WO2001020317A1 - Procede de preparation de support d'electrophorese - Google Patents

Procede de preparation de support d'electrophorese Download PDF

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WO2001020317A1
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Yoshihide Hayashizaki
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Riken
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    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • G01N27/447Systems using electrophoresis
    • G01N27/44704Details; Accessories

Definitions

  • the present invention relates to a method for preparing a support for electrophoresis, a support for electrophoresis, and an electrophoresis method. More particularly, the present invention relates to a method for preparing an electrophoretic support, wherein an electrophoretic support, such as a gel or an entangled polymer, is formed on a silicon-containing support member. The present invention also relates to a method characterized by a method of washing a support member, and an electrophoresis method using a support prepared by the method. Further, the present invention relates to an electrophoresis gel used for separating nucleic acids or PNA fragments, and an electrophoresis method for separating nucleic acids or PNA fragments using the gel or the support.
  • an electrophoresis gel used for separating nucleic acids or PNA fragments
  • an electrophoresis method for separating nucleic acids or PNA fragments using the gel or the support.
  • the generation of bubbles during the preparation of the support for electrophoresis can be suppressed, so that the performance of separating a sample (for example, nucleic acid) is improved.
  • the separation performance in electrophoresis can be improved. Therefore, it is possible to satisfactorily separate a long-chain nucleic acid and a PNA fragment, which are required particularly in a base-sequence determination method.
  • the nucleotide sequence of the human genome which is more than 3 billion base pairs, is being analyzed.
  • the analysis of polymorphisms in the human genome is associated with traits unique to individuals, and is of great interest in pharmacology and biology.
  • Conventional Geno In order to determine a huge base sequence such as a sequence, a sequencer has been developed that can automatically process multiple samples simultaneously with high speed and high sensitivity.
  • the emergence of a multi-capillary DNA sequencer that uses many gel-filled capillary columns at the same time instead of the conventional plate-shaped slab gel has contributed significantly to increasing the speed of sequencing.
  • a sequencer currently in use can read around 500 bases with a single ram.
  • a support member for supporting an electrophoretic support is used.
  • This support member has various shapes according to the purpose of electrophoresis.
  • slab electrophoresis In the capillary electrophoresis, a column-shaped (hollow cylindrical) silica-made capillary ram is used as a support member.
  • microelectrophoresis a support member having a shape like a minute separation path formed on a silicon wafer is used.
  • These support members are generally made of a material containing silicon such as silica.
  • the support In order to obtain good separation performance of a support for electrophoresis prepared on a support member containing such a silicon (hereinafter, also simply referred to as a “support member”), the support should not contain bubbles. Is preferred.
  • an object of the present invention is to solve the above-mentioned problems in electrophoresis, to improve the separation performance during electrophoresis, and to improve the separation of a sample.
  • a longer-chain base sequence is also read The purpose is to provide the means by which
  • an object of the present invention is to provide a support for electrophoresis that can suppress generation of bubbles in the support when preparing a support for electrophoresis using a support member containing silicon. And a method for preparing an electrophoresis using the support for electrophoresis prepared by the method.
  • Another object of the present invention is to provide an electrophoresis gel that is less likely to cause compression even for base sequences having a chain length of more than 500 bases, and it is possible to read longer base sequences using this gel.
  • Disclosure of the invention is to provide an electrophoresis gel that is less likely to cause compression even for base sequences having a chain length of more than 500 bases, and it is possible to read longer base sequences using this gel.
  • the present inventors have found that when supporting (supporting or filling) a support such as a gel or a polymer on a support member containing a silicon such as a silica capillary column, no bubbles are generated and the separation performance is improved.
  • the present inventors have conducted intensive studies on a method for preparing a support capable of improving the performance.
  • the generation of bubbles in the support can be suppressed, but the separation performance is improved despite the suppression of the generation of bubbles.
  • the present inventor believes that the reason for this is that the surface of the support member is etched by the action of the strongly basic reagent, and irregularities are generated on the surface of the support member. As a result, diffusion other than the separation direction of electrophoresis occurs, or It was speculated that the increase in free silanol groups in the gel prevented the improvement in separation performance in electrophoresis.
  • the present inventors have made various studies on a method in which etching is unlikely to occur on the support member surface and generation of bubbles in the support can be suppressed. As a result, no air bubbles were seen on the support supported (supported or filled) on the support member washed with the weakly basic solution, and the electrophoresis time was lower than that of the conventional method using the strongly basic solution.
  • the present inventors have found that the separation performance is improved, and have completed the present invention (a method for preparing a support for electrophoresis).
  • a part of the surface of a member (supporting member) for supporting the electrophoresis support that comes into contact with the support is washed, and then the support is supported.
  • a method of preparing a support for electrophoresis comprising supporting a body on the support member, wherein the support member is made of a material containing silicon, and at least a part of the washing is performed using a weakly basic solution.
  • the present invention relates to the above method, wherein the method is performed using
  • a second aspect of the present invention relates to an electrophoresis method using a support for electrophoresis prepared using the above-mentioned preparation method.
  • the present inventor can separate nucleic acids or PNA fragments having a longer chain length to the extent that the base sequence can be determined at a time with one single capillary column.As a result, the base sequence can be determined.
  • the composition of the gel for electrophoresis was improved as described above, and at the same time, the electrophoresis conditions when using the gel, particularly the electrophoresis solution, were examined.
  • polyacrylamide gel As a gel used for electrophoresis for nucleotide sequence determination, polyacrylamide gel is generally used (Reference: Toshio Takagi, edited by PAGE (Polyacrylamide gel electrophoresis) Hirokawa Shoten 1990).
  • the present inventors have found that a gel obtained by performing the preparation of a polyacrylamide gel in the presence of two or more polar organic solvents, for example, methanol and formamide, can solve the above-mentioned problems, and have found that the present invention (electrical Gel for electrophoresis) was completed.
  • the third embodiment of the present invention relates to an electrophoresis gel comprising a polyacrylamide-based polymer obtained by polymerizing acrylamide or a derivative thereof in the presence of two or more polar organic solvents.
  • a fourth aspect of the present invention relates to a method for separating a nucleic acid or a PNA fragment by electrophoresis in the presence of a polar organic solvent.
  • the gel of the third embodiment of the present invention can be applied to a gel having high elasticity obtained by coexisting a water-soluble polymer such as dextran (Katsunori Aizawa, Protein Nucleic Acid Enzyme 43 (1998) 2191-2198). .
  • BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION a water-soluble polymer such as dextran (Katsunori Aizawa, Protein Nucleic Acid Enzyme 43 (1998) 2191-2198).
  • a support member made of a material containing silicon is used to support the support.
  • the material of the support member used here is not particularly limited as long as it contains at least silicon and can be used for electrophoresis.
  • a material of such a silicon-containing support member for example, glass products such as natural or synthetic quartz, borosilicate glass, alkali lead glass, soda-lime silica glass, oxynitride glass, siliceous brick, Zeolite, cordierite, silicon carbide, silicon, enamel and the like containing silicon as a main component can be mentioned.
  • the shape of the support member used in the present invention can be appropriately determined according to the object to be separated. Examples of such a shape include a plate shape, a column shape (hollow cylindrical shape), a granular shape, a fibrous shape, and a shape formed by any combination thereof.
  • the shape of the microchip electrophoresis / nanochip electrophoresis can be included in the support member of the present invention as long as it can function as a chip.
  • the diameter and length of the support member can be appropriately determined according to the purpose of separation.
  • the outer diameter is about 100 to 400 mm
  • the inner diameter is about 2 to 100 rn
  • the length is about 10 to 100 cm.
  • the surface of the support member in the present invention that comes into contact with the gel for electrophoresis is washed with a weakly basic solution.
  • the weakly basic solution used for washing is a solution in which a weakly basic substance (including an organic substance and an inorganic substance) is used as a solute and dissolved in a liquid medium, preferably water.
  • a weakly basic substance including an organic substance and an inorganic substance
  • the weak basic solvent include, for example, an organic solution, an inorganic solution, or a mixture of any combination of an organic solution and an inorganic solution.
  • the organic solution is, for example, aminobutanoic acid, 2-amino-2-ethyl-1, 3-prono ⁇ ° diol, 2-amino-2-methyl-1,3, -propanediol, 2-amino-2-methyl- 1-propanol, aminoviridine, ptyramine, chloridine, jetanolamine, getylamine, getylbarbitalic acid, dimethylamine, dimethylimidazole, ephedrine, ethanolamine, ethylmorpholine, daricylglycine, hydroxypyrroline, pyridine, methylamine
  • organic substance solution other than the above examples include, for example, a solution in which organic substances such as amines, amides, imides, ammonia compounds, and amino acids are dissolved, or a solution such as aqueous ammonia or a good buffer solution.
  • organic substances such as amines, amides, imides, ammonia compounds, and amino acids are dissolved
  • a solution such as aqueous ammonia or a good buffer solution.
