WO1994024265A1 - Souche de micro-organisme du genre bacillus cereus et son utilisation - Google Patents

Souche de micro-organisme du genre bacillus cereus et son utilisation Download PDF

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WO1994024265A1
WO1994024265A1 PCT/FR1994/000408 FR9400408W WO9424265A1 WO 1994024265 A1 WO1994024265 A1 WO 1994024265A1 FR 9400408 W FR9400408 W FR 9400408W WO 9424265 A1 WO9424265 A1 WO 9424265A1
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saa
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microorganism
compounds
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David Perry
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Societe Alsacienne D'aluminium
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205—Bacterial isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01—Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales
    • C12R2001/07—Bacillus
    • C12R2001/085—Bacillus cereus

Definitions

  • the present invention relates to a new microorganism strain capable of degrading organic and / or inorganic compounds, in particular volatile organic compounds, hereinafter called C.O.V.
  • the subject of the present invention relates to a new strain of microorganism of the Bacillus cereus geme. hereinafter called strain SAA 1, as well as the mutants of this strain, obtained by culture of the strain SAA 1 in the presence of mutagenic agents such as, for example, sulfonates, NTG (N-methyl-N'-nitro -N-nitrosoguanidine), etc., or under the action of an energetic radiation (UV rays for example).
  • the invention also relates to the hybrids or clones derived from the strain
  • the SAA 1 strain was taken from the wild, in a specific environment, then selected for its ability to destroy C.O.V. It was deposited in the National Collection of Cultures of Micro-organisms (CNCM) on April 22, 1992 under the number 1-1205.
  • This extremely polymorphic strain successively presents on the same culture medium, such as a medium comprising glucose and yeast extract or a standard nutritive medium PCA (Plate Count Agar), the rod forms (Gram +), the filaments (Gram -), the elongated spores formed inside the rods or filaments, the spores developing in bundles of 4 to 6 spores in bundles, or in chains of unlimited length.
  • PCA Platinum Count Agar
  • the development of these forms depends on the environment, age and growing conditions. Due to the asynchronous development of these forms, the same culture can turn out to be Gram + and Gram - simultaneously.
  • the main intrinsic properties of this SAA 1 strain are as follows:
  • genomic characteristics of this strain were also determined: useful restriction profiles were obtained with the DNA of this strain cleaved with the endonucleases Bam ⁇ Î, Bgll, BglU, Clal, EcoRV, HindUl, Mlul, Pstl, Smal, Styl, Xbal and hybrid with the Escherichia coli 16 + 23S ribosomal RNA probe.
  • FIG. 1 gives the schematic representation of the restriction profiles of genes coding for the ribosomal RNAs of the SAA 1 strain, obtained after cleavage with these eleven endonucleases and hybridization with the 16 + 23 S rRNA of Escherichia coli.
  • FIG. 2 shows the profiles (ribotypes) of the DNA of the SAA 1 strain obtained after cleavage with the endonucleases Hind ⁇ l, Clal, Styl and hybridization with the 16 + 23 S RNA of Escherichia coli labeled with acetylaminofluorene and detected by an immuno-enzymatic reaction.
  • FIG. 3 shows the profiles (ribotypes) of the DNA of the SAA 1 strain obtained after cleavage with the endonucleases BamHl, Eco l, Mlul, Bgll, Pstl, BglVL, Xbal, Smal and hybridization with RNA 16 + 23 S of Escherichia coli labeled with radioactive phosphorus 32p.
  • the SAA 1 strain according to the invention makes it possible to degrade organic and / or inorganic compounds, in particular volatile organic compounds, such as: - alcohols, in particular ethanol and propanol;
  • VOCs which are usually used as solvents, such as for example aromatic solvents, nitrogenous solvents or halogenated solvents, as well as aldehydes, hydrocarbons, and refining residues.
