UA151171U - Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів - Google Patents

Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів Download PDF

Info

Publication number
UA151171U
UA151171U UAU202106101U UAU202106101U UA151171U UA 151171 U UA151171 U UA 151171U UA U202106101 U UAU202106101 U UA U202106101U UA U202106101 U UAU202106101 U UA U202106101U UA 151171 U UA151171 U UA 151171U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
iodoform
microorganisms
bandage
powder
concentration
Prior art date
Application number
UAU202106101U
Other languages
English (en)
Inventor
Юлія Вікторівна Чумак
Галина Андріївна Лобань
Майя Миколаївна Ананьєва
Марія Олексіївна Фаустова
Давид Соломонович Аветіков
Original Assignee
Полтавський Державний Медичний Університет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Полтавський Державний Медичний Університет filed Critical Полтавський Державний Медичний Університет
Priority to UAU202106101U priority Critical patent/UA151171U/uk
Publication of UA151171U publication Critical patent/UA151171U/uk

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів включає застосування методу серійних розведень. Культури музейних штамів мікроорганізмів Staphylococcus aureus ATCC 25923, Staphylococcus epidermidis ATCC 14990, Candida albicans ATCC 10231 піддають дії 5 % йодоформного бинта. Для отримання бинта використовують 96 % етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 °C, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу. Цим 5 % йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2, 1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентраці ї йодоформу відповідно 1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.

