WO1990015137A1 - Enzymes immobilisees sur membranes composites microporeuses, supports actives ainsi prepares, et leurs utilisations - Google Patents

Enzymes immobilisees sur membranes composites microporeuses, supports actives ainsi prepares, et leurs utilisations Download PDF

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WO1990015137A1
WO1990015137A1 PCT/BE1989/000025 BE8900025W WO9015137A1 WO 1990015137 A1 WO1990015137 A1 WO 1990015137A1 BE 8900025 W BE8900025 W BE 8900025W WO 9015137 A1 WO9015137 A1 WO 9015137A1
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membrane
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activated support
activated
binder
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Application number
PCT/BE1989/000025
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Inventor
Léa Tirtiaux
Line Paridans
Jean-Paul Prieels
Original Assignee
Synfina-Oleofina S.A.
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/18—Multi-enzyme systems
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/14—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an inorganic carrier

Definitions

  • the present invention relates to supports activated by adsorption of enzymes on microporous composite supports in organic binder charged with metal oxide, and the applications of these activated supports, in particular in reactors with immobilized enzyme. More specifically, it relates to the immobilization of lipases on composite membranes of this type, and the uses of these activated membranes for hydrolysis or the synthesis of esters.
  • Enzymes are biochemical catalysts that have significant advantages. Thus, for the hydrolysis of triglycerides, conventional methods require sometimes high temperatures and pressures (up to 250 ° C. and 5.5 MPa respectively), while the introduction of a lipase makes it possible to work at atmospheric pressure. and at a more moderate temperature ( ⁇ 100 ° C). In addition, the use of certain enzymes makes it possible to carry out specific reactions.
  • the membrane reactor with compartmentalized phases of YAMANE transforms 0.026 moles of triglyceride per m ⁇ of membrane and per hour with a half-life of lipase (MEITO SANGYO / lipase OF) of 15 days at 40 ° C (MM HOQ et al., J. Amer. Oil Che. Soc, 2, 1016, 1985).
  • the membrane reactor of VAN 't RIET (.PRONK et al. Biotech. And Bioeng., J32, 512, 1988) allows the hydrolysis of 0.0043 moles of soy triglyceride per m ⁇ of membrane and per hour with a half-life of lipase (MEITO SANGYO / lipase OF) of 43 days at 30 "C and 4 days at 40 ° CJ KL00STERMAN et al. (Fat Sci. Technol. 89 592, 1987) evaluated the operational cost of a membrane reactor for the hydrolysis of soybean oil.
  • a rate reusability (as defined below) of the 50 mole triglyceride enzyme
  • An object of the invention is to provide new activated supports usable in enzymatically catalyzed reactions.
  • Another object of the invention relates to a new use of microporous supports composed of organic binder loaded with titanium oxide, zirconium, hafnium and thorium.
  • a further object of the invention is to provide an improved method for immobilizing enzymes.
  • the activated supports are prepared by adsorption of at least one enzyme on composite microporous supports in organic binder with oxide charge chosen from the group comprising the oxides of titanium, zirconium, hafnium, thorium and their mixtures, the binder being insoluble in all the media in which it is intended to be placed, and the binder: oxide weight ratio being between 3: 1 and 1:20.
  • the supports used must be microporous supports. This type of support is well known, because microporous membranes are used for microfiltration, ultrafiltration or hyperfiltration (depending on the size of the pores).
  • the enzymes can be immobilized on microporous supports having a generally arbitrary shape, for example in the form of grains, beads, strips, tubes, hollow fibers, spirals, it is often preferred to use membranes.
  • the use of activated supports having a different shape is well known to those skilled in the art. Also, in order to simplify the presentation, the supports will be described below in the physical form of membranes.
  • micro- or ultrafiltration membranes As a support for the preparation of activated supports according to the invention, it is preferred to use micro- or ultrafiltration membranes. These membranes generally have pores of about 10 " ⁇ to 10 ⁇ 5 m, preferably 10"? at 10 " ⁇ m. In filtration, the pore size is often characterized according to the molecular weight of the smallest dextran molecules, 90% of which are retained by the microporous membrane, also called the dextran cutoff threshold. This value is usually understood between 2.10 5 and 2.10 6 .
  • the membranes intended to be used in the process of the invention comprise an organic binder.
  • This binder must meet a certain number of conditions, in particular those required by the process for using activated membranes (usually “activated membrane” means the membrane on which an enzyme has been immobilized).
  • the binder must be insoluble in water (medium for the use of enzymes) and resist the conditions (pH, temperature, etc.) of activation, use and regeneration, these being a function of the enzyme.
  • the binder must resist the substrates, products and solvents present during the implementation of the activated membranes.
  • a hydrophobic binder for example poly (tetrafluoroethylene) or PTFE, poly (vinyl chloride), polyethylene, polypropylene, copolymers of ethylene and chlorotrifluoroethylene, poly (vinylidene fluoride) or PVdF, and the polysulfones, the preferred polymers being PVdF, PTFE and the polysulfones, in particular the polysulfones which can be obtained by nucleophilic substitution reaction between the disodium salt of bisphenol A and the sulfone of 4 , 4-dichlorodiphenyl.
  • a hydrophobic binder for example poly (tetrafluoroethylene) or PTFE, poly (vinyl chloride), polyethylene, polypropylene, copolymers of ethylene and chlorotrifluoroethylene, poly (vinylidene fluoride) or PVdF, and the polysulfones, the preferred polymers being PVdF, PTFE and the polysulf
  • the membranes used also comprise an oxide chosen from the group comprising the oxides of titanium, zirconium, hafnium, thorium and their mixtures; preferably Zr ⁇ 2 or Ti ⁇ 2, or their equivalents ZrO (OH) 2.nH2 ⁇ or Ti0 (0H) 2.nH2 ⁇ , are used.
  • the particle size of the oxide is usually less than 10 " ⁇ m, most often less than 10 " ⁇ m ; one can, for example, use sieved powder to prepare the membranes, or provide for a grinding step during this preparation.
  • the weight ratio of the binder to the oxide in the microporous composite membrane can vary within wide limits and in particular from 3: 1 to 1:20, preferably from 1: 2 to 1: 5, the most preferred ratios being understood
  • microporous membranes are well known.
  • One of the preferred processes is described in patent application EP-241995-A: a metal oxide suspension is produced in a solution of the binder, then the solvent is removed, the boiling temperature of which determines the size of the pores; the use of this process implies that it is possible to dissolve the binder in an appropriate solvent.
  • Another preferred method, which does not use a binder solvent is described in patent application EP-234619-A: binder powders, a metal oxide and a pore-forming substance are dry mixed, before to remove the latter; this process is particularly suitable for sparingly soluble polymers such as PTFE, provided that the metal oxide resists the conditions for removing the pore-forming substance.
  • the thickness, the total porosity of the microporous membranes and their permeability are not critical; membranes 0.1 to 0.5 mm thick are generally used, having a total porosity of at least 45%, usually around 65%, and a water flow of around 1 cm ⁇ / cm ⁇ .min for a relative pressure of 0.1 MPa.
  • the adsorption of the enzyme on the microporous composite membrane can be done in several modes: by filtration: the solution containing the enzyme is filtered through the membrane, then the latter is rinsed; by rehydration: the completely dried membrane is rehydrated in a solution of the enzyme, then rinsed; by immersion: the membrane is immersed in a solution of the weakly agitated enzyme, then rinsed.
  • the method by immersion, at room temperature and under the following preferred conditions: at least 1 g of enzyme per liter of solution, preferably at least 10 g / l; at least 30 minutes, preferably at least one hour of immersion.
  • a step for balancing the activated membrane by immersion in a large volume of water or by tangential or transmembrane passage of water, for at least 30 minutes, preferably at least an hour.
