UA151172U - Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms - Google Patents

Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms Download PDF

Info

Publication number
UA151172U
UA151172U UAU202106102U UAU202106102U UA151172U UA 151172 U UA151172 U UA 151172U UA U202106102 U UAU202106102 U UA U202106102U UA U202106102 U UAU202106102 U UA U202106102U UA 151172 U UA151172 U UA 151172U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
iodoform
microorganisms
powder
bandage
minimum inhibitory
Prior art date
Application number
UAU202106102U
Other languages
Ukrainian (uk)
Inventor
Юлія Вікторівна Чумак
Галина Андріївна Лобань
Майя Миколаївна Ананьєва
Марія Олексіївна Фаустова
Давид Соломонович Аветіков
Original Assignee
Полтавський Державний Медичний Університет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Полтавський Державний Медичний Університет filed Critical Полтавський Державний Медичний Університет
Priority to UAU202106102U priority Critical patent/UA151172U/en
Publication of UA151172U publication Critical patent/UA151172U/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

A method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms involves use of the method of serial dilutions. Cultures of museum strains of microorganisms Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, Candida albicans ATCC 10231 are exposed to a 5% iodoform bandage, for the production of which 96% ethyl alcohol with a volume of 20 ml is used. 500 mg of fine-crystalline iodoform powder is added, incubation is carried out for 24 hours at a temperature of 35-36°C till complete dissolution of iodoform powder. Sterile bandage segments weighing 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.5, 0.25 mg are impregnated with 5% iodoform-alcohol solution, those have the concentration of iodoform 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2.5 mg/ml, respectively, in equivalent of iodoform dry matter content.

Description

Корисна модель належить до галузі медицини, зокрема мікробіології, та може бути використана для вивчення мінімальної інгібуючої концентрації Йодоформу на штами мікроорганізмів.A useful model belongs to the field of medicine, in particular microbiology, and can be used to study the minimum inhibitory concentration of Iodoform on strains of microorganisms.

Серед тих, що відомі, є такі способи дослідження мікроорганізмів на чутливість: 1. Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації антибіотика для лікування стафілококової інфекції, який включає оцінку протимікробної активності антибіотика після додавання його до культури інфекційного збудника за стандартною схемою, який відрізняється тим, що одержаний матеріал після додавання антибіотика досліджують шляхом полімеразної ланцюгової реакції (ПЛР) із застосуванням праймерів 5 ТА АСА САТ САТ тат ТаА СО-3/5Among those that are known, there are the following methods of testing microorganisms for sensitivity: 1. A method for determining the minimum inhibitory concentration of an antibiotic for the treatment of staphylococcal infection, which includes the assessment of the antimicrobial activity of the antibiotic after adding it to the culture of the infectious agent according to the standard scheme, which differs in that the obtained after adding the antibiotic, the material is examined by polymerase chain reaction (PCR) using primers 5 TA АСА SAT SAT tat TaА СО-3/5

АдСсАТа Аді ТОасії ТАА ТАС ба, розміром продукту ПЛР - 550 пар нуклеотидів; позитивний результат дослідження протестованого зразка матеріалу констатують при наявності на треку смуги утворюваного амплікону, розмір якого ідентичний відповідному розміру контрольних ампліконів; негативний результат досліджуваного зразка констатують при відсутності на треку амплікону будь-якого розміру або при наявності амплікону (чи декількох ампліконів), розмір якого відрізняється від розміру відповідних контрольних ампліконів. (Пат.на винахід 112557,AdSsaTa Adi TOasii TAA TAS ba, the size of the PCR product - 550 pairs of nucleotides; a positive result of the study of the tested sample of material is ascertained if there is a band of the formed amplicon on the track, the size of which is identical to the corresponding size of the control amplicons; a negative result of the tested sample is determined when there is no amplicon of any size on the track or when an amplicon (or several amplicons) is present, the size of which differs from the size of the corresponding control amplicons. (Invention patent 112557,

Україна, МПК С20О1М 33/00. Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації антибіотика для лікування стафілококової інфекції / Автори: Іванова Ніна Миколаївна (ША); Реміз ОлександрUkraine, IPC C20O1M 33/00. The method of determining the minimum inhibitory concentration of an antibiotic for the treatment of staphylococcal infection / Authors: Ivanova Nina Mykolaivna (SHA); Remiz Oleksandr

