UA151172U - Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів - Google Patents
Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів Download PDFInfo
- Publication number
- UA151172U UA151172U UAU202106102U UAU202106102U UA151172U UA 151172 U UA151172 U UA 151172U UA U202106102 U UAU202106102 U UA U202106102U UA U202106102 U UAU202106102 U UA U202106102U UA 151172 U UA151172 U UA 151172U
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- iodoform
- microorganisms
- powder
- bandage
- minimum inhibitory
- Prior art date
Links
- OKJPEAGHQZHRQV-UHFFFAOYSA-N iodoform Chemical compound IC(I)I OKJPEAGHQZHRQV-UHFFFAOYSA-N 0.000 title claims abstract description 87
- 244000005700 microbiome Species 0.000 title claims abstract description 24
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 20
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 title claims abstract description 9
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 11
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000000843 powder Substances 0.000 claims abstract description 9
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 claims abstract description 6
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 claims abstract description 4
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 claims abstract description 4
- 238000005303 weighing Methods 0.000 claims abstract description 3
- 238000011534 incubation Methods 0.000 abstract description 3
- 241000222122 Candida albicans Species 0.000 abstract 1
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 abstract 1
- 241000191963 Staphylococcus epidermidis Species 0.000 abstract 1
- 229940095731 candida albicans Drugs 0.000 abstract 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 abstract 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 15
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 11
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 description 8
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 7
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 7
- 108091093088 Amplicon Proteins 0.000 description 6
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 6
- 208000016063 arterial thoracic outlet syndrome Diseases 0.000 description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 5
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 4
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 4
- 239000012224 working solution Substances 0.000 description 4
- 230000000845 anti-microbial effect Effects 0.000 description 3
- 229940124350 antibacterial drug Drugs 0.000 description 3
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 3
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 3
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 3
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 description 3
- 206010041925 Staphylococcal infections Diseases 0.000 description 2
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 2
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 244000309464 bull Species 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 2
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 239000002068 microbial inoculum Substances 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 208000035473 Communicable disease Diseases 0.000 description 1
- 241000025907 Remiz Species 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000003637 basic solution Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 1
- 239000006160 differential media Substances 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 1
- 230000009036 growth inhibition Effects 0.000 description 1
- 239000012678 infectious agent Substances 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 239000013642 negative control Substances 0.000 description 1
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 1
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів включає застосування методу серійних розведень. Культури музейних штамів мікроорганізмів Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, Candida albicans ATCC 10231 піддаються дії 5 % йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 % етиловий спирт об'ємом 20 мл. До нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 °C, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу, цим 5 % йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентрації йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.
Description
Корисна модель належить до галузі медицини, зокрема мікробіології, та може бути використана для вивчення мінімальної інгібуючої концентрації Йодоформу на штами мікроорганізмів.
Серед тих, що відомі, є такі способи дослідження мікроорганізмів на чутливість: 1. Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації антибіотика для лікування стафілококової інфекції, який включає оцінку протимікробної активності антибіотика після додавання його до культури інфекційного збудника за стандартною схемою, який відрізняється тим, що одержаний матеріал після додавання антибіотика досліджують шляхом полімеразної ланцюгової реакції (ПЛР) із застосуванням праймерів 5 ТА АСА САТ САТ тат ТаА СО-3/5
