UA127428U - METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS - Google Patents
METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS Download PDFInfo
- Publication number
- UA127428U UA127428U UAU201803317U UAU201803317U UA127428U UA 127428 U UA127428 U UA 127428U UA U201803317 U UAU201803317 U UA U201803317U UA U201803317 U UAU201803317 U UA U201803317U UA 127428 U UA127428 U UA 127428U
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- aorta
- cells
- culture
- explants
- laboratory animals
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 31
- 238000010171 animal model Methods 0.000 title claims abstract description 5
- 210000000709 aorta Anatomy 0.000 claims abstract description 30
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims abstract description 9
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims abstract description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 5
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 abstract 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 19
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 7
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 6
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 4
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 4
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 4
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 4
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 4
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 4
- 210000000329 smooth muscle myocyte Anatomy 0.000 description 4
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 4
- 241000699666 Mus <mouse, genus> Species 0.000 description 3
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 3
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 3
- 210000002536 stromal cell Anatomy 0.000 description 3
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 2
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 2
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 2
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 2
- 210000002376 aorta thoracic Anatomy 0.000 description 2
- 210000000748 cardiovascular system Anatomy 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 2
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 2
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 2
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 2
- 230000002477 vacuolizing effect Effects 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 1
- 206010048554 Endothelial dysfunction Diseases 0.000 description 1
- 206010015548 Euthanasia Diseases 0.000 description 1
- HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N Heparin Chemical compound OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(COS(O)(=O)=O)C1OC1C(OS(O)(=O)=O)C(O)C(OC2C(C(OS(O)(=O)=O)C(OC3C(C(O)C(O)C(O3)C(O)=O)OS(O)(=O)=O)C(CO)O2)NS(O)(=O)=O)C(C(O)=O)O1 HTTJABKRGRZYRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000270923 Hesperostipa comata Species 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 230000006907 apoptotic process Effects 0.000 description 1
- 230000001174 ascending effect Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 1
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 1
- 210000004351 coronary vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000000805 cytoplasm Anatomy 0.000 description 1
- 230000001086 cytosolic effect Effects 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 230000008694 endothelial dysfunction Effects 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 1
- 239000003102 growth factor Substances 0.000 description 1
- 229960002897 heparin Drugs 0.000 description 1
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 1
- 230000036512 infertility Effects 0.000 description 1
- 238000007912 intraperitoneal administration Methods 0.000 description 1
- 230000000302 ischemic effect Effects 0.000 description 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 210000001316 polygonal cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 101150041594 soti gene Proteins 0.000 description 1
- 238000013337 sub-cultivation Methods 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000451 tissue damage Effects 0.000 description 1
- 231100000827 tissue damage Toxicity 0.000 description 1
- YFDSDPIBEUFTMI-UHFFFAOYSA-N tribromoethanol Chemical compound OCC(Br)(Br)Br YFDSDPIBEUFTMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229950004616 tribromoethanol Drugs 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 238000012800 visualization Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Спосіб отримання культури експлантів аорти лабораторних тварин включає культивування in vitro методом експлантів фрагментів тканини аорти. Попередньо з аорти за допомогою мікроінструментів видаляють адвентицію.A method of obtaining aortic explants culture in laboratory animals involves in vitro cultivation by aortic tissue fragments explants. The adventitia is removed from the aorta with micro-tools.
Description
Корисна модель належить до експериментальної медицини, зокрема до галузі клітинних та тканинних технологій, і може використовуватись для отримання культури експлантів аорти лабораторних тварин з метою дослідження регенеративного потенціалу стовбурових клітин та подальшої розробки нових методів лікування захворювань серцево-судинної системи у людини.The useful model belongs to experimental medicine, in particular to the field of cell and tissue technologies, and can be used to obtain a culture of aorta explants of laboratory animals for the purpose of researching the regenerative potential of stem cells and further developing new methods of treating diseases of the cardiovascular system in humans.