Миколайович (ША); заявник та патентовласник: Державна установа "Інститут дерматології та венерології НАМНУ", вул. Чернишевського, 7/9, м. Харків, 61057 (ОА). - Мо агО1404569; Заявл. 28.04.2014; Опубл. 26.09.2016, бюл. Мо 18/2016. 2. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів біоплівок до дезінфекційних засобів, що включає приготування розчину дезінфікуючого засобу, бактерійної культури і поживного середовища, експозицію суміші суспензії культури мікроорганізму з дезінфікуючим засобом в лунках імунологічних планшетів, додавання нейтралізатора дезінфікуючого засобу, висів суспензії на поживне середовище з подальшою оцінкою зростання мікроорганізмів на поживному середовищі шляхом обліку зростання в посівах контрольних та дослідних зразків порівнювання і визначення найменшої бактерицидної концентрації, при якій проявилися бактерицидні властивості дезінфекційного засобу, який відрізняється тим, що спочатку формують біоплівку на рідкому поживному середовищі в лунках імунологічних планшетів, зMykolayovych (USA); applicant and patent owner: State institution "Institute of Dermatology and Venereology of NAMNU", str. Chernyshevsky, 7/9, Kharkiv, 61057 (OA). - Mo agO1404569; Application 28.04.2014; Publ. 26.09.2016, Bull. May 18/2016. 2. The method of determining the sensitivity of microorganisms of biofilms to disinfectants, which includes the preparation of a solution of a disinfectant, a bacterial culture and a nutrient medium, exposure of a mixture of a suspension of a microorganism culture with a disinfectant in the wells of immunological tablets, adding a neutralizer of a disinfectant, sowing the suspension on a nutrient medium with further evaluation the growth of microorganisms on the nutrient medium by recording the growth in the cultures of control and experimental samples, comparing and determining the lowest bactericidal concentration at which the bactericidal properties of the disinfectant were manifested, which is characterized by the fact that they first form a biofilm on a liquid nutrient medium in the wells of immunological tablets, with

Зо лунок планшету з сформованою біоплівкою видаляють рідке поживне середовище, потім оброблюють біоплівку дезінфекційним засобом після експозиції, відбирають з дослідних лунок частину їх вмісту і переносять у інший планшет до нейтралізатора дезінфекційного засобу, далі вміст висівають на тверде диференційне середовище; виконують контрольне дослідження суспензії цих бактерій з тією ж послідовністю дій, посіви інкубують при 37 "С протягом 24-48 год., після чого здійснюють оцінку зростання мікроорганізмів. (Пат.:на корисну модель 89438,The liquid nutrient medium is removed from the wells of the tablet with the formed biofilm, then the biofilm is treated with a disinfectant after exposure, a part of their contents is taken from the experimental wells and transferred to another tablet to the neutralizer of the disinfectant, then the contents are sown on a solid differential medium; perform a control study of a suspension of these bacteria with the same sequence of actions, the crops are incubated at 37 "C for 24-48 hours, after which the growth of microorganisms is evaluated. (Pat.: on the useful model 89438,

Україна, МПК С120 31/04. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів біоплівок до дезінфекційних засобів різних груп хімічних сполук/ Автори: Марієвський Віктор Федорович (ОА);Ukraine, IPC C120 04/31. The method of determining the sensitivity of microorganisms of biofilms to disinfectants of different groups of chemical compounds/ Authors: Marievsky Viktor Fedorovych (OA);

Кролевецька Надія Михайлівна (ША); Рубан Надія Михайлівна (ША); Матошко Галина Вікторівна (ША); Бубало Володимир Олександрович (ША); Омельченко Володимир Вікторович (ША); заявник та патентовласник: Державна установа Інститут епідеміології та інфекційних хвороб ім.Krolevetska Nadiya Mykhailivna (SHA); Ruban Nadiya Mykhailivna (USA); Galina Viktorivna Matoshko (USA); Bubalo Volodymyr Oleksandrovych (USA); Omelchenko Volodymyr Viktorovych (SHA); applicant and patent owner: State institution Institute of Epidemiology and Infectious Diseases named after

Л.В. Громашевського Національної академії медичних наук України, вул. М. Амосова, 5, м. Київ, 03680 (ОА). - Мо и201311162; Заявл. 19.09.2013; Опубл. 25.04.2014, бюл. Мо 8/2014.L.V. Gromashevsky National Academy of Medical Sciences of Ukraine, str. M. Amosova, 5, Kyiv, 03680 (OA). - MO and 201311162; Application 09/19/2013; Publ. 25.04.2014, Bull. May 8/2014.

