TW201934132A - 禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途 - Google Patents

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Abstract

本發明提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，在經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)；其中該抗疲勞包含提高肌肉肝醣濃度、有助於增加運動耐力、有助於提升血液中尿素氮代謝以及有助於抑制乳酸生成。

Description

禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途
本發明提供一種禽類粗蛋白萃取物，特別係一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途。
疲勞係指身體無法維持在一定水平上運作，各器官無法維持固定的工作能力；即身體因過度活性造成作業肌肉無法維持力量，而導致活動能力下降。
已知疲勞的成因為能量耗竭、代謝產物堆積、自由基損傷之因素。血液中葡萄糖在長時間的運動中進行代謝提供肌肉組織能量，當血糖含量不足以提供充足能量，肝醣便會被分解形成葡萄糖釋放於血液中。研究指出肌肉中肝醣含量可做為長時間肌肉運動的相關指標，而在大量消耗能量時，會促使體內進行無氧醣代謝以在短時間內增加大量ATP，同時也會產生大量乳酸堆積，造成氫離子濃度上升而是pH值下降，導致鈣離子的釋放並降低肌纖維的收縮能力，加快疲勞的發生。有研究指出，肌肉與血液中的乳酸值需5~10分鐘才會達到平衡，而乳酸可藉由轉變為葡萄糖或肝醣等方式去除。因此，加速乳酸的代謝為恢復疲勞之重要指標。
血尿素氮是人體中蛋白質及胺基酸代謝的最終產物，而蛋白質的分解速度與代謝速度則會影響血尿素氮的濃度。運動造成蛋白質與胺基酸激烈分解、腎臟的功能下降、脫水使得血漿量減少而導致腎臟的血流縮減以及蛋白質與胺基酸大量的分解，都會造成血尿素氮的濃度上升。
自由基為原子、分子及離子等元素，其外圍軌道上含有單獨為成對電子之結構，容易結合周遭其他細胞分子之電子而引發一連串的反應造成氧化壓力的產生。在長期或進行激烈運動情形下，自由基會大量的生成，而造成大量的氧化壓力。若抗氧化防禦系統不足以抗衡時，身體細胞組織將產生損傷，導致生理功能發生障礙。
當疲勞產生後會發生反應遲緩與無法進行精密操作等問題，將會增加機器操作上的失誤以及危險的發生。因此，如何從日常生活中補充何種物質或成分預疲勞之發生，一直是食品、營養保健與醫學界之重大課題。
有鑑於此，本發明提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由85~105℃之高溫高壓萃取9~11小時，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
本發明另提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備提高肌肉肝醣濃度之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
本發明另提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備增加運動耐力之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
本發明另提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備提升血液中尿素氮代謝之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
本發明另提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抑制乳酸生成之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
在本發明之一實施例中，其中該禽類粗蛋白萃取物進一步包含酪胺酸及甲硫胺酸。
在本發明之一實施例中，其中該禽類粗蛋白萃取物之有效劑量為每日攝取至少20 mL。
在本發明之一實施例中，其中該禽類肉品來源為雞、鴨、鵝或鴿子。