Застосування тканино-специфічних прогеніторів з магістральних судин вважають перспективним підходом для прискорення регенерації ішемічних пошкоджень тканин, що супроводжуються ендотеліаальною дисфункцією. Отримання за короткий проміжок часу чистої популяції клітин з необхідними морфологічними та функціональними характеристиками для досягнення максимального терапевтичного ефекту при патології серцево-судинної системи є актуальним завданням сучасної біотехнології та регенеративної медицини.The use of tissue-specific progenitors from main vessels is considered a promising approach for accelerating the regeneration of ischemic tissue damage accompanied by endothelial dysfunction. Obtaining in a short period of time a pure population of cells with the necessary morphological and functional characteristics to achieve the maximum therapeutic effect in the pathology of the cardiovascular system is an urgent task of modern biotechnology and regenerative medicine.
За останні роки в Україні та світі активно впроваджуються нові методи культивування тканино-специфічних стовбурових та прогеніторних клітин з різних джерел, в тому числі і з магістральних судин. Для отримання культур клітин з стінки судин в експерименті та клініці застосовують кілька підходів.In recent years, new methods of cultivating tissue-specific stem and progenitor cells from various sources, including main vessels, have been actively implemented in Ukraine and the world. Several approaches are used to obtain cell cultures from the vessel wall in experiments and clinics.
Зокрема, відомий спосіб отримання культури гладком'язових клітин з аорти (Пат. 2529947In particular, there is a known method of obtaining a culture of smooth muscle cells from the aorta (Pat. 2529947
Російська Федерація МПК СтТ2М 5/071, С12М 55/02, С12М 5/077, опубл. 10.10.2014. пЕрулимлмі ліре.гу|. Метод полягає в тому, що вирізають фрагмент судини, подрібнюють його на шматочки до розмірів не більше 2 мм, інкубують в 0,1 95 розчині колагенази протягом 30 хв. та культивують в культуральному флаконі з попередньо нанесеними на дно флакона подряпинами.Russian Federation IPC StT2M 5/071, S12M 55/02, S12M 5/077, publ. 10.10.2014. pErulymlmi lire.gu|. The method consists in cutting out a fragment of a vessel, chopping it into pieces no bigger than 2 mm, and incubating in a 0.1 95 collagenase solution for 30 minutes. and cultivated in a culture flask with scratches previously applied to the bottom of the flask.
Однак, цей спосіб стосується отримання культур, насамперед, гладком'язових клітин і лише у людини, оскільки передбачає виділення висхідного фрагмента грудної аорти під час операції аортокоронарного шунтування.However, this method concerns obtaining cultures, first of all, of smooth muscle cells and only in humans, as it involves the selection of the ascending fragment of the thoracic aorta during coronary artery bypass surgery.
Відомий також метод культивування іп міо ендотеліальних клітин з аорти щурів (Пат. 104673744А СМ, МПК Ст2М 5/071; заявник та власник патенту Мапа дипії (СМ); опубл. 03.06.2015 пОрз/Лмопаміде. езрасепеї.соті|. За даним методом на етапі інкубації в колагеназі вирізану аорту попередньо наповнюють поживним середовищем, що містить гепарин.There is also a well-known method of culturing IP myo endothelial cells from the aorta of rats (Pat. 104673744А SM, IPC St2M 5/071; applicant and patent owner Mapa dipia (SM); publ. 06/03/2015 pOrz/Lmopamide. ezrasepei.soti|. According to this method at the stage of incubation in collagenase, the excised aorta is pre-filled with a nutrient medium containing heparin.
Стерильною голкою та ниткою зшивають кінці судини та інкубують у СО?» інкубаторі.The ends of the vessel are sutured with a sterile needle and thread and incubated in CO? incubators
Однак, використання даного підходу потребує освоєння методики накладання судинногоHowever, the use of this approach requires mastering the vascular overlay technique
Зо шва та забезпечення його герметичності і стерильності на час інкубації та при щоденній заміні середовища. Також, дана методика не може бути використана у лабораторних мишей через значно менші розміри аорти, в порівнянні з відповідними судинами у щура.From the seam and ensuring its tightness and sterility during incubation and when the medium is changed daily. Also, this technique cannot be used in laboratory mice due to the significantly smaller size of the aorta compared to the corresponding vessels in the rat.
