過膜またはエンドトキシン吸着体などによりエンドトキシンを除去する方法や、限外ろ過膜などによりエンドトキシンを予め除去した水を用いて糖類溶液を調製する方法などが挙げられる。また、滅菌された市販の糖類溶液、例えば、日本薬局方ブドウ糖注射液（５ｗ／ｖ％、１０ｗ／ｖ％等）をそのまま用いることもでき、この場合、特別な調製を要さないので好都合である。また、かかる市販の糖類溶液を、適宜、上記溶媒を用いて無菌的に希釈して用いてもよい。
かくして、適当な固体を本発明の組成物の溶液中に浸漬させたり、該固体の表面を該溶液で洗浄することにより、該固体の表面に付着または吸着したエンドトキシンは該表面から脱離または脱着して該溶液中に移行するため、効果的に除去される。また、浸漬または洗浄に用いた溶液を回収することによって、固体表面に付着していたエンドトキシン量を検出又は測定することもできる。すなわち、本発明の組成物は、エンドトキシン検出液としても用いることができる。
上記のようにして回収された溶液を、自体公知のエンドトキシン測定法、例えば、カブトガニの血球成分抽出液（以下、ＡＬ溶液と略記する。）を用いるリムルステスト法等に測定用サンプルとして供することにより、固体表面のエンドトキシンによる汚染の度合を正確に測定できる。ＡＬ溶液としては、例えば、リムルス属（Ｌｉｍｕｌｕｓ）、タキプレウス属（Ｔａｃｈｙｐｌｅｕｓ）などのカブトガニの血球から抽出されたもので、エンドトキシン又はβ−１，３−グルカンとの反応により凝固が生じるものを使用できる。一般には、生化学工業（株）及び和光純薬工業（株）等から市販されている凍結乾燥品をもとに調製したものが使用可能である。リムルステスト法によってサンプル中のエンドトキシン濃度を測定する方法としては、日本薬局方に記載されているような通常用いられる方法であれば特に限定されることなく使用可能である。
本発明のエンドトキシン除去または抽出方法の対象となる固体表面としては、医療用具、医薬品製造器具、医薬品製造装置などの表面が挙げられる。医療用具としては、例えば、ディスポーザブル注射針、ディスポーザブル注射筒、ディスポーザブル輸血器具及び輸液器具、ディスポーサブル採血用器具、人工心肺用ディスポーサブルセット、医療用人工血管、人工心臓弁、心臓ペースメーカー、透析型人工腎臓装置のほか、エンドトキシン試験に使用するディスポーサブル実験器具（滅菌済みピペット、滅菌済み試験管、滅菌済みピペットチップ等）などが含まれる。医薬品製造器具および医薬品製造装置としては、例えば、イオン交換樹脂等の精製や分離に用いる樹脂、逆浸透膜、ナノろ過膜、限外ろ過膜、精密ろ過膜、電気透析膜などの精製や分離に用いる膜などが挙げられる。また、本発明は、有効期限が短いために需要に応じた高頻度の製造が要求される医薬品の製造器具および装置からエンドトキシンを除去するために有用であり、特に、２−［１８Ｆ］−フルオロ−２−デオキシ−Ｄ−グルコースの合成装置及び／または器具に付着または吸着したエンドトキシンを効果的に除去するために好都合である。
実施例
以下に、実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。なお、以下の実施例において、特に断らない限り、糖類溶液の濃度表示は「ｗ／ｖ％」とする。
試験に用いた試薬および器具
注射筒、三方活栓及びカラム等は市販の滅菌済使い捨て器具を用いた。ガラス器具は洗浄後注射用水を通し、２５０℃、９０分乾熱滅菌処理したものを用いた。
糖類の溶液については市販品を適宜希釈するか、市販品特級試薬を注射用水に溶解し、下記実施例でイオン遅滞樹脂に通過させるエンドトキシン除去用溶液として用いた。これらの溶液の調製はすべて無菌的な操作によって行った。
日本薬局方に基づいたエンドトキシン試験用試薬は、以下のものを用いた。
エンドトキシン標準溶液（１００００ＥＵ／ｍｌ）：エンドトキシン１００００標準品（日本薬局方標準品）へエンドトキシン試験用水適量を加え溶解し、エンドトキシン標準溶液（１００００ＥＵ／ｍｌ）を調製し、これを原液とし、適宜希釈して用いた。なお、「ＥＵ」はエンドトキシン単位を意味する。
ゲル化法：リムルスＥＳ−ＩＩテストワコー（和光純薬製）
比濁法：リムルスＥＳ−ＩＩテストワコーまたはリムルスＥＳ−Ｊテストワコー（和光純薬製）
イオン遅滞樹脂はバイオラッド製イオン遅滞樹脂ＡＧ１１Ａ８を用いた。
実施例１
グルコース溶液によるイオン遅滞樹脂の洗浄−１
オートクレーブ滅菌（１２０℃、２０分）したカラムに、イオン遅滞樹脂を無菌的に充填した。カラムは２本作成した。
２本のカラムに注射用水１００ｍｌを通し、コンディショニングを行なった。その後、１本のカラム（以下カラム１とする）には注射用水１０ｍｌを通し、もう一本のカラム（以下カラム２とする）には０．１７５ｗ／ｖ％グルコース溶液１０ｍｌを通した。それぞれのカラムからの各溶出液についてエンドトキシン試験（ゲル化法）を行なった。ゲル化法は日本薬局方の方法に従い実施した。結果を表１に示す。
表１のカラム２の結果から、０．１７５ｗ／ｖ％グルコース溶液をカラムに通すことによって、エンドトキシンが溶出されていることが確認された。一方、注射用水を通したカラム１の溶出液からはエンドトキシンは検出されなかった。このことから、注射用水１００ｍｌを用いたコンディショニングではカラムから溶出されなかったエンドトキシンが、この後に０．１７５ｗ／ｖ％グルコース溶液１０ｍｌを通すことによって溶出されたといえる。

