TWI731667B - Pgc薄膜其製備方法及其於皮炎修復之應用 - Google Patents
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Abstract
本發明係關於一種親水性薄膜,其係由聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinyl pyrrolidone,PVP)/明膠(Gelatin)/幾丁聚醣(Chitosan)所組成(簡稱PGC薄膜),並透過戊二醛(Glutaraldehyde,GA)蒸氣交聯而製備得。本發明之PGC薄膜表現柔軟、有韌性的機械性質,以及穩定的生物降解度,且對於放射性皮炎有顯著的修復效果。
Description
本發明係關於一種促進傷口修復之由聚乙烯吡咯烷酮(Polyvinyl pyrrolidone,PVP)/明膠(Gelatin)/幾丁聚醣(Chitosan)製得之PGC薄膜,以及其用於皮炎修復的應用。
傷口產生時,身體為了修復組織會經過三個階段修復組織:(1)炎症期(Inflammatory phase),血小板釋放凝血因子時,也會釋放化學引誘物質吸引嗜中性白血球、巨噬細胞及淋巴球等免疫細胞,透過血管擴張及增加血管通透性等方式使免疫細胞進入組織進行一連串反應;(2)增生期(Proliferative phase),血管內皮細胞增生並產生適當的微血管網,供應纖維母細胞及週邊細胞營養及氧氣,而纖維母細胞在這時期主要增加纖維形成,利用新生細胞外基質(ECM)修補受損之組織;(3)再上皮化期(Reepithelialization phase),表皮角質細胞進行增生與向創面遷移並覆蓋,最後使表皮與基底膜產生連結,膠原纖維開始重組,使閉合之皮膚組織恢復彈性及強度。
依據傷口兩側變化及預後情形可分為初級癒合及次級癒合。傷口癒合之方法依據不同創面程度選用合適的方法修復組織,除了單純的縫合外,可用組織膠、軟膏等修復小型傷口;應用於多量組織液滲出傷口或關節處等活動量大之部位的多種功能性敷料至大面積損傷用的皮膚替代物(如自體移植皮膚或人工真皮等)。常見傷口敷料類型有:紗布、棉墊、薄膜、水膠體、水凝膠、纖維及泡沫等。薄膜敷料為延展性佳、操作性佳、可屏蔽外來細菌的半通
透性的敷料,但不適用於滲出液較多之傷口;水凝膠作為傷口敷料的優點是擁有良好的保濕性、延展性及透氣性,濕潤的環境對於創面有良好的修復效果。
水凝膠敷料也可當作藥物載體,透過三維網路形成之結構,可控制藥物緩慢釋出。Rassua等人提出海藻酸鈉/幾丁聚醣水凝膠能夠捕獲從微球釋放的藥物,進一步延遲其釋放(G.Rassu等人,Carbohydrate Polymers,vol.136,pp.1338-1347,2016)。幾丁聚醣及明膠共混應用已有許多研究使用,Pereda等人製備幾丁聚醣-明膠雙層(bi-layer)及幾丁聚醣/明膠複合之可食用且可生物降解的薄膜,在機械性質方面,加入明膠後的複合薄膜明顯比純幾丁聚醣薄膜柔軟;而在抗菌方面,顯示以幾丁聚醣/明膠複合共混薄膜,對於大腸桿菌及李斯特菌的抑菌效果最為顯著(M.Pereda等人,Food Hydrocolloids,vol.25,no.5,pp.1372-1381,2011)。
幾丁聚醣為幾丁質去乙醯化(deacetylaion)產生,具有良好生物相容性、生物降解性、無毒性和止血性,抗微生物和保濕劑(R.Jayakumar等人,Biotechnology Advances,vol.29,no.3,pp.322-337,2011)。由於這些性可應用於薄膜、海綿、微球、奈米纖維、藥物載體等生醫領域。當幾丁聚醣將逐漸釋放N-乙酰基-β-D-葡糖胺,即可啟動成纖維母細胞增殖、有序地使膠原沉積並刺激傷口部位的天然透明質酸合成水平的增加,因此能更快的傷口癒合和疤痕預防,也經常被使用於燙傷傷口修復(H.Ueno,T.Mori & T.Fujinaga,Advanced Drug Delivery Reviews,vol.52,no.2,pp.105-115,Nov.2001)。
聚乙烯吡咯烷酮(PVP)是一種白色吸濕性粉末,具有良好的生物相容性、成膜性、親水性且無毒性。由於其結構近似於蛋白質,已有文獻指出PVP可助於小鼠胚胎纖維母細胞(3T3 cells)生長,由於其近似於細胞基質般的功能,有助於為體外細胞創造近似體內之環境以助其生長(R.Rashid等人,Tissue Engineering Part C:Methods,vol.20,no.12,pp.994-1002,2014)[26]。
Risbud等人製備幾丁聚醣及聚乙烯吡咯烷酮交聯水凝膠薄膜,並研究幾丁聚醣/PVP水凝膠的機械性質、親水性及成纖維母細胞(NIH 3T3 cells)、人類子宮頸癌上皮細胞(SiHa cells)的生長效果,顯示幾丁聚醣薄膜中加入PVP,可使水凝膠在機械強度、親水性及含水量性質方面,優於單純的幾丁聚醣水凝膠;而PVP釋出有助於細胞的生長及貼附,故幾丁聚醣/PVP水凝膠適合應用於燒燙傷等慢性傷口的患者進行傷口修復(M.Risbud等人,Journal of Biosciences,vol.25,no.1,pp.25-30,Mar.2000)。
本發明遂首先試驗以不同聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)之比例組合,製得PGC薄膜比例為1:1:2wt%之薄膜(簡稱PGC112薄膜),該薄膜表現柔軟、有韌性的機械性質,且具有穩定的生物降解度。
於是,於一方面,本發明係提供一種PGC薄膜,其中聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)之組合比例為1:1~2:1~2wt%。本發明之一些具體實施例,所述之PGC薄膜其乾燥模材之抗張強度為4.5-7.0kgf/mm2、楊氏模數為0.75-0.95kN/mm2以及延伸率為4.8-15.6%。本發明之較佳具體實施例,所述之PGC薄膜其乾燥模材之抗張強度為6.1-7.0kgf/mm2及楊氏模數為0.75-0.95kN/mm2。本發明之其他具體實施例,所述之PGC薄膜其膨潤模材之延伸率為40.5-67.5%。
於本發明之一些具體實施例,所述之PGC薄膜中所含聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)之組合比例為1:1:2wt%。於本發明之另一些具體實施例,聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)之組合比例為1:2:2wt%。
於一方面,本發明係關於所述PGC薄膜之製備方法,包含:將聚乙烯吡咯烷酮、明膠及幾丁聚醣以1:1~2:1~2wt%之比例溶解於2%醋酸水溶液中;將所成之均勻溶液塗佈於鐵氟龍板上,放置室溫下自然晾乾;以及將乾燥薄膜以25wt%戊二醛(Glutaraldehyde,GA)蒸氣交聯15-20min,再置於110℃高溫下乾燥30-40min,以去除未反應之戊二醛以及醋酸,並完成明膠與幾丁聚醣之交聯程序,而製得一PGC薄膜。
於一方面,本發明係關於一種用於傷口減緩及修復之親水性敷料,其特徵在於包含本發明之PCG薄膜。
於本發明之其他具體實施態樣,所述之傷口為炎性傷口。於本發明之較佳具體實施態樣,所述之PCG薄膜係用於放射性皮炎修復。
圖1係顯示不同比例之PGC薄膜所測得的重量損失率。*p<0.05顯著差異於PGC111組,**p<0.01極為顯著差異於PGC111組。
圖2係顯示不同比例之PGC薄膜浸泡於PBS溶液中之生物降解度。
圖3係比較添加奈米澱粉-硬脂酸之PC薄膜(A)及添加奈米銀之PC薄膜(B)與本發明之PGC薄膜(C)的細胞毒性測試圖。
圖4係比較各比例之Serafim等人製備PVP/明膠薄膜PG薄膜(A)與本發明之本研究之PGC薄膜(B)的含水率柱狀圖。
圖5係比較Kim等人製備之明膠/幾丁聚醣薄膜(簡稱GC薄膜)與本發明之本研究之PGC薄膜(B)的細胞毒性測試圖。
圖6係比較抗張強度(A)及延伸率(B)的示意圖,其中UMH、MRH及CTH為Wang等人製備之PGC薄膜;PGC112為本發明所製備之PGC水膠薄膜。
圖7為PGC薄膜空氣接觸面與鐵氟龍板接觸面FE-SEM圖,放大倍率為×1000。
圖8為PGC薄膜截面FE-SEM圖,放大倍率為×1000。
圖9係顯示薄膜萃取液培養L929老鼠成纖維母細胞之第1天與第3天的細胞存活率表現。*p<0.05顯著差異於對照組,**p<0.01極為顯著差異於對照組。
圖10係顯示放射性皮炎出現開放性傷口之時間組距,即傷口產生時間之頻率,n=6隻SD大鼠。
圖11為各組皮炎開放性傷口面積之比較。*p<0.05表顯著差異,**p<0.01表極為顯著差異於對照組;ap<0.05表顯著差異,aap<0.01表極為顯著差異於3MTM CavilonTM組;取樣數,第15天:n=6,第21天:n=6,30天:n=3。
圖12為經照射40Gy電子射束後30天期間SD大鼠放射皮炎傷口變化數位影像。
圖13為大鼠修復第21天及第30天之H&E組織切片染色圖(×100)。
圖14係顯示各組皮膚組織CD68標記物面積的檢測結果。*p<0.05代表顯著差異,**p<0.01代表極為顯著差異於對照組;ap<0.05代表顯著差異,aap<0.01代表極為顯著差異於3MTM CavilonTM組,n=3。
實施例一、PGC薄膜之製備及結構與特性評估
將聚乙烯吡咯烷酮含量固定,明膠及幾丁聚醣以不同比例(各材料之含量配比如表1所示),溶於50ml之2%醋酸水溶液,以磁石攪拌機室溫下攪拌至完全溶解,將均勻溶液倒至鐵氟龍板上,以自動塗膜機以2.8mm厚度塗佈於鐵氟龍板上,塗佈好的薄膜放置室溫下自然晾乾備用。將乾燥薄膜以25wt%戊二醛(Glutaraldehyde,GA)蒸氣交聯15min,再置於110℃高溫下乾燥30min,以去除未反應之戊二醛以及醋酸,完成明膠與幾丁聚醣之交聯程序。
PGC薄膜重量損失率評估
圖1之結果係顯示,PGC薄膜浸泡0.9%生理食鹽水中24小時的重量損失率,重量損失率會影響薄膜的釋藥性的應用以及降解度,使傷口敷料更換次數增加或者加速被傷口組織吸收。各組薄膜在重量損失率的比較如下:PGC112>PGC121>PGC122>PGC111,而PGC111與PGC112重量損失率相比,幾丁聚醣之含量比例增加1wt%時,PGC112薄膜的重量損失率增加了6.25%,有極為顯著的差異(**p<0.01);PGC111與PGC121相比,當明膠比例增加1wt%時,PGC121重量損失率增加2.44%;PGC112與PGC122相比,PGC122之重量損失率少9.51%。
PGC薄膜生物降解率測試
為模擬人體體液中薄膜降解程度的變化,本實驗使用PBS為浸泡液,因PBS中的滲透壓以及離子濃度等是與人體中的是相匹配的。將薄膜裁剪成適當大小,並秤其初始重量(W0)後浸泡至10ml PBS中於37℃下培養,於第1、3、7天取出薄膜,並以去離子水清洗後,再以冷凍乾燥機冷凍乾燥24小時,將薄膜取出秤取其乾重(W1),最後利用公式計算出降解率(Degradation rate)。
如圖2結果顯示,PGC122降解度明顯提升,隨天數增加表現出持續上升的趨勢,第7天降解度為56.86%;PGC112於第3天起降解度就趨於平衡維持在27-28%,顯示PGC122薄膜於模擬人體體液中的穩定性。
PGC薄膜機械性能測試-拉伸測試
本實例中使用拉伸測試評估PGC薄膜在不同材料比例下的機械性能變化,將交聯好的乾燥PGC薄膜剪裁成5×3cm2大小的拉伸試片後,將其置於拉力機以500kgf夾具固定接著執行試驗直至斷裂,拉伸測試之施力速率為30mm/min。測量其乾燥模材之抗張強度(kgf/mm2)、楊氏模數(kN/mm2)以及延伸率(%),每組測試至少重複三次。厚度量測使用電子游標尺(1108-200,Insize)進行重複三次測量取其平均。
抗張強度能表示材料在拉伸至斷裂前的最大強度。由下表2所列之顯示,抗張強度PGC112>PGC122呈現極為顯著差異(**p<0.01),表示PGC112比PGC122更具強韌,可承受較大的力量拉扯。楊氏模數又稱彈性模量,為施展之正向應力與致使其產生於彈性限度下之正向應變比值,楊氏模數數值越低表示其彈性表現較佳。楊氏模數之測試結果表現出PGC112<PGC122,代表拉伸至相同應變情況下,PGC112所需施展之正向應力較低,意即PGC112彈性較PGC122佳。延伸率代表材料在斷裂前的最大應變,延伸率比較結果顯示PGC112>PGC122,有極為顯著差異(**p<0.01),表示PGC112可表現出相對強韌且延展性佳,具有作為適合傷口敷料之特性。
*p<0.05顯著差異於PGC122組,**p<0.01極為顯著差異於PGC122組
實施例二、本發明PGC薄膜與文獻薄膜之性能比對
與文獻PVP/幾丁聚醣薄膜之比對
Poonguzhali等人曾製備PVP/幾丁聚醣薄膜,以下稱PC薄膜(R.Poonguzhali等人,Polym.Bull.,vol.74,no.6,pp.2185-2201,2017)。於本實例係從重量損失率方面進行比較,依照文獻指出最佳比例PC薄膜於第8小時測得之重量損失率為36.92±1.0%,然而本發明之PGC薄膜測量24小時之重量損失率為24.77±1.83%,其測量時間雖比文獻多了16小時浸泡時間,但重量損失率仍低於PV薄膜測量8小時之重量損失率約12.15%,可見本發明之PGC薄膜之對於水溶解程度較低,能夠維持薄膜形體,長時間使用於組織液滲出之傷口上。
另外,圖3(A)為Poonguzhali等人所製得之PVP/幾丁聚醣/奈米澱粉-硬脂酸複合薄膜的細胞毒性測試結果,圖3(B)為Archana等人製備之PVP/幾丁聚醣/奈米銀複合薄膜(D.Archana等人,Int.J.Biol.Macromol.,vol.73,pp.49-57,2015)的細胞毒性測試結果。由圖3(A)與圖3(B)可看出,添加奈米澱粉-硬脂酸及奈米銀之PC薄膜於纖維母細胞毒性測試中發現,皆會產生抑制生長之情形。由於明膠為變性的蛋白質,更易使細胞貼附及生長,而從細胞毒性測試可證明,本發明添加明膠之PGC薄膜對細胞不具毒性,並且能顯著助於纖維母細胞增殖(圖3(C))。
與文獻PVP/明膠薄膜之比對
Lopes等人製備PVP/明膠薄膜(簡稱PG薄膜),測量其平衡含水率,三個比例3:7、5:5及7:3,所得數據分別為為90.2%、92.2%及89.8%,而測得本發明PGC薄膜之含水率為92.7±0.2%,高於PG薄膜之含水量,表示PGC
薄膜有能力可吸收更多的組織液(C.M.A.Lopes與M.I.Felisberti,Biomaterials,vol.24,no.7,pp.1279-1284,2003)。
另外,參見圖4之含水率比較結果,可觀察出Serafim等人製備之PG薄膜(Serafim等人-2015-Gelatin-PVP Hydrogels with Potential Skin Grafts A.pdf.),測量其平衡含水率皆低於90%,但本研究之PGC薄膜含水率皆為90%以上,相比於PG薄膜,本發明添加幾丁聚醣的PGC薄膜具備較強大的吸水性能,可吸收比PG薄膜更大量的組織液。
與文獻明膠/幾丁聚醣薄膜之比對
Patel等人製備不同比例的明膠/幾丁聚醣薄膜(簡稱GC薄膜),其平衡含水率皆低於90%,分別為77.5%、77.71%及85.40%(S.Patel等人,Int.J.Biol.Macromol.,vol.107,pp.1888-1897,2018),而本發明的PGC薄膜含水率為92.7%,明顯高於Patel等人製備之GC薄膜,由於PVP為親水性高分子,具有極高的吸水性,故本發明包含PVP之薄膜對於組織液吸收收有絕佳的效能。
Kim等人利用花青素及戊二醛交聯GC薄膜(S.Kim等人,J.Biomed.Mater.Res.B Appl.Biomater.,vol.75B,no.2,pp.442-450,2005)。如圖5,Kim等人以60,000cell/well之密度培養纖維母細胞15天,細胞毒性測試結果顯示,在第15天時生長最多的組為青花素組,其細胞生長將近7萬顆,而於本發明之PGC薄膜處理組,僅以10,000cell/well之密度種植細胞,於培養第3天就已達51,643顆細胞,表示本研究PGC薄膜不具有毒性,且相比於GC薄膜,PVP能夠使細胞快速生長,應用在傷口能加速傷口閉合。
與文獻PVP/明膠/幾丁聚醣薄膜之比對
Wang等人利用不同交聯劑並分別搭配超聲波+微波、微波及傳統製法製備PGC水凝膠膜,分別簡稱UMH、MRH、CTH薄膜(Y.Wang等人,Ultrason.
Sonochem.,vol.40,pp.714-719,2018)。拉伸試驗可測量較適當之材料機械性質,若欲應用於作為敷料使用,則薄膜應同時具備最佳抗張力及延展性。
從圖6之拉伸試驗數據比較可觀察出,UMH雖有高抗張強度,但其延伸率不足,易斷裂且呈現硬而脆的情況;MRH雖具有極高延伸率,但抗張強度差,薄膜呈現軟而弱的機械性質,以傳統製法製得之CTH薄膜,抗張強度及延伸率皆不及PGC112。因此,PGC112在此呈現出最理想之機械性質,薄膜強韌且具有高延伸率,作為傷口敷料可提供良好的舒適程度,本發明經由後述之動物實驗也可發現,SD大鼠不會因敷上PGC112而產生不適及移動困難等問題,故本發明之PGC薄膜確實符合理想敷料之要件。
PGC薄膜表徵顯微結構觀察
使用場發射掃描式電子顯微鏡(Field emission scanning electron microscope,FE-SEM)掃描薄膜表面結構,將PGC薄膜裁剪成符合載台之適當大小,表面鍍金40秒後進行掃描拍攝,拍攝位置為薄膜空氣接觸面(Air-contact surface)、鐵氟龍板接觸面(Plate-contact surface)及截斷面(Section view)。
圖7顯示PGC薄膜於空氣接觸面及鐵氟龍板接觸面的FE-SEM圖,從空氣接觸面觀察出PGC薄膜表面光滑且平坦,為緻密薄膜;紋狀結構可能是由於鐵氟龍板撕起時所造成。而圖8顯示出PGC薄膜致密的截面的FE-SEM圖。
實施例三、PGC薄膜之傷口癒合功效評估
體外細胞測試
依照ISO10993-12細胞毒性測試方法,在細胞培養液中萃取薄膜。使用薄膜萃取液培養L929老鼠成纖維母細胞分別1及3天,結果由圖14顯示,各處理組之細胞存活率皆高於100%,意即PGC薄膜無細胞毒性,且有助於L929細胞增長。
與對照組相比,PGC組在第24小時及72小時,皆表現對L929細胞具有極為顯著的促進增殖效果,證明PGC薄膜中的成分有助於纖維母細胞成長,故可應用於作為敷料,促進開放性傷口的基質生成。對於放射皮炎修復效果
使用七週齡Sprague Dawley品種大鼠(簡稱SD大鼠)共30隻,購入時體重約為250克,進行實驗時平均體重為300g,購自樂斯科生物科技股份有限公司,飼養環境在溫度22℃、濕度59%獨立大鼠房中,每籠均鋪滿木屑及玉米梗,定時更換水源及添加飼料,起先飼養於動物室一星期觀察其生理及外觀是否正常,如果正常無異狀則可執行放射線照射。
運用直線加速器(PreciseTM,ELEKTA,Sweden)之電子射束照射SD大鼠背部,選定使用6 MeV電子射束,單次劑量40Gy,6×6cm2電子錐,照射面積為直徑約2cm之圓形,劑量率為400cGy/min,SSD=100cm,選擇背部緊貼1cm Bolus使PDD之最大百分劑量深度(Dmax)集中於皮表(約皮下0.5mm),照射時間約10分鐘/隻,使大鼠背部產生第Ⅲ級放射皮炎之傷口。比照臨床放射治療分次間隔時間,照射後6小時表面予以生理食鹽水簡單清洗後給予對應敷料包紮。對照組及3MTM CavilonTM為比照正常臨床實際使用方式,故使皮膚暴露於空氣中,薄膜敷料以滅菌生理食鹽水潤濕後,在上方覆蓋一層3MTM TegadermTM防水透氣敷料(滅菌)使其固定於背部,敷料更換頻率為3天更換一次,如有吸收大量組織液或者脫落則立即更換,以間隔三天拍照紀錄之,於第21天及第30天各組犧牲3隻SD大鼠,以舒泰50麻醉鎮靜後剃除背部毛髮並拍照記錄傷口,隨後以過量CO2安樂死,剪下皮膚組織浸泡於10%福馬林中,待組織固定再以石蠟包埋以及切片作為染色前備用。
於第15及21天時進行實驗影像擷取,取樣數皆為6隻/組,於第30天之取樣數為3隻/組,實驗期間大鼠皆無因輻射造成之身體不適、體重驟降情
況,且薄膜覆蓋於大鼠背上並不會影響其飲食及活動。照射後,於第12天陸續開始出現脫毛及泛紅跡象,傷口大小不一且呈不規則狀,圖15表示各組(n=6)開放性傷口出現之時間組距,與Control組比較,3MTM CavilonTM組並無延遲傷口產生之效用,皆於6-15天產生傷口,此與Shaw等人之研究發現3MTM CavilonTM無痛保膚膜於試驗臨床中,與未處理組首發生放射皮炎時間無顯著差異,僅適合用於未出血前部位的結論相符。
PGC組於第15-21天產生傷口比率為50%,其他50%也只是輕中度的脫毛伴有小面積開放性傷口,外觀上明顯比對照組及3MTM CavilonTM組輕微,表示親水性敷料保濕作用可延遲放射性皮炎傷口的產生,相較於3MTM CavilonTM組,PGC薄膜防止摩擦的效果更佳。第15天之傷口表現也未見似Control組般大且深的傷口,PGC薄膜適合應用於減輕放射性皮炎的損傷及促進傷口癒合。
圖11顯示各組於第15、21及30天產生放射性皮炎傷口之面積,3MTM CavilonTM對於放射皮炎傷口的減輕及修復係於第30天才有顯著差異(*p<0.05),表示3MTM CavilonTM無痛保膚膜對於第Ⅲ級放射性皮炎的修復及減輕效果有限。
由圖10及圖11所顯示之趨勢,可將放射性皮炎傷口最大面積出現時間由是否使用PGC薄膜作為分界點,使用PGC薄膜的SD大鼠,第15天時的傷口面積相較於對照組及3MTM CavilonTM組,皆有顯著差異的小,而傷口面積於第15至21天之間增加其最大值出現在第21天,可表示放射性皮炎傷口的產生出現了延遲,傷口面積也較對照組小,比較三個天數的平均傷口面積,PGC組不管在傷口產生及癒合階段,皆有最理想之效果。由以上之實驗數據及結果可證明,PGC薄膜有助於放射性皮炎傷口修復的效果。
圖12為各天數放射性皮炎傷口面積的數位影像,可觀察出Control組傷口外觀多呈現結痂且凹陷的狀態;3MTM CavilonTM組結痂程度較小,且傷口面積縮小變化也較小;PGC組於第15天表現輕微脫毛及泛紅,外觀不同於Control組及3MTM CavilonTM組的大面積開放性傷口,於第21天的傷口外觀,PGC組傷口較為平坦且組織柔軟,但會伴隨著許多組織液滲出,由於在濕性環境下修復,傷口能減少過度纖維化,使積累的基質溶解,促進傷口癒合。結論,以PGC薄膜處理的傷口組織具有彈性且不易結痂,能減少疤痕組織之產生。
使用H&E常規切片染色觀察大鼠皮膚修復狀況,觀察第21天及30天組織染色切片,由圖13之結果發現,受到放射線照過後21天及30天,組織內見不到毛囊或皮膚感覺受器,真皮與上皮界線消失、膠原纖維水腫、微血管過度充血以及真皮增厚等表徵,為放射性皮炎表現。相較於3MTM CavilonTM組,PGC薄膜能保持濕潤環境修復,能使傷口表面不易積累大量基質,減少傷口周圍陡峭硬皮組織環繞和表面結痂產生,另外,能使纖維母細胞不過度增生,減少疤痕產生,修復的組織得以保持平坦與彈性。如圖13可見,PGC薄膜處理組之傷口組織有良好的再上皮化外,也可在第30天見毛囊的產生,相比於Control組及3MTM CavilonTM組,更有利於放射皮炎傷口修復。
巨噬細胞為傷口修復中重要的炎症細胞之一,標記抗體為CD68,傷口炎症早期由嗜中性白血球為主,巨噬細胞進入受損組織分泌多種細胞生長因子並召集炎症細胞浸潤,進行吞噬異物及促進免疫反應;發炎後期由巨噬細胞為主,吞噬凋亡過程的嗜中性白血球,減少浸潤於組織的嗜中性白血球,若巨噬細胞延遲聚集,會使嗜中性白血球過高,則會延長炎症反應,延遲傷口癒合。本實例亦偵測各組皮膚組織之CD68標記物表現。
從圖14之CD68標記物面積結果發現,在第21天及第30天,除了對照組外,其他組之CD68標記皆有減少的趨勢,表示傷口正處於主動癒合的狀態。
在第21天,PGC組的CD68標記物高於3MTM CavilonTM組,具極為顯著差異於對照組及3MTM CavilonTM組(**p<0.01),此可能是由於延後產生放射性皮炎傷口緣故,而使炎症反應較晚發生,到了第30天則下降,為處於主動修復狀態的跡象。結果表明,從第21天就小於其他組別,可對應於圖12之傷口面積結果,PGC薄膜的生物效應,可能作用於減少大部分白細胞介素誘導發炎,同時刺激成上皮細胞及成纖維細胞增長[13,68],對於放射性皮炎傷口癒合具有顯著功效。
綜合上述,本發明首先以1:1~2:1~2wt%之比例,製得具有柔軟且強韌的機械性質,以及穩定且較低的生物降解度之聚乙烯吡咯烷酮/明膠/幾丁聚醣薄膜(PGC薄膜),其中以PGC112及PGC122薄膜具有良好的吸水性質,而且有顯著助於L929細胞增殖,於放射性皮炎動物實驗結果顯示,PGC薄膜有助於放射性皮炎延遲發生;PGC薄膜吸收組織液功能可提供濕性修復環境、減少基質積累和促進細胞遷移及增殖,也可使發炎期縮短並進行主動修復狀態。因此,本發明之PGC薄膜,極具發展潛力應用於製備炎性傷口修復之親水性敷料。
Claims (7)
- 一種促進傷口修復之PGC薄膜,其特徵在於係由組合比例為聚乙烯吡咯烷酮、明膠及幾丁聚醣,其中聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)=1:1~2:1~2wt%之聚乙烯吡咯烷酮、明膠及幾丁聚醣所組成,且該PGC薄膜其乾燥模材之抗張強度為4.5-7.0kgf/mm2、楊氏模數為0.75-0.95kN/mm2以及延伸率為4.8-15.6%。。
- 如申請專利範圍第1項所述之PGC薄膜,其中該聚乙烯吡咯烷酮(P):明膠(G):幾丁聚醣(C)之組合比例為1:1:2wt%。
- 如申請專利範圍第1項所述之PGC薄膜,其中該PGC薄膜其乾燥模材之抗張強度為6.1-7.0kgf/mm2及楊氏模數為0.75-0.95kN/mm2。
- 如申請專利範圍第1項所述之PGC薄膜,其中該PGC薄膜其膨潤模材之延伸率為50.3-67.5%。
- 一種製備如申請專利範圍第1項所述之促進傷口修復之PGC薄膜之方法,包含:將聚乙烯吡咯烷酮、明膠及幾丁聚醣以1:1~2:1~2wt%之比例完全溶於2%醋酸水溶液中;將所成之均勻溶液塗佈於鐵氟龍板上,放置室溫下自然晾乾;及將乾燥薄膜以25wt%戊二醛(Glutaraldehyde,GA)蒸氣交聯15-20min,再置於110℃高溫下乾燥30-40min,以去除未反應之戊二醛以及醋酸,並完成明膠與幾丁聚醣之交聯程序,而得一PGC薄膜。
- 一種用於炎性傷口修復之親水性敷料,其特徵在於包含如申請專利範圍第1所述之PGC薄膜。
- 如申請專利範圍第6項所述之親水性敷料,其係用於減輕放射性皮炎的損傷及皮膚修復。
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CN105327385A (zh) * | 2014-08-06 | 2016-02-17 | 上海威尔医疗保健厂 | 功能性水凝胶医用敷料的制造方法 |
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