З літературних джерел також відомий метод виділення ендотеліальних клітин з аорти мишіA method for isolating endothelial cells from mouse aorta is also known from literary sources
ІА бітріє Меїноадй ої Ізоїайіпд Моизе Аопіс Епдоїпеїїа! СеїІв / М. Кобрауавні, К. Іпошйе, Е. УМагабі, єї а. // доштаї ої ашегозсіеговів апа (пготрброзвів. - 2005. - Мої. 12, Ме 3. - Р. 138-42). За матеріалами публікації, даний метод включає заповнення аорти через канюлю розчином колагенази типу ЇЇ на 45 хв. з подальшим вимиванням виділених клітин поживним середовищем. Отриману суспензію відмивають та культивують в середовищі для ендотеліальних клітин, а аорту нарізають на фрагменти зі стороною 2-3 мм та культивують методом експлантів для виділення гладком'язових клітин.IA bitrie Meinoady oi Izoyaipd Moise Aopis Epdoipeiia! Seyiv / M. Kobrauavni, K. Iposhye, E. UMagabi, Yei a. // the children of Ashegozsiegov apa (pgotrbrozviv. - 2005. - Moi. 12, Me 3. - R. 138-42). According to the publication, this method includes filling the aorta through a cannula with a solution of collagenase type HER for 45 minutes. followed by washing out the isolated cells with a nutrient medium. The obtained suspension is washed and cultivated in the medium for endothelial cells, and the aorta is cut into fragments with a side of 2-3 mm and cultivated by the explant method to isolate smooth muscle cells.
Проте, даний метод потребує додаткових етапів зав'язування дистального кінця аорти, промивання її поживним середовищем та використання спеціального покриття флаконів для культивування, що збільшує часові та фінансові затрати на його виконання.However, this method requires additional stages of tying the distal end of the aorta, washing it with a nutrient medium, and using a special coating of vials for cultivation, which increases the time and financial costs of its implementation.
За прототип авторами взятий спосіб отримання та культивування ендотеліальних клітин з грудної аорти миші (Пат. 106591217А СМ, МПК С12М 5/071; заявник та власник патенту ОпімAs a prototype, the authors took the method of obtaining and cultivating endothelial cells from the thoracic aorta of a mouse (Pat. 106591217А СМ, МПК С12М 5/071; applicant and owner of the patent Opim
Зіспцап (СМ); опубл. 26.04.2017. пИр/Амопаміде.езрасепеї.соті|, який передбачає попереднє нарізання аорти на кільця та культивування їх методом експлантів на матриксі Майїде! в спеціальному середовищі для ендотеліальних клітин.Zisptsap (SM); published 26.04.2017. пР/Амопамиде.езрасепей.соти|, which involves preliminary cutting of the aorta into rings and their cultivation by the method of explants on the Mayide matrix! in a special environment for endothelial cells.
Проте, даний метод не запобігає контамінації культури фібробластами із зовнішньої оболонки аорти та потребує значних фінансових затрат на ростові фактори та покриття для культурального посуду.However, this method does not prevent contamination of the culture with fibroblasts from the outer lining of the aorta and requires significant financial costs for growth factors and cover for culture dishes.
В основу даної корисної моделі поставлена задача удосконалити спосіб отримання культури експлантів аорти лабораторних тварин, який би був надійний і ефективний та дозволив отримувати з внутрішніх оболонок аорти чисту культуру гладком'язових або ендотеліальних клітин, яка не контамінована стромальними клітинами із зовнішньої сполучнотканинної оболонки, що додатково зменшить час та витрати на культивування необхідної популяції клітин.The basis of this useful model is the task of improving the method of obtaining the culture of explants of the aorta of laboratory animals, which would be reliable and effective and allow obtaining a pure culture of smooth muscle or endothelial cells from the inner membranes of the aorta, which is not contaminated by stromal cells from the outer connective tissue membrane, which additionally will reduce the time and cost of culturing the required cell population.