  • examples thereof include a solution showing a weak basicity at the time of solution or a solution prepared to be weakly basic with an arbitrary reagent.
  • the inorganic solution is, for example, a substance selected from the group consisting of phosphoric acid, pyrophosphoric acid, boric acid, and carbonic acid, has a pK value of 7 to 12 at room temperature, and has a weak base when the inorganic material is dissolved.
  • examples thereof include substances exhibiting properties (pH value of 7 to 12, preferably 8 to 11) or substances prepared to be weakly basic with any reagent, and are preferably aqueous carbonate solutions.
  • the weakly basic solution used for washing in the present invention a solution in which an organic solvent of an arbitrary concentration is mixed can also be used. In the present invention, at least a part of the washing is performed with a basic solution.
  • another solution can be used in combination with the weakly basic solution.
  • the solution that can be used in combination include a neutral solution such as pure water (pure treated with milli-Q), an organic solvent such as methanol and ethanol, and a solution combining a weakly basic solution and an acidic solution.
  • the order of washing when a solution other than a weakly basic solution is used is not particularly limited as long as washing with a weakly basic solution is not omitted.Washing with a weakly basic solution may be performed first or later. It does not matter. Note that washing with a solution other than the weakly basic solution is optional and can be omitted.
  • any time can be selected as long as it is within the range of one second to several months.
  • the washing time is preferably about several minutes.
  • the temperature at the time of washing is not particularly limited as long as the solution does not solidify, volatilize, or boil. However, it is preferable to wash at room temperature from the viewpoint of easy operation.
  • the washing in the present invention is performed on at least a part of the surface where the support member contacts the electrophoresis support.
  • the washing of the support member is intended to suppress the generation of bubbles during the preparation of the electrophoresis support by this washing. Therefore, preferably, the entire surface of the support member that comes into contact with the electrophoresis support is washed. Do about.
  • a support generally used as an electrophoresis support can be used as it is.
  • the support may be, but is not limited to, a gel or an entangled polymer.
  • the support include polyacrylamide, agarose gel, an entangled polymer having a molecular sieving effect, that is, linear polyacrylamide, a water-soluble cellulose derivative, and dextran.
  • the gel for electrophoresis of the present invention which will be described later, can be used. When the gel is used, it is particularly suitable for separating nucleic acids and PNA fragments.
  • the present invention includes an electrophoresis method using a support prepared by the above-described preparation method of the present invention.
  • various substances can be separated according to the support used for electrophoresis.
  • a substance include a water-soluble substance having one or more cationic and Z or anionic charges, a neutral substance having no charge, or an arbitrary mixture thereof.
  • This includes nucleic acids (DNA or RNA) and PNA fragments.
  • a substance composed of an organic substance, an inorganic substance (including metal ions), or a combination thereof can be included in the above substances.
  • the state of the substance to be separated can be appropriately selected according to the support, such as solid, slurry, powder, and liquid, and the conditions of electrophoresis.
  • the electrophoresis conditions such as the buffer, voltage, and time used in the electrophoresis method of the present invention are appropriately determined depending on the properties of the support, the substance to be separated, and the like.
  • the electrophoresis conditions when the support is the gel for electrophoresis of the present invention described later can also be used.
  • the gel for electrophoresis of the present invention comprises a polyacrylamide-based polymer obtained by polymerizing acrylamide or a derivative thereof in the presence of two or more polar organic solvents.
  • the two or more polar organic solvents used in the present invention include alcohols such as methanol, ethanol, 1-propanol, 2-propanol, isobutanol, t-butanol, pyridine, tetrahydrofuran, Dioxane, acetone, acetonitrile, dimethylformamide, dimethylacetamide, dimethylsulfoxide, N-methylpyrrolidone, hexamethylphosphamide and the like can be mentioned.
  • the gel for electrophoresis of the present invention is obtained by allowing the polar organic solvent to coexist when polymerizing the acrylamide derivative. Even if the acrylamide derivative is polymerized, and the same two or more polar organic solvents are supplied to the voids of the obtained polymer (matrix), the desired effects of the present invention cannot be obtained. In addition, even when only one kind of polar organic solvent is used in the polymerization, the effect intended by the present invention cannot be obtained.
  • the combination of two or more polar organic solvents is not particularly limited.
  • a combination of formamide and an alcohol is preferable, and a combination of formamide and methanol is particularly preferable.
  • the acrylamide derivative used for the polymerization is not particularly limited, and examples thereof include N, N′-dimethylacrylamide and N- (hydroxymethyl) acrylamide.
  • the acrylamide derivative may be used alone or as a mixture of one or more kinds.
  • As the polymerization initiator used for the polymerization those usually used for the polymerization of acrylamide derivatives can be used as they are.
  • the concentration (w / v%) of the gel can be determined as appropriate in consideration of the molecular weight of the nucleic acid to be separated, etc., but is usually in the range of 3 to 10 w / v%, preferably about 5 w / v%. Is appropriate.
  • Example 1 5% on IOODI I scale using methanol and formamide as polar organic solvents The case where the gel of Example 1 is prepared will be described.
  • concentration of urea exceeds 6 M, urea tends to precipitate at low temperatures (O to 10 ° C) due to the presence of the polar organic solvent.
  • concentration of methanol and formamide are each 10%.
  • concentration of the polar organic solvent is not limited to the above, and can be appropriately determined in consideration of the nucleic acid separation characteristics and the like, and can be, for example, in the range of 5 to 15%.
  • concentrations of the two or more polar organic solvents do not need to be the same and can be changed as appropriate.
  • a water-soluble polymer such as dextran or other cell-mouth derivatives can be added to the gel for electrophoresis of the present invention.
  • the gel elasticity can be improved by adding these water-soluble polymers (Katsunori Aizawa, Protein Nucleic Acid Enzyme 43 (1998) 219-2198).
  • the water-soluble polymer is added, for example, in an amount of 1 to 30 w / v%, preferably about 2 to 5 w / v%.
  • the water-soluble polymer can be uniformly dispersed and dissolved in the reaction solution by adding to the reaction solution obtained above and stirring appropriately.
  • the reaction solution obtained above removes fine debris contained in the reaction solution. This is because electrophoresis using a capillary column is hindered by the presence of fine debris. It is because there is a case.
  • suction filtration using a filtration filter (0.22 micron) can be used. However, it is not limited to this.
  • the reaction solution from which impurities have been removed is then cooled with ice while stirring to suppress polymerization of the gel.
  • a low temperature room may be used.
  • an appropriate amount of ammonium persulfate solution which is a polymerization initiator, is added, and deaeration is performed if necessary.
  • ammonium persulfate solution for example, about 0.5 ml of a 10% solution can be added.
  • the reaction solution can be degassed, for example, for about 30 minutes under reduced pressure while stirring the reaction solution.
  • TEMED polymerization initiator N, ⁇ , ⁇ ', ⁇ '-tetramethylethylenediamine
  • Add to the solution 0.05 ml of the polymerization initiator N, ⁇ , ⁇ ', ⁇ '-tetramethylethylenediamine (hereinafter referred to as “TEMED”) is reacted. Add to the solution. After the addition of TEMED, the reaction solution is preferably degassed for 5 to 10 minutes while stirring.
  • the polymerization initiator is added as described above, the polymerization is started, and gelation starts. Therefore, it is preferable to carry out the above steps under ice-cooling or in a low-temperature room as described above, from the viewpoint of suppressing gelation before packing in a capillary column or the like.
  • the support member used for the gel for electrophoresis of the present invention is not particularly limited in the material, diameter, length, and the like, like the support member used in the method for preparing the support for electrophoresis described above.
  • those commonly used in multicapillary DNA sequencers can be used.
  • a slab gel type support member can be used. It is preferable that the inner surface of the support member is prepared by the method for preparing an electrophoresis support of the present invention before use. Filling gel support
  • the reaction solution which has started to gel by adding a polymerization initiator, can be filled into a support member (capillary column) at room temperature using a gel filling device, for example, a GVT machine (manufactured by Shimadzu Corporation).
  • a gel filling device for example, a GVT machine (manufactured by Shimadzu Corporation).
  • the type of gel filling device is not limited to this.
  • slab gel it can be prepared by adding a polymerization initiator and filling the reaction solution, which has begun to gel, into a supporting member (gel plate) and leaving it at room temperature for a certain period of time in the same manner as before. it can.
  • the present invention further includes an electrophoresis method for separating a nucleic acid or a PNA fragment in the presence of a polar organic solvent using the gel of the present invention or the support (gel) prepared by the preparation method of the present invention.
  • the nucleic acid to be separated may be either RNA or DNA.
  • the gel used in the electrophoresis using the gel of the present invention may be a support prepared by the preparation method (first embodiment) of the present invention. It is more preferable to carry out electrophoresis using the thus prepared support as a gel, since a base sequence having a longer chain length can be separated.
  • a buffer obtained by adding a polar organic solvent to a buffer such as TBE is used.
