UA72227C2 - Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood - Google Patents

Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood Download PDF

Info

Publication number
UA72227C2
UA72227C2 UA2001053642A UA2001053642A UA72227C2 UA 72227 C2 UA72227 C2 UA 72227C2 UA 2001053642 A UA2001053642 A UA 2001053642A UA 2001053642 A UA2001053642 A UA 2001053642A UA 72227 C2 UA72227 C2 UA 72227C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
plasminogen
sorbent
photocopolymer
lysine
human blood
Prior art date
Application number
UA2001053642A
Other languages
English (en)
Inventor
Anatolii Fedorovych Masliuk
Original Assignee
Inst Of Bio Chemistry Im O V P
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Of Bio Chemistry Im O V P filed Critical Inst Of Bio Chemistry Im O V P
Priority to UA2001053642A priority Critical patent/UA72227C2/uk
Publication of UA72227C2 publication Critical patent/UA72227C2/uk

Links

Description

Винахід відноситься до біохімтехнологічних процесів, спрямованих на отримання ферментних препаратів, і може бути використаний як хімічною, так і фармацевтичною промисловістю при виробництві афінних сорбентів, призначених для виділення ферментів певної групи.
Найбільш близьким за технічною суттю і практичним призначенням є відомий спосіб отримання нерозчинного гранульованого кополімеру (матриці) при кополімеризації М-вінілпіролідону з малеїновим ангідридом шляхом термохімічного ініціювання, наступного гранулювання (зшивки), що здійснюється в двох незмішуючих між собою рідинах органічної (диметилформамід) і кремнійорганічної (поліетиленсилоксанова рідина) природи при 70-80" протягом 2-3Згод. і, нарешті, приєднання ліганду, що і означає утворення, власне, сорбенту (11.
Недоліком найбільш близького з відомих способів отримання афінного сорбенту є малий ступінь відтворюваності властивостей кополімеру на основі М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду, що є наслідком термохімічного радикально-ланцюгового методу. Так, наприклад, не спостерігається постійності у відтворенні такого параметру, як молекулярна маса від одного напрацювання до іншого, що характерно для термополімеризації за рахунок локальних областей перегріву реакційної маси в об'ємі (21. Цей недолік є типовим для термохімічної ( 460-807, «-6-8год.), гомо- і кополімеризації різних ненасичених мономерів (табл.1).
Вказана мета досягається тим, що процес кополімеризації М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду в мольному співвідношенні 4:1 відповідно здійснюється методом фотохімічного ініціювання при кімнатній температурі 18-257С протягом (6--1)год.
Таблиця 1
Умови термохімічного синтезу кополімерів" і їх фізико-хімічна характеристика
Умовне Реакційне середовище Середня й й позначення вакційне середовищ Середня (п), мопекулярна Час синтезу (УФ- Вихід кополімеру, кополімеру фото-кополімеру г/дл маса кополімеру опромінення), год ше кл» | діоккан.//// | 060 | 1832000 | щ-:Й 7 | 70 2 "Співвідношення М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду 4:1; термоініціатор - динітрил-азо-біс-ізомасляної кислоти; температура кополімеризації 7070.
Сутність винаходу пояснюється прикладами виконання.
Приклад 1. а) Фотохімічний спосіб отримання лінійного фотокополімеру на основі М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду.
У плоскодонну колбу ємністю 0,1л, забезпечену мішалкою, завантажують 10г (0,091моля) М-вінілпіролідону, 2,23г (0,02З3моля) малеїнового ангідриду, 0,45г (0,0027моля або 2,Омас.95) фотоініціатора (Дарокурі 173) і 10мл розчинника (діоксана).
Вміст колби ретельно перемішують до повного розчинення і гомогенізації всіх компонентів реакційного середовища. Потім отриману реакційну масу піддають УФ-опроміненню при Хмакс.-300-400нм у режимі періодичного перемішування протягом бгод. при температурі 18-2570.
У результаті фотокополімеризації отримують лінійний термопластичний фотокополімер (ФКП-1) на основі М- вінілпіролідону і малеїнового ангідриду в діоксані. Фотокополімер з розчину діоксану висаджують сумішшю розчинників ацетон:гексан-2:4. Декантацією видаляють розчинники (ацетон, гексан) від ФКП-1, додатково промивають діетиловим ефіром і висушують на повітрі. Після цих операцій отримують ФКП-1 у вигляді пластівцеподібного порошку білого кольору. Вихід ФКП-1 за початковою сировиною становив 11,62г (95мас.95).
Молекулярна маса ФКП-1, визначена за величиною характеристичної в'язкості (п)20,69г/дл. (табл.2) і становить 233900. б) Гранулювання (поперечна зшивка) ФКП-1.
У тригорлий реактор ємністю 0,5л, забезпечений механічною мішалкою, зворотним холодильником і термометром, завантажують О,Зл поліетиленсилоксану (ПЕС-5) і при інтенсивному перемішуванні практично одночасно додають розчин-1 (10г ФКП-1 в бОмл диметилформаміду) і розчин-2 (0,52г або 5,2мас.95 від ваги ФКП- 1 4,4-діамінодифенілметана в Змл диметилформаміду). Протягом 1 год температуру підвищують від 18-257С до 70-757"С0 і при цій температурі реакційну масу витримують ще протягом 1год., після чого протягом 2год. температуру в реакторі підвищують до 80-857С. Потім нагрів припиняють і реакційну масу повільно охолоджують протягом 2,5год. при постійному перемішуванні.
Отриманий зшитий гранульований фотокополімер ФКП-1 (ГФКП-1) відділяють фільтруванням від поліетиленсилоксану і диметилформаміду і промивають спочатку декількома порціями гексану, а потім, для повного видалення залишків поліетиленсилоксанового масла (ПЕС-5), сірчаним ефіром. ГФКП-1 сушать при температурі 25-30 і зберігають в герметичному посуді. Вихід гранульованого фотокополімеру ГФКП-1 - 9Змас.Оо (9,8г) (табл.3).
Таблиця 2
Умови фотохімічного синтезу фотокополімерів і їх фізико-хімічна характеристика позначення (розчинник) синтезу пі, г/дл |молекулярна маса| опромінення), |фотокополімеру, фотокополімеру фотокополімеру фотокополімеру год. о, о 1 ФКПЯ | 7 діоксган// 069 | 2339900. | щ- 6 щЩщ | 95 ж Ж«(«
ФК? 0 17111лдіоксан// | 0.74 | 251200 | (б г щДщ МюЯЖВ 97 2 і ФКПЗ | діоксган/ | 068 | 232200 | (6 | 9
Таблиця З
Деякі фізико-хімічні параметри фотокополімерів і афінних сорбентів (СФКП) 1 1 г)
Умовне | мобннонннн | Вйносна ступінь позначення : : набухання по : гранульованого | афінного о сФкпа | 77778 177771717171717707777171717171717197. 17... .90 2 | 6 і сФкп3 | 77/80 17771717171750. | ...ю.93 5 ЮЩщ | 9 | є в) Імобілізація І -лізину на гранульований фотокополімер-1.
Отримання сорбенту СФКП-1.
В круглодонну колбу ємністю 0,5л вносять 250 мл дистильованої води, 10г ГФКП-1 і 1,0г І -лізинхлоргідрату (1Омас.бо від маси фотокополімеру), підтримуючи при цьому рнН.-7,0-7,2. Прищеплення (Імобілізація) І- лізинхлоргідрату до ГФКП-1 проводять при температурі 25"7С і постійному перемішуванні, підтримуючи рнН-7,0 протягом 4год. Через 14-16бгод., отриманий афінний сорбент відділяють фільтруванням і промивають 0,2М розчином Мансо»з, потім зливають розчин 0,2М Мансо»з і остаточно промивають сорбент дистильованою водою до рн-7,6-8,0.
В результаті мобілізації І -лізину отримано сорбент СФКП-1 на основі фотокополімеру (ФКП-1).
Дані аналізу першої промивної проби розчину після прищеплення І -лізину за методом реакції с-аміногрупи з нінгідрином показують, що концентрація прищепленого І-лізину на гранульованому фотокополімері дорівнює 8,Змас.95. Вихід сорбенту СФКП-1 після ретельної промивки складає 6б2мас.Оо (6,82г) (табл.3).
Приклад 2. а) Фотохімічний спосіб отримання лінійного фотокополімеру на основі М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду.
У плоскодонну колбу ємністю 0,25л, забезпечену мішалкою, завантажують 25г (0,228моля) М-вінілпіролідону, 5,6г (0,057моля) малеїнового ангідриду, 1,15г (0,007моля або 2,Омас.95) фотоініциатора (Дарокурі 173) і 25мл розчинника (діоксана).
Далі як в Прикладі та.
Вихід ФКП-2 за початковою сировиною становить 30,8г (97мас.9о). Молекулярна маса ФКП-2, визначена по величині характеристичної в'язкості |п)50,74г/дл, складає 251900 (табл.г). б) Гранулювання (поперечна зшивка) ФКП-2.
Все, як в Прикладі 16. Вихід гранульованого фотокополімеру-2 (ГФКП-2) складає 9,Зг (9Змас.9о) (табл.3). в) Імобілізація І -лізину на гранульований фотокополімер-2.
Отримання сорбенту СФКП-2.
Все, як в Прикладі 1в. Дані аналізу першої промивної проби розчину після прищеплення І -лізину по методу реакції сх-аміногрупи з нінгідрином показують, що концентрація прищепленого І-лізину на гранульованому фотокополімері дорівнює 7,9мас.9о. Вихід сорбенту СФКП-2 після ретельної промивки складає б5мас.9о (7,15г) (табл.3).
Приклад 3. а) Фотохімічний спосіб отримання лінійного фотокополімеру на основі М-вінілпіролідону і малеїнового ангідриду.
У плоскодонну колбу ємністю 0,5л, забезпечену мішалкою, завантажують 50г (0,45моля) М-вінілпіролідону, 11,18г (0,114моля) малеїнового ангідриду, 3,22г (0,02моля або 2,0мас.9о) фотоініциатора (Дарокур 1173) і 100мл розчинника (діоксана).
Далі все, як в Прикладі та.