  • REPLACEMENT SHEET activated by adsorption of enzymes working fatty substances appears as a preferred application insofar as the microporous membrane can also be used to separate the immiscible phases.
  • the conditions of use of the activated membranes depend on the enzyme used, but also on the substrate (s) and on the method of implementation of the activated membranes.
  • the reaction conditions need only be such that the inactivation of the adsorbed enzyme is prevented or minimized; an optimum pH and an optimum temperature are usually used for the immobilized enzyme, the optimal conditions being those in which the best compromise between the activity of the adsorbed enzyme and its stability is observed. This temperature is usually between 10 and 60 ° C; if the enzyme is thermostable, a higher temperature will be used.
  • the pH can be adjusted by adding an appropriate buffer, acid or base.
  • an activator suitable for the enzymatic reaction it may prove useful to add to the reaction medium an activator suitable for the enzymatic reaction, and / or an acceptable surfactant (not inhibiting the activity of the enzyme).
  • an activator suitable for the enzymatic reaction, and / or an acceptable surfactant (not inhibiting the activity of the enzyme).
  • an activator mention may be made of bile salts, and in particular sodium deoxycholate, which can be used as emulsifiers when the membranes are used with water / fat emulsions.
  • an activator mention may be made of calcium ions for enzymatic reactions catalyzed by certain lipases of the pancreatic type.
  • the composite membranes may be suitable for simultaneously immobilizing, if necessary, the cofactor of an enzymatic reaction.
  • cofactor is meant a non-protein molecule or an organic or inorganic ion which combines with variable affinities at the active site of an enzymatic reaction and which is essential for ensuring the conversion of the substrate into a product.
  • the cofactor can be immobilized, if necessary, by adsorption but also by any other suitable technique such as immobilization by covalent bond or even during the preparation of the membrane.
  • the enzymatically catalyzed reaction can be carried out according to a continuous, semi-continuous or discontinuous process (in batches), bringing the substrate (s) into contact with the immobilized enzyme.
  • any type of (bio) reactor can be used, for example fixed bed reactors, fluidized bed reactors,
  • REPLACEMENT SHEET batch reactors perfectly mixed continuous reactors, transmembrane reactors, whether in recycled mode or in continuous mode (with one or more stages), or tangential reactors.
  • the tangential reactors can be used with emulsions or preferably in compartmentalized phases (the two phases being separated by a composite microporous membrane activated according to the invention). In the latter case, a person skilled in the art knows that, if one of the faces of the membrane is more hydrophobic than the other, it is advisable to orient the membrane suitably according to the type of chemical reaction (hydrolysis or synthesis ) implemented.
  • the Applicant has found that it is preferable to apply the regeneration process to the composite membrane before the first immobilization of the enzyme, which makes it possible to improve the reproducibility of the results.
  • the regeneration conditions of the membranes depend on the enzyme, the organic binder, and the substrate.
  • hot regeneration in moderately concentrated solution of sodium carbonate makes it possible both to desorb the proteins and to dissolve the fatty materials by formation of soaps; treatment in an acid medium makes it possible to remove the excess carbonate before being immobilized again.
  • the Applicant has observed that the activity after regeneration is substantially identical after each regeneration.
  • the initial activity of a partially or totally deactivated membrane can be found without regenerating: thus, the Applicant has found that, surprisingly, when working with fatty substances, an in situ cleaning of the membrane by an appropriate solvent (in general hexane) can make it substantially return to its initial activity several times in succession, without detaching from the enzyme.
  • an appropriate solvent in general hexane
  • This suspension was poured onto a polyester sieve (type PE 73 HC; thickness: 0.075 mm, wire diameter: 0.040 mm, square mesh of 0.070 x 0.070 mm) placed on a glass plate, so as to form a layer of '' a wet thickness of approximately 0.35 mm.
  • the whole was soaked in a water bath at room temperature (about 20 ° C).
  • the membrane thus obtained had an average thickness of approximately 0.22 mm, a cut-off threshold (dextran) of approximately 10 ⁇ daltons and a specific surface of 17 m ⁇ / g.
  • the lipase dissolved in 10 g / l in demineralized water, was passed through an ultrasonic bath for 2 minutes. The insoluble residue was removed by centrifugation at 10,000 rpm for 10 minutes. The membrane was immersed for 60 minutes in the weakly stirred lipase solution at room temperature (about 20 ° C), then the membrane was rinsed before being soaked for one hour in a large volume of water
  • the aforementioned 4 cm ⁇ membrane was immersed in a large volume of 1M Na2C ⁇ 3, which was brought to 65 ° C for 30 minutes. The membrane was then rinsed with water, immersed for 30 minutes in a 1M HCl solution, rinsed again with water, and equilibrated by a stay of 30 minutes in a large volume of water at room temperature. Regeneration was continued by immobilization of lipase, as described above.
  • the activity was determined according to the method detailed above, and an activity corresponding to 10.50% H was observed; the regeneration-immobilization-expression cycle was repeated 10 times, and an average value of 9.65% H was observed with a ype deviation of 1.04% H.
  • Example 1 A second aliquot of the membrane prepared in Example 1 (a and b) was used to carry out the hydrolysis of soybean oil in a recycled transmembrane reactor.
  • a disc of activated membrane was deposited in a 4.7 cm diameter filter support (MILLIPORE, Swinnex type) so that its useful surface is 17.3 cm 2 per side.
  • 50 ml of an emulsion was prepared, comprising 60% by weight of soybean oil and 40% by weight of demineralized water, which was pumped at 23 ° C. through the membrane with a flow rate of 15 ml / h, by continuously recycling the emulsion.
  • REMP SHEET membrane was observed by titrimetric determination of the fatty acids released (according to the method described in example 1 c):
  • Example 2 was repeated with an activated membrane with an area equal to 125 cm ⁇ (per side). After 20 hours, the hydrolysis was complete (100% H). The substrate was renewed and the experiment repeated six times before observing a drop in activity during the eighth experiment. In situ cleaning of the membrane by passing hexane made it possible to recover 80% of the activity with a fresh substrate.
  • Example 2 A new aliquot of the activated membrane prepared in Example 1 (a + b) was used in a transmembrane reactor such as that described in Example 2.
  • An emulsion comprising 60% by weight was continuously passed through. soybean oil and 40% by weight of water, through the membrane, at a temperature of 23 ° C, with a flow rate of 5.5 ml / h and without recycling.
  • activity values greater than 20% H and on average equal to 26.8% H were observed, which corresponds to 0.52 mole of hydrolyzed soybean oil per hour and per ⁇ - of membrane .
  • Example 2 Three aliquots of the activated membrane prepared in Example 1 (a + b) were used in a transmembrane reactor comprising three stages in series such as that described in Example 2. An emulsion (oil soy / water in a weight ratio 60/40) successively through the three membranes, at a temperature of 23 ° C,
  • a 125 cm ⁇ piece of the activated membrane prepared in Example 1 (a + b) was placed in an ultrafiltration module support (Pléiade P2, RHONE-POULENC).
  • 70 ml of soybean oil in water (in a 60/40 weight ratio) were passed in tangential mode, along a single wall of the activated membrane, at a temperature of 23 ° C, at a flow rate of 15 ml / h and with continuous recirculation.
  • the conversion rate was:
  • a tangential reactor with compartmentalized phases was built, formed of two identical plexiglass parts placed on either side of the membrane, each comprising a distribution channel and a collection channel connected by a groove 2 mm deep, the drawing is suitable for creating turbulence at the level of the membrane.
  • the membrane used was a piece of activated membrane prepared according to Example 1 (a + b).
  • the membrane serves as a phase separator, a flat rubber seal of 1 mm thick ensuring sealing and a set of threaded rods and nuts holding everything together.
  • the useful surface of the membrane was 74 cm ⁇ .