  • a polar organic solvent such as TBE
  • 0.5 to 5X TBE, preferably 1.5X final concentration can be mentioned.
  • a mixed liquid of alcohols and formamide particularly preferably a mixed liquid of methanol and formamide can be mentioned.
  • the concentration of the polar organic solvent is, for example, 5 to 15%, preferably 10% (v / v).
  • the final concentration of each solvent is 5 to 15%, preferably 10% (v / v).
  • Injection of a sample can be performed under the same conditions as those used in ordinary electrophoresis.
  • 0.1 to 10 kV is 5 to 600 seconds, preferably 2 kV is 90 seconds.
  • the electrophoresis is 20 to 70 ° C, preferably 55 ° C, 1 to 20 kV, preferably 4.8 kV. It is appropriate to do this at
  • the loading of the sample onto the gel can be performed according to a conventional method.
  • the sample that can be separated by electrophoresis using the gel for electrophoresis of the present invention is, for example, a nucleic acid such as DNA or RNA or a PNA fragment that is fluorescently labeled with an ordamine or the like. It is preferable from the viewpoint of. However, the present invention is not limited to these, and may have a label such as a radioisotope. Bands of fluorescently labeled DNA and RNA can be detected using a laser light source and a fluorescence detector attached to the cabillaries, sequencers, etc. In the case of slab gel, the light source and detector attached to the sequencer can be used.
  • each degree of separation (Rs) in the examples was calculated by the following equation from the separation data, with the signal wavelength being a Gaussian type.
  • tA and tB are the times at which the peaks of the A and B signals were detected, respectively, and W 1/2 A and W 1/2 B are the signal widths at half the peak height of the A and B signals.
  • a gel matrix (100 ml) was prepared by sequentially mixing the following reagents at room temperature with constant stirring.
  • the solution thus obtained was filled with a gel at room temperature using a GVT machine (manufactured by Shimadzu Corporation) in a capillary (SGE, made of phased silica having an inner diameter of 100 ⁇ m and an outer diameter of 360, total length of 48 cm). After the packing, the gel was left still at room temperature for 3 hours to obtain a capillary column filled with the gel of the present invention. This capillary column was then used for electrophoresis.
  • the electrophoresis was performed under the condition of 55 ° (: 4.8 kV).
  • the ability to read a nucleotide sequence was represented by the number of nucleotide sequences that showed a degree of separation of 0.5 or 0.25 between DNA fragments differing by one base length.
  • Capillary tube used A fused silica capillary manufactured by SGE with an outer diameter of 360 microns, an inner diameter of 100 microns, and a total length of 48 cm. Before filling the gel, the inner surface of the tube was washed with 1 N sodium hydroxide, purified water, 1 N hydrochloric acid, and purified water in this order.
  • Electrophoresis conditions 6 kV, 55 ° C, and the electrode solution used was a solution consisting of components other than gel and urea in each gel composition.
  • Analytical sample M13 Immediate DNA single-stranded DNA fragment (Takara) and fluorescent labeling by Cycle sequencing using BigDye TM Primer (PE Applied Biosystems) Kit. .
  • a gel 6M Urea, 10% (v / v) forinamide, 10% (v / v) methanol, 10% (v / v) Long Ranger TM, x 1.5 TBE
  • B gel 6M Urea, 20% methanol, 103 ⁇ 4 Long Ranger TM, xl.5 TBE
  • D gel xl.5 TBE 545 625 The ability to read a base sequence was represented by the number of base sequences showing a resolution of 0.5 or 0.25 between DNA fragments having a difference of one base length.
  • Capillary tube used SGE's fused silica capillary with an outer diameter of 360 microns, an inner diameter of 100 microns, and a total length of 48 cm. Before filling the gel, the inner surface of the tube was washed with 1 N sodium hydroxide, purified water, 1 N hydrochloric acid, and purified water in this order. Running conditions: 6kV, 55 ° C
  • Analytical sample DNA fragment obtained by labeling M13mpl8 single strand DNA (Takara) with type II and fluorescently labeling by Cycle sequencing reaction using BigDye TM Primer (PE Applied Biosystems) Kit.
  • a gel 6M Urea, 10% (v / v) formamide, 10% (v / v) methanol, 103 ⁇ 4 (v / v) Long Ranger TM, XI.5 TBE
  • D gel 6M Urea, 10% Long Ranger TM, xl.5 TBE Table 1 compares the conditions under which a polar organic solvent is present during gel preparation to improve the base sequence reading ability of the gel. Things. As can be seen from this example using formamide and methanol, at least two polar organic solvents were required and were ineffective alone. In addition, the best concentration of each of the two organic solvents was 10% as far as it was examined. Under these conditions, more than 900 bases could be read in some cases.
  • Table 2 shows the results of how the ability to read the base sequence of a gel is affected by the presence or absence of a polar organic solvent when preparing a gel and the presence or absence of a polar organic solvent in an electrophoresis buffer. is there. As is clear from this table, it was found that the best results were obtained when the organic solvent was present both during gel preparation and during electrophoresis.
  • a fused silica cavitary ram manufactured by Moritex was used as a support member.
  • This one-stop ram is full length 384 tubes of 48 cm, 39.5 to 40 cm in length from the entrance to the detection window, outer diameter of 300 m, inner diameter of 100 n ⁇ , and uncoated inner surface were used.
  • washing at room temperature 0.1 M NaHCO 3 pH 9.0
  • pure (milli Q processing ones) was carried out in the order of 1M HCK purely (those milli Q processing).
  • conventional washing was performed at room temperature in the order of 1M Na0H (pH 13-14), pure (milli-Q treatment), and 1M HC pure (milli-Q treatment). The washing time for each solution was 3 minutes.
  • a gel matrix (100 ml) was prepared in the washed 384 fused silica capillary columns.
  • acrylamide Z-bis and a commercial solution of Long Ranger 1 manufactured by FMC, USA
  • Page Plus manufactured by Amresco
  • the composition of the solution before the polymerization was as follows.
  • each of the above-mentioned 384 capillaries was filled with each gel in the same manner as in Example 1, and then allowed to stand at room temperature.
  • a standard sample for sequencing (pGEM-3Zf (+)) / 21M13 forward primer and a fluorescent labeling agent (BigDye tenninator) Z cycle sequencing and purification) were prepared.
  • a sequence (electrophoresis) was performed at an applied voltage of 4.8 kV and at a temperature of 50 ° C using a RISA sequencer (manufactured by Shimadzu Corporation). The other conditions are the same as in the first embodiment.
  • NaOH 750 methanosol filled NaHC0 3 750 d ⁇ 1 o ⁇ fi ⁇ nu page plus / formamide /
  • the number of bases is the value when the resolution is 0.5 As shown in Table 3, for example, in the case of a gel consisting only pages plus 0, when washed with lM NaHCO 3 was able to decode to the base sequence number of separability 0.5 at 750. This almost coincided with the number of base sequences that could be read by the RISA sequencer. In contrast, when washed with 1 M NaOH, only 560 nucleotides could be decoded at a resolution of 0.5. Thus, when the composition of the solution before polymerization to compare gel What happened the same, than if the person in the case of washing any type of gel is a be 0. 1M NaHCO 3 was washed with 1 M NaOH It was also possible to decode a nucleotide sequence with a long chain length.