実施例２
グルコース溶液によるイオン遅滞樹脂の洗浄−２
オートクレーブ滅菌（１２０℃、２０分）したカラムに、イオン遅滞樹脂を無菌的に充填した。カラムは２本作成した。
１本のカラム（以下カラム３とする）に注射用水を通し、もう１本のカラム（以下カラム４とする）に０．１７５ｗ／ｖ％グルコース溶液を通した。各溶出液は１００ｍｌ、２００ｍｌ、５００ｍｌ及び１０００ｍｌ溶出された時点でサンプリングし、それぞれサンプリング番号１，２，３及び４とした。サンプリングした溶出液について比濁法によってエンドトキシン濃度の測定を行なった。比濁法は日本薬局方の方法に従い実施した。結果を表２に示す。
表２に示すように、カラム４の結果から０．１７５ｗ／ｖ％グルコース溶液を流すことによって、最初のフラクション中（サンプリング番号１）にエンドトキシンが溶出されていることが確認された。また、エンドトキシンのカラムからの抽出は比較的速く、サンプリング番号２から４においては、ほとんどエンドトキシン濃度が認められないレベルになっていることが観察された。一方、カラム３の結果が示すように注射用水を流しても、エンドトキシンは溶出されなかった。

参考例
エンドトキシン混入イオン遅滞樹脂カラムの作成
ビーカーにイオン遅滞樹脂（ＡＧ１１Ａ８）２０ｇをとり、注射用水適量を加え膨潤させ、さらに、上記の如く調製したエンドトキシン標準溶液（１００００ＥＵ／ｍｌ）を０．４ｍｌ添加した。これを一昼夜攪拌しながら４℃で保管した。このイオン遅滞樹脂適量をオートクレーブ滅菌（１２０℃、２０分）したカラムに無菌的に充填した。
実施例３
イオン遅滞樹脂中に含まれるエンドトキシンの除去効果の測定：イオン遅滞樹脂からのエンドトキシンの除去操作−１
参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを２本用意し、１本のカラム（以下カラム５とする）には注射用水５ｍｌを、もう一本のカラム（以下カラム６とする）には１０ｗ／ｖ％グルコース溶液５ｍｌを通過させた。それぞれのカラムからの各溶出液を滅菌済みのビーカーに０．５ｍｌずつ合計１０フラクション分取した。これらのフラクションのそれぞれをフラクション番号１から１０とした。
カラム中に残留したエンドトキシンを確認するための洗浄操作
次いで、前記カラム５および６に１０ｗ／ｖ％グルコース溶液７．５ｍｌを通過させた。それぞれのカラムからの各溶出液を滅菌済みの試験管に０．５ｍｌずつ合計１５フラクション分取した。これらのフラクションのそれぞれをフラクション番号１１から２５とした。
各フラクションのエンドトキシン濃度測定
カラム５及び６から上記のように得られたフラクション番号４，５，６，７，１０，１３，１６，１９，２２及び２５の溶液について、それぞれエンドトキシン濃度の測定を実施した。エンドトキシン試験は日本薬局方の方法に従い比濁法にて行った。
エンドトキシン濃度測定値の補正
溶出液についてのエンドトキシン試験の測定値は、阻害補正を行った。阻害補正は以下のようにして行った。各々の糖類溶液にエンドトキシン標準溶液希釈液（０．５ＥＵ／ｍｌ）をサンプル液が０．２５ＥＵ／ｍｌとなるように添加し、この溶液のエンドトキシン濃度を測定した。一方、注射用水にもエンドトキシン標準溶液希釈液（０．５ＥＵ／ｍｌ）を同様に添加し、この溶液のエンドトキシン濃度を測定した。エンドトキシン標準溶液希釈液（０．５ＥＵ／ｍｌ）を加えた各糖類溶液のエンドトキシン濃度のそれぞれについて、エンドトキシン標準溶液希釈液（０．５ＥＵ／ｍｌ）を加えた注射用水のエンドトキシン濃度を百としたときの割合を百分率（％）を求め、これを阻害率（％）とした。各フラクションのエンドトキシン濃度をこの阻害率で補正した。注射用水のエンドトキシン試験の測定値については、補正は行なわなかった。
表３に、カラム５および６のそれぞれの各フラクション４、５、６、７および１０中に含まれるエンドトキシン濃度（補正後の値）を示す。