  • Soybean oil was circulated in the upper compartment, on the most hydrophilic side of the membrane, with a flow rate of 1.6 ml / h and water in the lower compartment, in the same direction and with the same flow rate, all at a temperature of 37 ° C.
  • REPLACEMENT SHEET The conversion rate in a single pass was around 58% at the start of the experiment, and decreased according to a substantially linear curve, reaching around 29% after 90 days of work.
  • the conversion rate in this reactor was of the order of 0.003 to 0.0015 moles of hydrolyzed soybean oil per hour and per m ⁇ of membrane.
  • the "reusability" of the enzyme was greater than 15000 moles of soybean oil transformed per kg of enzyme.
  • Example 7 The experiment described in Example 7 was repeated, cleaning the membrane in situ with hexane after 50, 100 and 150 days of operation. After the reactor returned to service after the third cleaning, it was observed that the conversion rate in a single pass was still more than half the initial rate.
  • Example 7 The experiment described in Example 7 was repeated, connecting three identical reactors in series. During 80 days (1920 hours), 100% conversion was observed, which corresponds to approximately 0.0017 moles of hydrolyzed soybean oil per hour and per m ⁇ of membrane. After 150 days, an activity equivalent to 49% of the initial activity was observed.
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1a. b. Immobilization of lipase
  • lipase G This lipase is relatively specific for the hydrolysis and synthesis of monoglycerides.
  • a 131 cm 3 piece of the activated membrane was placed in an ultrafiltration support.
  • 90 ml of emulsion 60 ml of 99% glycerol, 27.5 ml of oleic acid, 2.5 ml of water
  • emulsion 60 ml of 99% glycerol, 27.5 ml of oleic acid, 2.5 ml of water
  • % S conversion rate or synthesis rate
  • Example 9 We took a second 131 cm ⁇ piece of the activated membrane prepared in Example 9, which was mounted in a tangential reactor with compartmentalized phases (identical to that described in Example 7).
  • Oleic acid was circulated in the upper compartment, on the most hydrophobic side of the membrane, with a flow rate of 1.7 ml / h, and 95% glycerol in the lower compartment, co-current and with the same flow rate, all at a temperature of 37 ° C.
  • the average synthesis rate over a 7-day period was 11%.
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1 (a). b. Immobilization of amyloglucosidase
  • Rhizopus amyloglucosidase marketed by SIGMA under the reference A-7255. Amyloglucosidase was put in 10 g / 1 solution
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1 (a). b. Immobilization of glucose oxidase
  • the glucose oxidase was dissolved in 1 g / l (or 58,000 international units per liter). The membrane was immersed for 30 minutes in the weakly agitated glucose oxidase solution at room temperature (approximately 20 ° C.), then the membrane was rinsed before being immersed for one hour in a large volume of slightly agitated water and at ambient temperature. vs. Expression of activity
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1 (a). b. Immobilization of lactoperoxidase
  • lactoperoxidase at 900 ABTS units per mg, obtained from cow's milk, marketed by SYNFINA-OLEOFINA S.A.
  • the lactoperoxidase was dissolved in 1 g / l.
  • the membrane was immersed for 30 minutes in the weakly stirred lactoperoxidase solution at room temperature (about 20 ° C), then the membrane was rinsed before being soaked for one hour in a large volume of weakly stirred water and at ambient temperature. vs. Expression of activity
  • the solution was thermostated at 37 ° C and a 4 cm 3 aliquot of activated membrane was immersed therein.
  • the optical density of the solution measured at 412 nm, was 0.52 after one minute, 0.92 after two minutes and 1.32 after three minutes.
  • the experiment was repeated ten consecutive times, washing the membrane thoroughly with water after each experiment.
  • the average increase in the optical density of the solution was 0.41 with a standard deviation of 0.05, which corresponds to an enzymatic activity of 410 ABTS units.
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1 (a). b. Co-immobilization of two enzymes
  • the membrane was immersed for 30 minutes in a weakly stirred solution at room temperature containing, per liter, 0.5 g of the glucose oxidase described in example 13 and 5 g of the lactoperoxidase described in example 14. then rinsed the membrane before soaking it for one hour in a large volume of lightly stirred water at room temperature. vs. Expression of activity
  • a membrane was prepared according to the procedure of Example 1 (a), using the following proportions:
  • the membrane thus obtained had a thickness of approximately 0.4 mm, and a cutoff threshold (dextran) of approximately 10> daltons. b.
  • Example 17 The OF lipase was immobilized on the membrane according to the procedure of Example 1 (b), and the activity of the activated membrane was expressed as described in Example 1 (c). An activity of 3.5% H was observed. vs. Example 17
  • the lipase G was immobilized on the membrane according to the procedure of Example 10 (b).
  • a 4 cm aliquot of the activated membrane was introduced into a 25 ml Erlenmeyer flask containing 7.5 ml of 99% glycerol, 2.5 ml of oleic acid and 0.7 ml of water. The whole was incubated, with vigorous stirring, for 2 hours in a terostatized water bath at 37 ° C., then centrifuged at 7000 rpm for 5 minutes. An aliquot of the upper phase was taken and introduced into 20 ml of neutralized denatured ethyl alcohol. This alcoholic solution was titrated using 0.1 N NaOH in the presence of phenolphthalein. A synthesis activity of 5.2% S was observed.
  • REPLACEMENT SHEET membrane by a variation of the binder / metal oxide ratio, one can influence the activity of the activated membrane in enzymatic reactions where water is a substrate or a product.
  • Example 1 The procedure of Example 1 was repeated (a, b and c), replacing the zirconium dioxide with an equivalent weight (in terms of zirconium) of oxide Zr0 (0H) 2.xH2 ⁇ .
  • This mixture was compressed under a pressure of 20 kg / cm 2 to obtain a cake 4 mm thick.
  • This wafer was calendered by successive passages between two rollers, the rollers being brought closer to 0.1 mm and the wafer rotated by 90 ° after each pass, until a wafer of approximately 0.5 mm in thickness was obtained.
  • the cake was brought to an oven at 300 ° C for 4 hours, then boiled in a 1N HCl aqueous solution before rinsing. A membrane with a porosity of 45% was obtained.
  • the OF lipase was immobilized on the membrane thus prepared, according to the procedure of Example 1 (b).
  • the activity of ten aliquots of 4 c ⁇ .2 of activated membrane was determined, following the method described in Example 1 (c). The average activity was 16.7% H with a standard deviation of 0.95% H.
  • the viscous liquid obtained was poured onto a glass plate, which was placed in an oven at 90 ° C until the edges partially dried (evidenced by a change in color, from gray to white). The glass plate was then soaked in water at about 1 ° C and then under a stream of water, and the membrane was detached. b. Immobilization of lipase

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Abstract

Les supports microporeux composites en liant organique à charge d'oxyde métallique peuvent servir à l'immobilisation d'enzymes par adsorption. Les enzymes ainsi immobilisées peuvent avantageusement être utilisées dans des réacteurs à enzyme immobilisée. En particulier, on décrit l'immobilisation de lipases sur des membranes composites de ce type, et leurs utilisations pour l'hydrolyse ou la synthèse d'esters.

Description

ENZYMES IMMOBILISEES SUR MEMBRANES COMPOSITES MICROPOREUSES. SUPPORTS ACTIVES AINSI PREPARES. ET LEURS UTILISATIONS
La présente invention concerne des supports activés par adsorption d'enzymes sur des supports composites microporeux en liant organique à charge d'oxyde métallique, et les applications de ces supports activés, en particulier dans des réacteurs à enzyme immobilisée. Plus spécialement, elle concerne l'immobilisation de lipases sur des membranes composites de ce type, et les utilisations de ces membranes activées pour l'hydrolyse ou la synthèse d'esters.
Les enzymes sont des catalyseurs biochimiques qui présentent des avantages importants. Ainsi, pour l'hydrolyse des triglycérides, les procédés classiques nécessitent des températures et des pressions parfois élevées (jusqu'à 250°C et 5,5 MPa respectivement), alors que l'introduction d'une lipase permet de travailler à pression atmosphérique et à température plus modérée (< 100°C) . De plus, l'utilisation de certaines enzymes permet de réaliser des réactions spécifiques.
Toutefois, vu les quantités importantes d'enzymes à mettre en oeuvre et leur prix qui reste élevé, il s'avère le plus souvent indispensable d'immobiliser les enzymes. Cependant, l'immobilisation provoque fréquemment une désactivation partielle de l'enzyme; de plus, l'accessibilité du site catalytique de l'enzyme peut parfois être réduite suite à l'immobilisation. Ainsi, l'hydrolyse d'huile de soja, le réacteur à membranes à phases compartimentées de YAMANE transforme 0,026 moles de triglycéride par m^ de membrane et par heure avec une demi-vie de la lipase (MEITO SANGYO/lipase OF) de 15 jours à 40°C (M.M. HOQ et al., J. Amer. Oil Che . Soc, 2, 1016, 1985). Le réacteur à membranes de VAN 't RIET ( .PRONK et al. Biotech. and Bioeng. , J32, 512, 1988) permet l'hydrolyse de 0,0043 moles de triglycéride de soja par m^ de membrane et par heure avec une demi-vie de la lipase (MEITO SANGYO/lipase OF) de 43 jours à 30"C et de 4 jours à 40°C. J. KL00STERMAN et al. (Fat Sci. Technol. 89 592, 1987) ont évalué le coût opérationnel d'un réacteur à membrane pour l'hydrolyse de l'huile de soja. Par extrapolation des meilleurs résultats expérimentaux, sur base d'un taux de transformation de 0,05 mole de triglycéride par nfi- de membrane et par heure, d'un taux de réutilisabilité (telle que définie ci-après) de l'enzyme de 50 moles de triglycéride
FEUILLE DE REMPLACEMENT transformées par kg enzyme et des paramètres opérationnels les plus plausibles, ils ont évalué le coût de l'enzyme comme étant égal à 76% du coût total de l'opération d'hydrolyse transposée à l'échelle industrielle.
D'autres applications sont connues, comme par exemple les synthèses d'esters d'acides gras décrites dans la demande de brevet EP-195311-A.
On a déjà proposé d'utiliser des membranes composites de silice dans du poly(chlorure de vinyle) , mais il faut dans ce cas fixer l'enzyme par une liaison covalente pour que l'enzyme reste immobilisée sur la membrane.
Il existe donc un besoin pour des supports activés par immobilisation d'enzymes qui permettent d'obtenir des activités et des stabilités catalytiques suffisamment élevées, en termes de quantité d'enzyme mise en oeuvre par rapport à la quantité de substrat transformé (ce que l'on nomme la "réutilisabilité" de l'enzyme).
Un objet de l'invention est de fournir de nouveaux supports activés utilisables dans des réactions catalysées enzymatiquemen .
Un autre objet de l'invention concerne une nouvelle utilisation de supports microporeux composites de liant organique à charge d'oxyde de titane, de zirconium, de hafnium et de thorium.
Un objet supplémentaire de l'invention est de fournir un procédé amélioré afin d'immobiliser des enzymes.
D'autres objets de l'invention se rapportent aux utilisations de ces supports activés.
Selon l'invention, les supports activés sont préparés par adsorption d'au moins une enzyme sur des supports microporeux composites en liant organique à charge d'oxyde choisi dans le groupe comprenant les oxydes de titane, zirconium, hafnium, thorium et leurs mélanges, le liant étant insoluble dans tous les milieux dans lesquels il est destiné à être placé, et le rapport en poids liant : oxyde étant compris entre 3:1 et 1:20.
Les supports utilisés doivent être des supports microporeux. Ce type de support est bien connu, car les membranes microporeuses sont utilisées pour la microfiltration, l'ultrafiltration ou l'hyperfiltration (selon la taille des pores). Bien que les enzymes puissent être immobilisées sur des supports microporeux ayant une forme généralement quelconque, par exemple sous la forme de grains, billes, lanières, tubes, fibres creuses, spirales, on préfère souvent utiliser des membranes. Toutefois, la mise en oeuvre de supports activés ayant une forme différente est bien connue de l'homme de l'art. Aussi, dans le but de simplifier l'exposé, les supports seront décrits ci-après sous la forme physique de membranes.
FEUILLE DE REMPLACEMENT Comme support pour la préparation des supports activés selon l'invention, on préfère utiliser des membranes de micro - ou d'ultrafiltration. Ces membranes ont généralement des pores d'environ 10"^ à 10~5 m, de préférence de 10"? à 10"^ m. En filtration, on caractérise souvent la taille des pores d'après le poids moléculaire des plus petites molécules de dextran dont 90% sont retenues par la membrane microporeuse, encore appelé seuil de coupure dextran. Cette valeur est habituellement comprise entre 2.105 et 2.106.
Les membranes destinées à être utilisées dans le procédé de l'invention comportent un liant organique. Ce liant doit répondre à un certain nombre de conditions, notamment à celles requises par le procédé d'utilisation des membranes activées (on entend habituellement par "membrane activée" la membrane sur laquelle a été immobilisée une enzyme). Ainsi, le liant devra être insoluble dans l'eau (milieu d'utilisation des enzymes) et résister aux conditions (pH, température, etc.) d'activation, d'utilisation et de régénération, celles-ci étant fonction de l'enzyme. En particulier, le liant devra résister aux substrats, aux produits et aux solvants présents lors de la mise en oeuvre des membranes activées. Selon l'invention, il est préférable d'utiliser un liant hydrophobe, par exemple le poly(tétrafluoroéthylène) ou PTFE, le poly(chlorure de vinyle), le polyéthylène, le polypropylène, les copolymères d'éthylène et de chlorotrifluoroéthylène, le poly(fluorure de vinylidène) ou PVdF, et les polysulfones, les polymères préférés étant PVdF, PTFE et les polysulfones, en particulier les polysulfones que l'on peut obtenir par réaction de substitution nucléophile entre le sel disodique de bisphénol A et le sulfone de 4,4-dichlorodiphényle.
Les membranes utilisées comprennent également un oxyde choisi dans le groupe comprenant les oxydes de titane, zirconium, hafnium, thorium et leurs mélanges; on utilise de préférence Zrθ2 ou Tiθ2, ou leurs équivalents ZrO(OH)2.nH2θ ou Ti0(0H)2.nH2θ. Dans la membrane composite, la granulométrie de l'oxyde est habituellement inférieure à 10"^ m, le plus souvent inférieure à 10"^ m; on peut, par exemple, utiliser de la poudre tamisée pour préparer les membranes, ou prévoir une étape de broyage au cours de cette préparation.
Le rapport en poids du liant à l'oxyde dans la membrane composite microporeuse peut varier dans de larges limites et notamment de 3:1 à 1:20, de préférence de 1:2 à 1:5, les rapports les plus préférés étant compris
FEUILLE DE REMPLACEMENT entre 3:7 et 1:4.
Les procédés de fabrication de membranes microporeuses sont bien connus. Un des procédés préférés est décrit dans la demande de brevet EP-241995-A : on réalise une suspension d'oxyde métallique dans une solution du liant, puis on élimine le solvant dont la température d'ébullition détermine la taille des pores; l'utilisation de ce procédé implique qu'il soit possible de dissoudre le liant dans un solvant approprié. Une autre méthode préférée, qui n'utilise pas de solvant du liant, est décrite dans la demande de brevet EP-234619-A : on mélange à sec des poudres de liant, d'un oxyde métallique et d'une substance porogène, avant d'enlever cette dernière; ce procédé est particulièrement adapté aux polymères difficilement solubles comme le PTFE, pourvu que l'oxyde métallique résiste aux conditions d'enlèvement de la substance porogène.