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Description

明細 電気泳動用支持体の調製方法、 電気泳動用支持体及び電気泳動法 技術分野
本発明は、 電気泳動用支持体の調製方法、 電気泳動用支持体及び電気泳動法に 関する。より詳しくは、本発明は、ゲル又は絡み合った高分子 (entangl ed polymer) のような電気泳動用の支持体を、 ケィ素を含有する支持部材上に形成する電気泳 動用支持体の調製方法であって、 支持部材の洗浄法に特徴の有る方法、 及びこの 方法により調製した支持体を用いた電気泳動法に関する。 さらに本発明は、 核酸 又は P N A断片の分離に使用する電気泳動用ゲル及びこのゲル若しくは前記支 持体を用いた核酸又は P N A断片を分離する電気泳動法に関する。
本発明の電気泳動用支持体の調製方法によれば、 電気泳動用支持体の作成時に おける気泡の発生を抑制できるため、 試料 (例えば核酸など) の分離性能が向上 する。 また本発明の電気泳動用支持体またはゲルを用いた電気泳動法によれば、 電気泳動における分離性能を高めることができる。 そのため、 特に塩基配列決定 法で必要とされる、 長鎖の核酸及び P N A断片の分離を良好に行うことができ、 長鎖の塩基配列決定法へ適用する場合、 特に有用である。 背景技術
30 億もの塩基対をもっといわれるヒトゲノムの塩基配列が解析されつつある。 特にヒトゲノムにおける多型性の解析は、 個人個人に特有の形質とも関連し、 医 学的薬理的にも、 また生物学的にもすこぶる高い関心がもたれている。 従来ゲノ ムのような膨大な塩基配列を決定するためには、 多試料を同時に高速に高感度に 自動的に処理できるようなシーケンサーの開発が行われてきた。 特に従来の平板 状のスラブゲルに代わってゲルを充填したキヤピラリーカラムを多数同時に用 いるマルチキヤビラリ一 D N Aシーケンサーの出現は、 塩基配列決定速度を高め ることに著しく貢献してきた。 現在、 すでに 96本 (たとえば ABI社シーケンサ 一 3700、 Molecul ar Dynamics社 MegaBACElOOOなど) の、 また最近では、 さらに その 4倍の 384本(384本マルチキヤビラリーシーケェンシングシステムの開発: 第 21回日本分子生物学年会抄録 1P- 570 ( 1998年 12月横浜)) ものキヤビラリ一 カラムを用いたマルチキヤピラリー D N Aシーケンサーが開発されている。
しかるに、 キヤビラリ一カラムの本数を増加させる場合、 配列を読み取るため の検出器の性能や構造に起因する制約がある。 また、 単にキヤピラリーカラムの 本数を増加させるだけでは、 キヤビラリ一カラム自体の供給及びキヤビラリ一力 ラムへの検体の口一ディング等に必要とされる労力は低減されない。
また、 現在使用されているシーケンサ一では 1本のキヤビラリ一力ラムで 500 塩基前後が読み取れるといわれている。 1本のキヤビラリ一力ラムで読み取れる 塩基数を増加させれば、 すなわち分離性能を向上させれば、 キヤビラリ一力ラム 自体の供給及びキヤビラリ一カラムへの検体のローデイング等に必要とされる 労力等を低減できるという利点がある。 しかるに、 個々のキヤビラリ一力ラムに ついてさらに多くの塩基を一度に読み取れるようにするかについての検討は、 あ まり行われておらず、 今後解決すべき一つの課題として残されていた。
例えば、 D N Aシーケンサーをはじめとする多くの電気泳動装置では、 電気泳 動用支持体を支持するための支持部材が使用される。 この支持部材は、 電気泳動 の目的に応じて様々な形状を有する。 例えば、 スラブ電気泳動では支持部材とし て平板状の 2枚のシリカガラスが使用され、 またキヤピラリ一電気泳動では支持 部材としてカラム状(中空円筒状)のシリカ製キヤビラリ一力ラムが使用される。 さらに、 マイクロ電気泳動ではシリコンウェハ上に作成した微小な分離路のよう な形状を有する支持部材が使用される。 これらの支持部材はいずれもシリカ等の ケィ素を含有した材料からなるのが一般的である。
このようなケィ素を含有する支持部材 (以下、 単に 「支持部材」 ともいう) 上 に調製された電気泳動用支持体において良好な分離性能を得るためには、 支持体 は気泡を含まないことが好ましい。
例えば、 2枚の支持部材の間に電気泳動用ゲルを作成する場合 (スラブ電気泳 動) や、 支持部材の空胴中に絡み合った高分子溶液を注入する場合 (キヤビラリ 一電気泳動)、 支持部材を洗浄することなく使用すると、 特に、 支持部材の幅や 注入口が狭い (幅又は直径約 1匪以下) 場合に、 支持部材の表面近く又はその微 小空隙内に気泡が発生しやすくなる。 このような気泡を含むゲルや高分子等の支 持体では充分な分離性能が得られず、 電気泳動用支持体としての本来の機能を果 たし得ない。
このような気泡を支持体中に発生させないための方法としては、 これまでにプ ロパノールやポリエチレングリコールを高分子の重合前に混入する方法が提唱 されている (Anal. Chem. , 1992 ; 64 ; p2665-2671 , J. Chromatogr. , 1991 ; 550 : Ρ823-830) 0 この方法によれば、 確かに気泡を含まない支持体を得ることができ る。 しかし、 この方法で得られた支持体は、 従来のものと比較した場合に電気泳 動における分離性能が低下してしまうという欠点があった。 このため、 上記方法 は、 高度の分離性能が要求される電気泳動法に対しては不向きである。
また、 支持部材の表面にある不純物が気泡の芯になるという想定の下に、 キヤ ピラリーカラム内壁の不純物を NaOH溶液の強塩基性溶液、 エタノールなどの有 機溶媒、 HC1 などの酸性溶液、 及びこれらと純水を組み合わせた溶液を用いて洗 浄する方法により気泡の発生を押さえる試みもなされている (Elect rophores is 1996 ; 17 :pl44-151)。 しかるに、 この方法は支持部材表面の気泡の発生を押さえ ることができたものの、 前記方法と同様に、 電気泳動の分離性能については満足 の行くものではなかった。
したがって、 支持部材に担持又は充填された支持体中における気泡の発生を有 効に抑制でき、 かつ良好な分離性能を得ることができる電気泳動用支持体の調製 方法の提供がかねてから課題となっていた。
また、 電気泳動用支持体の調製方法とは別に、 電気泳動の分離性能を向上させ る目的で、 電気泳動用支持体自身についても改善の余地があった。 しかし、 電気 泳動用支持体の材料等については、 これまで十分な検討はなされていなかった。 そこで、 本発明の目的は、 電気泳動における上記課題を解決し、 電気泳動時の 分離性能を高め、 試料の分離の向上、 特に、 核酸又は P N A断片においては、 よ り長鎖の塩基配列も読み取ることを可能にする手段を提供することを目的とす る。
より具体的には、 本発明の目的は、 ケィ素を含有する支持部材を用いて電気泳 動用支持体を調製する場合に、 支持体中に気泡が発生することを抑制できる電気 泳動用支持体の調製方法の提供、 及びこの調製方法により調製した電気泳動用支 持体を用いた電気泳動法を提供することにある。
さらに本発明の別の目的は、 500 塩基を超える鎖長の塩基配列についてもコン プレツシヨンを生じにくい電気泳動用ゲルの提供、 さらにはこのゲルを用いてよ り長鎖の塩基配列の読み取りも可能になる電気泳動法を提供することにある。 発明の開示
本発明者は、 シリカ製キヤピラリーカラムのようなケィ素を含有する支持部材 にゲルや高分子のような支持体を支持 (担持または充填)する際に、 気泡が発生せ ず、 かつ分離性能も向上できる支持体の調製方法につき鋭意検討を重ねた。
上述のように、 支持部材を、 強塩基性溶液を用いて洗浄すると、 支持体中への 気泡の発生は抑制できるが、 気泡の発生が抑制されるにもかかわらず分離性能の 向上は得られなかった。 本発明者は、 この原因を、 強塩基性試薬の作用により支 持部材表面がエッチングされて支持部材表面に凹凸が生じ、 その結果、 電気泳動 の分離方向以外の拡散が生じ、 あるいは支持部材表面の遊離シラノール基が増加 して、 電気泳動における分離性能の向上を妨げたと推測した。
そこで本発明者は、 このような推測のもと、 支持部材表面でエッチングが起こ り難く、 かつ支持体中における気泡の発生を抑制できる方法について種々検討し た。 その結果、 弱塩基性溶液を用いて洗浄した支持部材に支持(担持または充填) した支持体には気泡の発生が見られず、 かつ強塩基性溶液を用いた従来法に比べ て電気泳動時の分離性能が向上することを見出し、 本発明(電気泳動用支持体の 調製方法)を完成するに至った。