表３から、１０ｗ／ｖ％グルコース溶液をカラムに通した場合、溶出するエンドトキシン量はフラクション４から７までのエンドトキシン濃度の変化が示すように、フラクションごとに急速に減少していった。このことから１０ｗ／ｖ％グルコース溶液によって、速やかにエンドトキシンが除去されてゆく様相が観察された。
この結果より、注射用水を用いるよりも１０ｗ／ｖ％グルコース溶液を用いてカラム中のエンドトキシンを溶出させるほうが、より速やかにエンドトキシンを溶出できることが確認された。
カラム内になお残留しているエンドトキシンの有無を示すために、表４に、カラム５および６のそれぞれの各フラクション１３，１６，１９，２２及び２５中に含まれるエンドトキシン濃度（補正後の値）を示す。

フラクション１〜１０の溶出液に注射用水を用いたカラム５では、その後の１０ｗ／ｖ％グルコース溶液を溶出液としたフラクション１１〜２５にエンドトキシンが溶出されたので、フラクション１〜１０の注射用水によるエンドトキシン除去が充分でなかったといえる。
一方、フラクション１〜１０の溶出液に１０ｗ／ｖ％グルコース溶液を用いたカラム６では、その後の１０ｗ／ｖ％グルコース溶液を溶出液としたフラクション１１以降にほとんどエンドトキシンが溶出されなかった。
このように、上記イオン遅滞樹脂中のエンドトキシンを除去するための溶液として、注射用水を用いるよりも、１０ｗ／ｖ％グルコース溶液を用いたほうが、より有効にエンドトキシンを溶出できることが確認された。
実施例４
イオン遅滞樹脂中に含まれるエンドトキシンの除去効果の測定：イオン遅滞樹脂からのエンドトキシンの除去操作−２
参考例で作成したイオン遅滞樹脂カラム（以下カラム７とする）へ、１ｗ／ｖ％グルコース溶液５ｍｌを通過させた。このカラムからの溶出液を滅菌済みのビーカーに０．５ｍｌずつ合計１０フラクション分取した（フラクション番号１から１０）。
各フラクションのエンドトキシン濃度測定
得られたフラクションのうち、フラクション番号４，５，６，７及び１０の溶液について、それぞれエンドトキシン濃度の測定を実施した。エンドトキシン試験及び測定値の阻害補正は実施例３の方法と同様に行った。その結果を表５に示す。

表５より、１ｗ／ｖ％グルコース溶液をカラムに通すことによって、イオン遅滞樹脂カラム中のエンドトキシンが各フラクションへ溶出され、その量はフラクション４から７までのエンドトキシン濃度の変化が示すように、フラクションごとに急速に減少してゆき、上記イオン遅滞樹脂カラムから速やかにエンドトキシンが除去、抽出されてゆく様相が観察された。
実施例５
イオン遅滞樹脂中に含まれるエンドトキシンの除去効果の測定：イオン遅滞樹脂からのエンドトキシンの除去操作−３
参考例で作成したイオン遅滞樹脂カラム（以下カラム８とする）へ、１ｗ／ｖ％Ｄ−（＋）グルコサミン塩酸塩溶液５ｍｌを通過させた。このカラムからの溶出液を滅菌済みのビーカーに０．５ｍｌずつ合計１０フラクション分取した（フラクション番号１から１０）。
各フラクションのエンドトキシン濃度測定
得られたフラクションのうち、フラクション番号４，５，６，７及び１０の溶液について、それぞれエンドトキシン濃度の測定を実施した。エンドトキシン試験及び測定値の阻害補正は実施例３の方法と同様に行った。その結果を表６に示す。

実施例６
イオン遅滞樹脂中に含まれるエンドトキシンの除去効果の測定：イオン遅滞樹脂からのエンドトキシンの除去操作−４
参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを２本用意し、一本のカラム（以下カラム９とする）には１ｗ／ｖ％マルトース溶液５ｍｌを、もう一本のカラム（以下カラム１０とする）には１０ｗ／ｖ％マルトース溶液５ｍｌを通過させた。それぞれのカラムからの各溶出液を滅菌済みのビーカーに０．５ｍｌずつ合計１０フラクション分取した。これらのフラクションのそれぞれをフラクション番号１から１０とした。
各フラクションのエンドトキシン濃度測定
得られたフラクションのうち、フラクション番号４，５，６，７及び１０の溶液について、それぞれエンドトキシン濃度の測定を実施した。エンドトキシン試験及び測定値の阻害補正は実施例３の方法と同様に行った。その結果を表７に示す。

実施例７
イオン遅滞樹脂中に含まれるエンドトキシンの除去効果の測定：イオン遅滞樹脂からのエンドトキシンの除去操作−５
参考例にしたがって作成したイオン遅滞樹脂カラムを２本用意し、一本のカラム（以下カラム１１とする）には１ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液５ｍｌを、もう一本のカラム（以下カラム１２とする）には１０ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液５ｍｌを通過させた。それぞれのカラムからの各溶出液を滅菌済みのビーカーに０．５ｍｌずつ合計１０フラクション分取した。これらのフラクションのそれぞれをフラクション番号１から１０とした。
各フラクションのエンドトキシン濃度測定
得られたフラクションのうち、フラクション番号４，５，６，７及び１０の溶液について、それぞれエンドトキシン濃度の測定を実施した。エンドトキシン試験及び測定値の阻害補正は実施例３の方法と同様に行った。その結果を表８に示す。

表６、表７および表８より、１ｗ／ｖ％Ｄ−（＋）−グルコサミン塩酸塩溶液、１ｗ／ｖ％マルトース溶液、１０ｗ／ｖ％マルトース溶液、１ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液及び１０ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液をエンドトキシン除去用溶液として用いた場合でも、表１から表５に示したグルコース溶液と同様の結果が得られた。即ち、これらの溶液をカラムに流すことによって、各フラクションへイオン遅滞樹脂カラム中のエンドトキシンが溶出され、その量はフラクション４から７までのエンドトキシン濃度の変化が示すように、フラクションごとに急速に減少してゆき、上記イオン遅滞樹脂カラムから速やかにエンドトキシンが除去、抽出されてゆく様相が観察された。
さらに、１ｗ／ｖ％マルトース溶液よりも１０ｗ／ｖ％マルトース溶液を、また、１ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液よりも１０ｗ／ｖ％Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン溶液をエンドトキシン除去用溶液として用いたとき、エンドトキシンの溶出の様相は速やかであり、濃度が高い溶液のほうが減少の割合が速やかであることも認められた。
産業上の利用の可能性
本発明によれば、糖類の溶液を用いて固体表面に付着又は吸着したエンドトキシンを除去できることが明らかとなった。したがって、滅菌処理された糖類の溶液を医療用具や医薬品製造器具および装置の表面に接触させることにより、該表面に付着又は吸着したエンドトキシンを効率良く除去することができる。本発明によれば、従来の除去方法では溶出もしくは抽出困難であったものまで、効果的にかつ簡便に除去でき、さらに、除去後の煩雑な後処理も不必要である点で、医薬品製造現場などで有用である。 Technical field
The present invention relates to a technique for removing endotoxin using saccharides, and more particularly, to a composition for removing endotoxin containing saccharides, and a method for removing and extracting endotoxin using the composition, and a medical device, a pharmaceutical production device, The present invention relates to a technique useful for removing endotoxin from a solid surface such as a pharmaceutical production apparatus.
Background art
Endotoxin is a kind of lipopolysaccharide that is mainly present in the outer membrane of the cell wall of Gram-negative bacteria, and is a substance that is generally well known as a pyrogenic substance (Pyrogen).
When pyrogens are mixed into the body due to endotoxin contamination such as injections and catheters, fever, shock, and diffuse intravascular coagulation (DIC) may occur. Endotoxin contamination of medical devices such as syringes and catheters, as well as pharmaceutical production equipment and devices, must be strictly controlled.
Many medical devices, pharmaceutical production devices and devices are composed of various synthetic resins, glass, metal, natural fibers, and the like, and are highly likely to be contaminated by endotoxin adhesion or adsorption.
Usually, endotoxins can be inactivated by heat treatment at 250 ° C. for 30 minutes or more or 170 ° C. for 120 minutes or more, so glass, metal, etc. can be decontaminated by such heat treatment. Further, since endotoxin is inactivated at 30 ° C. in an organic solvent such as sodium hydroxide-containing ethanol or dimethyl sulfoxide, endotoxin can also be removed by washing the glass with such a medium. However, for medical devices and pharmaceutical manufacturing instruments and devices made of materials that cannot be subjected to such heat treatment or organic solvent processing, or medical devices or pharmaceutical manufacturing tools and devices having such a structure that cannot be heated. Must be by other decontamination methods.
In order to remove endotoxin contained in these medical devices, pharmaceutical production equipment and devices, for example, a method of washing with water or physiological saline that does not contain endotoxin can be considered. In this washing method, water or physiological saline is used. In addition, there is a fear that removal of endotoxin adhering to or adsorbing to medical instruments, pharmaceutical manufacturing instruments and devices may be incomplete.
Japanese Patent No. 2884975 discloses, as a method for efficiently extracting endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface of a container, an instrument, etc., a protein solution such as albumin, human serum albumin, globulin instead of water or physiological saline. Describes a method for extracting endotoxin into a solution by washing containers, instruments, etc.
However, since blood protein is a biological component, it is not desirable for cleaning for removing endotoxin present in medical devices, pharmaceutical production devices and devices. For such applications, it is desirable to use a composition that is easier to prepare and use, rather than using a solution containing a biological component as described above.
Endotoxin washing or removal technology using a composition that is easier to prepare and use is, for example, a drug that requires a high frequency of production according to demand due to its short expiration date, such as short half-life radioactivity. It is suitable for the production of radiopharmaceuticals using nuclides. In particular, this technique is more suitable for the manufacture of a drug used in a positron emission tomography (hereinafter referred to as PET) diagnostic method using an ultrashort half-life positron emitting nuclide having a half-life of several hours or less.
The present invention is a technique for removing endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface of a medical device, a pharmaceutical production device, an apparatus, etc., which is a chemical reagent that is not derived from a living body and that can be sterilized, It is an object of the present invention to provide a method capable of removing endotoxin more efficiently than physiological saline.
Disclosure of the invention
2- [18F] -Fluoro-2-deoxy-D-glucose (hereinafter referred to as 18F-FDG), which is a representative agent for PET diagnosis, is the method of Hamacher et al. (Hamacher, K. et al., J. Nuclear Medicine, 27: 235-238, 1986), the present inventors have conducted extensive research on a method for removing endotoxin adhering to or adsorbing to an ion-retarding resin often used in this production method. Endotoxin, which is not normally removed by saline and physiological saline, is removed very efficiently by elution or extraction with a solution containing saccharides as a component, to remove endotoxin adhering to or adsorbing to the solid surface of medical devices, pharmaceutical manufacturing devices and devices, etc. Finding that it can be used to complete the present invention It was.
Thus, according to one aspect of the present invention, there is provided a composition for removing endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface, which comprises a saccharide as an active ingredient.
Therefore, the endotoxin can be effectively recovered by bringing the solution of the removal composition of the present invention into contact with various solid surfaces in addition to medical devices and pharmaceutical manufacturing devices and devices that require removal of endotoxin. Can be removed.
Therefore, according to another aspect of the present invention, there is provided an endotoxin characterized in that the endotoxin adhering to or adsorbing to the solid surface is removed by bringing the solid surface from which the endotoxin is to be removed into contact with a solution of the composition. A removal method is provided.
The method of bringing the solution of the removal composition of the present invention into contact with the solid surface may be appropriately selected depending on the type of the solid surface. For example, the solid surface is immersed in the solution of the removal composition of the present invention. Or a method in which the solid surface is washed with the solution, a cloth sterilized with the solution is impregnated with an appropriate method, and the solid surface is wiped with the cloth.
In addition, the above-described solution of endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface of a medical device, a pharmaceutical production device, or an apparatus by performing the above-described immersion, washing, wiping operation, etc. using the solution of the composition of the present invention Since the endotoxin can be eluted into or extracted from the solution, the composition of the present invention is useful for obtaining a detection solution in detecting and measuring the degree of contamination of the solid surface by endotoxin.
Therefore, according to still another aspect of the present invention, the composition containing endotoxin desorbed or desorbed from the solid surface is obtained by bringing the solid surface to which the endotoxin is attached or adsorbed into contact with the solution of the composition. A method for extracting endotoxin is provided.
Embodiments of the present invention will be described below.
Examples of the saccharide used in the composition of the present invention include monosaccharides, oligosaccharides, and derivatives thereof. These saccharides may be salts or hydrates thereof. The saccharide may be either D-form or L-form. Specifically, the monosaccharide is generally preferably a hexose. For example, in addition to glucose, galactose, mannose, fructose, etc., glucosamine, galactosamine, glucosamine hydrochloride, galactosamine hydrochloride, N-acetylglucosamine, N -Amino sugars such as acetylgalactosamine, derivatives and salts thereof. Examples of oligosaccharides include disaccharides to hexasaccharides, and disaccharides such as maltose, sucrose, and lactose are preferable. Of these, particularly preferred saccharides are glucose, glucosamine hydrochloride, N-acetyl-D-galactosamine and maltose, most preferably glucose.
The removal composition of the present invention is prepared as a solution dissolved in a suitable solvent at the time of use, but may be provided in the form of a solution previously dissolved in the solvent, or dissolved in the solvent at the time of use. It may be provided in lyophilized form for use. Moreover, you may provide as a kit which combined the freeze-dried product and solvent of the composition of this invention.
The solvent is not particularly limited as long as it is physiologically, pharmaceutically or chemically acceptable. For example, an electrolyte composition such as water, physiological saline, Ringer's solution, injection solution, and various buffer solutions. Is mentioned. Buffers include phosphate buffer, citrate buffer, phthalic acid, phosphoric acid, boric acid, citric acid, succinic acid, tartaric acid, lactic acid, acetic acid, ammonium chloride, carbonic acid, tris (hydroxymethyl) amino Examples include buffers composed of methane and salts thereof.
Moreover, the composition of this invention can contain the various physiologically, pharmaceutically, or chemically acceptable additive as needed. Examples of additives include various pH adjusting agents such as acids and bases, various buffer solutions, dextran 10, dextran 40, dextrin, cyclodextrin, sodium lactate, various amino acids, methanol, ethanol, dimethyl sulfoxide, and N, N-dimethyl. Examples include formamide, acetonitrile, tetrahydrofuran and the like.
In the present invention, the concentration of saccharides in the solution varies depending on the types of sugars and solvents, or the degree of endotoxin adhesion and adsorption to the solid surface, and cannot be always constant. 15 g / 100 ml (hereinafter referred to as w / v%), preferably about 0.5 to 10 w / v%. If the concentration is too low, the effect of removing endotoxin is reduced. If the concentration is too high, a large amount of washing solution is required to wash away the saccharide remaining after the removal operation, and the operation becomes complicated.
The solution of the composition of the present invention can be prepared by dissolving saccharides in a solvent together with additives as necessary. However, the solution must be prepared as containing no endotoxin or inactivated. As a method for removing endotoxin from the composition of the present invention, a method for removing endotoxin from a saccharide solution with an ultrafiltration membrane or an endotoxin adsorbent, or a saccharide solution using water from which endotoxin has been previously removed by an ultrafiltration membrane or the like. And the like. Further, a sterilized commercially available saccharide solution, for example, Japanese Pharmacopoeia glucose injection solution (5 w / v%, 10 w / v%, etc.) can be used as it is, and in this case, it is convenient because no special preparation is required. is there. Further, such a commercially available saccharide solution may be used aseptically diluted with the above solvent as appropriate.
Thus, by immersing a suitable solid in the solution of the composition of the present invention or washing the surface of the solid with the solution, the endotoxin attached or adsorbed on the surface of the solid is desorbed or desorbed from the surface. Since it moves into the solution, it is effectively removed. In addition, the amount of endotoxin adhering to the solid surface can be detected or measured by collecting the solution used for immersion or washing. That is, the composition of the present invention can also be used as an endotoxin detection solution.
By using the solution collected as described above as a measurement sample in an endotoxin measurement method known per se, for example, the Limulus test method using a blood cell component extract of horseshoe crab (hereinafter abbreviated as AL solution), etc. The degree of endotoxin contamination on the solid surface can be accurately measured. As the AL solution, for example, a solution extracted from the blood cells of horseshoe crab such as Limulus and Tachypleus, which can be coagulated by reaction with endotoxin or β-1,3-glucan can be used. . In general, those prepared based on freeze-dried products commercially available from Seikagaku Corporation and Wako Pure Chemical Industries, Ltd. can be used. The method for measuring the endotoxin concentration in a sample by the Limulus test method is not particularly limited as long as it is a commonly used method as described in the Japanese Pharmacopoeia.
Examples of the solid surface to be subjected to the endotoxin removal or extraction method of the present invention include surfaces of medical devices, pharmaceutical manufacturing devices, pharmaceutical manufacturing devices, and the like. Examples of medical devices include disposable injection needles, disposable syringes, disposable blood transfusion devices and infusion devices, disposable blood collection devices, cardiopulmonary disposable sets, medical artificial blood vessels, artificial heart valves, cardiac pacemakers, dialysis-type artificial kidney devices In addition, disposable laboratory instruments (sterilized pipettes, sterilized test tubes, sterilized pipette tips, etc.) used for endotoxin tests are included. Examples of pharmaceutical production equipment and pharmaceutical production equipment include purification and separation of resins used for purification and separation of ion exchange resins, reverse osmosis membranes, nanofiltration membranes, ultrafiltration membranes, microfiltration membranes, electrodialysis membranes, etc. Examples include a film to be used. In addition, the present invention is useful for removing endotoxins from pharmaceutical production equipment and devices that require high-frequency production according to demand due to a short expiration date, and in particular, 2- [18F] -fluoro. It is convenient for effectively removing endotoxin adhering to or adsorbing to a 2-deoxy-D-glucose synthesizer and / or instrument.
Example
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples. However, the present invention is not limited to these examples. In the following examples, unless otherwise specified, the concentration display of the saccharide solution is “w / v%”.
Reagents and instruments used for testing
Commercially available sterilized disposable instruments were used for the syringe barrel, three-way stopcock, column, and the like. Glassware used was washed and passed through water for injection and subjected to a dry heat sterilization treatment at 250 ° C. for 90 minutes.
Regarding the saccharide solution, a commercially available product was appropriately diluted, or a commercially available special grade reagent was dissolved in water for injection, and used as an endotoxin removing solution that was passed through an ion delay resin in the following examples. All of these solutions were prepared by aseptic operation.
The following endotoxin test reagents based on the Japanese Pharmacopoeia were used.
Endotoxin standard solution (10000 EU / ml): Add an appropriate amount of water for endotoxin test to 10000 endotoxin standard product (Japanese Pharmacopoeia standard product) and dissolve it to prepare an endotoxin standard solution (10000 EU / ml). Used. “EU” means an endotoxin unit.
Gelation method: Limulus ES-II Test Wako (Wako Pure Chemical Industries)
Nephelometry: Limulus ES-II Test Wako or Limulus ES-J Test Wako (Wako Pure Chemical Industries)
As the ion delay resin, Biorad ion delay resin AG11A8 was used.
Example 1
Washing of ion-retarding resin with glucose solution-1
An autoclave-sterilized column (120 ° C., 20 minutes) was aseptically packed with an ion-retarding resin. Two columns were created.
Conditioning was performed by passing 100 ml of water for injection through two columns. Thereafter, 10 ml of water for injection was passed through one column (hereinafter referred to as column 1), and 10 ml of a 0.175 w / v% glucose solution was passed through the other column (hereinafter referred to as column 2). Endotoxin test (gelation method) was performed on each eluate from each column. The gelation method was performed according to the method of Japanese Pharmacopoeia. The results are shown in Table 1.
From the results of column 2 in Table 1, it was confirmed that endotoxin was eluted by passing a 0.175 w / v% glucose solution through the column. On the other hand, endotoxin was not detected from the eluate of column 1 through which water for injection was passed. From this, it can be said that endotoxin that was not eluted from the column by conditioning with 100 ml of water for injection was eluted by passing 10 ml of a 0.175 w / v% glucose solution thereafter.

Example 2
Washing of ion-retarding resin with glucose solution-2
An autoclave-sterilized column (120 ° C., 20 minutes) was aseptically packed with an ion-retarding resin. Two columns were created.
Water for injection was passed through one column (hereinafter referred to as column 3), and a 0.175 w / v% glucose solution was passed through the other column (hereinafter referred to as column 4). Each eluate was sampled when it was eluted at 100 ml, 200 ml, 500 ml and 1000 ml, and the sampling numbers were 1, 2, 3 and 4, respectively. The endotoxin concentration of the sampled eluate was measured by the turbidimetric method. The turbidimetric method was carried out according to the method of Japanese Pharmacopoeia. The results are shown in Table 2.
As shown in Table 2, it was confirmed that endotoxin was eluted in the first fraction (sampling number 1) by flowing a 0.175 w / v% glucose solution from the result of column 4. In addition, endotoxin extraction from the column was relatively fast, and it was observed that the endotoxin concentration was almost not observed in sampling numbers 2 to 4. On the other hand, endotoxin was not eluted even when water for injection was allowed to flow as indicated by the results of column 3.

Reference example
Preparation of ion-retarding resin column containing endotoxin
Into a beaker, 20 g of an ion-retarding resin (AG11A8) was added, an appropriate amount of water for injection was added to swell, and 0.4 ml of the endotoxin standard solution (10000 EU / ml) prepared as described above was further added. This was stored at 4 ° C. with stirring all day and night. An appropriate amount of this ion retardation resin was aseptically packed into an autoclave sterilized column (120 ° C., 20 minutes).
Example 3
Measurement of removal effect of endotoxin contained in ion retarding resin: operation for removing endotoxin from ion retarding resin-1
Two ion-retarding resin columns prepared according to the reference example were prepared. One column (hereinafter referred to as column 5) had 5 ml of water for injection, and the other column (hereinafter referred to as column 6) had 10 w / 5 ml of v% glucose solution was passed through. A total of 10 fractions of 0.5 ml of each eluate from each column were collected in a sterilized beaker. Each of these fractions was designated fraction numbers 1-10.
Washing operation to confirm endotoxin remaining in the column
Next, 7.5 ml of a 10 w / v% glucose solution was passed through the columns 5 and 6. A total of 15 fractions of 0.5 ml of each eluate from each column were collected in a sterilized test tube. Each of these fractions was designated fraction numbers 11-25.
Endotoxin concentration measurement of each fraction
Endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7, 10, 13, 16, 19, 22, and 25 obtained from columns 5 and 6 as described above. The endotoxin test was performed by the turbidimetric method according to the method of the Japanese Pharmacopoeia.
Correction of measured endotoxin concentration
The measured value of the endotoxin test for the eluate was corrected for inhibition. Inhibition correction was performed as follows. Endotoxin standard solution dilution (0.5 EU / ml) was added to each saccharide solution so that the sample solution was 0.25 EU / ml, and the endotoxin concentration of this solution was measured. On the other hand, endotoxin standard solution dilution (0.5 EU / ml) was similarly added to water for injection, and the endotoxin concentration of this solution was measured. For each endotoxin concentration of each saccharide solution to which endotoxin standard solution dilution (0.5 EU / ml) was added, when the endotoxin concentration of injection water to which endotoxin standard solution dilution (0.5 EU / ml) was added was defined as 100 The percentage was obtained as a percentage (%), and this was taken as the inhibition rate (%). The endotoxin concentration in each fraction was corrected with this inhibition rate. No correction was made for the endotoxin test values for water for injection.
Table 3 shows the endotoxin concentrations (corrected values) contained in the respective fractions 4, 5, 6, 7 and 10 of the columns 5 and 6, respectively.

From Table 3, when a 10 w / v% glucose solution was passed through the column, the amount of endotoxin eluted rapidly decreased from fraction to fraction, as shown by the change in endotoxin concentration from fractions 4 to 7. From this, it was observed that the endotoxin was rapidly removed by the 10 w / v% glucose solution.
From this result, it was confirmed that the endotoxin can be eluted more quickly by eluting the endotoxin in the column using a 10 w / v% glucose solution than using the water for injection.
To indicate the presence or absence of endotoxin still remaining in the column, Table 4 shows the endotoxin concentration (corrected value) contained in each of the fractions 13, 16, 19, 22 and 25 of columns 5 and 6, respectively. Indicates.

In column 5 using water for injection as the eluate of fractions 1-10, endotoxin was eluted in fractions 11-25 using the subsequent 10 w / v% glucose solution as the eluent. It can be said that endotoxin removal was not sufficient.
On the other hand, in column 6 using a 10 w / v% glucose solution as the eluate of fractions 1 to 10, almost no endotoxin was eluted after fraction 11 using the 10 w / v% glucose solution as the eluent.
Thus, it was confirmed that the endotoxin can be more effectively eluted by using a 10 w / v% glucose solution as a solution for removing endotoxin in the ion-retarding resin than using water for injection.
Example 4
Measurement of removal effect of endotoxin contained in ion-retarding resin: operation for removing endotoxin from ion-retarding resin-2
5 ml of a 1 w / v% glucose solution was passed through an ion-retarding resin column (hereinafter referred to as column 7) prepared in Reference Example. The eluate from this column was collected in a sterilized beaker by 0.5 ml, for a total of 10 fractions (fraction numbers 1 to 10).
Endotoxin concentration measurement of each fraction
Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7 and 10. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in the method of Example 3. The results are shown in Table 5.

From Table 5, by passing a 1 w / v% glucose solution through the column, the endotoxin in the ion lag resin column was eluted into each fraction, and the amount was shown to indicate the change in the endotoxin concentration from fraction 4 to 7. It decreased rapidly every time, and the aspect that endotoxin was rapidly removed and extracted from the ion-delayed resin column was observed.
Example 5
Measurement of removal effect of endotoxin contained in ion retarding resin: operation for removing endotoxin from ion retarding resin-3
5 ml of 1 w / v% D-(+) glucosamine hydrochloride solution was passed through the ion-retarding resin column (hereinafter referred to as column 8) prepared in Reference Example. The eluate from this column was collected in a sterilized beaker by 0.5 ml, for a total of 10 fractions (fraction numbers 1 to 10).
Endotoxin concentration measurement of each fraction
Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7 and 10. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in the method of Example 3. The results are shown in Table 6.

Example 6
Measurement of removal effect of endotoxin contained in ion retarding resin: operation for removing endotoxin from ion retarding resin-4
Prepare two ion-retarding resin columns prepared according to the reference example. One column (hereinafter referred to as column 9) contains 5 ml of 1 w / v% maltose solution and the other column (hereinafter referred to as column 10). Was passed 5 ml of a 10 w / v% maltose solution. A total of 10 fractions of 0.5 ml of each eluate from each column were collected in a sterilized beaker. Each of these fractions was designated fraction numbers 1-10.
Endotoxin concentration measurement of each fraction
Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7 and 10. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in the method of Example 3. The results are shown in Table 7.

Example 7
Measurement of removal effect of endotoxin contained in ion retarding resin: operation for removing endotoxin from ion retarding resin-5
Two ion-retarding resin columns prepared according to the reference example were prepared, and 5 ml of 1 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution was added to one column (hereinafter referred to as column 11). (Hereinafter referred to as column 12) was passed 5 ml of a 10 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution. A total of 10 fractions of 0.5 ml of each eluate from each column were collected in a sterilized beaker. Each of these fractions was designated fraction numbers 1-10.
Endotoxin concentration measurement of each fraction
Among the obtained fractions, the endotoxin concentration was measured for the solutions of fraction numbers 4, 5, 6, 7 and 10. The endotoxin test and the inhibition correction of the measured values were performed in the same manner as in the method of Example 3. The results are shown in Table 8.

From Table 6, Table 7 and Table 8, 1 w / v% D-(+)-glucosamine hydrochloride solution, 1 w / v% maltose solution, 10 w / v% maltose solution, 1 w / v% N-acetyl-D-galactosamine Even when the solution and the 10 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution were used as endotoxin removal solutions, the same results as the glucose solutions shown in Tables 1 to 5 were obtained. That is, by passing these solutions through the column, the endotoxin in the ion-retarding resin column is eluted into each fraction, and the amount rapidly decreases with each fraction as shown by the change in the endotoxin concentration from fraction 4 to 7. As a result, it was observed that endotoxin was quickly removed and extracted from the ion-retarding resin column.
Furthermore, 10 w / v% maltose solution is used for removing endotoxin than 1 w / v% maltose solution, and 10 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution is used than 1 w / v% N-acetyl-D-galactosamine solution. When used as a solution, the endotoxin elution profile was rapid, and it was also observed that the rate of decrease was faster in the higher concentration solution.
Industrial applicability
According to the present invention, it has become clear that endotoxin adhering to or adsorbing to a solid surface can be removed using a saccharide solution. Therefore, when the sterilized saccharide solution is brought into contact with the surface of a medical device or a pharmaceutical production device and apparatus, endotoxin adhering to or adsorbing on the surface can be efficiently removed. According to the present invention, it is possible to effectively and easily remove even those that were difficult to elute or extract by the conventional removal method, and further, complicated post-treatment after the removal is unnecessary, and the pharmaceutical manufacturing site This is useful.

Claims

A composition for removing endotoxin adhering to or adsorbing on a solid surface, comprising a saccharide as an active ingredient.

The composition according to claim 1, wherein the saccharide is at least one selected from the group consisting of monosaccharides, oligosaccharides and derivatives thereof, and hydrates and salts thereof.

The composition according to claim 2, wherein the monosaccharide is hexose.

The composition according to claim 2, wherein the saccharide is glucose, glucosamine hydrochloride, N-acetyl-D-galactosamine or maltose.

The composition according to claim 1, wherein the composition is in the form of a solution, and the concentration of sugars is 0.1 to 15 g / 100 ml.

A solid surface to which endotoxin is to be removed is brought into contact with a solution of the composition according to any one of claims 1 to 5 to remove endotoxin adhering to or adsorbing to the solid surface. And a method for removing endotoxin.

The method according to claim 6, wherein the solid surface is a surface of a medical device, a pharmaceutical production device or a pharmaceutical production device.

The method according to claim 7, wherein the pharmaceutical production device or the pharmaceutical production device is a radiopharmaceutical production device or a production device.

The method according to claim 8, wherein the radiopharmaceutical production apparatus or apparatus is a 2- [18F] -fluoro-2-deoxy-D-glucose production apparatus or apparatus.

The said composition containing the endotoxin which contacted the solution of the composition of any one of Claim 1 thru | or 5 and the solid surface to which the endotoxin adhered or was adsorbed | sucked or detached | desorbed from this solid surface A method for removing endotoxin, comprising obtaining a product.