本發明之禽類粗蛋白萃取物不會影響動物體重、攝食量、肝臟重量及腎臟重量，對生理代謝無不良之影響。經由肝臟損傷指標(AST、ALT)以及肌肉損傷(CPK、肌酸酐)之數值顯示餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物對大鼠之安全性無不良的影響。肝臟及肌肉氧化傷害指標顯示餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後可提高抗氧化酵素的活性，形成保護作用。經過游泳力竭試驗結果得知，餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物之游泳時間明顯上升；代謝壓力生化指標評量結果顯示乳酸產生方面，餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物之乳酸產生較低；在肝臟及肌肉肝醣濃度方面，餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物之肌肉肝醣濃度呈現顯著增加。因此，本發明之禽類粗蛋白萃取物具有提高肌肉肝醣濃度、有助於增加運動耐力、有助於提升血液中尿素氮代謝以及有助於抑制乳酸生成之功效。
以下將配合圖式進一步說明本發明的實施方式，下述所列舉的實施例係用以闡明本發明，並非用以限定本發明之範圍，任何熟習此技藝者，在不脫離本發明之精神和範圍內，當可做些許更動與潤飾，因此本發明之保護範圍當視後附之申請專利範圍所界定者為準。
當疲勞產生後會發生反應遲緩、無法進行精密操作，故會增加操作上的失誤以及危險發生。當人體進行缺氧或激烈運動時，會藉由肝醣轉換成葡萄糖而提升體內血糖濃度，經由糖解作用(Glycolysis)以提供肌肉組織充分的能量、減少無氧運動後人體內乳酸的產生、及時清除乳酸或是增加體內抗氧化物質皆可達到抗疲勞的效果。
本發明提供一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途，本發明為評估禽類粗蛋白萃取物對抗疲勞功能之影響，參照衛生福利部公告之「健康食品之抗疲勞功能評估方法」規範，以9周齡Sprague-Dawley(SD)品系雄性大鼠進行試驗，每組8隻，分別為控制組、低劑量組、中劑量組及高劑量組。經8周餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後，進行體能挑戰與消除疲勞指標之評估。定義
本文所述之禽類粗蛋白萃取物包含雞、鴨、鵝及鴿子等禽類之粗蛋白萃取物。
本文所述之「抗疲勞」是指提高肌肉肝醣濃度、有助於增加運動耐力、有助於提升血液中尿素氮代謝以及有助於抑制乳酸生成。
如於本文中所使用數值為近似值，所有實驗數據皆表示在20%的範圍內，較佳為在10%的範圍內，最佳為在5%的範圍內。統計分析
依一般生物統計方法分析，SPSS統計軟體統整後以平均值(mean) ± 標準偏差 (standard deviation，S.D.) 表示。試驗數據利用統計軟體中單因子變異數分析(One-way ANOVA)之鄧肯式多變域測試(Duncan’s Multiple Range Test) 比較試驗物質介入後疲勞挑戰的恢復評量，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異(p ＞0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異(p ＜0.05)。當試驗物質介入後，在適當的疲勞性挑戰後，恢復評量指標至少有2種類型指標達到統計上的顯著改善(p ＜0.05)，即可判斷該試驗物質應具有抗疲勞之功能。實施例 1 本發明之禽類粗蛋白萃取物的製備方法
本發明選用15週齡的白色番鴨畜試1號，經屠宰後置於溫度-2℃至7℃的環境下驗收與原物料處理，挑選肉色正常且表面無滲出液、無異味，肉質富彈性的鴨肉裝入壓力鍋後，以設定溫度95℃，減壓濃縮滴取10小時，再經油水分離、85℃熱充填，最後於121℃滅菌15分鐘後獲得本發明之禽類粗蛋白萃取物。實施例 2 本發明之禽類粗蛋白萃取物的成分分析
本發明進一步將實施例1製備的鴨禽類粗蛋白萃取物及以相同方法製備的雞禽類粗蛋白萃取物進行成分分析，結果如表一、表二所示，其中含有胺基酸及蛋白質，以酥胺酸、組胺酸、纈胺酸、苯丙胺酸、異白胺酸、白胺酸以及離胺酸等胺基酸的含量較高，尤其白胺酸為人體所必需之胺基酸，因為該些胺基酸無法由肝臟中合成，必須藉由額外的攝取才能獲得；其可降低疲憊感，對有在進行體能鍛鍊者而言，白胺酸為α-酮異己酸(α-ketoisocaproate，KIC)以及β-羥基-β-甲基丁酸鹽複合物(beta-hydroxy beta-methylbutyrate, HMB)的前驅物，可以增進運動能力，加速肌肉疲勞的恢復速度。再者，在營養成分分析中進一步證實本發明之禽類粗蛋白萃取物不含反式脂肪且飽和脂肪脂含量極少，有益人體健康。 表一、 鴨禽類粗 蛋白萃取物與雞禽類粗蛋白萃取物之胺基酸分析 (mg/100g) 表二、鴨禽類組蛋白萃取物與雞禽類組蛋白萃取物之營養成分分析 實施例 3 本發明之禽類粗蛋白萃取物的抗疲勞評估
本發明為評估禽類粗蛋白萃取物對抗疲勞功能之影響，參照衛生福利部公告之「健康食品之抗疲勞功能評估方法」規範，以9周齡SD品系雄性大鼠(購自樂斯科生物科技股份有限公司)進行試驗，每組8隻，分別為控制組、低劑量組、中劑量組及高劑量組，其所投予本發明之禽類粗蛋白萃取物之低、中、高劑量分別0.58、1.17、2.92 g/kg B.W.(body weight)，控制組給予逆滲透水(大鼠口服給予劑量依據成人每日攝取量計算，如表三所示)。表三、 本發明之禽類粗蛋白萃取物各組餵食劑量 a 劑量換算：大鼠口服給予劑量依據成人每日攝取量，再根據大鼠相對人體之代謝係數(6.2)進行換算，計算出大鼠每日口劑量，以每人每日服用1g為例，大鼠劑量為0.103g/kg (1g/60kg × 6.2=0.103 g/kg)。 b 本發明之禽類粗蛋白萃取物餵食8周。規格為65 mL/瓶，凍乾比例8.7 %，所以凍乾後重量為5.66 g/ 瓶。
經8周餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後，進行體能挑戰與消除疲勞指標之評估。體能挑戰為游泳力竭試驗、並於試驗後進行疲勞評估。生理壓力恢復之評量包含代謝壓力指標：含乳酸上升率(Increase lactate rate)、乳酸下降率(Decrease lactate rate)、血尿素氮(BUN)含量。肌肉損傷指標(Muscle damage index)：含肌酸酐(Creatinine)、肌酸激酶(Creatinine phosphokinase，CPK)及肌紅蛋白(Myoglobin)。肝臟損傷指標(Liver damage index)：含麩胺酸苯醋酸轉胺基酵素(Aspartate aminotransferase，AST)及麩胺酸丙酮酸轉胺基酵素(Alanine Aminotransferase，ALT)活性。氧化傷害指標(Oxidative damage index)：含硫代巴比妥酸反應物質(Thiobarbituric acid reactive substances，TBARS)、過氧化經酶(Catalase)、超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase，SOD)及谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase，GPx)活性。
開始試驗前，大鼠經過1周入室檢疫及適應，使大鼠習慣、熟悉新的環境。第1天試驗開始，每日管餵本發明之禽類粗蛋白萃取物，持續至第56天；第49天進行游泳訓練，以利之後進游泳試驗；第52天進行負重3%游泳力竭試驗；第53天進行90分鐘游泳試驗後，測定血尿素氮(BUN)值；第55天進行10分鐘油用試驗後，測定游泳前、游泳後與休息20分鐘後血清乳酸值；第56天進行動物犧牲及採血後進行生理生化分析。3.1 體重及攝食量測定
試驗動物於給予開始前、試驗期間每周量測一次動物體重及攝食量；且試驗期間每周進行結算1次，量測方法為體重秤重當日加入定量飼料，一周後結算剩餘飼料量。如表四及表五所示，試驗結果顯示，試驗第1至8周低、中、高劑量平均體重及攝食量與控制組相較下，無顯著差異(p ＞0.05)。表四、試驗期間各組大鼠平均體重變化 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之fmultiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異(p ＞ 0.05)，不相同字 母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。 表五、試驗期間各組大鼠平均攝食量變化 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。3.2 肝臟及腎臟之重量測定
試驗結束大鼠犧牲時，秤取各組大鼠主要臟器肝、腎臟之重量，並進行統計分析。試驗期間結果如表六所示，各組大鼠肝、腎臟之重量與控制組相比較，並無顯著差異(p ＞0.05)。表六、各組大鼠肝臟與腎臟平均重量 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。3.3 游泳力竭試驗
實驗前一周，在餵食30分鐘後，先前進行游泳訓練。於試驗前禁食12小時後，將大鼠放入直徑45 cm、水深50 cm、水溫27±1℃的塑膠水桶中進行負重游泳，負重比率為體重之3 %，強迫大鼠進行游泳掙扎，直到體力消耗殆盡下沈為止，計算自落水開始至鼻孔沈入水中10秒即為游泳時間。
各組大鼠游泳力竭時間結果如表七所示，餵食低、中、高劑量之本發明之禽類粗蛋白萃取物後，大鼠游泳時間與控制組相比，可由442.3秒分別提升到598.8秒、571.3秒及585.6秒，可發現動物在餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後游泳時間增長，呈現顯著差異(p ＜0.05)，但在各劑量間無明顯差異(p ＞0.05)。表七、各組大鼠游泳力竭時間 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。3.4 乳酸生化分析檢測
進行10分鐘游泳試驗後，測定游泳前、游泳後與休息20分鐘後血清乳酸值，取得血清並以血清生化分析儀(7070 Autoanalyzer，日立)乳酸含量。游泳力竭試驗後乳酸含量之變化，由表八結果可發現，低、中及高劑量組之乳酸上升率與控制組相比有明顯減少，呈現顯著差異(p ＜0.05)；然而，各劑量組之乳酸下降率與控制組相比則無顯著差異(p ＞0.05)。此外，乳酸上升率與乳酸下降率於各劑量間無明顯差異(p ＞0.05)。3.5 血尿素氮生化分析檢測
進行90分種游泳試驗後，測定血尿素氮含量(BUN)。取得血清並以血清生化分析儀(7070 Autoanalyzer，日立)檢測血漿中血尿素氮含量。血尿素氮含量分析結果如表八所示，可發現餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後，各劑量組之血尿素氮值顯著低於控制組(p ＜0.05)，但在各劑量間無明顯差異(p ＞0.05)。3.6 肝臟與肌肉組織肝臟分析
本次餵食30分鐘後犧牲動物，取肝臟與小腿腓腸肌，並將肝醣分解為葡萄糖，以市售套組蔥酮試劑進行肝醣檢測。肝臟與肌肉肝醣濃度之分析結果如表八所示，肝臟肝醣濃度結果顯示，低、中及高劑量組與控制組相比，則無顯著差異(p ＞0.05)；肌肉肝醣濃度結果顯示，低、中及高劑量組與控制組相比呈現顯著增加(p ＜0.05)，但在各劑量間無明顯差異(p ＞0.05)。表八、各組大鼠血尿素氮、乳酸上升及乳酸下降率、肝臟及肌肉肝醣分析結果 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。3.7 肝臟與肌肉組織氧化傷害指標因子分析
本發明經由含硫代巴比妥酸反應物質(Thiobarbituric acid reactive substances，TBARS)、過氧化經酶(Catalase)、超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase，SOD)及谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase，GPx)活性檢測肝臟與肌肉組織氧化傷害程度。
硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid，TBA) 反應物質係參考Tarladgis et al. 之脂質過氧化分析法，以1,1,3,3-tetramethoxy-propane(TMP)為標準品，先以二次蒸餾水將TMP稀釋為1 mM，再以1 N H2 SO4 溶液將其濃度分別稀釋為0、20、40、60、80、100 μM，各取100 μL進行分析，分析方法與樣品相同。取100 μL的組織萃取液加入600 μL的5 % 三氯乙酸(trichloroacetic acid)以及200 μL 60 mmol/L的TBA，於80 ℃反應90分鐘後，冷卻至室溫，在經離心後(12,000×g，15 min，4 ℃)，去上清液以供丙二醛(malondialdehyde，MDA)濃度之分析。丙二醛與硫代巴比妥酸溶液在酸性環境下，加熱一段時間後會生成粉紅色物質，並在波長540 nm下測定吸光值，以推算檢體之「脂質過氧化」程度。硫代巴比妥酸是分析脂質過氧化作用所產生的產物，一般以MDA的產量表示，檢測單位以μM/g蛋白質表示之。
過氧化氫酶(Catalase)測定原理為過氧化氫酶能催化H2 O2 分解為H2 O及O2 ，而使H2 O2 吸光值隨時間增加而減少，由於反應量與吸收值減少速率呈比例關係，因此可依H2 O2 分解速率來定量過氧化氫酶活性。過氧化氫酶之活性以U/g蛋白質表示。以磷酸鹽緩衝液(Phosphate Buffered Saline，PBS；0.05 M NaH2 PO4 及Na2 HPO4 )稀釋H2 O2 ，使其吸光值約1.2~1.3之間進行試驗，配製過氧化氫酶(20、40、60、70、80、90、100 unti/mL/蛋白質)，取900 μL H2 O2 稀釋液與100 μL樣品均勻混合後，利用分光光度計檢測3分鐘內波長230 nm吸光值變化量，進行定量分析。
超氧化物歧化酶(Superoxide dismutase，SOD)活性分析依據SOD活性檢驗試劑Ransod(RANDOX Lab. Ltd，英國)。SOD活性定義為抑制2-(4-碘-苯基)-3-(4-硝基-苯基)-5-苯基四唑化氯(2-(4-iodo-phenyl)-3-(4-nitro-phenyl)-5- phenyltetrazolium chloride)還原反應速率50%所需酵素的量為一單位(U)，檢測單位以U/mg 蛋白質表示。
谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase，GPx)檢測係依據GPx活性檢驗試劑Ransel(RANDOX Lab. Ltd，英國)。GPx活性定義為每分鐘氧化1 mole NADPH所需酵素的量為一單位(U) ，組織的GPx活性以U/mg 蛋白質表示。
各組大鼠肝臟氧化傷害指標如表九所示，低、中及高劑量組之GPx活性顯著均高於控制組(p ＜0.05)；低劑量組之SOD活性與控制組相較則無顯著差異(p ＞0.05)，而中及高劑量組與控制組相較下，SOD活性顯著提升(p ＜0.05)；低、中及高劑量組之過氧化氫酶活性高於控制組(p ＜0.05)，各劑量間則無顯著差異(p ＞0.05)；各劑量組之硫代巴比妥酸反應物質(TBARS)含量與控制組相比，顯著降低(p ＜0.05)，而各劑量組無組間之差異(p ＞0.05)。表九、各組大鼠肝臟組織氧化傷害指標分析結果 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。
各組大鼠肌肉氧化傷害指標如表十所示，低、中及高劑量組之GPx活性均顯著高於控制組(p ＜0.05)；中、高劑量組之SOD活性均高於控制組(p ＜0.05)；低、中及高劑量組之過氧化氫酶活性與控制組，則相比顯著增加(p ＜0.05)；而GPx、SOD及過氧化氫酶活性於各劑量組皆無組間差異(p ＞0.05)；TBARS之各劑量組與控制組相比，顯著降低(p ＜0.05)。表十、各組大鼠肌肉組織氧化傷害指標分析結果 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。3.8 血清生化分析
事件結束時，使用吸入二氧化碳方式將所有試驗大鼠進行犧牲進行血液採樣。經4 ℃、3,000×g條件下離心15分鐘，取得血清並以血清生化分析儀(7070 Autoanalyzer，日立)及相關試劑檢測血清樣本中之天冬氨酸氨基轉移酶(Aspartate aminotransferase，AST)、丙氨酸氨基轉移酶(Alanine aminotransferase，ALT)、葡萄糖(Glucose)、血尿素氮(BUN)與肌酸酐(Creatinine)。
各組大鼠血清生化檢測結果如表十一所示，各組之肝臟損傷指標(AST、ALT)之數值均無顯著差異(p ＞0.05)。3種肌肉損傷指標(CPK、肌酸酐、肌紅蛋白)，而低、中及高劑量組之CPK、肌酸酐濃度與控制組相較下，數值均無顯著差異(p ＞0.05)。各劑量之肌紅蛋白濃度與控制組相較下，顯著增加(p ＞0.05)。在血糖值方面，各組間也並無顯著差異(p ＞0.05)。表十一、各組大鼠血清生化分析結果 所有數據均以Mean ± S.D.表示，n = 8。以One-Way ANOVA之Duncan's multiple range test比較各組間之差異，以英文字母表示統計之結果，相同字母表示組間不具統計上差異 (p ＞ 0.05)，不相同字母表示組間具統計上差異 (p ＜ 0.05)。
綜上所述，各劑量組平均體重、平均攝食量及大鼠肝、腎臟之重量與控制組比較；代表餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物對生理代謝無不良反應之影響。餵食低、中、高劑量之本發明之禽類粗蛋白萃取物後，其大鼠游泳時間與控制組相比，可442.3秒分別提升到598.8秒、517.3秒即585.6秒游泳時間增長，表示具提升大鼠基礎體力之效果。血尿素氮分析結果，各劑量組之血尿素氮值顯著低於控制組，表示由低劑量組起，即具有加快蛋白代謝的能力，而降低血尿素氮的含量。游泳力竭試驗後乳酸含量之變化，由結果顯示，經過游泳試驗後乳酸含量會因疲勞而增加，休息後也會因乳酸代謝而逐漸降低。由血漿中乳酸分析結果可知，各劑量組大鼠給予本發明之禽類粗蛋白萃取物，於運動測試後，可抑制乳酸之形成，而減緩乳酸堆積。肌肉肝醣濃度之分析結果，各劑量組與控制組相比，呈現顯著增加。表示可藉由提高肌肉肝醣濃度、增加抗疲勞之效果。血清生化指標分析結果可知，各組間之肝臟損傷指標(AST、ALT)之數值均無顯著差異；肌肉損傷(CPK、肌酸酐)之數值均無顯著差異，顯示餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物對大鼠之安全性無不良的影響。各劑量組之肝臟及肌肉CPx、過氧化氫酶活性均顯著高於控制組，顯示餵食本發明之禽類粗蛋白萃取物後，可提高抗氧化酵素的活性，形成保護作用。在氧化傷害指標方面，TBARS為脂質過氧化反應脂標之一。因此，劇烈運動後，脂質過氧化物會顯著增加，由結果顯示，本發明之禽類粗蛋白萃取物可顯著降低肝臟與肌肉TBARS數值，各劑量組間對於改善肝臟與肌肉脂質過氧化現象，則顯著差異。因此，本發明之禽類粗蛋白萃取物具有提高肌肉肝醣濃度、有助於增加運動耐力、有助於提升血液中尿素氮代謝以及有助於抑制乳酸生成之功效。
無。
無。

Claims (8)

  1. 一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抗疲勞之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由85~105℃之高溫高壓萃取9~11小時，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
  2. 一種禽類粗蛋白萃取物用於製備提高肌肉肝醣濃度之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
  3. 一種禽類粗蛋白萃取物用於製備增加運動耐力之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
  4. 一種禽類粗蛋白萃取物用於製備提升血液中尿素氮代謝之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
  5. 一種禽類粗蛋白萃取物用於製備抑制乳酸生成之組合物的用途，其中該禽類粗蛋白萃取物係一禽類肉品經由高溫高壓萃取，再經由油水分離去除油脂後而獲得，且該禽類粗蛋白萃取物至少包含支鏈胺基酸(Branched- chain amino acid，BCAA)、組胺酸(Histidine)、酥胺酸(Threonine)、離胺酸(Lysine)以及苯丙胺酸(Phenylalanine)。
  6. 如申請專利範圍第1項至第5項任一項所述之用途，其中該禽類粗蛋白萃取物進一步包含酪胺酸及甲硫胺酸。
  7. 如申請專利範圍第1項至第5項任一項所述之用途，其中該禽類粗蛋白萃取物之有效劑量為每日攝取至少20 mL。
  8. 如申請專利範圍第1項至第5項任一項所述之用途，其中該禽類肉品來源為雞、鴨、鵝或鴿子。
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