Найближчим аналогом до заявленого є спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів (АБП) макрометодом серійних розведень у поживному бульйоні, який полягає в тому, що робочий розчин АБП готують з основного розчину з використанням рідкого поживного середовища. Робочий розчин у кількості 0,5 куб.см за допомогою мікропіпетки із стерильним наконечником вносять в першу пробірку, що містить 0,5 куб.см бульйону. Ретельно перемішують і новим стерильним наконечником переносять 0,5 куб.см розчину антибактеріального препарату в бульйоні в наступну пробірку з 0,5 куб.см бульйону. Цю процедуру повторюють, поки не буде приготований весь необхідний ряд розведень. З останньої пробірки 0,5 куб.см бульйону видаляють. Таким чином, отримують ряд пробірок з розчиномThe closest analogue to the stated method is the method of determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs (ABP) by the macro method of serial dilutions in nutrient broth, which consists in the fact that the working solution of ABP is prepared from the basic solution using a liquid nutrient medium. The working solution in the amount of 0.5 cubic cm using a micropipette with a sterile tip is introduced into the first test tube containing 0.5 cubic cm of broth. Mix thoroughly and use a new sterile tip to transfer 0.5 cubic cm of the solution of the antibacterial drug in the broth to the next test tube with 0.5 cubic cm of the broth. This procedure is repeated until the entire necessary series of dilutions is prepared. 0.5 cubic cm of broth is removed from the last test tube. Thus, a number of test tubes with a solution are obtained

АПБ, концентрації яких відрізняються в сусідніх пробірках у 2 рази. Для інокуляції використовують мікробну суспензію, еквівалентну 0,5 за стандартом МакФарланда. По 0,5 куб.см інокулюма вносять в кожну пробірку, що містить по 0,5 куб.см відповідних розведень АПБ і в одну пробірку з 0,5 куб.см поживного бульйону без АПБ як "негативний контроль". Пробірки інкубують при температурі 35 "С протягом 20-24 год. Для визначення наявності росту мікроорганізму пробірки з посівами переглядають у проходячому світлі.APB, the concentrations of which differ in neighboring test tubes by a factor of 2. For inoculation, a microbial suspension equivalent to 0.5 McFarland standard is used. 0.5 cubic cm of inoculum is introduced into each test tube containing 0.5 cubic cm of the appropriate dilutions of APB and into one tube with 0.5 cubic cm of nutrient broth without APB as a "negative control". The test tubes are incubated at a temperature of 35 "С for 20-24 hours. To determine the presence of growth of the microorganism, the test tubes with cultures are viewed in transmitted light.

Про затвердження методичних вказівок "Визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів": наказ МОЗ України від 5 квітня 2007 р. Мо 167. - режим доступу:On the approval of methodological instructions "Determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs": the order of the Ministry of Health of Ukraine dated April 5, 2007 Mo 167. - access mode:

порз//2аКоп.гада.дом.са/гада/5пом/м0167282-07ЖТехі Недоліками цього методу в разі використання його для визначення чутливості мікроорганізмів до Йодоформу є те, що 1) Йодоформ майже не розчинний у воді і тому для проведення дослідження неможливо приготувати його водний розчин; 2у Модоформ розчинний в етиловому спирті і можна приготувати основний спиртовий його розчин. Проте при приготуванні робочого розчину шляхом розведення поживним середовищем,porz//2аКоп.гада.дом.са/гада/5пом/м0167282-07ЖТехи The disadvantages of this method in the case of using it to determine the sensitivity of microorganisms to Iodoform are that 1) Iodoform is almost not soluble in water and therefore it is impossible to prepare it for conducting research its aqueous solution; 2u Modoform is soluble in ethyl alcohol and it is possible to prepare its basic alcohol solution. However, when preparing a working solution by diluting with a nutrient medium,

Йодоформ випадає в осад.Iodoform precipitates.

Ці недоліки роблять неможливим використання антисептика Йодоформ у вигляді порошку для приготування основного і робочого його розчину. | тому проведення дослідження стає не можливим.These shortcomings make it impossible to use the antiseptic Iodoform in the form of a powder for the preparation of its main and working solutions. | therefore, the research becomes impossible.

В основу корисної моделі поставлена задача на вивчення протимікробної дії антисептичного препарату Йодоформ на різні штами мікроорганізмів.The basis of the useful model is the task of studying the antimicrobial effect of the antiseptic drug Iodoform on various strains of microorganisms.