Description

Корисна модель належить до галузі медицини, зокрема мікробіології, та може бути використана для вивчення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу на штами мікроорганізмів.
Серед тих, що відомі є такі способи дослідження мікроорганізмів на чутливість: 1. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до антисептиків, що включає виділення чистих культур патогенних мікроорганізмів, приготування суспензії з чистих культур, посів суспензії в чашки Петрі з м'ясопептонним агаром (МПА), інкубація чашок протягом 24 години, який відрізняється тим, що у МПА роблять лунки, які заповнюють антисептиками, в якому оцінку проводять за діаметром затримки росту мікроорганізмів навколо лунки: діаметр до 15 мм - мікроорганізми нечутливі до антисептиків; від 16 до 20 мм - мікроорганізми помірно-чутливі до антисептиків; від 21 до 25 мм - мікроорганізми чутливі до антисептиків; від 26 і більше мм - мікроорганізми високочутливі до антисептиків (патент України на корисну модель Мо 91492, МПК
С01М 33/00. Спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до антисептиків/ Автори: Козловська
Ірина Михайлівна (ША); Кухтин Микола Дмитрович (ША); Іфтодій Андріан Георгійович (ША); заявник та патентовласник: Буковинський державний медичний університет МОЗ України, пл.
Театральна, 2, м. Чернівці, 58002 (А). - Заявка Мо ци201400070; заявл. 08.01.2014; опубл. 10.07.2014, бюл. Мо 13/2014). 2. Спосіб визначення індивідуальної чутливості умовно-патогенних мікроорганізмів до пробіотичного препарату методом дифузії в агар шляхом визначення антагоністичної активності мікроорганізмів, який відрізняється тим, що пробіотик вносять в лунку на щільному поживному середовищі з попередньо засіяними умовно-патогенними мікроорганізмами, виділеними з кишечнику хворого, а результати оцінюють за наявністю зони затримки росту умовно- патогенних бактерій навколо лунки з пробіотиком, причому при діаметрі зони від 10 до 20 мм мікроорганізми визначають як чутливі до препарату-пробіотика, при діаметрі зони від 7 до 9 мм - слабочутливі, а при відсутності зони затримки росту мікроорганізмів навколо лунки з пробіотиком - стійкі (патент України на винахід Мо 80934, МПК С120 1/02 (2006.01), С120 1/18 (2006.01), (с01М 33/58 (2006.01). Спосіб визначення індивідуальної чутливості умовно- патогенних мікроорганізмів до пробіотичного препарату/ Автори: Лісяна Тамара Олександрівна (ША); Лісяний Микола Іванович (ША); Пономарьова Інна Георгіївна (ША); заявник та
Зо патентовласник: Інститут педіатрії, акушерства та гінекології АМН України, вул. Мануїльського, 8, м. Київ, 04050, Україна (ША). - Заявка Мо а200612536; заявл. 28.11.2006; опубл. 12.11.2007, бюл. Мо 18/2007).
Найбільш близьким аналогом корисної моделі є спосіб визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів (АБП) макрометодом серійних розведень у поживному бульйоні, що полягає в тому, що робочий розчин АБП готують з основного розчину з використанням рідкого поживного середовища. Робочий розчин у кількості 0,5 куб.см за допомогою мікропіпетки зі стерильним наконечником вносять в першу пробірку, що містить 0,5 куб.см бульйону. Ретельно перемішують і новим стерильним наконечником переносять 0,5 куб.см розчину антибактеріального препарату в бульйоні в наступну пробірку з 0,5 куб.см бульйону. Цю процедуру повторюють, поки не буде приготований весь необхідний ряд розведень. Із останньої пробірки 0,5 куб.см бульйону видаляють. Таким чином, отримують ряд пробірок з розчином АПБ, концентрації яких відрізняються в сусідніх пробірках у 2 рази. Для інокуляції використовують мікробну суспензію, еквівалентну 0,5 за стандартом МакФарланда.
По 0,5 куб.см інокулюма вносять в кожну пробірку, що містить по 0,5 куб.см відповідних розведень АПБ і в одну пробірку з 0,5 куб.см поживного бульйону без АПБ як "негативний контроль". Пробірки інкубують при температурі 35 "С протягом 20-24 год. Для визначення наявності росту мікроорганізму пробірки з посівами переглядають у проходячому світлі.
Про затвердження методичних вказівок "Визначення чутливості мікроорганізмів до антибактеріальних препаратів": наказ МОЗ України від 5 квітня 2007 р. Мо 167. - режим доступу: порз//2акоп.гада.дом.па/гада/впом/и0167282-074Техії
Недоліками цього методу в разі використання його для визначення чутливості мікроорганізмів до йодоформу є те, що: 1) йодоформ майже не розчинний у воді і тому для проведення дослідження неможливо приготувати його водний розчин; 2) йодоформ розчинний в етиловому спирті і можна приготувати основний спиртовий його розчин. Проте при приготуванні робочого розчину шляхом розведення поживним середовищем йодоформ випадає в осад.
Ці недоліки роблять неможливим використання антисептику Йодоформ у вигляді порошку для приготування основного і робочого його розчину. | тому проведення дослідження стає не (516) можливим.
В основу корисної моделі поставлена задача вивчити протимікробну дію антисептичного препарату йодоформ на різні штами мікроорганізмів.
Поставлена задача вирішується тим, що у способі визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, згідно з корисною моделлю, культури музейних штамів мікроорганізмів еарпуїососсив ашеив АТС 25923, Єарнуіососсив ерідентідіє АТОС 14990, Сапаїда аїрісап5
АТСС 10231 піддають дії 5 96 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 С, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу, цим 5905 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128 мг, 64 мг, 32 мг, 16 мг, 8 мг, 4 мг, 2 мг, 1мг, 0,5мг, 0,25мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентрації йодоформу відповідно1280 мг/мл, 640 мг/мл, 320 мг/мл, 160 мг/мл, 80 мг/мл, 40 мг/мл, 20 мг/мл, 10 мг/мл, 5 мг/мл, 2,5 мг/мл.
Спосіб здійснюють наступним чином: для отримання 5595 йодоформного бинта використовували 9695 етиловий спирт об'ємом 20 мл та до нього додавали 500 мг дрібнокристалічний порошок йодоформу, інкубували цей розчин протягом 24 год. при температурі 35-36 "С. Після інкубації досягли повного розчинення порошку йодоформу і отримали робочий 5 95 йодоформно-спиртовий розчин. Для досягнення двократних послідовних розведень препарату цим розчином просочували відрізки стерильного бинта різної ваги: 128 мг, 64 мг, 32 мг, 16 мг, 8 мг, 4 мг, 2 мг, 1мг, 0,5мг, 0,25мг; який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому, містив такі концентрації йодоформу: 1280 мг/мл, 640 мг/мл, 320 мг/мл, 160 мг/мл, 80 мг/мл, 40 мг/мл, 20 мг/мл, 10 мг/мл, 5 мг/мл, 2,5 мг/мл, відповідно.
Для визначення чутливості мікроорганізмів до йодоформу використовували 12 пробірок, які містили поживний бульйон, 595 йодоформний бинт певної ваги та мікробний інокулюм відповідно до стандартної методики, враховуючи контролі з "позитивним" та "негативним" результатами. Титруванню піддавали 5 95 йодоформний бинт. Таким чином, отримували ряд пробірок, в яких концентрація йодоформу відрізнялася в 2 рази між сусідніми пробірками. Для приготування стандартного мікробного інокулюма, що еквівалентний 0,5 за стандартом мутності
Зо МакФарланда, використовували добові культури музейних штамів мікроорганізмів еіарпуїососсив ашгеи5 АТОСС 25923, Єїарпуіососсив еріаєптідіє АТОС 14990, Сапаїда аїрісап5
АТСС 10231. Згідно методики використовували мікробну суспензію, що являла собою розведений інокулюм і містила 1,5 х 106 КУО/см3. Готову мікробну суспензію не пізніше 15 хв. з моменту її приготування додавали в кожну пробірку, яка містила відповідну кількість ПожИВнНого бульйону та досліджуваного антисептика у вигляді просоченого бинта. Пробірки інкубували в звичайній атмосфері при температурі 35-36 "С протягом 24 год. Після інкубації оцінювали результати і визначали мінімальну інгібуючу концентрацію (МІК) йодоформу. Для визначення мінімальної бактерицидної концентрації (МБцК) йодоформу проводили посів вмісту пробірок з відсутністю росту мікроорганізмів на поживний агар. Посіви інкубували в звичайній атмосфері при температурі 35-36 "С протягом 24 год.
Визначаючи бактерицидну та фунгіцидну активність йодоформу, переглядали чашки Петрі з посівами мікроорганізмів і оцінювали кожний сектор поживного агару окремо, який відповідав концентрації у вище зазначеному методі серійних розведень (Таблиця).
Виявили ріст музейного штаму біарпуіососсив еріденптідіє АТС 14990 у секторі поживного агару, починаючи з концентрації 40 мг/мл йодоформу, відповідно МБЦК, тобто мінімальна концентрація йодоформу, яка викликала загибель культури, дорівнювала 80 мг/мл.
Мікробоцидна дія йодоформу стосовно штаму біарпуіососсив аштеиз АТСС 25923 була гіршою,
МБЦК йодоформу при дослідженні цього штаму становила 1280 мг/мл. Оцінюючи результати дії йодоформу щодо музейного штаму Сапаїда аІрісапе АТСС 10231, відсутність росту культури спостерігали у секторі з концентрацією йодоформу 1280 мг/мл, тобто саме ця концентрація антисептика виявлена як МЕЦК для даного музейного штаму.
Таблиця
Визначення мікробоцидної дії йодоформу на музейні штами мікроорганізмів (мг/мл)
Культури (1280) 640 | зго | 160 | 80 | 40 | го | 10 | 5 | 25 |кК (ки
З.ерідетійв | - | - / - | - | - | ях | я | 5 | «
З.ашензї | - | хх | я | 5 | ях | ях | 5 | 5 | | - (С.абісапєї | - | ях | ях | 5 | 5 | 5 їх | «| 5 | 5
Примітка: ж ріст мікроорганізмів, - відсутність росту мікроорганізмів, К/К - контроль культури,
К/И - контроль йодоформу.
Дані способу, згідно з корисною моделлю, можуть бути використані в подальшому вивченні протимікробної дії антисептичного препарату йодоформ на клінічні штами мікроорганізмів.