すなわち、本発明の第 1の態様は、電気泳動用支持体を支持するための部材(支 持部材) のこの支持体と接触することになる表面の少なくとも一部を洗浄し、 次 いでこの支持体を前記支持部材に支持させることを含む電気泳動用支持体の調 製方法であって、 前記支持部材がケィ素を含有する材料からなり、 かつ前記洗浄 の少なくとも一部を、 弱塩基性溶液を用いて行うことを特徴とする前記方法に関 する。 本発明の第 2の態様は、 上記調製方法を用いて調製した電気泳動用支持体を用 いた電気泳動法に関する。
また、 本発明者は、 従来より鎖長の長い核酸又は P N A断片まで、 一本のキヤ ビラリ一カラムで一度に塩基配列を決定できる程度に分離することができ、 その 結果、 塩基配列を決定できるように電気泳動用ゲルの組成を改良し、 併せて当該 ゲルを用いるときの電気泳動条件、 特に電気泳動液についても検討した。
塩基配列決定のための電気泳動に用いられるゲルとしてはポリアクリアミ ド ゲルが一般的に用いられる (参考:高木俊夫編著 PAGE (ポリアクリルアミドゲ ル電気泳動) 廣川書店 1990年)。 本発明者は、 ポリアクリアミドゲルの調製を 2 種以上の極性有機溶媒、 例えばメタノール及びホルムアミド、 の存在下に行うこ とで得られたゲルが、 上記課題を解決できることを見出し本発明(電気泳動用ゲ ル)を完成した。
すなわち、 本発明の第 3の態様は、 2種以上の極性有機溶媒の共存下にァクリ アミ ド又はその誘導体を重合することにより得られるポリアクリアミド系重合 体からなる電気泳動用ゲルに関する。
さらに本発明の第 4の態様は、 極性有機溶媒の存在下で核酸又は P N A断片を 電気泳動させて分離する方法に関する。
本発明の第 3の態様のゲルは、 デキストランのような水溶性高分子を共存させ て得られる弾力性に富んだゲル(相澤克則、蛋白質核酸酵素 43 (1998) 2191-2198) についても適応できる。 本発明を実施するための最良の形態
[電気泳動法用支持体の調製方法 (第 1の態様)] 本発明の電気泳動用支持体の調製方法では、 支持体を支持するためにケィ素を 含有する材料からなる支持部材を使用する。 ここで用いる支持部材は、 少なくと もケィ素を含有し、 電気泳動に用いることができるものであれば、 材料について は特に限定はない。 このようなケィ素を含有する支持部材の材料として、 例えば 天然又は合成の石英、 ホウケィ酸ガラス、 アルカリ鉛ガラス、 ソーダ石灰シリカ ガラス、 ォキシナイトライドガラスなどのガラス製品のほか、 珪石質煉瓦、 ゼォ ライト、 コーディエライト、 炭化珪素、 シリコン、 エナメルなどケィ素を主成分 とするものが挙げられる。
本発明で用いる支持部材の形状については、 分離する対象に応じて適宜決定す ることができる。 そのような形状として、 例えば、 平板状、 カラム状 (中空円筒 状)、 顆粒状、 繊維状の形状又はそれらの任意の組み合わせからなる形状などを 挙げることができる。 またマイクロチップ電気泳動ゃナノチップ電気泳動のゥェ 八の形状についてもチップとして機能し得るものであれば、 本発明の支持部材に 含まれる。
また支持部材の径や長さについても、 分離目的に応じて適宜決定することがで きる。 例えば、 キヤビラリ一力ラムの場合、 外径が 100〜400 ΠΚ 内径が 2〜100 rn, 長さ 10〜100cm 程度であることが適当である。 キヤビラリ一カラムにおい てシーケンサーなどで蛍光を測定する場合には、 蛍光測定の妨げとならないよう な材質又は処理(無蛍光材質での被覆)がなされたものを用いることが望ましい。 本発明における支持部材は、 電気泳動用ゲルと接触することになる表面を弱塩 基性溶液を用いて洗浄する。 洗浄に用いる弱塩基性溶液は、 弱塩基性物質 (有機 性物質及び無機性物質を含む) を溶質として液体状の媒体、 好ましくは水中に溶 解させたものである。 弱塩基性溶媒の態様については、 例えば、 有機性溶液、 無機性溶液又は有機物 溶液と無機物溶液の任意の組み合わせからなる混合物を挙げることができる。 有機物溶液は、 例えば、 アミノブタン酸, 2 -ァミノ- 2 -ェチル - 1, 3 -プロノ \° ンジオール, 2 -ァミノ- 2 -メチル - 1 , 3 —プロパンジオール, 2 -ァミノ- 2 -メ チル- 1 -プロパノール, アミノビリジン, プチルァミン, クロリジン, ジェタノ ールァミン, ジェチルァミン, ジェチルバルビタール酸, ジメチルァミン, ジメ チルイミダゾール, エフェドリン, エタノールァミン, ェチルモルホリン, ダリ シルグリシン, ヒドロキシピロリン, ピぺリジン, プロピルァミン, メチルアミ ン, メチルイミダゾール, 卜リエチルァミン, トリエタノールァミン, トリメチ ルァミン, トリス (ヒドロキシメチル) ァミノメタノールの群から選択されるい ずれか 1つ又は複数の組み合わせからなる有機物を溶媒に溶解させた溶液であ り、 室温で溶媒中に溶解したときの p K値が 7〜12、 ρ Η値が 7〜1 2、 好まし くは 8〜1 1のものを挙げることができる。
また、 上記以外の有機物溶液としては、 例えば、 アミン類、 アミド類、 イミド 類、 アンモニア化合物、 アミノ酸などの有機物を溶解した溶液、 又はアンモニア 水や Goodの緩衝液などの溶液であって、 これらを溶液した時の pHが弱塩基性を 示す溶液又は任意の試薬で弱塩基性に調製した溶液などが挙げられる。
一方、 無機物溶液としては、 例えば、 リン酸、 ピロリン酸、 ホウ酸、 炭酸の群 から選ばれる物質であって、 室温で p K値が 7〜12、 無機物を溶液したときに ρ Ηが弱塩基性 (pH値 7〜 1 2、 好ましくは 8〜 1 1 ) を示す物質又は任意の試 薬で弱塩基性に調製した物質などが挙げられ、 好ましくは炭酸塩の水溶液である。 さらに本発明において洗浄に使用する弱塩基性溶液は、 任意の濃度の有機溶媒 を混在させたものも用いることもできる。 本発明における洗浄は、 少なくとも洗浄の一部を塩基性溶液で行う。 即ち、 本 発明における洗浄には、 弱塩基性溶液に他の溶液を併用することができる。 併用 できる溶液としては、 例えば、 純水 (ミリ Q処理した純粋) などの中性溶液、 メ 夕ノール、 エタノールなどの有機溶媒、 弱塩基性溶液と酸性溶液とを組み合わせ た溶液を挙げることができる。 弱塩基性溶液以外の溶液を用いる場合の洗浄の順 序については、 弱塩基性溶液での洗浄を省略しない限り特に制限はなく、 弱塩基 性溶液による洗浄を先に行っても、 又は後に行っても構わない。 なお、 弱塩基性 溶液以外の溶液による洗浄は、 任意であるため省略することもできる。
洗浄時間については、 1秒〜数ケ月の範囲内の時間であれば任意の時間を選択 することができる。 但し、 操作の効率等を考慮すれば、 洗浄時間としては数分間 程度が好ましい。 また洗浄時の温度についても、 溶液が固化又は揮発又は沸騰し ない温度であれば特に制限はないが、 操作の容易性等の観点からは室温で洗浄す ることが望ましい。
なお、 本発明における洗浄は、 支持部材が電気泳動用支持体と接触する表面の 少なくとも一部に対して行われる。 但し、 支持部材の洗浄は、 この洗浄により電 気泳動用支持体調製時の気泡発生を抑制することを目的とするものであるので、 好ましくは電気泳動用支持体と接触する支持部材表面の全部について行う。
支持部材と接触することになる電気泳動用支持体は、 電気泳動用の支持体とし て一般的に用いられる支持体をそのまま使用することができる。 支持体は、 ゲル 又は絡み合った高分子であることもできるが、 特にこれらに限定されるものでは ない。 支持体としては、 例えば、 ポリアクリルアミド、 ァガロースゲル、 分子ふ るい効果を有する絡み合った高分子、 すなわち直鎖上ポリアクリルアミド、 水溶 性セルロース誘導体、 デキストランなどが挙げられる。 また、 このような支持体 として後述する本発明の電気泳動用ゲルを用いることもでき、 当該ゲルを用いた 場合には特に核酸や P N A断片の分離に好適となる。
その他、 支持部材と接触することになる電気泳動用支持体の調製における支持 体の作成、 充填等の条件及び方法については、 通常の支持体に用いる一般的な条 件及び方法を用いることもできる。 さらに、 この支持体が後述する本発明の電気 泳動用ゲルである場合には、 後述する条件に従つて調製することができる。
[本発明の調製方法により調製された支持体を用いた電気泳動法 (第 2の態様)] 本発明は、 上記本発明の調製方法で調製した支持体を用いた電気泳動法を包含 する。 この電気泳動法によれば、 電気泳動に使用される支持体に応じて種々の物 質を分離することができる。 このような物質としては、 例えば、 陽イオン性及び Z又は陰ィォン性電荷を 1又は 2以上有する水溶性物質、 電荷を有しない中性物 質、 又はこれらの任意の混合物を挙げることができ、 この中には核酸 (D N A又 は R N A) や P N A断片も含まれる。 加えて、 有機物質、 無機物質(金属イオン 類を含む)、 又はそれらの組み合わせからなる物質も上記物質の中に含まれるこ とができる。 また、 分離する物質の状態についても固体、 スラリー、 粉体、 液体 など支持体や電気泳動の条件に従って適宜選択することができる。