Поставлена задача вирішується тим, що спосіб визначення мінімальної |інгібуючої концентрації Йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, згідно з корисною моделлю, культури музейних штамів мікроорганізмів еарпуїососсив ашеивз АТС 25923, Єтарпуіососси5 ерідептідіє АТОС 14990, Сапаїда аїбісапеThe task is solved by the fact that the method of determining the minimum inhibitory concentration of Iodoform for microorganisms, which includes the use of the method of serial dilutions, according to a useful model, of cultures of museum strains of microorganisms earpuiosossiv asheyvz ATS 25923, Etarpuiosossiv ATS erideptidie ATOS 14990, Sapaida aibisape

АТОС 10231 піддаються дії 5 96 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошкуATOS 10231 are exposed to the action of 5 96 iodoform bandage, for which 96 95 ethyl alcohol in a volume of 20 ml is used, 500 mg of fine crystal powder is added to it

Йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 С, досягаючи повного розчинення порошку Йодоформу, цим 595 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини Йодоформу в ньому, містить концентрації Йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.Iodoform, incubated for 24 hours. at a temperature of 35-36 C, achieving complete dissolution of the Iodoform powder, this 595 iodoform-alcohol solution soaks segments of a sterile bandage weighing 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.5, 0.25 mg, which in recalculation of the dry matter content of Iodoform in it, contains concentrations of Iodoform, respectively 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2.5 mg/ml.

Спосіб здійснюється наступним чином.The method is carried out as follows.

Для отримання 5 95 йодоформного бинта використовували 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл та до нього додавали 500 мг дрібнокристалічного порошку Йодоформу, інкубували цей розчин протягом 24 год. при температурі 35-36 "С. Після інкубації досягли повного розчинення порошку Йодоформу і отримали робочий 5 95 йодоформно-спиртовий розчин. Для досягнення двократних послідовних розведень препарату цим розчином просочували відрізки стерильного бинта різної ваги: 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини Йодоформу в ньому, містив такі концентрації Йодоформу: 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл відповідно.To obtain 5 95 iodoform bandage, 20 ml of 96 95 ethyl alcohol was used and 500 mg of fine crystalline powder of Iodoform was added to it, this solution was incubated for 24 hours. at a temperature of 35-36 "C. After incubation, complete dissolution of the Iodoform powder was achieved and a working 5 95 iodoform-alcohol solution was obtained. To achieve two-fold successive dilutions of the drug, this solution soaked sterile bandage segments of different weights: 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.5, 0.25 mg, which, based on the content of dry matter of Iodoform in it, contained the following concentrations of Iodoform: 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2, 5 mg/ml respectively.

Для визначення чутливості мікроорганізмів до Йодоформу використовували 12 пробірок, які містили поживний бульйон, 595 йодоформний бинт певної ваги та мікробний інокулюм відповідно до стандартної методики, враховуючи контролі з "позитивним" та "негативним" результатами. Титруванню піддавали 5 95 йодоформний бинт. Таким чином, отримували ряд пробірок, в яких концентрація Йодоформу відрізнялася в 2 рази між сусідніми пробірками. Для приготування стандартного мікробного інокулюма, що еквівалентний 0,5 за стандартом мутностіTo determine the sensitivity of microorganisms to Iodoform, 12 test tubes containing nutrient broth, 595 Iodoform bandage of a certain weight and microbial inoculum were used according to the standard method, taking into account controls with "positive" and "negative" results. 5 95 iodoform bandage was subjected to titration. Thus, a number of test tubes were obtained in which the concentration of Iodoform differed by a factor of 2 between adjacent test tubes. For preparation of standard microbial inoculum equivalent to 0.5 turbidity standard

МакФарланда, використовували добові культури музейних штамів мікроорганізмів еарпуіососси5 аштеибз АТО 25923, Єіарпуіососсив ерідентідіє АТОС 14990, Сапаїда аїрісап5McFarland, used daily cultures of museum strains of earpuiosossi5 ashteibz ATO 25923, Eiarpuiosossiv eridentidie ATOS 14990, Sapaida airisap5

АТОСС 1023. Згідно з методикою використовували мікробну суспензію, що являла собою розведений інокулюм і містила 1,5х106 КУО / см3. Готову мікробну суспензію не пізніше 15 хв. з моменту її приготування додавали в кожну пробірку, яка містила відповідну кількість ПожИВнНого бульйону та досліджуваного антисептика у вигляді просоченого бинта. Пробірки інкубували в звичайній атмосфері при температурі 35-36 "С протягом 24-48 год. Після інкубації оцінювали результати і визначали мінімальну інгібуючу концентрацію (МІК) Йодоформу.ATOSS 1023. According to the method, a microbial suspension was used, which was a diluted inoculum and contained 1.5x106 CFU / cm3. Ready microbial suspension no later than 15 min. from the moment of its preparation, it was added to each test tube, which contained the appropriate amount of nutrient broth and the studied antiseptic in the form of a soaked bandage. The test tubes were incubated in a normal atmosphere at a temperature of 35-36 "C for 24-48 hours. After incubation, the results were evaluated and the minimum inhibitory concentration (MIC) of Iodoform was determined.