Claims (1)

  1. ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів, що включає застосування методу серійних розведень, який відрізняється тим, що культури музейних штамів мікроорганізмів арпуіососсив ашеив АТОС 25923, Марнуососсив ерідептіаів АТОСС 14990, Сапаїда аірісапе АТОСС 10231 піддають дії 5 95 йодоформного бинта, для отримання якого використовують 96 95 етиловий спирт об'ємом 20 мл, до нього додають 500 мг дрібнокристалічного порошку йодоформу, інкубують протягом 24 год. при температурі 35-36 "С, досягаючи повного розчинення порошку йодоформу, цим 5 95 йодоформно-спиртовим розчином просочують відрізки стерильного бинта вагою 128, 64, 32, 16, 8, 4, 2,1, 0,5, 0,25 мг, який в перерахунку вмісту сухої речовини йодоформу в ньому містить концентрації йодоформу відповідно1280, 640, 320, 160, 80, 40, 20, 10, 5, 2,5 мг/мл.
UAU202106101U 2021-11-01 2021-11-01 Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів UA151171U (uk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU202106101U UA151171U (uk) 2021-11-01 2021-11-01 Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU202106101U UA151171U (uk) 2021-11-01 2021-11-01 Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA151171U true UA151171U (uk) 2022-06-15

Family

ID=89903142

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU202106101U UA151171U (uk) 2021-11-01 2021-11-01 Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA151171U (uk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5217707A (en) Pharmaceutical composition and process for the preparation thereof
RU2505813C1 (ru) Способ определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным веществам
WO2011043690A1 (ru) Способ получения биоцидного полигуанидина и биоцидный полигуанидин
CN110123806A (zh) 表没食子儿茶素没食子酸酯在制备抗猪链球菌药物中的应用
Otto et al. Assessment of antibacterial activity of crude leaf and root extracts of Cassia alata against Neisseria gonorrhea.
Lakshmi et al. Anticancer potentials of secondary metabolites from endophytes of Barringtonia acutangula and its molecular characterization
CN110151752A (zh) 一种茶多酚类组合物及其在制备抗猪链球菌药物中的应用
Rose et al. Resistance to American foulbrood in honey bees IX. Effects of honey-bee larval food on the growth and viability of Bacillus larvae
UA151171U (uk) Спосіб визначення мінімальної бактерицидної концентрації йодоформу до мікроорганізмів
Yanagita et al. Comparative and quantitative studies of fungitoxicity against fungal spores and mycelia
Hafiz et al. Prolonged survival of Neisseria gonorrhoeae in a new liquid medium.
RU2398872C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ Bacillus licheniformis, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОБИОТИЧЕСКОЙ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ, ПРЕДНАЗНАЧЕННОЙ ДЛЯ ПРОИЗВОДСТВА ВЫСОКОКАЧЕСТВЕННЫХ КОРМОВ, ПОВЫШАЮЩИХ ПРОДУКТИВНОСТЬ И СНИЖАЮЩИХ РИСК ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ЖИВОТНЫХ, ПТИЦЫ И РЫБ
CN106974914B (zh) 利奈唑胺联合氟康唑的抗真菌产品及其应用
Stabili et al. Susceptibility to antibiotics of Vibrio sp. AO1 growing in pure culture or in association with its hydroid host Aglaophenia octodonta (Cnidaria, Hydrozoa)
UA126590C2 (uk) Похідні глюконової кислоти для застосування в лікуванні та/або попередженні інфекцій, спричинених мікроорганізмами
CN104193686A (zh) N-没食子酰胺-嘧啶基苯磺酰胺类衍生物及其制备方法和应用
CN113350327A (zh) 肉桂酸及其衍生物作为抗菌剂在抑制人源性病菌中的应用
CN109400444A (zh) 抑制植物病源真菌的倍半萜类化合物及其制备方法
JPH10298070A (ja) 抗真菌剤
Ohyama On the antibacterial action and mechanism of nitrofuran derivatives
UTESHOVNA et al. Antibacterial And Antifungal Activity Of A Plant Substance Of The Genus Calligonum.
CN106619621B (zh) 利克飞龙联合氟康唑的抗真菌产品及其应用
RU2800127C1 (ru) Питательная среда для культивирования микроорганизмов
UA144151U (uk) Спосіб визначення фунгіцидної активності екстракту протефлазиду
Singh et al. The effect of vaginal lubricants on Neisseria gonorrhoeae