Поставлена задача вирішується тим, що в способі, який включає культивування іп мйго методом експлантів фрагментів тканини аорти, згідно з даною корисною моделлю, з аорти попередньо за допомогою мікроінструментів видаляють адвентицію.The task is solved by the fact that in the method that includes the cultivation of ip mygo by the method of explants of fragments of aorta tissue, according to this useful model, the adventitia is removed from the aorta beforehand with the help of micro-instruments.
Технічний результат, який досягається при застосуванні даного способу, полягає в тому, що завдяки попередньому видаленню адвентиції в культурі іп міго з експлантів аорти мігрують клітини лише з внутрішніх її оболонок. Відсутність адвентиції та парааортальної жирової тканини в експлантах фрагментів аорти дозволяє запобігти контамінації культури фібробластами та мультипотентними стромальними клітинами, які швидко проліферують та зменшують ефективність міграції цільової популяції клітин з внутрішніх оболонок. При даному способі зменшуються час та витрати поживних середовищ і матеріалів на культивування необхідної популяції клітин. Даний спосіб не потребує значних затрат часу та використання дорогого високотехнологічного обладнання.The technical result, which is achieved when applying this method, is that thanks to the preliminary removal of the adventitia in the culture of ip migo from explants of the aorta, cells migrate only from its inner membranes. The absence of adventitia and para-aortic adipose tissue in explants of aorta fragments prevents contamination of the culture by fibroblasts and multipotent stromal cells, which rapidly proliferate and reduce the efficiency of migration of the target population of cells from the inner membranes. With this method, the time and costs of nutrient media and materials for cultivating the required population of cells are reduced. This method does not require significant investment of time and the use of expensive high-tech equipment.
Спосіб здійснюють наступним чином.The method is carried out as follows.
Тварини підлягають евтаназії методом цервікальної дислокації після інтраперитонеального введення 2,5 95 розчину авертину в дозі 400 мг/кг. В стерильних умовах відпрепаровують аорти та переносять їх в чашки Петрі з середовищем АРМІ-1640, яке містить 1 95 суміші антибіотиківAnimals are subject to euthanasia by the method of cervical dislocation after intraperitoneal administration of 2.5 95 solution of avertin at a dose of 400 mg/kg. Under sterile conditions, aortas are prepared and transferred to Petri dishes with ARMI-1640 medium, which contains 1 95 of a mixture of antibiotics
Репеігтер. Під стереомікроскопом промивають порожнину аорти стерильним середовищемRepeigter Under a stereomicroscope, the aortic cavity is washed with a sterile medium
АРМІ-1640, видаляють фрагменти парааортальної жирової тканини та препарують зовнішню оболонку аорти (Шпіса ехієгта, адвентиція) від середньої (Шпіса тедіа) та внутрішньої (Шпіса іпіїта). Виділені внутрішні оболонки промивають в середовищі АРМІ-1640, подрібнюють на фрагменти розмірами біля 1 мм: та інкубують в 0,1 95 розчині колагенази І типу протягом 40 хвилин при температурі 437 "С, після чого промивають середовищем АРМІ-1640 з 1 95 суміші антибіотиків Репоігер. Подрібнені елементи внутрішньої оболонки аорти переносять в чашкиARMI-1640, fragments of para-aortic adipose tissue are removed and the outer layer of the aorta (Shpisa echiegta, adventitia) is dissected from the middle (Shpisa tedia) and inner (Shpisa ipiita) aorta. The selected internal membranes are washed in ARMI-1640 medium, crushed into fragments about 1 mm in size: and incubated in a 0.1 95 solution of type I collagenase for 40 minutes at a temperature of 437 "C, after which they are washed in ARMI-1640 medium with 1 95 of a mixture of antibiotics Repoiger.The crushed elements of the inner lining of the aorta are transferred to cups
Петрі діаметром 35 мм з повним живильним середовищем МЕМ АОтеєаіа з додаванням 10 95 фетальної сироватки корів.Petri dishes with a diameter of 35 mm with complete nutrient medium MEM Aoteaia with the addition of 10 95 fetal bovine serum.
Культивування усіх зразків клітин проводять за стандартних умов в СОг-інкубаторі при температурі 37 "С та зволоженій атмосфері з концентрацією СО» 595. Першу заміну середовища проводять через 10 діб після початку культивування. Подальшу заміну поживного середовища проводять через кожні три доби. Субкультивування проводять при досягненні 80 95 конфлуентності моношару за допомогою 0,25 95 розчину трипсину.Cultivation of all cell samples is carried out under standard conditions in a CO2 incubator at a temperature of 37 "С and a humidified atmosphere with a CO concentration of 595. The first change of the medium is carried out 10 days after the start of cultivation. Further replacement of the nutrient medium is carried out every three days. Subcultivation is carried out at reaching 80 95 confluency of the monolayer with the help of 0.25 95 trypsin solution.
Приклад.Example.
Джерелом клітин-попередників з магістральних судин була аорта самців мишей лінії ЕВМThe source of progenitor cells from main vessels was the aorta of male EVM mice
Зо віком 5 міс. Порівнювали культури клітин, отриманих з адвентиції та внутрішніх оболонок аорти, виділених за запропонованим способом.From the age of 5 months. Cultures of cells obtained from the adventitia and inner membranes of the aorta isolated by the proposed method were compared.
Прикріплені експланти з адвентиції зберігали адгезію до пластику протягом усього часу культивування до першого пасажу. Міграція клітин з експлантів адвентиції аорти мишей розпочиналась з 7-10 доби культивування. На ранніх пасажах культура була гетерогенною за морфологічними характеристиками: клітини мали переважно видовжену веретеноподібну форму з чіткою візуалізацією округлого або овального ядра та ядерець. Деякі з клітин набували полігональної форми та утворювали довгі відростки, які контактували з сусідніми клітинами, утворюючи кластери конфлюентного моношару. У частини клітин було виявлено вакуолізацію цитоплазми, за короткий час вони набували округлої форми та відкріплювались від поверхні культурального посуду, що свідчить про їх апоптоз.Attached adventitia explants maintained adhesion to plastic throughout the culture time until the first passage. The migration of cells from the explants of the adventitia of the mouse aorta began on the 7-10th day of cultivation. At early passages, the culture was heterogeneous in terms of morphological characteristics: cells were predominantly elongated spindle-shaped with a clear visualization of a round or oval nucleus and nucleoli. Some of the cells acquired a polygonal shape and formed long processes that contacted neighboring cells, forming clusters of a confluent monolayer. Cytoplasmic vacuolation was detected in some of the cells, in a short time they acquired a rounded shape and detached from the surface of the culture dishes, which indicates their apoptosis.
Культура клітин з внутрішніх оболонок аорти мишей за морфологічними характеристиками була представлена однорідною популяцією полігональних клітин, які щільно контактували між собою та утворювали характерні острівці моношару по типу "бруківки". В динаміці культивування острівці зливались між собою, утворюючи конфлюентний моношар. Цитоплазма клітин при цьому була світлою, гомогенною, без ознак вакуолізації. Ядра та ядерця зберігали правильну округлу форму та розміщувались по центру клітин. На ранніх етапах культивування були присутні поодинокі гігантські розпластані клітини, навколо них концентрично розміщувались клітини веретеноподібної форми, які при подальшому пасажуванні не виявлялись.According to the morphological characteristics, the culture of cells from the inner membranes of the aorta of mice was represented by a homogeneous population of polygonal cells, which were in close contact with each other and formed characteristic monolayer islands of the "cobblestone" type. In the dynamics of cultivation, the islands merged with each other, forming a confluent monolayer. At the same time, the cytoplasm of the cells was light, homogeneous, without signs of vacuolation. Nuclei and nucleoli kept the correct rounded shape and were located in the center of the cells. At the early stages of cultivation, single giant flattened cells were present, and spindle-shaped cells were concentrically located around them, which were not detected during further passage.
В результаті з експлантів аорти мишей, з якої було видалено адвентицію, отримано однорідну культуру клітин, яка за морфологічними характеристиками подібна до ендотеліальних, без збереження стромальних елементів.As a result, from the explants of the aorta of mice, from which the adventitia was removed, a homogeneous cell culture was obtained, which in terms of morphological characteristics is similar to endothelial cells, without preservation of stromal elements.
Таким чином, даний спосіб доступний, не потребує високовартісних реактивів та обладнання, забезпечує отримання чистої культури клітин, не контамінованої фібробластами та стромальними клітинами, і може використовуватись в експериментальній медицині.Thus, this method is affordable, does not require expensive reagents and equipment, provides a pure cell culture, not contaminated by fibroblasts and stromal cells, and can be used in experimental medicine.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
UAU201803317U UA127428U (en) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
UAU201803317U UA127428U (en) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
UA127428U true UA127428U (en) | 2018-07-25 |
Family
ID=63041456
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
UAU201803317U UA127428U (en) | 2018-03-29 | 2018-03-29 | METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
UA (1) | UA127428U (en) |
-
2018
- 2018-03-29 UA UAU201803317U patent/UA127428U/en unknown
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US9206393B2 (en) | Isolated adult pluripotent stem cells and methods for isolating and cultivating thereof | |
Chen et al. | A new isolation method of human limbal progenitor cells by maintaining close association with their niche cells | |
Spiliotis et al. | Axenic in vitro cultivation of Echinococcus multilocularis metacestode vesicles and the generationof primary cell cultures | |
CN110484506B (en) | Construction method and application of glioblastoma organoid model | |
RU2323252C1 (en) | Method for culturing human mesenchymal stem cells ex vivo | |
KR102445537B1 (en) | System and method for 3d cell culture and use thereof | |
CN105861428B (en) | A kind of induced fibroblast transdifferentiation is the induced medium and its application of cardiac muscle cell | |
CN108330099A (en) | The culture of personalized liver cell and amplification method and its application | |
CN103013909B (en) | Method of efficiently separating embryonic stem cells of poultry | |
CN105754935B (en) | A kind of induced fibroblast transdifferentiation is the induced medium and its application of fat cell | |
CN103756952B (en) | The structure of a kind of Cynoglossus semilaevis ovary cell line and application process | |
Antonica et al. | Generation of functional thyroid tissue using 3D-based culture of embryonic stem cells | |
CN102424813A (en) | Simple extraction method of high-purity mouse skeletal muscle satellite cells | |
US20090221022A1 (en) | Three Dimensional Cell Culture | |
CN103409363B (en) | Co-culture method of photosensory precursor cells and retinal tissue in vitro | |
CN106244522A (en) | A kind of stem cell cultivating system and cultural method thereof | |
JP4267689B2 (en) | Method for culturing avian cell and cell line obtained by the culturing method | |
UA127428U (en) | METHOD OF OBTAINING CULTURE OF AORT OF LABORATORY ANIMALS | |
CN102250841A (en) | Recoverable immortalized rat bone marrow mesenchyme stem cell as well as preparation method and application thereof | |
Huang et al. | A novel primary culture method for rat choroidal epithelial cells | |
CN108774630A (en) | A kind of primary culture method of Microhyla ornata Skeletal Muscle Cell | |
CN110923192B (en) | Long-term in vitro culture method of mature hepatocytes | |
CN104755610A (en) | Adipose tissue cells | |
RU2039816C1 (en) | Preparation for detaching contact-dependent cells from substrate | |
JP2007014273A (en) | Hepatic tissue/organ and method for preparation thereof |