本発明の電気泳動法に使用する緩衝液、 電圧、 時間等の電気泳動の条件につい ては、 支持体及び分離する物質等の特性に応じて適宜決定される。 また、 支持体 が後述する本発明の電気泳動用ゲルである場合の電気泳動の条件を用いること もできる。
[電気泳動用ゲル (第 3の態様) ]
本発明の電気泳動用ゲルは、 二種類以上の極性有機溶媒の存在下でァクリルァ ミド又はその誘導体を重合して得られるポリアクリルアミド系重合体からなる。 本発明で使用される二種類以上の極性有機溶媒としては、 例えば、 メタノール、 エタノール、 1 -プロパノール、 2 -プロパノール、 イソブ夕ノール、 t—ブタノ —ル等のアルコール類、 ピリジン、テ卜ラヒドロフラン、 ジォキサン、 アセトン、 ァセトニトリル、 ジメチルホルムアミド、 ジメチルァセトアミド、 ジメチルスホ キシド、 N-メチルピロリ ドン、 へキサメチルホスフアミド等を挙げることがで さる。
本発明の電気泳動用ゲルは、 アクリルアミド誘導体を重合する際に、 前記極性 有機溶媒を共存させて得られる。 アクリルアミド誘導体を重合し、 得られた重合 体(マトリクス)の空隙に同様の二種類以上の極性有機溶媒を供給しても、 本発明 が目的とする効果は得られない。 また、 重合の際に用いる極性有機溶媒が 1種類 の場合にも、 同様に、 本発明が目的とする効果は得られない。
二種類以上用いられる極性有機溶媒の組み合わせには特に制限はないが、 例え ば、 ホルムアミド及びアルコール類の組み合わせは好ましく、 特に、 ホルムアミ ドとメタノールの組み合わせが好ましい。
また、 重合に用いるアクリルアミド誘導体には特に制限はないが、 例えば、 N, N ' -ジメチルアクリルアミド、 N- (ヒドロキシメチル) アクリルアミドを挙げ ることができる。 アクリルアミド誘導体は単独でも、 1 種以上の混合物であって もよい。 また重合に用いる重合開始剤は、 アクリルアミド誘導体の重合に通常用 いられるものをそのまま使用することができる。 また、 ゲルの濃度(w/v%)は、 分離したい核酸の分子量等を考慮して適宜決定できるが、 通常 3〜10 w/v%の範 囲、 好ましくは約 5 w/v%とすることが適当である。
以下に本発明の電気泳動用ゲルの製造法をより具体的に説明する。
極性有機溶媒としてメタノール及びホルムアミド用い、 I OO DI Iスケールで 5 % のゲルを作成する場合について説明する。
ス夕一ラ一バーを入れたフラスコかビーカ一を準備し、 先ず最終濃度 6 Mにな るように尿素 36 g、 純水 (好ましくはミリ Q処理のもの) 25ml、 l O 卜リスホ ゥ酸- E D T A緩衝液 (以下 「T B E」 という、 この場合は X 10 T B E ) 緩衝液 15 mK ァクリアミド誘導体としてはロングレンジャー (米 FMC社) 10 mlを室温 にて順に加えて攪拌し、 尿素が溶けるのを待つ。 尿素は核酸などの変性剤として 添加されるが、 添加しなくてもよく、 尿素の濃度は 0〜8 Mの範囲とすることが できる。 なお、 尿素の濃度が 6 Mを越えると、 極性有機溶媒が存在しているため に、 低温 (O〜10°C ) では尿素が析出しやすくなる傾向がある。 次に、 常時攪拌 を続けながら、 極性有機溶媒であるメタノール 10 ml 及びホルムアミド 10 ml を添加混合し、 最終容量を 100 ml にし、 さらによく混ぜ合わせる。 この例では、 メタノール及びホルムアミドは最終濃度がそれぞれ 10 %となる。 但し、 極性有機 溶媒の濃度は、 上記に限るものではなく、 核酸分離特性等を考慮して適宜決定す ることができ、 例えば、 5〜15 %の範囲とすることができる。 また、 2種以上用 いる極性有機溶媒の濃度は同一である必要はなく、 適宜変化させることができる。 本発明の電気泳動用ゲルには、 所望によりデキストラン又はその他のセル口一 ス誘導体のような水溶性高分子を添加することができる。 これら水溶性高分子を 添加することでゲルの弾力性を向上させることができる (相澤克則、 蛋白質核酸 酵素 43 ( 1998) 219卜 2198)。 水溶性高分子は、 例えば、 l〜30w/v%、 好ましく は 2〜5 w/v%程度添加する。水溶性高分子は、上記で得られた反応液に添加し、 適宜攪拌することで、 反応液に均一に分散溶解させることができる。
上記で得られた反応液は、 反応液に含まれる微細なごみを除くことが好ましレ これは、 キヤピラリーカラムでの電気泳動は微細なごみの存在により障害を起こ す場合があるからである。 反応液中の微細なごみの除去には、 例えば、 ろ過フィ ルター (0. 22ミクロン) を用いた吸引ろ過を用いることができる。 但し、 これに 限るものではない。
不純物を除いた反応液は次にゲルの重合を抑えるために攪拌しながら氷冷す る。 氷冷する代わりに低温室においてもよい。 充分冷却されたのを確認した後、 重合開始剤である過硫酸アンモニゥム液を適量添加し、 さらに必要により脱気を 行う。 過硫酸アンモニゥム液は、 例えば、 10%液を 0. 5 ml 程度添加することが できる。 但し、 必ずしもこれに限るものではない。 反応液の脱気は、 例えば、 反 応液を攪拌しながら、 減圧下で 30 分程度行うことができる。 過硫酸アンモニゥ ム液を添加し、 必要により脱気した後に、 重合開始剤である N, Ν, Ν ' , Ν ' -テ トラメチルエチレンジァミン (以下 「T E M E D」 という) を 0. 05ml 反応液に 添加する。 T E M E D添加後、 反応液を攪拌しつつ、 さらに 5〜10分脱気するこ とが好ましい。 上記のように重合開始剤を添加した時点で、 重合は開始され、 ゲ ル化が始まる。 そこで、 以上の工程は、 上記のように氷冷下、 または低温室にて 行うことが、 キヤビラリ一カラム等に充填前のゲル化を抑制するという観点から 好ましい。
支持部材の準備等
本発明の電気泳動用ゲルに用いる支持部材は、 前述した電気泳動用支持体の調 製方法で用いられる支持部材と同様に、その材質、径ゃ長さ等に特に制限はない。 例えば、 通常マルチキヤピラリー D N Aシーケンサーに用いられているものを使 用することができる。 その他、 スラブゲルタイプの支持部材を使用することもで きる。 支持部材は、 使用前に内面を、 本発明の電気泳動用支持体の調製方法によ り調製しておくことが好ましい。 ゲルの支持部材への充填
重合開始剤を添加してゲル化が始まった反応液の支持部材 (キヤピラリーカラ ム) への充填は、 ゲル充填装置、 例えば G V T機 (島津製作所製) などを用いて 室温で行うことができる。 但し、 ゲル充填装置の種類は、 これに限るものでもな レ^ G V T機等のゲル充填装置を使用する場合、 装置を加圧モードにすることで 全キヤビラリ一力ラムにゲル溶液 (ゲル化が始まった反応液) が満たされる。 キ ャピラリーカラムにゲル溶液が満たされたことを確認し、 さらに 1〜 2分後に加 圧モードを解除する。 ゲル溶液が満たされたキヤビラリ一カラムは、 例えば、 3 時間程度室温にて静置することで、 重合を完了させ、 そのまま使用することがで さる。
スラブゲルの場合には、 従来と同様の方法で、 重合開始剤を添加してゲル化が 始まった反応液を支持部材 (ゲル板) に充填し、 一定時間室温に放置することで 作製することができる。
[本発明のゲルを用いた電気泳動法 (第 4の態様) ]
本発明は、 さらに上記本発明のゲル又は本発明の調製方法により調製された支 持体 (ゲル) を用いて極性有機溶媒存在下に核酸又は P N A断片を分離する電気 泳動法を包含する。 分離対象である核酸は R N A及び D N Aのいずれであっても よい。 本発明のゲルを用いた電気泳動法で使用されるゲルは、 本発明の調製方法 (第 1の態様) により調製した支持体であってもよい。 このように調製された支 持体をゲルとして用いて電気泳動を行えば、 より鎖長の長い塩基配列まで分離で きるためより好ましい。