Вихід ФКП-3 по вихідній сировині становить 59,9г (9Змас.95). Молекулярна маса ФКП-3, визначена по величині характеристичної в'язкості (1)-0,68г/дл, дорівнює 232200 (табл.г). б) Гранулювання (поперечна зшивка) ФКП-3.
Все, як в Прикладі 16. Вихід гранульованого фотокополимеру-3 (ГФКП-3) дорівнює 9,8г (95мас.9о) (табл.3). в) Імобілізація І -лізину на гранульований фотокополімер-3.
Отримання сорбенту СФКП-3.
Все, як в Прикладі 1в. Дані аналізу першої промивної проби розчину після прищеплення І -лізину за методом реакції сх-аміногрупи з нінгідрином показують, що концентрація прищепленого І-лізину на гранульованому фотокополімері дорівнює 8,О0мас.9о. Вихід сорбенту СФКП-3 після ретельної промивки складає бімас.9о (6,71г) (табл.3).
Експериментальні результати, приведені в таблиці 2 і 3, свідчать про те, що в процесі фотохімічного ініціювання різних за концентраційним вмістом в реакційній масі комономерів отримані фотокополімери з хорошою відтворюваністю значень молекулярних мас і досить високим виходом кінцевого фотокополімеру з вузьким молекулярно-масовим розподілом, а також афінні сорбенти на їх основі.
Отримані афінні сорбенти випробовували на здатність виділяти з плазми людської крові такий фермент як плазміноген. Як приклад для виділення плазміногену з плазми взято сорбент СФКП-2.
Виділення плазміногену з пасти людської крові фракції І! по Кону сорбентом СФКП-2.
До 200мл 0,14М розчину масі у 0,05М фосфатному буфері рн-7,4 суспендують 40г пасти фракції ІІ! по Кону і потім центрифугують протягом З0хв. при 80009. Надосадову рідину збирають і суспендують в ній 4г (200мл) підготовленого сорбенту СФКП-2 при співвідношенні сировина:сорбент -10:1. Після перемішування протягом 7 год при 4"С сорбент відділяють декантуванням і переносять його у колонку. Неспецифічне адсорбовані білки виділяють 0,5М розчином Масі в 0,05М фосфатному буфері рн-7,4 доти, поки поглинання (оптична густина) при
Хл-280нм елюата не стане меншим за 0,05. Плазміноген злюють на колонці 0,2М розчином є-амінокапронової кислоти в 0,05М фосфатному буфері рн-7,4. Видалення є-амінокапронової кислоти здійснюють на холоду (47С) осадженням білка з розрахунку 0,41г сульфату амонію на 1мл розчину білка. Після центрифугування протягом 15хв. при 80009 цільовий продукт (плазміноген) отримують шляхом розчинення осаду в 0,1М МНаНсСО». Розчин діалізують при 4"С проти 0,0114М МНАНСО»з при рн-8,0. Отриманий розчин піддають ліофільній сушці. Вихід електрофоретично" гомогенного плазміногену складає бЗмг або 15,8мг на 1г сорбенту СФКП-2 з активністю 17 казеінолітичних одиниць (к.о.)"" на 1мг плазміногену.
Результати біоспецифічної сорбції плазміногену з плазми людської крові афінними сорбентами, отриманими на основі фотокополімерів, наведені в таблиці 4. Ці афінні сорбенти характеризували кількістю імобілізованого на них І-лізину, а також активністю, виходом виділеного плазміногену (табл.4). Виділений препарат проферменту має питому активність, що узгоджується з активністю препаратів плазміногену, отриманих на інших афінних сорбентах. Однак, позитивною характерною особливістю виділених новими сорбентами препаратів плазміногену є відсутність спонтанної активності. Крім того, сорбенти на основі СФКГТ можуть бути використані протягом тривалого часу, тобто можливе неодноразове регенерування сорбентів, при якому не втрачаються їх хроматографічні властивості.
Примітка: х електрофорез ліофілізованих препаратів плазміногену проводять в гелі поліакриламіду в системі тріс- боратного буферу рн-7 4. Аналізували розчини, що містять 25-30мкг плазміногену. ях За 1ко. приймають таку кількість ферменту, яка звільнює 450мкМ тирозину, розчиненого в 1595-ній трихлороцтовій кислоті в умовах аналізу.
Таблиця 4
Біоспецифічні сорбційні властивості сорбентів, отриманих на основі фотокополімерів, для виділення плазміногену з плазми крові людини
Відносна ступінь !
Умовне г. набрякання Питома афінна Активність
Імобілізованого | зшиваючого реагенту ємність сорбенту, мг й позначення : рої сорбенту за й плазміногену, й Ї -лізину у (4,4-діаміно- ; плазміногену на 1г й сорбентів : : об'ємом, 1хО к.о./мг білка разів сорбенту і сФкп3 | 80 | щХ 525 «Б | 50 2 2 Щ | 158 | 7160
Джерела інформації 1. Рогожин С.В., Давьдович Ю.А., Андреєв С.М., Юртанов А.И. / Полимерньй макросетчатьй М- оксисукцинимид для синтеза пептидов // Докл. АН СССР, 1973. Т.2П.-Моб. С.1356-1358. 2. С.Е. Бреслер, Б.Л. Ерусалимский. Физика и химия макромолекул. М.-Л.: Наука, 1965. 510.