АдСсАТа Аді ТОасії ТАА ТАС ба, розміром продукту ПЛР - 550 пар нуклеотидів; позитивний результат дослідження протестованого зразка матеріалу констатують при наявності на треку смуги утворюваного амплікону, розмір якого ідентичний відповідному розміру контрольних ампліконів; негативний результат досліджуваного зразка констатують при відсутності на треку амплікону будь-якого розміру або при наявності амплікону (чи декількох ампліконів), розмір якого відрізняється від розміру відповідних контрольних ампліконів. (Пат.на винахід 112557,
Україна, МПК С20О1М 33/00. Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації антибіотика для лікування стафілококової інфекції / Автори: Іванова Ніна Миколаївна (ША); Реміз Олександр
Миколайович (ША); заявник та патентовласник: Державна установа "Інститут дерматології та венерології НАМНУ", вул. Чернишевського, 7/9, м. Харків, 61057 (ОА). - Мо агО1404569; Заявл. 28.04.2014; Опубл. 26.09.2016, бюл. Мо 18/2016. 2. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів біоплівок до дезінфекційних засобів, що включає приготування розчину дезінфікуючого засобу, бактерійної культури і поживного середовища, експозицію суміші суспензії культури мікроорганізму з дезінфікуючим засобом в лунках імунологічних планшетів, додавання нейтралізатора дезінфікуючого засобу, висів суспензії на поживне середовище з подальшою оцінкою зростання мікроорганізмів на поживному середовищі шляхом обліку зростання в посівах контрольних та дослідних зразків порівнювання і визначення найменшої бактерицидної концентрації, при якій проявилися бактерицидні властивості дезінфекційного засобу, який відрізняється тим, що спочатку формують біоплівку на рідкому поживному середовищі в лунках імунологічних планшетів, з
Зо лунок планшету з сформованою біоплівкою видаляють рідке поживне середовище, потім оброблюють біоплівку дезінфекційним засобом після експозиції, відбирають з дослідних лунок частину їх вмісту і переносять у інший планшет до нейтралізатора дезінфекційного засобу, далі вміст висівають на тверде диференційне середовище; виконують контрольне дослідження суспензії цих бактерій з тією ж послідовністю дій, посіви інкубують при 37 "С протягом 24-48 год., після чого здійснюють оцінку зростання мікроорганізмів. (Пат.:на корисну модель 89438,
Україна, МПК С120 31/04. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів біоплівок до дезінфекційних засобів різних груп хімічних сполук/ Автори: Марієвський Віктор Федорович (ОА);
Кролевецька Надія Михайлівна (ША); Рубан Надія Михайлівна (ША); Матошко Галина Вікторівна (ША); Бубало Володимир Олександрович (ША); Омельченко Володимир Вікторович (ША); заявник та патентовласник: Державна установа Інститут епідеміології та інфекційних хвороб ім.
Л.В. Громашевського Національної академії медичних наук України, вул. М. Амосова, 5, м. Київ, 03680 (ОА). - Мо и201311162; Заявл. 19.09.2013; Опубл. 25.04.2014, бюл. Мо 8/2014.
Найближчим аналогом до заявленого є спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів (АБП) макрометодом серійних розведень у поживному бульйоні, який полягає в тому, що робочий розчин АБП готують з основного розчину з використанням рідкого поживного середовища. Робочий розчин у кількості 0,5 куб.см за допомогою мікропіпетки із стерильним наконечником вносять в першу пробірку, що містить 0,5 куб.см бульйону. Ретельно перемішують і новим стерильним наконечником переносять 0,5 куб.см розчину антибактеріального препарату в бульйоні в наступну пробірку з 0,5 куб.см бульйону. Цю процедуру повторюють, поки не буде приготований весь необхідний ряд розведень. З останньої пробірки 0,5 куб.см бульйону видаляють. Таким чином, отримують ряд пробірок з розчином
АПБ, концентрації яких відрізняються в сусідніх пробірках у 2 рази. Для інокуляції використовують мікробну суспензію, еквівалентну 0,5 за стандартом МакФарланда. По 0,5 куб.см інокулюма вносять в кожну пробірку, що містить по 0,5 куб.см відповідних розведень АПБ і в одну пробірку з 0,5 куб.см поживного бульйону без АПБ як "негативний контроль". Пробірки інкубують при температурі 35 "С протягом 20-24 год. Для визначення наявності росту мікроорганізму пробірки з посівами переглядають у проходячому світлі.
Про затвердження методичних вказівок "Визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів": наказ МОЗ України від 5 квітня 2007 р. Мо 167. - режим доступу:
порз//2аКоп.гада.дом.са/гада/5пом/м0167282-07ЖТехі Недоліками цього методу в разі використання його для визначення чутливості мікроорганізмів до Йодоформу є те, що 1) Йодоформ майже не розчинний у воді і тому для проведення дослідження неможливо приготувати його водний розчин; 2у Модоформ розчинний в етиловому спирті і можна приготувати основний спиртовий його розчин. Проте при приготуванні робочого розчину шляхом розведення поживним середовищем,
Йодоформ випадає в осад.
Ці недоліки роблять неможливим використання антисептика Йодоформ у вигляді порошку для приготування основного і робочого його розчину. | тому проведення дослідження стає не можливим.
В основу корисної моделі поставлена задача на вивчення протимікробної дії антисептичного препарату Йодоформ на різні штами мікроорганізмів.