  • the strain according to the invention can also be used for the treatment of smelly gases, such as sulfurous hydrogen or mercaptans.
  • VOCs present in various media water, air, soil, by directly introducing into these media the strain SAA 1 cultivated beforehand, or using various types of biological reactors.
  • These reactors can use the SAAl strain suspended in a liquid medium or else said strain which circulates freely or which is retained using a filter or a membrane in the reactor; or again, these reactors can be arranged to provide a solid support on which the SAA 1 strain is fixed, such as for example reactors of the fixed bed or fluidized bed type.
  • Any solid, mineral, organic or inorganic, natural or synthetic support may be suitable: in particular, ceramic materials, clays, rocks, sandstones or plastic materials may be used.
  • a refractory clay will be used, such as for example the light chamotte.
  • Example 1 degradation of VOCs present in water.
  • the strain SAA 1 was cultured for 24 hours on a culture medium containing glucose (30 g / 1) and yeast extract (10 g / 1).
  • the SAA 1 strain is cultivated in agitated liquid medium, in Erlenmeyer flasks (Table 3), and at higher scales in conventional fermenters (Table 4).
  • Table 3 Liquid medium and culture conditions in flask? Erlenmeyer
  • the SAA 1 strain was then placed in the presence of 1.10 or 100 g 1 of the test medium having the following composition: ethanol (ET) 4.0 ethyl acetate (AE) 3.5 methyl ethyl ketone (ME 2, 0 isopropanol (PI) 0.3 propanol ethoxide (EP) 0.2
  • the strain according to the invention cultivated under the conditions indicated in Table 3, and placed in the presence of the test medium, has the following characteristics:
  • Example 2 degradation of VOCs present in gaseous effluents.
  • the SAA 1 strain was cultivated for 24 hours on a culture medium identical to that described in Table 4. Then, the strain is seeded at a rate of 10% volume of inoculum / volume of test medium contained in a reactor liquid fed by a gaseous effluent (containing the mixture of VOCs from the test medium of Example 1) by simple bubbling through a sieve.
  • the performances of the SAA 1 strain are indicated in Table 5 below: ableau: elmances obtained with the SAA 1 strain
  • RI is a fluidized bed reactor containing 70 1 of water and 70 kg of light chamotte;
  • R2 is a multi-stage fluidized bed reactor containing 501 of water and 50 kg of light chamotte;
  • R3 is a circulating fluidized bed reactor containing 501 of water and 50 kg of light chamotte.
  • the reactors were supplied with gaseous effluents from two printing machines, by a system of valves and pumps making it possible to regulate the flow rate at the inlet to the reactor.
  • the reactors are fitted with probes for measuring temperature, pH, oxygen (concentration) and carbon dioxide (pressure) dissolved in the liquid phase inside the reactors.
  • the samples were taken from the liquid phase in order to analyze the concentrations of total and individual volatile organic compounds. All the measurements of concentrations of volatile organic compounds were carried out using a vapor phase chromatograph (CPV).
  • CPV vapor phase chromatograph
  • the process includes two successive steps:
  • the SAA 1 strain was cultivated under the conditions indicated in Example 1 (Table 4). The seeding is carried out so as to establish an initial concentration of the SAA 1 strain of 10 ⁇ cells / ml. It was found that the SAA 1 strain could be implanted in an environment pre-contaminated by all of the microorganisms present in the gaseous effluents.
  • VOCs are between 2.7 and 2.5 m / hour.
  • the productivity of CO 2 , witnessing an effective conversion, is highest in the reactor R3, where the concentration of C ⁇ at an average of 79.2% is high.
  • the concentration remains at a minimum in the reactors RI and R2, at 1.8 and 1.75 g / 1 respectively, which is reflected for all the VOCs taken individually;
  • the total VOC concentrations, in mg / m 3 of gaseous effluent / hour, are 34.8; 42.0 and 46.2 for reactors 1 to 3 respectively.