L'épaisseur, la porosité totale des membranes microporeuses et leur perméabilité (exprimée par le flux d'eau le traversant) ne sont pas critiques; on utilise généralement des membranes de 0,1 à 0,5 mm d'épaisseur, ayant une porosité totale d'au moins 45%, habituellement d'environ 65%, et un flux d'eau d'environ 1 cm^/cm^.min pour une pression relative de 0,1 MPa.
L'adsorption de l'enzyme sur la membrane composite microporeuse peut se faire selon plusieurs modes : par filtration : la solution contenant l'enzyme est filtrée à travers la membrane, puis celle-ci est rincée; par réhydratation : la membrane séchée complètement est réhydratée dans une solution de l'enzyme, puis rincée; par immersion : la membrane est immergée dans une solution de l'enzyme faiblement agitée, puis rincée .
On préfère utiliser la méthode par immersion, à température ambiante et dans les conditions préférées suivantes : au moins 1 g d'enzyme par litre de solution, de préférence au moins io g/l; au moins 30 minutes, de préférence au moins une heure d'immersion.
Quelle que soit la méthode d'adsorption, il est préférable de prévoir une étape d'équilibrage de la membrane activée, par immersion dans un grand volume d'eau ou par passage tangentiel ou transmembranaire d'eau, pendant au moins 30 minutes, de préférence au moins une heure.
Toutes les enzymes se prêtent à la préparation de membranes activées selon l'invention. Cependant, l'utilisation de membranes selon l'invention
FEUILLE DE REMPLACEMENT activées par adsorption d'enzymes travaillant les corps gras apparaît comme une application préférée dans la mesure où la membrane microporeuse pourra également servir à séparer les phases non miscibles.
Les conditions d'utilisation des membranes activées dépendent de l'enzyme utilisée, mais également du (ou des) substrat(s) et de la méthode de mise en oeuvre des membranes activées. Les conditions de réaction doivent seulement être telles que l'on empêche ou que l'on minimise 1'inactivation de l'enzyme adsorbée; on utilise habituellement un pH optimum et une température optimale pour l'enzyme immobilisée, les conditions optimales étant celles dans lesquelles on observe le meilleur compromis entre l'activité de l'enzyme adsorbée et sa stabilité. Cette température est habituellement comprise entre 10 et 60°C; si l'enzyme est thermostable, on utilisera une température plus élevée. Le pH peut être ajusté par addition d'un tampon, d'un acide ou d'une base appropriés. De plus, dans certains cas, il peut s'avérer utile d'ajouter au milieu réactionnel un activateur approprié pour la réaction enzymatique, et/ou un agent tensio-actif acceptable (n'inhibant pas l'activité de l'enzyme). Comme exemple d'agents tensio-actifs acceptables, on peut citer les sels biliaires, et en particulier le désoxycholate sodique, qui peuvent servir comme émulsifiants lorsque l'on utilise les membranes avec des émulsions eau/matière grasse. Comme exemple d'activateur, on peut citer les ions calciques pour des réactions enzymatiques catalysées par certaines lipases de type pancréatique.
Les membranes composites, telles qu'utilisées dans le cadre de la présente invention pour l'immobilisation d'enzymes, peuvent convenir pour immobiliser simultanément, le cas échéant, le cofacteur d'une réaction enzymatique. On entend par cofacteur une molécule non protéique ou un ion organique ou inorganique qui se combine avec des affinités variables au site actif d'une réaction enzymatique et qui est indispensable pour assurer la conversion du substrat en produit. Le cofacteur peut être immobilisé, le cas échéant, par adsorption mais aussi par toute autre technique appropriée comme l'immobilisation par liaison covalente voire au cours de la préparation de la membrane.
Le mise en oeuvre de la réaction catalysée enzymatiquement peut être réalisée selon un procédé continu, semi-continu ou discontinu (par lots) , en amenant le (ou les) substrat(s) en contact avec l'enzyme immobilisée. On peut notamment utiliser n'importe quel type de (bio)réacteur, par exemple les réacteurs à lit fixe, les réacteurs à lit fluidisé, les
FEUÏLLE DE REMPLACEMENT réacteurs discontinus, les réacteurs continus parfaitement mélangés, les réacteurs transmembranaires, qu'ils soient en mode recyclé ou en mode continu (à un ou plusieurs étages), ou les réacteurs tangentiels. Dans le cas du travail de substances grasses, les réacteurs tangentiels peuvent être utilisés avec des émulsions ou de préférence en phases compartimentées (les deux phases étant séparées par une membrane microporeuse composite activée selon l'invention). Dans ce dernier cas, l'homme de l'art sait que, si l'une des faces de la membrane est plus hydrophobe que l'autre, il convient d'orienter convenablement la membrane selon le type de réaction chimique (hydrolyse ou synthèse) mis en oeuvre.
Chaque fois que l'activité d'une membrane activée descend en dessous d'une valeur acceptable par rapport à la valeur de départ, il convient de procéder à sa régénération. D'une manière surprenante, la Demanderesse a trouvé qu'il est préférable d'appliquer le procédé de régénération à la membrane composite avant la première immobilisation d'enzyme, ce qui permet d'améliorer la reproductibilité des résultats. Les conditions de régénération des membranes dépendent de l'enzyme, du liant organique, et du substrat. Ainsi, lorsqu'on a immobilisé une lipase sur une membrane composite polysulfone/Zrθ2, une régénération à chaud en solution moyennement concentrée de carbonate sodique permet à la fois de désorber les protéines et de dissoudre les matières grasses par formation de savons; un traitement en milieu acide permet d'éliminer l'excès de carbonate avant une nouvelle immobilisation. D'une manière surprenante, la Demanderesse a observé que l'activité après régénération est sensiblement identique après chaque régénération.
Dans certains cas, on peut retrouver l'activité initiale d'une membrane partiellement ou totalement désactivée sans procéder à une régénération : ainsi, la Demanderesse a trouvé que, de manière surprenante, lorsqu'on travaille les corps gras, un nettoyage in situ de la membrane par un solvant approprié (en général de l'hexane) peut lui rendre sensiblement son activité initiale plusieurs fois de suite, sans décrochage de l'enzyme.
L'invention est également décrite à l'aide des exemples suivants qui ne limitent en rien sa portée.
FEUILLE DE REMPLACEMENT Exemple 1
a. Préparation de la membrane
On a dissous 100 g de polysulfone (type P 1800 NT 11 de UNION CARBIDE) dans 900 g de N-méthyl-2-pyrrolidone à une température de 50°C. A cette solution, on a ajouté 400 g de dioxyde de zirconium (type E10 de MAGNESIUM ELECTRON) . Le mélange résultant à été broyé à température ambiante pendant 48 heures dans un appareil de broyage en suspension. On a obtenu une suspension de grains plus fins que 10"° m; selon la méthode ASTM-D 1210, on a observé une finesse de dispersion de 8 sur l'échelle Hegman.
On a versé cette suspension sur un tamis de polyester (type PE 73 HC; épaisseur : 0,075 mm, diamètre des fils : 0,040 mm, mailles carrées de 0,070 x 0,070 mm) posé sur une plaque de verre, de manière à former une couche d'une épaisseur humide d'environ 0,35 mm. L'ensemble a été trempé dans un bain d'eau à température ambiante (environ 20°C).
En quelques minutes, la membrane a cristallisé et s'est détachée de la plaque de verre. On l'a encore laissée pendant une heure dans l'eau à température ambiante, puis on a porté l'eau à ébullition pendant une heure.
La membrane ainsi obtenue avait une épaisseur moyenne d'environ 0,22 mm, un seuil de coupure (dextran) d'environ 10^ daltons et une surface spécifique de 17 m^/g.