Claims (1)

  1. Спосіб отримання афінного сорбенту для виділення плазміногену з крові людини методом фотоініційованої радикально-ланцюгової кополімеризації М-вінілпіролідону з малеїновим ангідридом, наступним зшиванням - гранулюванням і прищепленням ліганду І. -лізину, який відрізняється тим, що процес кополімеризації М-вінілпіролідону з малеїновим ангідридом здійснюють методом фотоініціювання під впливом УФ-випромінювання при " макс. - 300- 400 нм і температурі 18-257С з наступним зшиванням-гранулюванням і прищепленням І .- лізину.
UA2001053642A 2001-05-29 2001-05-29 Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood UA72227C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UA2001053642A UA72227C2 (en) 2001-05-29 2001-05-29 Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UA2001053642A UA72227C2 (en) 2001-05-29 2001-05-29 Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA72227C2 true UA72227C2 (en) 2005-02-15

Family

ID=34618365

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA2001053642A UA72227C2 (en) 2001-05-29 2001-05-29 Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA72227C2 (uk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3775253A (en) Water-insoluble carrier-bound proteins
Kikuchi et al. Intelligent thermoresponsive polymeric stationary phases for aqueous chromatography of biological compounds
Hart et al. Synthetic peptide receptors: Molecularly imprinted polymers for the recognition of peptides using peptide− metal interactions
EP0392735B1 (en) Polymeric supports
CN102811805B (zh) 结合蛋白质和肽的特异性吸附剂及使用所述吸附剂的分离方法
US6852818B1 (en) Molecularly imprinted polymers produced by template polymerization
EP0354909B1 (en) Variable crosslinked polymeric supports
US5403902A (en) Polymeric supports
Pang et al. Bovine serum albumin-imprinted polyacrylamide gel beads prepared via inverse-phase seed suspension polymerization
CA1238626A (en) Phase supports for the partition chromatography of macromolecules, a process for their preparation and their use
US4192784A (en) Hydrophilic copolymers, their preparation and their use in separation techniques
CA1223859A (en) Surface-grafted particulate support, process for its preparation and adsorbants for affinity chromatography incorporating such support, and their use, particularly in biology
JPS59112260A (ja) クロマトグラフイ−の担体材料
JPS6356501A (ja) アフイニテイークロマトグラフイー用カラム充填剤及びその製造方法
Wang Development of new polycations for cell encapsulation with alginate
Armutcu et al. Purification of Fab and Fc using papain immobilized cryogel bioreactor separator system
JP3722842B2 (ja) Pth−アミノ酸の分離方法
Boschetti Polyacrylamide derivatives to the service of bioseparations
Kobos et al. A novel fluorocarbon-based immobilization technology
WO1994015951A1 (en) Affinity purification by the use of a complexed ligand
Porath Development of modern bioaffinity chromatography (A review)
UA72227C2 (en) Method for producing affine sorbent for extracting plasminogen from human blood
AU610734B2 (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
Yilmaz et al. The noncovalent approach
Pittner et al. Immobilization of protein on aldehyde-containing gels—II. Activation of pyridine rings with cyanogen bromide