Затримку росту музейних культур під дією Йодоформу визначали, переглядаючи вміст робочих пробірок у прохідному світлі, порівнюючи з "негативним" контролем (таблиця).The delay in the growth of museum cultures under the influence of Iodoform was determined by viewing the contents of the test tubes in transmitted light, comparing them with the "negative" control (table).

Найменшою концентрацією Йодоформу, яка викликала затримку росту штаму біарпуіососсив ерідептідіє АТСС 14990, виявилася 40 мг/мл. У пробірках з культурою, де концентраціяThe lowest concentration of Iodoform, which caused a delay in the growth of the strain biarpuiosossiv erideptidie ATSS 14990, was 40 mg/ml. In culture tubes, where the concentration

Йодоформу дорівнювала 20-2,5 мг/мл, спостерігали ріст культури. МІК Йодоформу стосовноIodoform was equal to 20-2.5 mg/ml, culture growth was observed. MIC of Iodoform in relation

Зіарпуюсоссив ашеив АТСС 25923 склала 160 мг/мл. Найменш чутливою до Йодоформу виявилася культура Сапаїйда аІрісапе АТОС 10231. Гальмування росту Сапаїйда аїібісапе АТОС 10231 спостерігали при концентрації Йодоформу 1280 мг/мл, подальше зменшення концентрації досліджуваного АБП не затримувало ріст культури порівняно з "негативним" контролем.Ziarpuyusossiv asheiv ATSS 25923 was 160 mg/ml. The least sensitive to Iodoform was the culture Sapaida airisape ATOS 10231. Growth inhibition of Sapaida airisape ATOS 10231 was observed at a concentration of Iodoform of 1280 mg/ml, a further decrease in the concentration of the studied ABP did not delay the growth of the culture compared to the "negative" control.

ТаблицяTable

Визначення інгібуючої дії Йодоформу на музейні штами мікроорганізмів (мг/мл)Determination of the inhibitory effect of Iodoform on museum strains of microorganisms (mg/ml)

Культури | 1280 | 640 | з2го | 160 80 | 40 | го | то | 5 |(25|кК| ки зЗ.ерідегтіаів й й й й йCulture | 1280 | 640 | from the 2nd | 160 80 | 40 | tho | then | 5 |(25|kK| ky zZ.eridegtiaiv y y y y

АТСС 14990 о 8.ашев | - | - | - | - 5 | 5 | 5 | їз я | 5 | -ATSS 14990 at 8.ashev | - | - | - | - 5 | 5 | 5 | i drive 5 | -

Сабрісапя | - | ях | 5 | 5 | 5 | 5 | ях | 5 їз 1 5Sabrisapya | - | ya | 5 | 5 | 5 | 5 | ya | 5 trip 1 5

Примітка: ж ріст мікроорганізмів, - відсутність росту мікроорганізмів, К/К - контроль культури,Note: growth of microorganisms, - absence of growth of microorganisms, K/K - culture control,

К/И - контроль Иодоформу.K/I - Iodoform control.

Дані вище заявленого способу можуть бути використані в подальшому вивчення протимікробної дії антисептичного препарату Иодоформ на клінічні штами мікроорганізмів.The data of the above-claimed method can be used in the further study of the antimicrobial effect of the antiseptic preparation Iodoform on clinical strains of microorganisms.