  • strain SAA 1 in industries which produce or use volatile organic compounds, for example printing works, but also water treatment plants or collective landfills and hydrocarbon installations (tanks and tanks, distillation columns, etc.).

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Abstract

La présente invention concerne une souche de micro-organisme du genre Bacillus cereus capable de dégrader des composés organiques et/ou inorganiques, notamment des composés organiques volatils. L'invention concerne également les mutants de cette souche possédant les mêmes propriétés.

Description

SOUCHE DE MICRO-ORGANISME DU GENRE BACILLUS CEREUS ET SON UTILISATION
La présente invention concerne une nouvelle souche de micro-organisme capable de dégrader des composés organiques et/ou inorganiques, notamment des composés organiques volatils, ci-après dénommés C.O.V.
La destruction des principaux polluants industriels, composés directement toxiques pour l'homme et l'environnement (solvants industriels, hydrocarbures, produits aromatiques) ou polluants impliqués dans les phénomènes géophysiques inquiétants, tels que le réchauffement de la terre (dioxyde de carbone, méthane) ou la formation de trou d'ozone dans la stratosphère (carbures halogènes, méthane, dioxyde de carbone, oxydes de soufre et d'azote), ainsi que des composés malodorants (mercaptans, produits soufrés, ammoniaque, scatols, indoles, etc) fait actuellement l'objet de nombreuses recherches. Les principales méthodes de destruction sont fonction des concentrations à traiter, de la nature des composés polluants présents, de leur état physico-chimique (effluents gazeux contenant des composés organiques volatils, effluents liquides, boueux ou solides). En ce qui concerne les effluents gazeux, la concentration et la nature des polluants (monocomposés, composés multiples) favorisent l'une ou l'autre solution. En ordre croissant de concentration, on emploie habituellement :
- le traitement biologique
- l'adsorption
- l'absorption
- l'incinération catalytique - l'incinération thermique
- la condensation.
Ainsi un procédé très utilisé est celui qui consiste à employer de la boue activée qui, en contact avec les effluents gazeux, favorise l'épuration des composés organiques volatils (C.O.V). On notera par exemple que les demandes de brevets EP-A-074 100, EP-A-186925, et le brevet US 4,723,968 décrivent des procédés de ce type. Il est également possible de mettre en contact des effluents gazeux avec des micro-organismes sélectionnés (on peut citer à ce sujet la demande de brevet européen EP-A-100024 ou bien le brevet US 4,894,162).
On a maintenant trouvé, de manière surprenante, qu'une nouvelle souche de micro-organisme sélectionnée permettait de dégrader de manière efficace de nombreux polluants organiques et inorganiques, seuls ou en combinaisons complexes, contenus dans des effluents gazeux, notamment des effluents gazeux industriels.
Ainsi, l'objet de la présente invention concerne une nouvelle souche de micro-organisme du geme Bacillus cereus. ci-après dénommée souche SAA 1, ainsi que les mutants de cette souche, obtenus par culture de la souche SAA 1 en présence d'agents mutagènes tels que, par exemple, les sulfonates, la NTG (N- méthyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine), etc., ou sous l'action d'un rayonnement énergétique (rayons UV par exemple). L'invention concerne également les hybrides ou clones issus de la souche
SAA 1.
La souche SAA 1 a été prélevée dans la nature, dans un environnement spécifique, puis sélectionnée pour son aptitude à la destruction des C.O.V. Elle a été déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (CNCM) le 22 avril 1992 sous le numéro 1-1205.