Le côté le plus brillant de la membrane (celui qui était en contact avec la plaque de verre) était le plus hydrophobe. Pour des réactions de synthèse d'esters, on a veillé à réaliser la réaction du côté le plus hydrophobe de manière à minimiser l'accumulation d'eau dans le microenvironnement de la lipase; pour des réactions d'hydrolyse, la situation est inverse. b. Immobilisation de la lipase
On a choisi une lipase produite par Candida cylindracea. commercialisée par MEITO SANGYO sous la référence OF. Cette lipase est aspécifique et elle permet une hydrolyse totale des triglycérides sans contamination par les produits intermédiaires (mono- et di-glycérides) .
La lipase, mise en solution à 10 g/1 dans de l'eau déminéralisée, a été passée au bain à ultra-sons pendant 2 minutes. Le résidu insoluble a été éliminé par centrifugation à 10000 tours/minute pendant 10 minutes. On a immergé la membrane pendant 60 minutes dans la solution de lipase faiblement agitée à température ambiante (environ 20°C), puis on a rincé la membrane avant de la tremper pendant une heure dans un grand volume d'eau
FEUILLE DE REMPLACE ENT faiblement agitée et à température ambiante. c. Expression d'activité
Une partie aliquote de 4 cm^ de la membrane activée a été introduite dans un erlenmeyer de 25 ml contenant 6 ml d'huile de soja et 4 ml d'eau déminéralisée. Le tout a été incubé, sous forte agitation, pendant 2 heures dans un bain d'eau thermostatisé à 37°C, puis centrifugé pendant 5 minutes à 7000 tours/minute. On a prélevé une fraction aliquote de la phase supérieure, que l'on a introduite dans 20 ml d'alcool éthylique dénaturé neutralisé. On a titré cette solution alcoolique à l'aide de NaOH 0,03 N en présence de phénolphtaléine. On a observé une activité correspondant à 10,42 % d'hydrolyse du substrat (ci-après % H).
On a répété l'expérience neuf fois en lavant soigneusement la membrane à chaque fois. On a observé un résultat moyen de 10,41 %H avec un écart-type de 0,70 %H sur l'ensemble des essais. d. Régénération de la membrane
On a immergé la membrane de 4 cm^ précitée dans un grand volume de Na2Cθ3 1M, que 1'on a porté à 65°C pendant 30 minutes. La membrane a ensuite été rincée à l'eau, immergée pendant 30 minutes dans une solution d'HCl 1M, à nouveau rincée à l'eau, et équilibrée par un séjour de 30 minutes dans un grand volume d'eau à température ambiante. La régénération a été poursuivie par une immobilisation de lipase, ainsi que décrit ci-dessus.
Avec la membrane régénérée, on a déterminé l'activité selon la méthode détaillée ci-dessus, et on a observé une activité correspondant à 10,50 % H; on a répété 10 fois le cycle régénération-immobilisation-expression, et on a observé une valeur moyenne de 9,65 %H avec un écart- ype de 1,04 %H.
Exemple 2
Une seconde partie aliquote de la membrane préparée à l'exemple 1 (a et b) a été utilisée pour effectuer l'hydrolyse d'huile de soja dans un réacteur transmembranaire recyclé.
On a déposé dans un support de filtre de 4,7 cm de diamètre (MILLIPORE, type Swinnex) un disque de membrane activée de telle sorte que sa surface utile est de 17,3 cm2 par face. On a préparé 50 ml d'une émulsion, comprenant 60% en poids d'huile de soja et 40% en poids d'eau déminéralisée, que l'on a pompée à 23°C à travers la membrane avec un débit de 15 ml/h, en recyclant continuellement 1'émulsion. L'activité de la
FEUILLE DE REMP membrane a été observée par dosage titrimétrique des acides gras libérés (selon la méthode décrite à l'exemple 1 c) :
- après 24 h 26% H
- après 48 h 50% H
- après 72 h 74% H
- après 98 h 100% H
D'une manière surprenante, on a observé que la réaction progresse linéairement jusqu'à ce que l'hydrolyse soit complète, alors que la même réaction en présence d'enzyme non immobilisée s'arrête alors qu'il subsiste quelques pourcents d'huile non hydrolysée.
Exemple 3
On a répété l'exemple 2 avec une membrane activée d'une surface égale à 125 cm^ (par face). Après 20 heures, l'hydrolyse était complète (100% H). On a renouvelé le substrat et répété l'expérience six fois avant d'observer une chute de l'activité lors de la huitième expérience. Un nettoyage in situ de la membrane par passage d'hexane a permis de récupérer 80% de l'activité avec un substrat frais.
Exemple 4
On a utilisé une nouvelle fraction aliquote de la membrane activée préparée à l'exemple 1 (a + b) dans un réacteur transmembranaire tel que celui décrit à l'exemple 2. On a fait passer en continu une émulsion, comprenant 60% en poids d'huile de soja et 40% en poids d'eau, à travers la membrane, à une température de 23°C, avec un débit de 5,5 ml/h et sans recyclage. Pendant 5 jours, on a observé des valeurs d'activité supérieures à 20% H et en moyenne égales à 26,8% H, ce qui correspond à 0,52 mole d'huile de soja hydrolysée par heure et par π - de membrane.
Exemple 5
On a utilisé trois fractions aliquotes de la membrane activée préparée à l'exemple 1 (a + b) dans un réacteur transmembranaire comportant trois étages en série tels que celui décrit à l'exemple 2. On a fait passer en continu une émulsion (huile de soja/eau dans un rapport en poids 60/40) successivement à travers les trois membranes, à une température de 23°C,
FEUILLE DE REMPLACEMENT avec un débit de 2,5 ml/h et sans recyclage. Après 9 jours de fonctionnement ininterrompu du réacteur, on a prélevé un échantillon d'émulsion après chaque membrane. Les valeurs d'activité observées étaient respectivement de :
- 22% H après la première membrane
- 45% H après la deuxième membrane
- 63% H après la troisième membrane.
Exemple 6
On a placé un morceau de 125 cm^ de la membrane activée préparée à l'exemple 1 (a + b) dans un support de module d'ultrafiltration (Pléiade P2, RHONE-POULENC) . On a fait passer 70 ml d'é ulsion d'huile de soja dans l'eau (dans un rapport en poids 60/40) en mode tangentiel, le long d'une seule paroi de la membrane activée, à une température de 23°C, à un débit de 15 ml/h et avec recirculation continuelle. Le taux de conversion était de :
- 28% après 24 heures
- 49% après 46 heures
- 72% après 68 heures
- 75% après 75 heures
Exemple 7
On a construit un réacteur tangentiel à phases compartimentées, formé de deux parties identiques en plexiglass placées de part et d'autre de la membrane, comportant chacune une rigole de distribution et une rigole de collection reliées par un rainurage de 2 mm de profondeur dont le dessin est adapté pour créer des turbulences au niveau de la membrane.
Comme membrane, on a utilisé un morceau de membrane activée préparée selon l'exemple 1 (a + b) . La membrane sert de séparateur de phases, un joint plat de caoutchouc de 1 mm d'épaisseur assurant l'étanchéité et un ensemble de tiges filetées et d'écrous maintenant le tout. La surface utile de la membrane était de 74 cm^.
On a fait circuler de l'huile de soja dans le compartiment supérieur, du côté le plus hydrophile de la membrane, avec un débit de 1,6 ml/h et de l'eau dans le compartiment inférieur, dans le même sens et avec le même débit, le tout à une température de 37°C.
FEUILLE DE REMPLACEMENT Le taux de conversion en un seul passage était de 58% environ au début de l'expérience, et a décru selon une courbe sensiblement linéaire, atteignant encore 29% environ après 90 jours de travail. Le taux de conversion dans ce réacteur était de l'ordre de 0,003 à 0,0015 moles d'huile de soja hydrolysée par heure et par m^ de membrane. La "réutilisabilité" de l'enzyme était supérieure à 15000 moles d'huile de soja transformées par kg d'enzyme.