Claims (1)

ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ Спосіб визначення мінімальної інгібуючої концентрації йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, який відрізняється тим, що культури музейних штамів мікроорганізмів Єарпуіососсив аштеиз АТС 25923, арнуіососсив ерідептіаів АТОСС 14990, Сапаїда аїрбісап5 АТС 10231 піддаються дії 595 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 "С, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу, цим 5 96 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентрації йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.USEFUL MODEL FORMULA The method of determining the minimum inhibitory concentration of iodoform for microorganisms, which includes the use of the method of serial dilutions, which differs in that the cultures of museum strains of microorganisms Earpuiosossiv ashteiz ATS 25923, Arnuiosossiv erideptiaiv ATSOS 14990, Sapaida airbisap5 ATS 10231 are exposed to the action of 595 iodoform bandage, to obtain which use 96 95 ethyl alcohol in a volume of 20 ml, add 500 mg of fine crystalline iodoform powder to it, incubate for 24 hours. at a temperature of 35-36 "С, achieving complete dissolution of the iodoform powder, this 5 96 iodoform-alcohol solution is impregnated with segments of a sterile bandage weighing 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0.5, 0.25 mg , which, based on the content of dry matter of iodoform, contains iodoform concentrations of 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2.5 mg/ml, respectively.
UAU202106102U 2021-11-01 2021-11-01 Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms UA151172U (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU202106102U UA151172U (en) 2021-11-01 2021-11-01 Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU202106102U UA151172U (en) 2021-11-01 2021-11-01 Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA151172U true UA151172U (en) 2022-06-15

Family

ID=89903463

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU202106102U UA151172U (en) 2021-11-01 2021-11-01 Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA151172U (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sayin et al. Antibacterial and antibiofilm effects of boron on different bacteria
Ghadaksaz et al. The prevalence of some Pseudomonas virulence genes related to biofilm formation and alginate production among clinical isolates
Ferrer et al. Effect of antibiotics on biofilm inhibition and induction measured by real‐time cell analysis
Sanchez-Vizuete et al. Pathogens protection against the action of disinfectants in multispecies biofilms
Deng et al. Diffusible signal factor (DSF) quorum sensing signal and structurally related molecules enhance the antimicrobial efficacy of antibiotics against some bacterial pathogens
US20230416671A1 (en) Composition And Method For Stabilizing And Maintaining The Viability Of Hardy Microorganisms
Trappetti et al. The impact of the competence quorum sensing system on Streptococcus pneumoniae biofilms varies depending on the experimental model
Bravo et al. The long-term survival of Acinetobacter baumannii ATCC 19606 T under nutrient-deprived conditions does not require the entry into the viable but non-culturable state
Gerber et al. Effect of sub-MIC concentrations of metronidazole, vancomycin, clindamycin and linezolid on toxin gene transcription and production in Clostridium difficile
RU2505813C1 (en) Method for determining microorganism sensitivity to antimicrobial substances
Gholamrezazadeh et al. Effect of nano-silver, nano-copper, deconex and benzalkonium chloride on biofilm formation and expression of transcription regulatory quorum sensing gene (rh1R) in drug-resistance Pseudomonas aeruginosa burn isolates
Merghni et al. Adhesive properties and extracellular enzymatic activity of Staphylococcus aureus strains isolated from oral cavity
Karimaei et al. Antibiotic tolerance in biofilm persister cells of Staphylococcus aureus and expression of toxin-antitoxin system genes
Yousefpour et al. Evaluating of the effects of sub-MIC concentrations of gentamicin on biofilm formation in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa
de Grandi et al. Dual-species biofilm of Listeria monocytogenes and Escherichia coli on stainless steel surface
Wang et al. Sodium houttuyfonate in vitro inhibits biofilm dispersion and expression of bdlA in Pseudomonas aeruginosa
Fattah et al. Effect of chitosan nanoparticles on quorum sensing-controlled virulence factors and expression of LasI and RhlI genes among Pseudomonas aeruginosa clinical isolates
Milisavljevic et al. Benzyl alcohol and ethanol can enhance the pathogenic potential of clinical Staphylococcus epidermidis strains
Mahmoud et al. Biofilm Formation And Quorum Sensing lasRGene Of Pseudomonas Aeruginosa Isolated From Patients With Post-Operative Wound Infections.
Medis et al. Biofilm formation and antibiotic resistance among Coagulase Negative Staphylococcus species isolated from central venous catheters of intensive care unit patients
UA151172U (en) Method for the determination of minimum inhibitory concentration of iodoform against microorganisms
Jalal et al. Synergistic Effect of Biogenic Silver Nanoparticles and Antibiotics Against Multidrug-Resistant Pseudomonas aeruginosa
Dioukhane et al. Study of the antibacterialeffect of 5-(4-chlorophenyl)-1H-tetrazole and its oxime precurs oragainststrainsisolated from the hospitalenvironment
Sharif et al. Bacillus species found antagonistic against bacteria isolated from currency notes in local circulation
Mustapha et al. Evaluation of biofilm formation by Staphylococcus aureus recovered from clinical samples of patients attending a tertiarycare hospital in North-Eastern Nigeria