Cette souche, extrêmement polymorphe, présente successivement sur un même milieu de culture, tel qu'un milieu comprenant du glucose et de l'extrait de levure ou un milieu nutritif standard PCA (Plate Count Agar), les formes bâtonnets (Gram +), les filaments (Gram -), les spores allongées et formées à l'intérieur des bâtonnets ou des filaments, les spores se développant en paquets de 4 à 6 spores par paquets, ou en chaînes de longueur non-limitée. Le développement de ces formes dépend du milieu, de l'âge et des conditions de culture. Du fait du développement asynchrone de ces formes, une même culture peut se révéler Gram + et Gram - simultanément. Les principales propriétés intrinsèques de cette souche SAA 1 sont les suivantes :
* sa résistance face à de fortes concentrations de composés organiques volatils ;
* son pouvoir de métabolisation ; * sa capacité de s'implanter et de se maintenir en environnement complexe aussi bien très faiblement que fortement pollué ;
* sa survie dans un milieu fortement contaminé par d'autres micro- organismes et ce, dans des environnements extrêmes (absence d'aération, interruption de l'alimentation en effluents gazeux pollués). Ses caractéristiques taxonomiques, déterminées par l'Institut Pasteur à Paris (FRANCE) et par l'Université de Delft (HOLLANDE), sont indiquées respectivement dans les tableaux 1 et 2 ci-dessous :
Tableau 1 : Caracterisation métabolique de la souche SAA 1 effectuée ar l'Institut Pasteur
Figure imgf000005_0001
Tableau 1 (suite)
Figure imgf000006_0001
Tableau 1 (suite)
1 -O-Methyl-a-galactoside
1 -O-Methyl-B-galactoside
3-O-Methyl-D-glucose
1-O-Methyl-B-D-glucoside
1-O-Methyl-B-D-glucoside
Mucate
Palatinose
Phenylacetate
3-Phenylpropionate
L-Proline
Propionate
Protocatechuate
Putrescine
Quinate
D-Raffinose
L-Rhamnose
D-Ribose
D-Saccharate
L-Serine
D-Sorbitol
L-Sorbose
Succinate
Sucrose
D-Tagatose
D-Tartrate
L-Tartrate meso-Tartrate
D-Trehalose
Tricarballylate
Trigonelline
Tryptamine
Tryptophane (orange)
D-Turanose
L-Tyrosine
Figure imgf000008_0001
Symboles : x, croissance en 3-4 jours ; -, pas de croissance
Tableau 2 : Caracterisation métabolique de la souche SAAl effectuée par l'Université de Delft
Figure imgf000008_0002
Figure imgf000009_0001
Symboles +, forte réponse en 1 à 2 jours ; +-, faible réponse en 1 à 2 jours ; -, absence de réponse en 1 à 2 jours.
Les caractéristiques génomiques de cette souche ont également été déterminées : des profils de restrictions utiles ont été obtenus avec l'ADN de cette souche clivé avec les endonucléases BamΗÎ, Bgll, BglU, Clal, EcoRV, HindUl, Mlul, Pstl, Smal, Styl,Xbal et hybride avec la sonde d'ARN ribosomal 16+23S de Escherichia coli.
La figure 1 donne la représentation schématique des profils de restriction de gènes codant pour les ARN ribosomaux de la souche SAA 1, obtenus après clivage avec ces onze endonucléases et hybridation avec l'ARNr 16 + 23 S de Escherichia coli. La figure 2 montre les profils (ribotypes) de l'ADN de la souche SAA 1 obtenus après clivage avec les endonucléases Hindϋl, Clal, Styl et hybridation avec l'ARN 16 + 23 S de Escherichia coli marqué à l'acétylaminofluorène et détecté par une réaction immuno-enzymatique.
La figure 3 montre les profils (ribotypes) de l'ADN de la souche SAA 1 obtenus après clivage avec les endonucléases BamHl, Eco l, Mlul, Bgll, Pstl, BglVL,Xbal, Smal et hybridation avec l'ARN 16 + 23 S de Escherichia coli marqué par du phosphore radioactif 32p.