電気泳動用の緩衝液としては、 例えば、 T B E等の緩衝液に極性有機溶媒を加 えたものを用いる。 T B Eとしては 0. 5〜5 X、 好ましく最終濃度が 1. 5Xのも のを挙げることができる。 極性有機溶媒としてはその種類、 組み合わせ、 量に特 に制限はない。 但し、 ゲルの作製と同様に、 2種以上の極性有機溶媒を用いるこ とが好ましい。 さらに好ましくは、 アルコール類とホルムアミドの混合液、 特に 好ましくはメタノールとホルムアミ ドの混合液を挙げることができる。 極性有機 溶媒の濃度は、 例えば、 5〜15%、 好ましくは 10% (v/v) であることが適当で ある。 2種以上の極性有機溶媒を用いる場合には、各溶媒の最終濃度が 5〜15%、 好ましくは 10% (v/v) であることが適当である。 試料のインジェクションは、 通常の電気泳動で用いられている条件と同様に行うことができる。 例えば、 キヤ ピラリーカラムの場合、 0. l〜10kVで 5〜600秒、 好ましくは 2kVで 90秒がよ レ^ 泳動は 20〜70°C好ましくは 55°C、 l〜20kV、 好ましくは 4.8kVで行うこ とが適当である。 スラブゲルの場合も、 試料のゲルへのローデイングは、 常法に 従って行うことができる。
分離物の検出
本発明の電気泳動用ゲルを用いた電気泳動法で分離できる試料は、 例えば、 口 ーダミン類等で蛍光標識した DNAや RNA等の核酸又は PNA断片であるこ とが、 分離物を容易に検出できるという観点から好ましい。 但し、 これらに限る ものでもなく、 放射性同位元素等の標識を有するものであってもよい。 蛍光標識 した DNAや RNAは、 キヤビラリ一シーケンサ一などに付属のレーザ一光源と 蛍光検出器などを用いて、 バンドを検出することができる。 スラブゲルの場合に もシーケンサ一付属の光源と検出器を用いることができる。 実施例
以下の実施例を用いて本発明をさらに説明する。 なお、 実施例における各々の分離度 (Rs) は、 シグナル波長がガウス型とし、 分離データから次式により計算した。
Rs = (2 In 2) 1/2 (tB-tA)/(Wl/2A+W1/2B)
ここで、 tAと tBは、 それぞれ A, Bシグナルのピークを検出した時間、 W1/2 Aと W1/2 Bは A, Bシグナルのピーク高さ半分の高さにおけるシグナル幅である。
(実施例 1 )
ゲルマトリックス (100ml) は次の試薬を室温で常時攪拌しつつ順次混合して 作製した。
1) 尿素 36g (最終濃度 6M)、
2) 純水 (ミリ Q処理のもの) 25ml、
3) xlOTBE緩衝液 15 ml、
4) ロングレンジャー (米 FMC社) 10 ml (尿素が溶解した後添加する)
5) メタノール 10 ml
6) ホルムアミド 10 ml
以上を混合できたことを確認し、 ミリ Q純水で容量を 100 ml として、 再度よ く混ぜ合わせる。 さらに陰圧にてフィルター (0.22ミクロン) ろ過を室温で行つ た後、 攪拌しながら氷冷 (10分) または低温室に置く (30分)。
7) 10%過硫酸アンモニゥム 0.5 ml
上記溶液を引き続き氷冷又は低温室で攪拌しながら、 新規に調製した本試薬を 添加していく。 さらに攪拌しながら減圧にて 30分ほど脱気を行う。
8) TEMD 0.05 ml
速やかに本試薬を添加し、 常時攪拌しながら水冷又は低温室で 10 分ほどの追 加脱気する。
このようにして得られた溶液を GVT機 (島津製作所製) を用いてキヤビラリ 一 (SGE社、 内径 100μ、 外径 360 のフェーズドシリカ製、 全長 48cm) に ゲルを室温にて充填した。 充填後、 室温にて 3時間静置して本発明のゲルを充填 したキヤビラリ一カラムを得た。 このキヤピラリーカラムを次に電気泳動に使用 した。
試料のィンジェクシヨン
サイクルシーケンス法などで蛍光ラベルした DN A断片を、 脱塩又はエタノー ル沈殿法で純化する。 このサンプルにホルムアミド又は緩衝液とホルムアミドの 混合液を混入し、 高温処理 (95°C, 2分) を行う。 1cm キヤビラリ一長あたり 5 〜100 ボルトの範囲で、 5秒〜 5分間印加電圧をかけて、 陰極側のキヤピラリー 入口より、 サンプルのキヤビラリ一へのインジェクションを行った。 電気泳動用緩衝液としては次の組成のものを常時攪拌、 室温にて作製した。
1) 純水 (ミリ Q処理のもの) 325 ml
2) X 10TBE 75 ml
3) メタノール (和光純薬特級 137-01823) 50 ml
4) ホルムアミド (GibcoBRL15515- 026) 50 ml
電気泳動は 55° (:、 4.8kVの条件で行った。
検 出
キヤビラリ一の陽極側に近い任意の位置に設置された検出用窓に、 アルゴンレ —ザ一を照射し、 DNAサンプルの蛍光剤を励起こさせ、 それによつて生じる蛍 光をホトマルにて検出した。 結 各種ゲルを用いたキヤピラリー電気泳動装置での各種ゲルの DNA塩基配列の 読み取り能力
ゲルの種類 最長の塩基配列読み取り能力 (塩基数)
分離度 0.5の場合 分離度 0.25の場合
Aゲル 810
Bゲル 590
Cゲル 520
Dゲル 625
Eゲル
Figure imgf000019_0001
565
塩基配列読み取り能力は、 一塩基長違う DN Aフラグメント間の分離度が 0.5ま たは 0.25を示す塩基配列数で表示した。 用いたキヤビラリ一チューブ:外径 360 ミクロン、内径 100ミクロンで全長 48cmの SGE社製のフユ一ズドシリカキヤピ ラリー。 これにゲルを充填する前に 1 N水酸化ナトリウム、 精製水、 1 N塩酸、 精製水の順でチューブ内面を洗浄した。
泳動条件: 6kV、 55°C、 電極液は各々のゲル組成中のゲルと urea (尿素) を除く 成分からなる溶液を使用した。
分析サンプル: M13即 18 single strand DNA (Takara社)を錶型とし、 BigDyeTMPrimer (PE Applied Biosystems 社) Kitを用いて Cycle sequencing 反応にて蛍光ラベ ルした DNA断片。 .
Aゲル: 6M Urea, 10% (v/v) forinamide, 10% (v/v) methanol, 10% (v/v) Long Ranger ™, x 1.5 TBE Bゲル: 6M Urea, 20% methanol, 10¾ Long Ranger™, xl.5 TBE
Cゲル: 6M Urea, 20¾ formamide, 10% Long Ranger ™, xl.5 TBE
Dゲル: 6M Urea, 10¾ Long Ranger ™, xl.5 TBE
Eゲル: 6M Urea, 10¾ Long Ranger ™, xl TBE 表 2
各種ゲルと電極液を用いたキヤピラリー電気泳動装置での DN A塩基配列の読み 取り能力
ゲルの種類 電極液の種類 最長の塩基配列読み取り能力 (塩基数) 分離度 0.5の場合 分離度 0.25の場合
10¾ (v/v) formamide,
Aゲル 1(W (v/v) methanol and 635 810
xl.5 TBE
Aゲル xl.5 TBE 520 650
10¾ (v/v) formamide,
Dゲル 10 (v/v) methanol and 555 640
xl.5 TBE
Dゲル xl.5 TBE 545 625 塩基配列読み取り能力は、 一塩基長違う DNAフラグメント間の分離度が 0.5ま たは 0.25を示す塩基配列数で表示した。 用いたキヤピラリーチューブ:外径 360 ミクロン、内径 100ミクロンで全長 48cmの SGE社製のフューズドシリカキヤピ ラリー。 これにゲルを充填する前に 1 N水酸化ナトリウム、 精製水、 1 N塩酸、 精製水の順でチューブ内面を洗浄した。 泳動条件: 6kV、 55°C
分析サンプル: M13mpl8 single strand DNA (Takara社)を銬型とし、 BigDyeTMPrimer (PE Applied Biosystems 社) Kitを用いて Cycle sequencing 反応にて蛍光ラベ ルした DNA断片。
Aゲル: 6M Urea, 10% (v/v) formamide, 10% (v/v) methanol, 10¾ (v/v) Long Ranger™, XI.5 TBE
Dゲル: 6M Urea, 10% Long Ranger ™, xl.5 TBE 表 1には、 ゲル作製時に極性有機溶媒がどのような条件で存在すると、 ゲルの 塩基配列読み取り能力が改善されるかを比較したものである。 ホルムアミドとメ 夕ノ一ルを用いたこの実施例からわかるように、 極性有機溶媒は少なくとも 2種 類必要で、 単独では効果がなかった。 また、 調べた限りでは二つの有機溶媒の濃 度は各々 10%が最適であった。 この条件では、 場合によっては 900塩基以上が読 み取れることもあった。
表 2は、 ゲル作成時の極性有機溶媒の有無と、 電気泳動用の緩衝液中での極性 有機溶媒の有無とで、 ゲルの塩基配列読み取り能力がどのように影響を受けるか をみた結果である。 この表から明らかなように、 有機溶媒はゲル作成時にも、 電 気泳動中にも存在させることが最もよい結果を与えることが判明した。
(実施例 2 )
使用した支持部材
本発明の電気泳動用支持体の調製方法では、 支持部材として Moritex社製フユ ーズドシリカキヤビラリ一力ラムを用いた。 このキヤビラリ一力ラムは、 全長が 48cm, 入口から検出窓までの長さが 39.5〜40 cm、 外径が 300 m、 内径が 100 n πιであり、その内側表面がコーティング処理されていないものを 384本使用した。
洗 浄
洗浄は、 室温で 0.1M NaHC03 (pH9.0)、 純粋 (ミリ Q処理のもの)、 1M HCK 純 粋(ミリ Q処理のもの)の順に行った。また比較するために、室温で lMNa0H(pH13 〜14)、 純粋 (ミリ Q処理のもの)、 1M HC 純粋 (ミリ Q処理のもの) の順で従 来法による洗浄を行った。 また各溶液の洗浄時間は 3分間とした。
支持体 (ゲル) の作成及びカラムへの充填
洗浄した上記 384本のフューズドシリカキヤピラリーカラム内でゲルマ卜リッ クス (100ml) を作成した。
先ず、 ゲルマトリックスの作成にはアクリルアミド Zビス、 市販品のロングレ ンジャ一(米 FMC社製)又はページプラス(Amresco社製)のモノマ一溶液を利用し た。 重合前の溶液の組成は次のとおりであった。
1) 4% (アクリルアミド(ビスアクリルアミドによる架橋度 5 %)/7M尿素/ xlTBE緩衝液)
2) 4% (アクリルアミド(ビスアクリルアミドによる架橋度 5%) /10% (v/v) ホルムアミド /10% (v/v)メタノール / 7 M尿素/ xlT BE緩衝液)
3) 10% (v/v) (ページプラス(Amresco社製) /7M尿素/ xlTBE)
4) 10% (v/v) (ページプラス(Amresco社製)/ホルムアミド /10% (v/v)メタノ —ル /7M尿素/ xlTBE)
5) 10% (v/v) (ロングレンジャ一(米 FMC社製)/ 7M尿素/ xlTBE)
6) 10% (v/v) (ロングレンジャー(米 FMC 社製)/ホルムアミド /10% (v/v)メ タノ一ル /7M尿素/ xlTBE) 重合前の上記各組成の溶液に最終濃度が 0.06% (v/v)の TEMEDを添加し、 氷冷させながら 30分間脱気した。 続いて最終濃度が 0.05% (w/v) 過硫酸アンモ 二ゥムを加えてさらに 5分間脱気した。
重合反応を開始した時点で、 実施例 1と同様の方法で上記 384本のキヤビラリ 一力ラムにそれぞれのゲルを充填した後、 室温で静置した。
また、 上記ゲルの作成とは別に、 シークェンシング用標準サンプル (pGEM-3Zf (+))/21M13 フォワードプライマ一(forward primer)) 及び蛍光ラベル 剤(ビッグダイタ一ミネ一夕(B i gDye tenninator)Zサイクルシークェンシング及 び精製) を調製した。 ゲルを充填したキヤビラリ一力ラムを使用して、 印加電圧 4.8kV、 温度 50°Cで R I SAシーケンサ一 (島津製作所製) を用いてシーケンス (電気泳動) を行つ た。 なお、 その他の条件は実施例 1と同様である。
結 果
表 3 ノレひ fflfi¾ 洗浄用アルカリ溶液 アクリルアミド-ビス N aHC03 560 ァクリリレア ド 1 -ビ \ ~ ,ス N a OH 520 ァクリルアミド-ビス/ホルムアミド 7
N aHC〇3 830 メタノール ァクリルアミド-ビス/ホルムアミド 7
N aOH 750 メタノ ソレ , フ入 N aHC03 750 dリ Γ1 o ς fi υ n u ページプラス/ホルムアミド /
N aHC03 850 メタノール ページプラス/ホルムアミド /
N aOH 750 々y /―ノ Ϊしレ ロングレインジャー N aHC03 750
1 ンゲレイ 1 、、 ャー N a〇H 540 ロングレインジャ /ホルムアミド 7
N aHC03 1200 メタノール ロングレインジャー/ホルムアミド /
N aOH 1000 メタノール 注) 全てのゲルには 7 M尿素及び x 1TBEが含まれる
塩基数は分離度 0. 5のときの値である 表 3に示すように、 例えばページプラスのみからなるゲルの場合、 0, lM NaHC03 で洗浄したときは、 分離度 0. 5で 750の塩基配列数まで解読することができた。 これは R I S Aシーケンサーで解読可能な塩基配列の数とほぼ一致した。 これに 対し、 l M NaOHで洗浄したときは、 分離度 0. 5で 560の塩基配列数までしか解読 することができなかった。 このように、 重合前の溶液の組成が同一であるゲル同 士を比較すると、 いずれの種類のゲルであっても 0. 1M NaHC03で洗浄した場合の 方が 1 M NaOHで洗浄した場合よりも鎖長の長い塩基配列まで解読することができ た。
また、 同一の洗浄液で洗浄した場合に、 ホルムアミドとメタノールが含まれた ゲルとそれらが含まれていないゲルを比較すると、 いずれの種類のゲルであって もホルムアミドとメタノールが含まれた方が鎖長の長い塩基配列まで解読するこ とができた。
さらに、 0. 1M NaHC03又は 1 M NaOH のいずれで洗浄した場合であっても、 ホル ムアミドとメ夕ノールが含まれたゲルの方がそれらが含まれていないゲルよりも 鎖長の長い塩基配列まで解読することができた。
このことから、 ゲル中のホルムアミドとメタノールの存在による効果と、 洗浄 に 0. 1M NaHC03を用いる効果とは相乗的に作用することが分かった。
なお、 0. lM NaHC03で処理した場合、 キヤビラリ一カラム内にあるいずれの種類 のゲルにおいても気泡はみなれなかった。 また、 洗浄に 0. 1M NaHC03 (pH9. 0) を 使用した場合には、 1 M NaOHを使用した場合よりも取扱いなどの作業面で安全性 が増した。

Claims

請求の範囲
1 . 電気泳動用支持体を支持するための部材 (以下、 支持部材) の前記支持体 と接触することになる表面の少なくとも一部を洗浄し、 次いで前記支持体を 前記支持部材に支持させることを含む電気泳動用支持体の調製方法であって、 前記支持部材がケィ素を含有する材料からなり、 かつ前記洗浄の少なくとも 一部を、 弱塩基性溶液を用いて行うことを特徴とする前記方法。
2. 電気泳動用支持体は、 ゲル又は絡み合った高分子である請求項 1に記載の 方法。
3. 支持部材の形状は、 平板状、 カラム状 (中空円筒状)、 顆粒状、 繊維状の いずれか又はそれらの任意の組み合わせからなる形状である請求項 1又は 2に記載の方法。
4. 弱塩基性溶液は、 有機物溶液、 無機物溶液又はそれらの任意の組み合わせ である請求項 1〜 3のいずれか 1項に記載の方法。
5. 弱塩基性溶液は、 炭酸塩の水溶液である請求項 1〜 4のいずれか 1項に記 載の方法。
6. 二種類以上の極性有機溶媒の存在下でアクリルアミ ド又はその誘導体を 重合して得られるポリアクリルアミド系重合体からなる電気泳動用ゲル。
7 . アクリルアミ ド誘導体は、 N, Ν ' -ジメチルアクリルアミド又は N- (ヒド 口キシメチル)ァクリルアミドである請求項 6に記載のゲル。
8. 極性有機溶媒は、 ホルムアミド及びアルコール類を含む請求項 6又は 7に 記載のゲル。
9. アルコール類は、 メタノールである請求項 8に記載のゲル。
10. アクリルアミド又はその誘導体の重合の際に水溶性高分子をさらに共存さ せる請求項 6〜 9のいずれか 1項に記載のゲル。
1 1. 水溶性高分子は、 デキストラン、 ポリエチレングリコール又はセルロース 誘導体である請求項 10に記載のゲル。
12. キヤビラリーゲル又はスラブゲルである請求項 6〜1 1 のいずれか 1項に 記載のゲル。
13. 電気泳動用支持体が請求項 6〜1 2のいずれか 1項に記載のゲルである請求 項 1〜 5のいずれか 1項に記載の方法。
14. 請求項 1に記載の方法により調製した支持体を用いることを特徴とする電 気泳動方法。
15. 電気泳動により分離する物質は、 陽イオン性及び Z又は陰イオン性電荷を 1又は 2以上有する水溶性物質、 電荷を有しない中性物質、 又はこれらの任 意の混合物であり、 固体、 スラリー、 粉体又は液体の状態である請求項 14 に記載の方法。
】6. 電気泳動により分離する物質は、 核酸である請求項 15に記載の方法。
17. 請求項 6〜12のいずれか 1項に記載のゲル又は請求項 13に記載の方法に より調製したゲルを用いて極性有機溶媒存在下に核酸又は P N A断片を分 離する電気泳動法。
18. 電気泳動時に用いる極性有機溶媒は、 ホルムアミド及びアルコール類を含 む請求項 17に記載の方法。
19. 電気泳動時に用いるアルコール類は、 メタノールである請求項 18 に記載 の方法。
20. 核酸は、 D N A又は R N Aである請求項 1 6〜19 のいずれか 1項に記載の
Figure imgf000028_0001
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