Поставлена задача вирішується тим, що спосіб визначення мінімальної |інгібуючої концентрації Йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, згідно з корисною моделлю, культури музейних штамів мікроорганізмів еарпуїососсив ашеивз АТС 25923, Єтарпуіососси5 ерідептідіє АТОС 14990, Сапаїда аїбісапе
АТОС 10231 піддаються дії 5 96 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку
Йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 С, досягаючи повного розчинення порошку Йодоформу, цим 595 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини Йодоформу в ньому, містить концентрації Йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.
Спосіб здійснюється наступним чином.
Для отримання 5 95 йодоформного бинта використовували 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл та до нього додавали 500 мг дрібнокристалічного порошку Йодоформу, інкубували цей розчин протягом 24 год. при температурі 35-36 "С. Після інкубації досягли повного розчинення порошку Йодоформу і отримали робочий 5 95 йодоформно-спиртовий розчин. Для досягнення двократних послідовних розведень препарату цим розчином просочували відрізки стерильного бинта різної ваги: 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини Йодоформу в ньому, містив такі концентрації Йодоформу: 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл відповідно.
Для визначення чутливості мікроорганізмів до Йодоформу використовували 12 пробірок, які містили поживний бульйон, 595 йодоформний бинт певної ваги та мікробний інокулюм відповідно до стандартної методики, враховуючи контролі з "позитивним" та "негативним" результатами. Титруванню піддавали 5 95 йодоформний бинт. Таким чином, отримували ряд пробірок, в яких концентрація Йодоформу відрізнялася в 2 рази між сусідніми пробірками. Для приготування стандартного мікробного інокулюма, що еквівалентний 0,5 за стандартом мутності
МакФарланда, використовували добові культури музейних штамів мікроорганізмів еарпуіососси5 аштеибз АТО 25923, Єіарпуіососсив ерідентідіє АТОС 14990, Сапаїда аїрісап5
АТОСС 1023. Згідно з методикою використовували мікробну суспензію, що являла собою розведений інокулюм і містила 1,5х106 КУО / см3. Готову мікробну суспензію не пізніше 15 хв. з моменту її приготування додавали в кожну пробірку, яка містила відповідну кількість ПожИВнНого бульйону та досліджуваного антисептика у вигляді просоченого бинта. Пробірки інкубували в звичайній атмосфері при температурі 35-36 "С протягом 24-48 год. Після інкубації оцінювали результати і визначали мінімальну інгібуючу концентрацію (МІК) Йодоформу.
Затримку росту музейних культур під дією Йодоформу визначали, переглядаючи вміст робочих пробірок у прохідному світлі, порівнюючи з "негативним" контролем (таблиця).
Найменшою концентрацією Йодоформу, яка викликала затримку росту штаму біарпуіососсив ерідептідіє АТСС 14990, виявилася 40 мг/мл. У пробірках з культурою, де концентрація
Йодоформу дорівнювала 20-2,5 мг/мл, спостерігали ріст культури. МІК Йодоформу стосовно
Зіарпуюсоссив ашеив АТСС 25923 склала 160 мг/мл. Найменш чутливою до Йодоформу виявилася культура Сапаїйда аІрісапе АТОС 10231. Гальмування росту Сапаїйда аїібісапе АТОС 10231 спостерігали при концентрації Йодоформу 1280 мг/мл, подальше зменшення концентрації досліджуваного АБП не затримувало ріст культури порівняно з "негативним" контролем.
Таблиця
Визначення інгібуючої дії Йодоформу на музейні штами мікроорганізмів (мг/мл)
Культури | 1280 | 640 | з2го | 160 80 | 40 | го | то | 5 |(25|кК| ки зЗ.ерідегтіаів й й й й й
АТСС 14990 о 8.ашев | - | - | - | - 5 | 5 | 5 | їз я | 5 | -
Сабрісапя | - | ях | 5 | 5 | 5 | 5 | ях | 5 їз 1 5
Примітка: ж ріст мікроорганізмів, - відсутність росту мікроорганізмів, К/К - контроль культури,
К/И - контроль Иодоформу.
Дані вище заявленого способу можуть бути використані в подальшому вивчення протимікробної дії антисептичного препарату Иодоформ на клінічні штами мікроорганізмів.