La souche SAA 1 selon l'invention permet de dégrader des composés organiques et/ou inorganiques, en particulier des composés organiques volatils, tels que : - les alcools, notamment l'éthanol et le propanol ;
- les cétones, notamment la méthyléthylcétone et l'acétone ;
- les éthers, notamment l'éthoxyde de propanol ;
- les acétates, notamment l'acétate d'éthyle ; On peut aussi utiliser la souche SAA 1 pour dégrader les COV qui sont habituellement utilisés comme solvants, tels que par exemple les solvants aromatiques, les solvants azotés ou les solvants halogènes, ainsi que les aldéhydes, les hydrocarbures, et les résidus de raffinage.
La souche selon l'invention peut également être utilisée pour le traitement des gaz malodorants, tels que l'hydrogène sulfureux ou les mercaptans.
Il est donc possible de dégrader des COV présents dans divers milieux : eau, air, sols, en introduisant directement dans ces milieux la souche SAA 1 cultivée au préalable, ou à l'aide de divers types de réacteurs biologiques. Ces réacteurs peuvent mettre en oeuvre la souche SAAl suspendue dans un milieu liquide ou bien ladite souche qui circule librement ou qui est retenue à l'aide d'un filtre ou d'une membrane dans le réacteur ; ou encore, ces réacteurs peuvent être agencés pour fournir un support solide sur laquelle la souche SAA 1 se fixe, comme par exemple les réacteurs de type lit fixe ou lit fluidisé. Tout support solide, minéral, organique ou inorganique, naturel ou synthétique, peut convenir : on peut utiliser notamment des matériaux céramiques, des argiles, des roches, des grès ou des matériaux plastiques. De préférence, on utilisera une argile réfractaire, telle que par exemple la chamotte légère.
Les exemples qui suivent illustrent l'invention sans toutefois en limiter la portée : Exemple 1: dégradation des COV présents dans de l'eau.
La souche SAA la été cultivée pendant 24 heures sur un milieu de culture contenant du glucose (30 g/1) et de l'extrait de levure (10 g/1).
Aux échelles égales ou inférieures à 1 1, la souche SAA 1 est cultivée en milieu liquide agité, dans des fioles d'Erlenmeyer (Tableau 3), et aux échelles supérieures dans des fermenteurs classiques (Tableau 4). Une courbe de croissance typique, représentée sur la Figure 4, sur laquelle on a porté en abscisse le temps de culture et en ordonnée le nombre de cellules, obtenue en feπnenteur de 20 1, illustre l'évolution de la culture. Tableau 3 : Milieu liquide et conditions de culture en fiole? Erlenmeyer
Figure imgf000011_0001
Tableau 4 Milieu liquide et conditions de culture en fermenteur
Figure imgf000011_0002
La souche SAA 1 a ensuite été mise en présence de 1,10 ou 100 g 1 du milieu d'essai ayant la composition suivante : éthanol (ET) 4,0 acétate d'éthyle (AE) 3,5 méthyléthylcétone (ME 2,0 isopropanol (IP) 0,3 éthoxyde de propanol (EP) 0,2
Total (T) (1, 10 et 100 g/1)
La souche selon l'invention, cultivée dans les conditons indiquées dans le Tableau 3, et mise en présence du milieu d'essai, présente les caractéristiques suivantes :
- efficacité* 38 %
- productivité 10,2 g/l/h
- spécificité dégrade ET, AE, IP, MEC et EP
- biomasse produite 2 g/1 milieu à pH = 6
* l'efficacité correspond au pourcentage de dégradation (COV totaux) au cours de l'essai.
La dégradation des COV par la souche SAA 1, cultivée dans les conditions indiquées dans le Tableau 4 , à partir d'une concentration du milieu d'essai de 10 g/1 et 100 g/1 est illustrée respectivement par les Figures 5 et 6, qui représentent l'évolution de la concentration des COV du milieu d'essai en fonction du temps.
Exemple 2 : dégradation des COV présents dans des effluents gazeux.
La souche SAA 1 a été cultivée pendant 24 heures sur un milieu de culture identique à celui décrit dans le Tableau 4. Ensuite, la souche est ensemencée à raison de 10 % volume d'inoculum/volume de milieu d'essai contenu dans un réacteur liquide alimenté par un effluent gazeux (contenant le mélange de COV du milieu d'essai de l'exemple 1) par simple bullage à travers un tamis. Les performances de la souche SAA 1 sont indiquées dans le Tableau 5 ci-après : ableau : ormances obtenues avec la souche SAA 1
Figure imgf000012_0001
La faible quantité de biomasse produite (3,9 exprimée en log cel/ml) pour une efficacité supérieure à 98 % met en évidence les propriétés avantageuses de la souche SAA 1 pour dégrader les COV.
Exemple 3 : Utilisation de la souche SAA 1 dans différents types de réacteurs
On a testé la capacité de la souche SAA 1 à dégrader des COV présents dans les effluents gazeux de machines imprimeuses en injectant ces effluents gazeux dans différents types de réacteurs contenant un support solide, tel que la chamotte légère, sur lequel on dépose la souche SAA 1 pour former un lit bactérien :
- le réacteur 1 (RI) est un réacteur à lit fluidisé contenant 70 1 d'eau et 70 kg de chamotte légère ;
- le réacteur 2 (R2) est un réacteur à lit fluidisé multi-étages contenant 501 d'eau et 50 kg de chamotte légère ;
- le réacteur 3 (R3) est un réacteur à lit fluidisé circulant contenant 501 d'eau et 50 kg de chamotte légère.
Ce type de réacteurs et leur technique de mise en oeuvre sont classiques et bien connus de l'homme du métier. La chamotte légère utilisée dans le cas présent a les caractéristiques physiques et chimiques résumées dans le Tableau 6 ci-après :
Tableau 6 Caractéristiques physiques et chimiques de la chamotte légère
Figure imgf000013_0001
Figure imgf000014_0001
Les réacteurs ont été alimentés avec des effluents gazeux provenant de deux machines imprimeuses, par un système de vannes et de pompes permettant de régler le débit à l'entrée du réacteur. Les réacteurs sont équipés de sondes de mesure de la température, du pH, de l'oxygène (concentration) et du gaz carbonique (pression) dissous dans la phase liquide à l'intérieur des réacteurs. Les prélèvements ont été effectués sur la phase liquide afin d'analyser les concentrations en composés organiques volatils totales et individuelles. Toutes les mesures de concentrations en composés organiques volatils ont été réalisées à l'aide d'un chromatographe en phase vapeur (CPV).
Le procédé comprend deux étapes successives :
- l'ensemencement du réacteur avec la souche SAA 1; et
- l'alimentation du réacteur avec les effluents gazeux provenant des machines imprimeuses.
La souche SAA 1 a été cultivée dans les conditions indiquées à l'exemple 1 (Tableau 4). L'ensemencement est effectué de manière à établir une concentration initiale de la souche SAA 1 de 10^ cellules/ml. On a constaté que la souche SAA 1 pouvait s'implanter dans un environnement pré-contaminé par l'ensemble des micro-organismes présents dans les effluents gazeux.
Le suivi analytique et microbiologique a été réalisé afin d'évaluer :
- l'efficacité de la souche SAAl, par analyse de la différence entre la concentration des composés organiques volatils à l'entrée et à la sortie du réacteur ;
- la productivité de la souche SAAl (en mg de composés organiques volatils dégradés/m3 de lit du réacteur/h)
- la formation de biomasse et le devenir de la souche SAA 1. L'ensemble des caractéristiques opérationnelles des différents réacteurs sont rassemblées dans le Tableau 7 :
Tableau 7 : Caractéristiques opérationnelles des réacteurs
Figure imgf000015_0001
Figure imgf000016_0001
La production d'acide et les fluctuations mises en évidence par le suivi du pH sont les plus faibles dans les réacteurs 1 et 2, avec une moyenne de pH de 5,8 et 5,5 respectivement. L'échange énergétique à l'intérieur de ces deux réacteurs est également légèrement supérieur, puisque la température maximum rencontrée est de 29,0 et 29,6 *C respectivement, par rapport à 27,4 *C dans le réacteur 3. Les débits moyens d'alimentation en effluents gazeux contenant des
COV se situent entre 2,7 et 2,5 m /heure. La productivité en CO2, témoin d'une conversion efficace, est la plus élevée dans le réacteur R3, où la concentration d'C^ à une moyenne de 79,2 % est importante.
Le bilan du traitement donne les éléments ci-dessous, rassemblés dans le Tableau 8 :
* concentration à l'entrée des réacteurs : 1 186 mg de COV total/m3 d'effluents gazeux/heure acétate d'éthyle : 1 110 mg/m3, éthoxyde de propanol : 67,8 mg/m3, méthyléthylcétone : 6,5 mg/m3, éthanol : 2,1 mg/m3, isopropanol : 0,3 mg/m3.
* dans le milieu liquide à l'intérieur des réacteurs, la concentration reste au minimum dans les réacteurs RI et R2, à 1,8 et 1,75 g/1 respectivement, ce qui est reflété pour tous les COV pris individuellement ;
* à la sortie des réacteurs, les concentrations en COV total, en mg/m3 d'effluent gazeux/heure, sont de 34,8; 42,0 et 46,2 pour les réacteurs 1 à 3 respectivement.
La majorité des COV à la sortie des réacteurs sont l'acétate d'éthyle (23,3 / 30,0 / 33,6 mg/m3 pour les réacteurs RI à R3 respectivement) et l'éthoxyde de propanol (11,2 / 11,1 / 12,0 mg/m3 respectivement). Tableau 8 : Bilan des réacteurs (valeurs moyennes)
Figure imgf000017_0001
Pour ce qui concerne la performance générale des réacteurs (Tableau 9), l'efficacité est de 97,0 %, 96,3 % et 95,9 % respectivement pour les réacteurs RI à R3. La biomasse moyenne rencontrée dans les réacteurs est de 10^ cellules SAA 1, ce qui correspond à une biomasse totale inférieure à 4 g par litre de milieu. Tableau 9 Performance générale des réacteurs
Figure imgf000018_0001
Ces résultats montrent que la souche SAA 1 peut être utilisée avec une grande efficacité dans divers types de réacteurs pour dégrader des COV présents dans des effluents gazeux, avec une concentration en COV à la sortie de ces réacteurs inférieure à 50 mg/m3, soit un niveau bien inférieur à la valeur limite fixée par la législation européenne (150 mg/m3).
Il est donc possible d'utiliser la souche SAA 1 selon l'invention dans les industries qui produisent ou mettent en oeuvre des composés organiques volatils, par exemple les imprimeries, mais aussi les stations d'épuration d'eau ou encore les décharges collectives et installations d'hydrocarbures (cuves et réservoir, colonnes de distillation, etc.).

Claims

REVENDICATIONS
1. Micro-organisme du genre Bacillus cereus. déposé à la CNCM sous le numéro 1-1205 et ses mutants capables de dégrader les composés organiques et/ou inorganiques.
2. Utilisation du micro-organisme selon la revendication 1 pour dégrader des composés organiques et/ou inorganiques.
3. Utilisation selon la revendication 2, caractérisée en ce que les composés organiques sont des composés organiques volatils.
4. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que les composés organiques volatils sont choisis parmi l'ethanol, l'acétate d'éthyle, la méthyléthylcétone, l'acétone, l'isopropanol ou l'éthoxyde de propanol.
PCT/FR1994/000408 1993-04-13 1994-04-13 Souche de micro-organisme du genre bacillus cereus et son utilisation WO1994024265A1 (fr)

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