Une transposition des résultats obtenus dans l'estimation du coût du procédé d'hydrolyse tel que décrite par J. KLOOSTERMAN et al. (Fat Sci. Technol. £, 592, 1987) montre que le coût de l'enzyme n'est plus un paramètre déterminant du coût du procédé : le coût de la transformation d'une mole de triglycéride est diminué d'un facteur 4 tandis que le coût de l'enzyme ne représente plus que 2% environ du coût de la transformation.
Exemple 8
On a répété l'expérience décrite à l'exemple 7, en nettoyant la membrane in situ à l'hexane après 50, 100 et 150 jours de fonctionnement. Une fois le réacteur remis en service après le troisième nettoyage, on a observé que le taux de conversion en un seul passage était encore supérieur à la moitié du taux initial.
Exemple 9
On a répété l'expérience décrite à l'exemple 7, en connectant en série trois réacteurs identiques. Pendant 80 jours (1920 heures), on a observé 100% de conversion ce qui correspond à environ 0,0017 moles d'huile de soja hydrolysée par heure et par m^ de membrane. Après 150 jours, on a observé une activité équivalente à 49% de l'activité initiale.
Exemple 10
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple 1 a. b. Immobilisation de la lipase
On a choisi une lipase de Pénicillium cyclopium. commercialisée par AMANO sous le nom de lipase G. Cette lipase est relativement spécifique pour l'hydrolyse et la synthèse de monoglycérides.
FEUILLE DE REMPLACEMENT La lipase, mise en solution à 10 g/1 dans de l'eau déminéralisée, a été passée au bain à ultra-sons pendant 2 minutes. Le résidu insoluble a été éliminé par centrifugation à 10000 tours/minute pendant 10 minutes. On a immergé la membrane pendant 60 minutes dans la solution de lipase faiblement agitée à température ambiante (environ 20°C), puis on a rincé la membrane avant de la tremper pendant une heure dans un grand volume d'eau faiblement agitée, pendant une heure et à température ambiante, c. Expression d'activité
On a placé un morceau de 131 cm^ de la membrane activée dans un support d'ultrafiltration. On a fait passer 90 ml d'émulsion (60 ml de glycerol à 99%, 27,5 ml d'acide oléique, 2,5 ml d'eau) en mode tangentiel, le long de la face la plus hydrophobe de la membrane activée, à une température de 25°C, et avec recirculation continuelle à un débit correspondant à 1,9 ml d'acide oléique par heure. Le taux de conversion ou taux de synthèse (%S) , défini comme le pourcentage d'acides gras estérifiés, était de :
- 26 %S après 6 jours
- 39 %S après 9 jours
- 52 %S après 12 jours
Exemple 11
On a pris un second morceau de 131 cm^ de la membrane activée préparée à l'exemple 9, que l'on a monté dans un réacteur tangentiel à phases compartimentées (identique à celui décrit dans l'exemple 7).
On a fait circuler de l'acide oléique dans le compartiment supérieur, du côté le plus hydrophobe de la membrane, avec un débit de 1,7 ml/h, et du glycerol à 95% dans le compartiment inférieur, à co-courant et avec le même débit, le tout à une température de 37°C.
Le taux de synthèse moyen pendant une période de 7 jours était de 11%.
Exemple 12
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple l(a). b. Immobilisation de 1'amyloglucosidase
On a choisi une amyloglucosidase de Rhizopus commercialisée par SIGMA sous la référence A-7255. On a mis l'amyloglucosidase en solution à 10 g/1
EUILLE DE REMPLACEMENT dans de l'eau déminéralisée. On a immergé la membrane pendant 60 minutes dans la solution d'amyloglucosidase faiblement agitée à température ambiante, puis on a rincé la membrane avant de la tremper dans un grand volume d'eau faiblement agitée pendant une heure à température ambiante, c. Expression d'activité
Une partie aliquote de 4 cm^ de membrane activée a été introduite dans une erlenmeyer de 25 ml avec 5 ml de milieu contenant du maltose à 10 g/1 et du tampon citrate de sodium 50 mM pH 4,6. ' Le tout a été thermostatisé à 55°C, et incubé sous agitation pendant 10 minutes. Membrane et milieu réactionnel ont été séparés, et le glucose libéré dans le milieu réactionnel a été dosé. On a observé une activité correspondant à 0,0143 moles de glucose libérées. L'opération a été reproduite six fois en lavant soigneusement la membrane à chaque fois. On a observé un résultat moyen de 0,0131 moles avec un écart-type de 0,0015 moles.
Exemple 13
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple l(a). b. Immobilisation de la glucose oxydase
On a choisi une glucose oxydase d'Aspergillus niger commercialisée par FERMCO.
La glucose oxydase a été mise en solution à 1 g/1 (soit 58 000 unités internationales par litre) . On a immergé la membrane pendant 30 minutes dans la solution de glucose oxydase faiblement agitée à température ambiante (environ 20°C), puis on a rincé la membrane avant de la tremper pendant une heure dans un grand volume d'eau faiblement agitée et à température ambiante. c. Expression d'activité
Une partie aliquote de 0,25 cι_2 de la membrane activée a été introduite dans la cellule d'une électrode de Clark contenant 4 ml d'une solution de glucose à 20 g/1, à pH 6, à 37°C, saturée en oxygène (soit 0,21 mM) et agitée.
A l'aide de cette électrode spécifique, on a observé que la consommation de l'oxygène dissous était de 1,66 mmol.min"l.m"2.
On a répété l'expérience après avoir lavé soigneusement la membrane à l'eau, et on a observé la même vitesse de consommation de l'oxygène dissous.
FEUILLE DE REMPLACEMENT Exemple 14
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple l(a) . b. Immobilisation de la lactoperoxydase
On a choisi une lactoperoxydase à 900 unités ABTS par mg, obtenue à partir de lait de vache, commercialisée par SYNFINA-OLEOFINA S.A.
La lactoperoxydase a été mise en solution à 1 g/1. On a immergé la membrane pendant 30 minutes dans la solution de lactoperoxydase faiblement agitée, à température ambiante (environ 20°C), puis on a rincé la membrane avant de la tremper pendant une heure dans un grand volume d'eau faiblement agitée et à température ambiante. c. Expression d'activité
Dans une fiole, on a introduit 100 ml d'une solution 0,1 mM d't_2θ2 à 37°C et pH5, dans laquelle on a dissous 50 mg d'ABTS (2,2' -azino-di (3-éthylbenzthiazoline-sulfonate-6) , vendue par BOEHRINGER sous la référence 102946) .
On a thermostatisé la solution à 37°C et on y a immergé une partie aliquote de 4 cm^ de membrane activée. La densité optique de la solution, mesurée à 412 nm, était de 0,52 après une minute, 0,92 après deux minutes et 1,32 après trois minutes.
On a répété l'expérience dix fois consécutives, en lavant soigneusement à l'eau la membrane après chaque expérience. L'augmentation moyenne de la densité optique de la solution était de 0,41 avec un écart-type de 0,05, ce qui correspond à une activité enzymatique de 410 unités ABTS.
Exemple 15
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple l(a). b. Coimmobilisation de deux enzymes
On a immergé la membrane pendant 30 minutes dans une solution faiblement agitée à température ambiante contenant, par litre, 0,5 g de la glucose oxydase décrite à l'exemple 13 et 5 g de la lactoperoxydase décrite à l'exemple 14. On a ensuite rincé la membrane avant de la tremper pendant une heure dans un grand volume d'eau faiblement agitée et à température ambiante. c. Expression d'activité
Dans une fiole, on a introduit 100 ml d'une solution à pH5 et à 37°C dans laquelle on a dissous 50 mg d'ABTS et 100 mg de glucose.
On y a ensuite plongé sous faible agitation une partie aliquote de 4 cm^ de la membrane activée préparée ci-dessus.
On a observé une augmentation rapide de la densité optique de la solution, mesurée à 412 nm, qui correspond à 260 unités ABTS pour l'ensemble du système composé de deux réactions enzymatiques consécutives la glucose oxydase a produit de l'eau oxygénée qui a été consommée par la lactoperoxydase dans la réaction colorimétrique.
Exemples 16 et 17
a. Préparation de la membrane
On a préparé une membrane selon le mode opératoire de l'exemple l(a) , en utilisant les proportions suivantes :
- polysulfone 100 g
- N-méthyl-2-pyrrolidone 900 g
- dioxyde de zirconium 250 g
La membrane ainsi obtenue avait une épaisseur d'environ 0,4 mm, et un seuil de coupure (dextran) d'environ 10> daltons. b. Exemple 16
On a immobilisé la lipase OF sur la membrane selon la procédure de l'exemple l(b), et on a exprimé l'activité de la membrane activée comme décrit dans l'exemple l(c). On a observé une activité de 3,5 %H. c. Exemple 17
On a immobilisé la lipase G sur la membrane selon la procédure de l'exemple 10(b).
Une partie aliquote de 4 cm de la membrane activée a été introduite dans un erlenmeyer de 25 ml contenant 7,5 ml de glycerol à 99%, 2,5 ml d'acide oléique et 0,7 ml d'eau. Le tout a été incubé, sous forte agitation, pendant 2 heures dans un bain d'eau ter ostatisé à 37°C, puis centrifugé à 7000 tours/minute pendant 5 minutes. On a prélevé une fraction aliquote de la phase supérieure que l'on a introduite dans 20 ml d'alcool éthylique dénaturé neutralisé. On a titré cette solution alcoolique à l'aide de NaOH 0,1 N en présence de phénolphtaléine. On a observé une activité de synthèse de 5,2 % S.
Ces exemples montrent qu'en variant le caractère hydrophile de la
FEUILLE DE REMPLACEMENT membrane par une variation du rapport liant/oxyde métallique, on peut Influencer l'activité de la membrane activée dans les réactions enzymatiques où l'eau est un substrat ou un produit.
Exemple 18
On a répété le mode opératoire de l'exemple 1 (a, b et c) , en remplaçant le dioxyde de zirconium par un poids équivalent (en termes de zirconium) d'oxyde Zr0(0H)2.xH2θ.
On a observé une activité moyenne de 11,2 %H avec un écart- ype de 0,75 %H sur dix essais.
Exemple 19
On a mélange à sec
- 21 parties en poids de poudre de poly(tétrafluoroéthylène) ou PTFE ayant des graines de taille inférieure à 5.10'^m,
- 46 parties en poids de poudre de dioxyde de zirconium ayant une granulometrie inférieure à 10"5 m, et
- 33 parties en poids de poudre de carbonate calcique ayant une granulometrie inférieure à 10"5 m.
On a comprimé ce mélange sous une pression de 20 kg/cm2 pour obtenir une galette de 4 mm d'épaisseur. Cette galette a été calandrée par passages successifs entre deux rouleaux, les rouleaux étant rapprochés de 0,1 mm et la galette pivotée de 90° après chaque passage, jusqu'à obtenir une galette d'environ 0,5 mm d'épaisseur.
On a porté la galette dans un four à 300°C pendant 4 heures, puis on l'a fait bouillir dans une solution aqueuse HCl IN avant de la rincer. On a obtenu une membrane ayant une porosité de 45%.
On a immobilisé la lipase OF sur la membrane ainsi préparée, selon le mode opératoire de l'exemple l(b).
On a déterminé l'activité de dix parties aliquotes de 4 cπ.2 de membrane activée, en suivant la méthode décrite à l'exemple l(c). L'activité moyenne était de 16,7 %H avec un écart-type de 0,95 %H.
FEUILLE DE REMPLACEMENT Exemple 20
a. Préparation de la membrane
On a dissous 2 g de poly(fluorure de vinylidène) dans 40 ml de N,N' -diméthylacétamide. On a ajouté 8 g de poudre de dioxyde de zirconium, ayant une granulométrie inférieure à 5.10" m, que l'on a mis en suspension tout en portant le mélange à une température comprise entre 80 et 90°C.
Le liquide visqueux obtenu a été versé sur une plaque de verre, que l'on a mis dans une étuve à 90°C jusqu'à séchage partiel des bords (mis en évidence par un changement de coloration, de gris à blanc) . La plaque de verre a ensuite été trempée dans de l'eau à environ 1°C puis sous un courant d'eau, et l'on a détaché la membrane. b. Immobilisation de la lipase
On a immobilisé la lipase OF sur la membrane ainsi obtenue en suivant le mode opératoire de l'exemple l(b). c. Expression d'activité
En suivant la méthode décrite à l'exemple l(c), on a observé une activité de 3,1 %H.
FEUiLLΞ DE REMPLACEMENT

Claims

Revendications
1. Support activé, préparé par immobilisation d'au moins une enzyme par adsorption sur un support microporeux composite en liant organique à charge d'oxyde choisi dans le groupe comprenant les oxydes de titane, zirconium, hafnium, thorium et leurs mélanges, le liant étant insoluble dans tous les milieux dans lesquels il est destiné à être placé, et le rapport en poids liant : oxyde étant compris entre 3:1 et 1:20.
2. Support activé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le rapport en poids liant : oxyde est compris entre 1:2 et 1:5.
3. Support activé selon la revendication 2, caractérisé en ce que le rapport en poids liant : oxyde est compris entre 3:7 et 1:4.
4. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l'on utilise un oxyde choisi dans le groupe comprenant Zrθ2, Tiθ2, Zr(0H)2.nH2θ, Ti0(0H)2.nH2θ et leurs mélanges.
5. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la granulométrie de l'oxyde est inférieure à 10-5 m.
6. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que la granulométrie de l'oxyde est inférieure à 10"6 m.
7. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que l'on utilise un liant hydrophobe.
8. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que l'on utilise un liant choisi dans le groupe comprenant le poly(tétrafluoroéthylène), le poly(chlorure de vinyle), le polyéthylène, le polypropylène, les copolymères d'éthylène et de chlorotrifluoroéthylène, le poly(fluorure de vinylidène), et les polysulfones.
9. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que l'on utilise un liant choisi dans le groupe comprenant le poly(tétrafluoroéthylène) , le poly(fluorure de vinylidène) et les polysulfones.
10. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce que l'on utilise comme liant une polysulfone qui peut s'obtenir par réaction de substitution nucléophile entre le sel disodique de bisphénol A et le suifone de 4,4-dichlorodiphényle.
11. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 10,
T caractérisé en ce que la microporosité du support est telle que le poids moléculaire des plus petites molécules de dextran dont 90% sont retenues par filtration à travers le support, pris sous la forme d'une membrane, est compris entre 2.10^ et 2.10°.
12. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que l'enzyme est une enzyme travaillant les corps gras.
13. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que l'enzyme est une lipase.
14. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que l'enzyme est une lactoperoxydase.
15. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que l'enzyme est une glucose oxydase.
16. Support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 15, caractérisé en ce que le support est pris sous la forme d'une membrane.
17. Utilisation du support activé selon l'une quelconque des revendications 1 à 16 pour la catalyse enzymatique d'une réaction.
18. Utilisation d'un support activé selon la revendication 16 pour la catalyse enzymatique d'une réaction dans un réacteur transmembranaire.
19. Utilisation d'un support activé selon la revendication 16 pour la catalyse enzymatique d'une réaction dans un réacteur en phases compartimentées.
20. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, caractérisé en ce que la réaction est une hydrolyse ou une synthèse d'ester.
FEUILLE DE REMPLACEMENT
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