Claims (1)
- ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, який відрізняється тим, що культури музейних штамів мікроорганізмів Єарпуіососсив аштеиз АТС 25923, арнуіососсив ерідептіаів АТОСС 14990, Сапаїда аїрбісап5 АТС 10231 піддаються дії 595 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 "С, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу, цим 5 96 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентрації йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU202106102U UA151172U (uk) | 2021-11-01 | 2021-11-01 | Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU202106102U UA151172U (uk) | 2021-11-01 | 2021-11-01 | Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| UA151172U true UA151172U (uk) | 2022-06-15 |
Family
ID=89903463
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| UAU202106102U UA151172U (uk) | 2021-11-01 | 2021-11-01 | Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| UA (1) | UA151172U (uk) |
-
2021
- 2021-11-01 UA UAU202106102U patent/UA151172U/uk unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Sayin et al. | Antibacterial and antibiofilm effects of boron on different bacteria | |
| Ghadaksaz et al. | The prevalence of some Pseudomonas virulence genes related to biofilm formation and alginate production among clinical isolates | |
| Ferrer et al. | Effect of antibiotics on biofilm inhibition and induction measured by real‐time cell analysis | |
| Deng et al. | Diffusible signal factor (DSF) quorum sensing signal and structurally related molecules enhance the antimicrobial efficacy of antibiotics against some bacterial pathogens | |
| US20230416671A1 (en) | Composition And Method For Stabilizing And Maintaining The Viability Of Hardy Microorganisms | |
| Trappetti et al. | The impact of the competence quorum sensing system on Streptococcus pneumoniae biofilms varies depending on the experimental model | |
| Bravo et al. | The long-term survival of Acinetobacter baumannii ATCC 19606 T under nutrient-deprived conditions does not require the entry into the viable but non-culturable state | |
| Gerber et al. | Effect of sub-MIC concentrations of metronidazole, vancomycin, clindamycin and linezolid on toxin gene transcription and production in Clostridium difficile | |
| RU2505813C1 (ru) | Способ определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным веществам | |
| Gholamrezazadeh et al. | Effect of nano-silver, nano-copper, deconex and benzalkonium chloride on biofilm formation and expression of transcription regulatory quorum sensing gene (rh1R) in drug-resistance Pseudomonas aeruginosa burn isolates | |
| Merghni et al. | Adhesive properties and extracellular enzymatic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from oral cavity | |
| Karimaei et al. | Antibiotic tolerance in biofilm persister cells of Staphylococcus aureus and expression of toxin-antitoxin system genes | |
| de Grandi et al. | Dual-species biofilm of Listeria monocytogenes and Escherichia coli on stainless steel surface | |
| Wang et al. | Sodium houttuyfonate in vitro inhibits biofilm dispersion and expression of bdlA in Pseudomonas aeruginosa | |
| Yousefpour et al. | Evaluating of the effects of sub-MIC concentrations of gentamicin on biofilm formation in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa | |
| Fattah et al. | Effect of chitosan nanoparticles on quorum sensing-controlled virulence factors and expression of LasI and RhlI genes among Pseudomonas aeruginosa clinical isolates | |
| Milisavljevic et al. | Benzyl alcohol and ethanol can enhance the pathogenic potential of clinical Staphylococcus epidermidis strains | |
| Mahmoud et al. | Biofilm Formation And Quorum Sensing lasRGene Of Pseudomonas Aeruginosa Isolated From Patients With Post-Operative Wound Infections. | |
| Hess et al. | Interplay of antibiotics and bacterial inoculum on suture-associated biofilms | |
| Medis et al. | Biofilm formation and antibiotic resistance among Coagulase Negative Staphylococcus species isolated from central venous catheters of intensive care unit patients | |
| UA151172U (uk) | Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів | |
| Jalal et al. | Synergistic Effect of Biogenic Silver Nanoparticles and Antibiotics Against Multidrug-Resistant Pseudomonas aeruginosa | |
| Dioukhane et al. | Study of the antibacterialeffect of 5-(4-chlorophenyl)-1H-tetrazole and its oxime precurs oragainststrainsisolated from the hospitalenvironment | |
| Mustapha et al. | Evaluation of biofilm formation by Staphylococcus aureus recovered from clinical samples of patients attending a tertiarycare hospital in North-Eastern Nigeria | |
| UA151171U (uk) | Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів |