TW201632620A - 使用前驅細胞治療視網膜變性 - Google Patents

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伊恩 哈里斯
曹靜
納汀 德吉內
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Abstract

使用諸如產後衍生細胞之前驅細胞及前驅細胞之條件培養基來治療及減輕視網膜變性之方法及組成物係經揭示。亦揭示由保護視網膜細胞及抑制視網膜細胞之細胞凋亡的細胞諸如光受體細胞所分泌之營養因子及其他劑。

Description

使用前驅細胞治療視網膜變性 【相關申請案之交互參照】
本申請案主張2014年12月16日提出申請之美國臨時申請案第62/092,658號及2015年10月2日提出申請之美國臨時申請案第62/236,732號兩案之權益；上述各案之全部內容以引用方式併入本文中。
本發明係關於用於眼科疾病及病症的基於細胞或再生性療法的領域。詳言之，本發明提供使用前驅細胞(諸如臍帶組織衍生細胞及胎盤組織衍生細胞)及由該些細胞製備之條件培養基來再生或修復眼細胞及組織之方法及組成物。
眼睛是一個複雜且敏感的身體器官，會罹患許多疾病及其他影響其正常發揮功能之能力的有害病狀。許多該些病狀與特定眼細胞及由該些細胞組成之組織的損傷或變性相關聯。舉例而言，視神經及視網膜之疾病及變性病狀為全世界失明之首要原因。角膜、水晶體及相關眼組織之損傷或變性為全世界視力喪失之另一顯著原因。
視網膜含有七層交替細胞及將光信號轉化成神經信號之過程。視網膜光受體與鄰近視網膜色素上皮(RPE)形成功能單元，其在許多病症中由於遺傳突變或環境條件(包括年齡)而變得不平衡。此導致光受體經由細胞凋亡或繼發性變性而損失，從而導致視力之進行性劣化並在一些情況下導致失明(有關綜述參見例如，Lund,R.D.等人，Progress in Retinal and Eye Research,2001；20：415-449)。具有此模式之兩類眼病症為年齡相關性黃斑變性(AMD)及色素性視網膜炎(RP)。
AMD在美國是50歲或年齡更大之人口中視力喪失之最普遍原因且其盛行率隨年齡升高。AMD之原發性病症似乎係因RPE功能異常及在布魯赫氏(Bruch's)膜中之變化所致，其特徵在於特別是脂質沉積、蛋白質交聯及營養素滲透性降低(參見Lund等人，2001見前文)。多種要素可導致黃斑變性，包括遺傳構成、年齡、營養、吸煙及暴露於陽光或其他氧化應力。非滲出性、或「乾性(dry)」形式之AMD佔AMD病例之90%；其他10%為滲出性、新生血管形式(「濕性(wet)」AMD)。在乾性AMD患者中，視網膜色素上皮(RPE)之逐漸消失導致環繞狀之萎縮區域。因為光受體損失跟隨在RPE消失之後，所以受影響之視網膜區域僅剩極少或完全無視覺功能。
AMD之當前療法涉及諸如例如雷射療法及醫藥介入之程序。雷射波束藉由轉移熱能來破壞黃斑下之滲漏血管，以延緩視力喪失之速率。雷射療法之缺點在於，由波束遞送之高熱能亦破壞附近的健康組織。Neuroscience第4版(Purves,D，等人2008)指出「目前沒有乾性AMD之治療。」
RPE移植在人類中尚未成功。舉例而言，Zarbin,M,2003指出「在正常老化情況下，人類布魯赫氏膜(尤其在黃斑下區域中)經歷許多改變(例如，厚度增大、ECM及脂質之沉積、蛋白質之交聯、高級糖化 終產物之非酶形成)。此等改變及由於AMD之額外改變可能降低ECM配體(例如，層黏蛋白、纖連蛋白素及膠原蛋白IV)之生物可利用性，且造成AMD眼睛中極為不良的RPE細胞存活。因此，儘管人類RPE細胞表現附著於此等ECM分子所需之整合素，但是老化的黃斑下人類布魯赫氏膜上之RPE細胞存活仍然受損。」(Zarbin,MA,Trans Am Ophthalmol Soc,2003；101：493-514)。
色素性視網膜炎主要被認為是一種遺傳性疾病，其中超過100種突變與光受體損失相關聯(參見Lund等人，2001，見前文)。儘管大部分突變以光受體為目標，但有些突變直接影響RPE細胞。綜上，此等突變影響諸如光受體與RPE細胞之間的分子運輸及光傳導之過程。
其他較不常見但亦有損健康的視網膜病變也可涉及導致視力喪失及失明之進行性細胞變性。此等視網膜病變包括例如糖尿病視網膜病變及脈絡膜新生血管膜(CNVM)。
用於組織修復及再生之基於幹細胞的療法的出現，對許多前述細胞變性病變及其他眼病症提供有前景之治療。幹細胞能夠自我更新及分化以產生多種成熟細胞譜系。此類細胞之移植可用來作為重構靶標組織之臨床工具，從而恢復生理及結構功能。幹細胞技術之應用範圍廣泛，包括組織工程化、基因療法遞送、及細胞治療，亦即，經由外源性供應可生產或含有生物治療劑之活細胞或細胞組分來遞送該些劑至靶標位置。(有關綜述，參見例如，Tresco,P.A.等人，Advanced Drug Delivery Reviews,2000,42：2-37)。
最近，已顯示產後衍生細胞改善視網膜變性(US 2010/0272803)。皇家外科學院(Royal College of Surgeons,RCS)大鼠具有影響外節吞噬之酪胺酸受體激酶(Mertk)缺陷，從而引起光受體細胞死亡。(Feng W.等人，J Biol Chem.,2002,10：277(19)：17016-17022)。發現將視 網膜色素上皮(RPE)細胞移植至RCS大鼠之視網膜下空間中會限制光受體損失之進展且保留視覺功能。(US 2010/0272803)。亦已證明，產後衍生細胞可在RCS模型中用於促進光受體救援且因此保留光受體。(US 2010/0272803)。將人類臍帶組織衍生細胞(hUTC)經視網膜下注射至RCS大鼠眼睛中改良視覺銳度且改善視網膜變性(US 2010/0272803；Lund RD，等人，Stem Cells.2007；25(3)：602-611)。此外，以衍生自hUTC之條件培養基(CM)進行治療，可使體外失養性RPE細胞恢復對ROS之吞噬。(US 2010/0272803)。
由吞噬細胞清除細胞凋亡細胞為正常生命不可或缺的一部分，在此過程中之缺陷會對自身耐受性及自體免疫性產生顯著影響(Ravichandran等人，Cold Spring Harb Perspect Biol.,2013,5(1)：a008748.doi：10.1101/cshperspect.a008748.Review)。細胞凋亡細胞之辨識及移除主要由職業性吞噬細胞(受體結合病原體以進行吞噬)諸如巨噬細胞、單核細胞、及其他白血球，及非職業性吞噬細胞(吞噬不是主要功能)諸如上皮細胞、RPE細胞、內皮細胞所媒介。迄今為止已識別出許多「吃我(eat me)」信號，包括表面蛋白質之醣基化改變或表面電荷之改變(Ravichandran等人，Cold Spring Harb Perspect Biol.,2013)。磷脂醯絲胺酸(PS)之外化為細胞凋亡之特徵，且為研究最多的「吃我」信號(Wu等人，Trends.Cell Biol.,2006,16(4)：189-197)。「吃我」信號由吞噬細胞吞沒(engulfment)受體直接辨識(如由PS受體辨識)，或間接經由橋分子及輔助受體來辨識(Erwig等人，Cell Death.Differ.,2008；15：243-250)。橋分子乳脂小球EGF因子8(MFG-E8)、生長休止特定6(Gas6)、蛋白質S、血小板反應蛋白(thrombospondin；TSP)、載脂蛋白H(先前稱為β2-醣蛋白，β2-GPI)全部結合至細胞凋亡細胞表面上之PS。MFG-E8隨後可由αvβ3及αvβ5整合素經由其RGD模體來辨識(Hanayama等人，Science,2004,304：1147-1150； Borisenko等人，Cell Death Differ.,2004；11：943-945)，Gas6可由Axl、Tyro3及Mer家族之受體酪胺酸激酶辨識(Scott等人，Nature,2001；411：207-211)且載脂蛋白H由β2-GPI受體辨識(Balasubramanian等人，J Bio Chem,1997；272：31113-31117)。其他橋分子與細胞凋亡細胞表面上改變的糖及/或脂質之辨識有關，諸如膠凝素(collectin)家族之成員界面活性蛋白質A及D(Vandivier等人，J Immunol,2002；169：3978-398)。
分子之膠凝素家族隨後係經由其膠原尾部與鈣網伴護蛋白(calreticulin,CRT)之交互作用而經辨識，此繼而藉由吞噬細胞經由低密度脂蛋白(LDL)受體相關蛋白質(LRP-1/CD91)傳導攝取信號(Gardai等人，Cell,2003；115：13-23)。作為另一實例，所識別之第一橋分子為作為細胞外基質醣蛋白之血小板反應蛋白(TSP)-1(Savill等人，J Clin Invest,1992；90：1513-1522)，且認為其結合至細胞凋亡細胞上之TSP-1結合位點且隨後結合至吞噬細胞上的包含αvβ3與αvβ5整合素及清道夫受體CD36之受體複合物。膜聯蛋白(Annexin)I屬於Ca2+依賴性磷脂結合蛋白之膜聯蛋白家族，且優先定位於細胞膜之細胞溶質(cytosolic)面上。膜聯蛋白I經顯示係與PS共定位。
由RPE對ROS之吞噬對於視網膜功能而言為必需的(Finnemann等人，PNAS,1997；94：12932-937)。據報告參與RPE吞噬ROS之受體包括清道夫受體CD36、整合素受體αvβ5、稱為Mertk之受體酪胺酸激酶、及甘露糖受體(MR)(CD206)(Kevany等人，Physiology,2009；25：8-15)。Finnemann發現，經分離之ROS擁有經外化的PS，該經外化的PS之阻斷或移除減少ROS於培養物中被RPE結合及吞沒(Finnemann等人，PNAS,2012；109(21)：8145-8148)。但是，對於RPE吞噬的理解仍甚少。
本發明提供適用於眼科疾病及病症的基於細胞或再生性療法的組成物及方法。詳言之，本發明之特徵在於用於治療眼科疾病或病狀之方法及組成物，包括醫藥組成物，該等方法及組成物包括使用諸如產後衍生細胞之前驅細胞及由該些細胞產生之條件培養基來再生或修復眼組織。產後衍生細胞可為臍帶組織衍生細胞(UTC)或胎盤組織衍生細胞(PDC)。
本發明之一個態樣為一種治療眼科疾病之方法，其包含向對象投予前驅細胞、或由前驅細胞群製備之條件培養基，其中該些細胞分泌橋分子。在本發明之一實施例中，橋分子係由條件培養基中之細胞群分泌。在進一步實施例中，橋分子係選自MFG-E8、Gas6、血小板反應蛋白(TSP)-1及TSP-2。在本發明之實施例中，細胞為前驅細胞。在本發明之具體實施例中，細胞為產後衍生細胞。在本發明之實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織或胎盤組織。
在實施例中，前驅細胞(例如產後衍生細胞)群分泌橋分子。在一實施例中，由前驅細胞(例如產後衍生細胞)群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。由該些細胞分泌且分泌於條件培養基中之此類橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。產後衍生細胞為臍帶組織衍生細胞(UTC)或胎盤組織衍生細胞(PDC)。
在一實施例中，橋分子抑制光受體細胞之細胞凋亡。在另一實施例中，由前驅細胞分泌且分泌於條件培養基中之橋分子減少光受體細胞損失。在一實施例中，光受體細胞損失係藉由橋分子刺激光受體片段之吞噬來減少。
在另一實施例中，上文所述之細胞群或由上文所述之細胞群製備之條件培養基改質視桿細胞外節(ROS)以利吞噬。在進一步實施例中，橋分子增強視網膜色素上皮(RPE)細胞對ROS之結合及內化。
在另一實施例中，上文所述之細胞群或由上文所述之細胞群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之受體酪胺酸激酶(RTK)營養因子。在一特定實施例中，營養因子為BDNF、NT3、HGF、PDGF-CC、PDGF-DD及GDNF。在實施例中，RTK營養因子媒介視網膜色素上皮(RPE)細胞中之吞噬。
在某些實施例中，RTK營養因子媒介RPE細胞吞噬以吞噬脫落的光受體片段(由細胞脫落的光受體片段)。在進一步實施例中，RTK營養因子活化RCE細胞上之受體以刺激吞噬。
本發明之另一態樣之特徵在於一種用於減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含向眼睛投予有效減少光受體細胞損失之量的前驅細胞群或由前驅細胞群製備之條件培養基。在本發明之一實施例中，前驅細胞為產後衍生細胞。在一具體實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織或胎盤組織。如在其他實施例中，產後衍生細胞分泌橋分子。在實施例中，條件培養基含有由細胞群(諸如產後衍生細胞群)分泌之橋分子。由產後衍生細胞分泌之此類橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
在另一實施例中，條件培養基係產生自分離的產後衍生細胞或產後衍生細胞群，產後衍生細胞衍生自實質上不含血液之人類臍帶組織或胎盤組織。在實施例中，產後衍生細胞能夠在培養物中擴增且具有分化成神經表型之細胞的潛能；其中該細胞需要L-纈胺酸以供生長且能夠於至少約5%氧氣中生長。此細胞進一步包含下列特徵中之一或多者：(a)在培養物中進行至少約40次倍增的潛能；(b)在經塗布或未經塗布的組織培養容器上附著並擴增，其中經塗布之組織培養容器包含明膠、層黏蛋白、膠原蛋白、聚鳥胺酸、玻璃連接蛋白、或纖連蛋白素之塗層；(c)生產組織因子、波形蛋白(vimentin)及α-平滑肌肌動蛋白(alpha-smooth muscle actin)中之至 少一者；(d)生產CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α、PD-L2及HLA-A、B、C中之至少一者；(e)不生產CD31、CD34、CD45、CD80、CD86、CD117、CD141、CD178、B7-H2、HLA-G及HLA-DR、DP、DQ中之至少一者，如藉由流動式細胞測量術所偵測；(f)針對編碼下列之至少一種基因的基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經增加：介白素8；內質網蛋白(reticulon)1；趨化激素(C--X--C模體)配體1(黑色素瘤生長刺激活性物，α)；趨化激素(C--X--C模體)配體6(顆粒性細胞趨化蛋白質2)；趨化激素(C--X--C模體)配體3；腫瘤壞死因子，α-誘發蛋白質3；C型凝集素超家族成員2；威爾姆斯(Wilms)腫瘤1；醛去氫酶1家族成員A2；腎素(renin)；氧化低密度脂蛋白受體1；智人(Homo sapiens)殖株IMAGE：4179671；蛋白質激酶C ζ；假想蛋白質DKFZp564F013；卵巢癌向下調控因子1；及殖株DKFZp547k1113之智人基因；(g)針對編碼下列之至少一種基因的基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經減少：矮小同源盒(short stature homeobox)2；熱休克27kDa蛋白質2；趨化激素(C--X--C模體)配體12(基質細胞衍生因子1)；彈性蛋白(瓣上主動脈狹窄，威廉-波倫(Williams-Beuren)症候群)；智人mRNA；cDNA DKFZp586M2022(來自殖株DKFZp586M2022)；間葉同源盒2(生長休止特異性同源盒(growth arrest-specific homeo box))；sine oculis同源盒同源物1(果蠅(Drosophila))；αB水晶體蛋白；形態發生紊亂關聯活化物2(disheveled associated activator of morphogenesis 2)；DKFZP586B2420蛋白質；類似於neuralin 1者；結合四素(tetranectin，纖維蛋白溶酶原(plasminogen)結合蛋白質)；src同源體3(SH3)與多半胱胺酸區(cysteine rich domain)；膽固醇25-羥化酶；矮小相關轉錄因子3(runt-related transcription factor 3)；介白素11受體，α；原膠原蛋白C-內肽酶增強子(procollagen C-endopeptidase enhancer)；捲曲同源物7 (frizzled homolog 7)(果蠅)；假想基因BC008967；第三型膠原蛋白α1；固生蛋白C(tenascin C,hexabrachion)；易洛魁族同源盒蛋白質5(iroquois homeobox protein 5)；希菲斯特蛋白(hephaestin)；整合素β8；突觸囊泡醣蛋白(synaptic vesicle glycoprotein)2；神經胚細胞瘤，致腫瘤性抑制因子1；類胰島素生長因子結合蛋白質2，36kDa；智人cDNA FLJ12280 fis，殖株MAMMA1001744；類細胞介素受體因子1；鉀中間物/小電導鈣活化通道，次家族N，成員4；整合素β7；具有PDZ-結合模體之轉錄共活化物(TAZ)；sine oculis同源盒同源物2(果蠅)；KIAA1034蛋白質；囊泡相關膜蛋白質5(肌短蛋白(myobrevin))；含EGF類fibulin細胞外基質蛋白質(EGF-containing fibulin-like extracellular matrix protein)1；早期生長反應蛋白質(early growth response)3；無背端同源盒(distal-less homeo box)5；假想蛋白質FLJ20373；醛基-酮基還原酶家族1，成員C3(3-α羥類固醇去氫酶(3-alpha hydroxysteroid dehydrogenase)，II型)；雙聚醣(biglycan)；具有PDZ-結合模體之轉錄共活化物(TAZ)；纖連蛋白素1；腦啡肽前質(proenkephalin)；整合素，類β1(具有類EGF重複區)；智人mRNA全長插入物cDNA殖株EUROIMAGE 1968422；EphA3；KIAA0367蛋白質；利尿鈉胜肽受體C(natriuretic peptide receptor C)/鳥苷酸環化酶C(guanylate cyclase C)(心房利尿鈉胜肽受體C(atrionatriuretic peptide receptor C))；假想蛋白質FLJ14054；智人mRNA；cDNA DKFZp564B222(來自殖株DKFZp564B222)；BCL2/類腺病毒E1B 19kDa交互作用蛋白質3(adenovirus E1B 19kDa interacting protein 3-like)；AE結合蛋白質1；細胞色素c氧化酶次單元VIIa多肽1(肌肉)；類似於neuralin 1者；B細胞轉位基因1；假想蛋白質FLJ23191；及DKFZp586L151；及(h)不表現hTERT或端粒酶。在一實施例中，臍帶組織衍生細胞進一步具有以下特徵：(i)分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1b、 I309、MDC、RANTES及TIMP1中之至少一者；(j)不分泌TGF-β2、MIP1a、ANG2、PDGFbb及VEGF中之至少一者，如藉由ELISA所偵測。在另一實施例中，胎盤組織衍生細胞進一步具有以下特徵：(i)分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1a、RANTES及TIMP1中之至少一者；(j)不分泌TGF-β2、MIP1b、ANG2、PDGFbb、FGF及VEGF中之至少一者，如藉由ELISA所偵測。
在特定實施例中，產後衍生細胞具有以下細胞型之所有識別特徵：細胞型UMB 022803(P7)(ATCC存取號PTA-6067)；細胞型UMB 022803(P17)(ATCC存取號PTA-6068)、細胞型PLA 071003(P8)(ATCC存取號PTA-6074)；細胞型PLA 071003(P11)(ATCC存取號PTA-6075)；或細胞型PLA 071003(P16)(ATCC存取號PTA-6079)。在一實施例中，衍生自臍組織之產後衍生細胞具有細胞型UMB 022803(P7)(ATCC存取號PTA-6067)或細胞型UMB 022803(P17)(ATCC存取號PTA-6068)之所有識別特徵。在另一實施例中，衍生自胎盤組織之產後衍生細胞具有以下細胞型之所有識別特徵：細胞型PLA 071003(P8)(ATCC存取號PTA-6074)；細胞型PLA 071003(P11)(ATCC存取號PTA-6075)；或細胞型PLA 071003(P16)(ATCC存取號PTA-6079)。
在某些實施例中，產後衍生細胞在一或多種酶活性存在下分離，該些酶活性包含金屬蛋白酶活性、黏液分解活性及中性蛋白酶活性。較佳地，產後衍生細胞具有正常核型，其在細胞繼代培養時維持。在較佳實施例中，產後衍生細胞表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90中之各者。在實施例中，產後衍生細胞表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α及HLA-A、B、C中之各者。在較佳實施例中，產後衍生細胞不表現CD31、CD34、CD45、CD117。在實施例中，產後衍生細胞不表現CD31、 CD34、CD45、CD117、CD141、或HLA-DR、DP、DQ，如藉由流動式細胞測量術所偵測。在實施例中，該些細胞不表現hTERT或端粒酶。
在如上文之實施例中，細胞群為實質上均質性產後衍生細胞群。在特定實施例中，該族群為均質性產後衍生細胞群。在本發明之實施例中，產後衍生細胞係衍生自實質上不含血液之人類臍帶組織或胎盤組織。
在某些實施例中，如上文所述之產後衍生細胞群或由該細胞群製備之條件培養基係與至少一種其他細胞型一起投予，該等其他細胞型諸如星狀細胞、寡樹突細胞、神經元、神經前驅、神經幹細胞、視網膜上皮幹細胞、角膜上皮幹細胞、或其他多潛能性或多能性幹細胞。在該些實施例中，其他細胞型可與產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群製備之條件培養基同時、或在之前、或在之後投予。
同樣地，在這些及其他實施例中，如上文所述之產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群製備之條件培養基係與至少一種其他藥劑諸如用於眼治療之藥品、或另一有益的輔助劑諸如消炎劑、抗細胞凋亡劑、抗氧化劑或生長因子一起投予。在該些實施例中，其他藥劑可與產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群製備之條件培養基同時、在之前、或在之後投予。
在本文所述之各種實施例中，產後衍生細胞群(臍或胎盤)或由產後衍生細胞產生之條件培養基係向眼睛例如眼睛表面投予、或向眼睛內部或向靠近眼睛之位置例如於眼睛後面投予。產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群製備之條件培養基可經由套管或自植入於眼睛內或靠近眼睛之患者體內之裝置投予，或可藉由植入具有細胞群或條件培養基之基質或支架來投予。
本發明之另一態樣之特徵在於一種用於減少視網膜變性病狀中光受體細胞損失之組成物，該組成物包含有效減少光受體細胞損失之量的前驅細胞群或由前驅細胞群製備之條件培養基。較佳地，前驅細胞為 如上文所述之產後衍生細胞。更佳地，產後衍生細胞係分離自如上文所述之實質上不含血液之產後臍帶或胎盤。變性病狀可為急性、慢性或進行性病狀。
在某些實施例中，如上文所述之組成物包含至少一種其他細胞型，諸如星狀細胞、寡樹突細胞、神經元、神經前驅、神經幹細胞、視網膜上皮幹細胞、角膜上皮幹細胞、或其他多潛能性或多能性幹細胞。在這些或其他實施例中，組成物包含至少一種其他藥劑，諸如用於治療眼變性病症之藥品或其他有益的輔助試劑，例如消炎劑、抗細胞凋亡劑、抗氧化劑或生長因子。
在如上文所述之實施例中，組成物為進一步包含醫藥上可接受之載劑之醫藥組成物。
在某些實施例中，醫藥組成物經調配用於向眼睛表面投予。或者，其可經調配用於向眼睛內部或靠近眼睛處(例如眼睛後面)投予。醫藥組成物亦可調配為含有如上文所述之前驅細胞或由前驅細胞製備之條件培養基之基質或支架。
根據本發明之另一態樣，提供一種用於治療具有眼變性病狀之患者的套組。該套組包含醫藥上可接受之載劑、前驅細胞或由前驅細胞(諸如分離自產後組織之細胞，較佳為上文所述之產後衍生細胞)產生之條件培養基、及於治療患者之方法中使用該套組之說明書。該套組亦可含有一或多種額外組分，諸如用於產生條件培養基之試劑及說明書、或至少一種其他細胞型之族群、或一或多種可用於治療眼變性病狀之劑。
本發明之其他態樣包括一種減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含投予有效減少光受體細胞損失之量的包含前驅細胞群或由前驅細胞群製備之條件培養基之組成物。較佳地，前驅細胞為產後衍生細胞或條件培養基係由如本文所述之產後衍生細胞群製備。在本發 明之實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之臍帶組織或胎盤組織。在特定實施例中，產後衍生細胞或由產後衍生細胞群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。由該些產後衍生細胞分泌或分泌於條件培養基中之此類橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
在一些實施例中，本發明提供一種用於減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含向眼睛投予有效減少或預防光受體細胞損失之量的產後衍生細胞或由產後衍生細胞群製備之條件培養基。產後衍生細胞係衍生自實質上不含血液之臍帶組織或胎盤組織。在一些實施例中，產後衍生細胞群為實質上均質性族群。在具體實施例中，細胞群為均質性。
在本文所述之本發明之進一步態樣中，產後衍生細胞群(臍或胎盤)或由產後衍生細胞產生之條件培養基保護視網膜細胞或改善因氧化應力或氧化損傷引起的視網膜損傷。在一實施例中，本發明為一種減少視網膜變性之方法，該方法包含向眼睛投予有效減少或防止氧化應力或損傷之量的產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群產生之條件培養基。在本發明之實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之臍帶組織或胎盤組織。在實施例中，視網膜細胞及組織暴露至氧化應力或氧化損傷。在本文之實施例中，視網膜細胞及組織為光受體細胞或視網膜上皮，包括視網膜色素上皮(RPE)細胞。在本文之實施例中，氧化應力或氧化損傷為高氧張力、日光暴露，包括長期日光暴露。
一實施例為一種減少視網膜變性中之光受體細胞損失之方法，該方法包含向眼睛投予有效減少或防止氧化應力或損傷之量的產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群產生之條件培養基。在實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之臍帶組織或胎盤組織。在實施例中，視網膜細胞及組織暴露至氧化應力或氧化損傷。在本文之實施例中，視網膜細 胞及組織為光受體細胞或視網膜上皮，包括視網膜色素上皮(RPE)細胞。在本文之實施例中，氧化應力或氧化損傷係選自高氧張力、日光暴露(包括長期日光暴露)、自由基應力、光氧化、及光誘導損傷。
在一實施例中，本發明為一種用於減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含投予有效減少或預防光受體細胞損失之量的產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群產生之條件培養基，其中該細胞群係分離自實質上不含血液之產後組織，且其中該細胞群能夠在培養物中擴增、具有分化成至少一神經表型之細胞的潛能、在繼代之後維持正常核型、且具有以下特徵：a)在培養物中進行40次族群倍增的潛能；b)生產CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；及c)不生產CD31、CD34、CD45、CD117及CD141，且其中產後衍生細胞群分泌橋分子，其中由產後衍生細胞群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。在一些實施例中，由產後衍生細胞分泌之橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。在一些實施例中，細胞群為實質上均質性族群。在具體實施例中，細胞群為均質性。產後衍生細胞為臍帶組織衍生細胞或胎盤組織衍生細胞。在一實施例中，臍帶組織衍生細胞群分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1b、I309、MDC、RANTES及TIMP1。在實施例中，臍帶組織衍生細胞群不分泌TGF-β2、MIP1a、ANG2、PDGFbb及VEGF，如藉由ELISA所偵測。在另一實施例中，胎盤組織衍生細胞群分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1a、RANTES及TIMP1。在實施例中，胎盤組織衍生細胞群不分泌TGF-β2、MIP1b、ANG2、PDGFbb、FGF及VEGF，如藉由ELISA所偵測。在實施例中，臍 衍生細胞或胎盤衍生細胞為HLA-A、B、C陽性，及HLA-DR、DP、DQ陰性。在進一步實施例中，臍衍生細胞不表現hTERT或端粒酶。
在一實施例中，本發明為一種用於減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含投予有效減少光受體細胞損失之量的產後衍生細胞群或由產後衍生細胞群製備之條件培養基，其中該細胞群係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，且其中該細胞群能夠在培養物中擴增、具有分化成至少一神經表型之細胞的潛能、在繼代之後維持正常核型、且具有以下特徵：a)在培養物中進行40次族群倍增的潛能；b)生產CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；c)不生產CD31、CD34、CD45、CD117及CD141，以及d)相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞，增加編碼介白素8與內質網蛋白1之基因的表現，且其中產後衍生細胞群分泌橋分子，或其中由產後衍生細胞群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。在實施例中，由產後衍生細胞群分泌之橋分子、或由產後衍生細胞群所分泌之條件培養基中之橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。在實施例中，細胞群分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1b、I309、MDC、RANTES及TIMP1。在一些實施例中，細胞群不分泌TGF-β2、MIP1a、ANG2、PDGFbb及VEGF，如藉由ELISA所偵測。在實施例中，細胞群為HLA-A、B、C陽性，及HLA-DR、DP、DQ陰性。在一些實施例中，細胞群為實質上均質性族群。在具體實施例中，細胞群為均質性。另外，細胞群不表現hTERT或端粒酶。
在某些實施例中，本發明提供一種用於減少視網膜變性中光受體細胞損失之方法，該方法包含投予有效減少或預防光受體細胞損失之 量的臍衍生細胞群或由臍衍生細胞群製備之條件培養基，其中該細胞群係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，且其中該細胞群能夠在培養物中擴增、具有分化成至少一神經表型之細胞的潛能、且具有以下特徵：a. 在培養物中進行40次族群倍增的潛能；b. 生產CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；及c. 相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞，增加編碼介白素8與內質網蛋白1之基因的表現，且產後衍生細胞群分泌橋分子，其中由產後衍生細胞群製備之條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。在實施例中，在分泌橋分子之產後衍生細胞群中分泌之橋分子、或分泌於條件培養基中之橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。在實施例中，該些細胞不生產或為CD31、CD34、CD45、CD117及CD141陰性。在一實施例中，臍帶組織衍生細胞群分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1b、I309、MDC、RANTES及TIMP1，且不分泌TGF-β2、MIP1a、ANG2、PDGFbb及VEGF，如藉由ELISA所偵測。在實施例中，臍衍生細胞群為HLA-A、B、C陽性，及HLA-DR、DP、DQ陰性。另外，細胞群不表現hTERT或端粒酶。在一些實施例中，細胞群為實質上均質性族群。在具體實施例中，細胞群為均質性。
本發明之另一態樣為一種製作條件培養基之方法，該方法包含培養細胞群，其中條件培養基含有由該細胞群分泌之橋分子。在本發明之一實施例中，橋分子係由條件培養基中之細胞群分泌。在進一步實施例中，橋分子係選自MFG-E8、Gas6、血小板反應蛋白(TSP)-1及TSP-2。在本發明之實施例中，細胞為前驅細胞。在本發明之具體實施例中，細胞為產後衍生細胞諸如產後衍生細胞。在本發明之實施例中，產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織或胎盤組織。
在如上文所述之本發明之實施例中，產後衍生細胞群進一步具有以下特徵：在經塗布或未經塗布的組織培養容器上附著並擴增，其中經塗布之組織培養容器包含明膠、層黏蛋白、膠原蛋白、聚鳥胺酸、玻璃連接蛋白、或纖連蛋白素之塗層；生產波形蛋白與α-平滑肌肌動蛋白；且為HLA-A、B、C陽性，及HLA-DR、DP、DQ陰性。
在如上文所述之本發明之實施例中，視網膜變性、視網膜病變或視網膜/黃斑病症為年齡相關性黃斑變性。在一替代實施例中，視網膜變性、視網膜病變或視網膜/黃斑病症為乾性年齡相關性黃斑變性。
在如上文所述之本發明之實施例中，光受體細胞損失係藉由抑制光受體細胞之細胞凋亡來減少或預防。在實施例中，光受體細胞損失係藉由刺激脫落光受體片段之吞噬來減少或預防。
圖1A至1B顯示預培養於具有血清之hUTC CM1製劑對失養性RPE吞噬之作用。圖1A色素失養性RPE係經CM1製劑(具有血清)預培養。至於對照組，將褐色頭套狀正常與色素失養性RPE預培養於對照培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))。培養時間為16小時。(tan N：褐色頭套狀正常RPE；pig D：色素失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基；w：具有)。值為一個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本11或12個；n：所計數的視野數目)；與pig D對照組比較，p<0.05。圖1B失養性RPE係經CM1(具有血清)預培養。至於對照組，將正常與失養性RPE預培養於具有血清之對照培養基中。培養時間為24小時。(N：正常RPE；D：失養性RPE；D(1)：三重複1；D(2)：三重複2；D(3)：三重複3；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基；w：具有)。值為一個樣本在計 數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本11、12或13個；n：所計數的視野數目)。與D對照組比較，p<0.05。
圖2顯示預培養於不含血清之hUTC CM1製劑對失養性RPE吞噬之作用。色素失養性RPE係經CM1(不含血清)預培養。至於對照組，將褐色頭套狀正常與色素失養性RPE預培養於不含血清之對照培養基中。培養時間為24小時。(tan N：褐色頭套狀正常RPE；pig D：色素失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基；wo：不含。值為一個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本9、10、11或12個；n：所計數的視野數目)；與pig D對照組比較，p<0.05。
圖3A至3D顯示預培養於hUTC CM對吞噬的作用。(圖3A)預培養於hUTC CM2對吞噬的作用。色素失養性RPE係經CM2預培養。至於對照組，將褐色頭套狀正常與色素失養性RPE預培養於對照培養基中。培養時間為24小時。(tan N：褐色頭套狀正常RPE；pig D：色素失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為一個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本8或10個；n：所計數的視野數目)。(圖3B至圖3D)預培養於hUTC CM3對吞噬的作用。失養性RPE係經CM3預培養。至於對照組，將正常與失養性RPE預培養於對照培養基中。培養時間為24小時。圖3B(N：正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為三重複樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本5至12個；n：所計數的視野數目)；與D+con M對照組比較，p<0.05。圖3C正常RPE對照組係來自CM3測試1。(N：正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為一個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本11或14個；n：所計數的視野數目)；與D+con M對照組比較，p<0.05。圖3D(N：正常RPE； N1：來自培養物之正常RPE；N2：來自N2培養物之正常RPE；tan N：褐色頭套狀正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為一個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本12或13個；n：所計數的視野數目)；與D+con M對照組比較，p<0.05。
圖4A至4C顯示hUTC對體外RCS RPE細胞中之吞噬的作用。RCS RPE細胞與接種於跨孔(transwell)中的hUTC共培養(圖13E)或以hUTC CM培養(圖13F)24小時且隨後進行吞噬檢定。N：正常RPE；D：失養性RCS RPE；CM，條件培養基。在與hUTC共培養或經hUTC CM培養之RCS RPE中觀察到吞噬增加。(圖13G)光受體OS係經hUTC CM培養24小時且隨後饋至RCS RPE細胞以在hUTC CM不存在下進行吞噬檢定。經hUTC CM處理之OS使RCS RPE之吞噬恢復。數據代表平均值±SEM(n=3)。****p<0.0001。
圖5A至5B顯示RTK配體BDNF或HB-EGF之檢定結果。失養性RPE細胞係以BDNF(200ng/ml)(圖5A)或HB-EGF(200ng/ml)(圖5B)培養於MEM+5% FBS(MEM5)中24h。至於陽性對照組，將失養性RPE細胞培養於CM3中24h。至於其他對照組，將正常與失養性RPE培養於MEM5中24h且進行吞噬檢定。(N：正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為二重複或三重複樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10、11或12個；n：所計數的視野數目)；與D對照組比較，p<0.05。
圖6A至6E顯示RTK配體PDGF-DD、蝶素(Ephrin)A4、與HGF之檢定結果。失養性RPE細胞係以PDGF-DD(圖6A、圖6B)、蝶素A4(圖6C)或HGF(200ng/ml)(圖6D、圖6E)培養於MEM5中24h且隨後添加ROS於含有PDGF-DD、蝶素A4或HGF之MEM5中以進行 吞噬檢定(當添加ROS時培養基未更換)。至於陽性對照組，將失養性RPE細胞培養於CM3中24h。至於其他對照組，將正常與失養性RPE培養於MEM5中24h且進行吞噬檢定。(N：正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為二重複或三重複樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10、11或12個；n：所計數的視野數目)；與D對照組比較，p<0.05。
圖7A至7B顯示RTK配體蝶素B2之檢定結果。失養性RPE細胞係以蝶素B2(200ng/ml)培養。至於陽性對照組，將失養性RPE細胞培養於CM3中。至於其他對照組，將正常與失養性RPE培養於MEM5中24h且進行吞噬檢定。(N：正常RPE；D：失養性RPE；con：對照組；M：培養基；CM：條件培養基)。值為二重複或三重複樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10、11或12個；n：所計數的視野數目)；與D對照組比較，p<0.05。
圖8A至8C顯示經內皮素-1、TGF-β1、或IL-6處理之失養性RPE細胞。(圖8A)內皮素-1或TGF-β1(以200ng/mL)相較於正常對照組之吞噬檢定。(圖8B、圖8C)失養性RPE細胞係以200ng/mL之重組人類內皮素-1、TGF-β1或IL-6培養且檢定其吞噬。hUTC CM3係用作陽性對照組。至於其他對照，將正常與失養性RPE培養於MEM5中24h且進行吞噬檢定。(N：正常RPE；D：失養性RPE)。值為每個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10個；n：所計數的視野數目)。
圖9顯示將失養性RPE細胞饋以用各種濃度之玻璃連接蛋白預培養的ROS，並檢定其以及正常對照組之吞噬。ROS係以對照培養基(DMEM+10% FBS)或CM3預培養。同時，ROS係以各種濃度之人類重組 玻璃連接蛋白(4、2、1、0.5ug/ml)分別預培養於MEM20中。至於對照組，將單獨正常RPE或單獨失養性RPE培養於MEM20中，隨後在未處理ROS(再懸浮於MEM20中且饋至RPE細胞)存在下更換成MEM5以進行吞噬檢定。(N：正常RPE；D：失養性RPE；Con M：對照培養基；V：玻璃連接蛋白)。值為每個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10個；n：所計數的視野數目)。
圖10顯示在hUTC中所識別之RTK配體之基因表現水準。總mRNA係萃取自hUTC且執行RNA-Seq以識別及定量hUTC中之RTK配體基因表現。經識別之RTK配體係基於對應RTK次家族分類且根據其FPKM值分級。偵測15個RTK次家族之多個RTK配體於hUTC中之基因表現。
圖11A至圖11G顯示在hUTC CM中所量測之選定RTK配體水準。(圖11A至圖11F)RTK配體之水準係與NHDF及ARPE-19條件培養基中之配體水準比較。相較於NHDF及ARPE-19條件培養基，BDNF係以高水準分泌於hUTC條件培養基中(圖11A)。相較於NHDF CM，NT3在hUTC CM中之水準係高，然而NT3於ARPE-19條件培養基及對照培養基中之量不可偵測(圖11B)。相較於NHDF及ARPE-19條件培養基，HGF係以高水準分泌於hUTC CM中(圖11C)。相較於NHDF及ARPE-19條件培養基，PDGF-CC及PDGF-DD在hUTC條件培養基中之水準係低(分別為圖11D與圖11E)。GDNF係分泌於hUTC及NHDF條件培養基中，但在ARPE-19條件培養基中僅痕量(圖11F)。所有值為三重複樣本之平均值±SD，除了NT3為二重複樣本之平均值±SD。(圖11G)藉由ELISA所量測之RTK配體水準。(所顯示之數據為平均值±SEM；n=3)。
圖12A至圖12E顯示在hUTC CM中所量測之橋分子水準。(圖12A至圖12E)。橋分子之水準係與NHDF及ARPE-19條件培養基比 較。圖12A顯示MFG-E8於hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基中之水準。值為二重複或三重複樣本之平均值±SD。圖12B顯示Gas6於hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基中之水準。值為二重複樣本之平均值±SD。圖12C顯示TSP-1於hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基中之水準。值為二重複樣本之平均值±SD。圖12D顯示TSP-2於hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基中之水準。值為二重複樣本之平均值±SD。(圖12E)藉由ELISA所量測之橋分子水準。所顯示之數據為平均值±SEM(對於TSP-1及TSP-2，n=2；對於所有MFG-E8，n=3)。
圖13A至13C顯示用hUTC條件培養基(CM)預培養失養性RPE細胞對吞噬之作用。對於對照組，將單獨正常RPE或單獨失養性RPE預培養於其常規生長培養基MEM20(MEM+20% FBS)中。同時，失養性RPE亦經CM3預培養。此外，測試經hUTC CM3預培養之ROS。值為每個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD。圖13A，n=每樣本10至20個；圖13B為原始數據。圖13C，n=每樣本12個且各樣本係二重複。(n：所計數的視野數目)；圖13D為原始數據。
圖14A至圖14D顯示橋分子及RTK配體對RCS RPE細胞吞噬視桿細胞外節(ROS)之作用。ROS係以對照培養基(DMEM+10% FBS)或hUTC條件培養基預培養。同時，ROS係以各種濃度之人類重組MFG-E8(圖14A)、Gas6(圖14B)、TSP-1(圖14C)、或TSP-2(圖14D)預培養於對照培養基中。至於對照組，將單獨正常RPE或單獨失養性RPE培養以用於吞噬檢定。(N：正常RPE；N+ROS：在吞噬檢定期間正常RPE細胞饋以未處理之ROS；D：失養性RPE細胞；D+ROS：在吞噬檢定期間失養性RPE細胞饋以未處理之ROS；Con M：對照培養基；D+ROS+Con：失養性RPE細胞饋以經對照培養基預培養之ROS；CM4：第4批hUTC條件培養基)。D+ROS+CM4：失養性RPE細胞饋以經CM4預培養之ROS； D+ROS+MFG-E8：失養性RPE細胞饋以經MFG-E8預培養之ROS。值為每個樣本在計數視野中經吞噬之ROS數目之平均值±SD(n=每樣本10個；n：所計數的視野數目)。*P<0.001，經MFG-E8、Gas6、TSP-1或TSP-2預處理之D+ROS與D+ROS+ConM及D+ROS比較；**P<0.0001，D+ROS+CM4與D+ROS及D+ROS+ConM比較。(圖14E至圖14H)光受體OS係經重組人類MFG-E8(圖14E)、Gas6(圖14F)、TSP-1(圖14G)、或TSP-2(圖14H)預培養24小時且隨後饋至RCS RPE細胞以在hUTC CM不存在下進行吞噬檢定。經hUTC CM預培養之OS係用作檢定之陽性對照。RCS RPE細胞對OS之吞噬係以劑量依賴性方式受到MFG-E8、Gas6、TSP-1或TSP-2之救援。(圖14I至圖14K)RCS RPE細胞係經重組人類BDNF(圖14I)、HGF(圖14J)或GDNF(圖14K)培養24小時，且隨後進行吞噬檢定。經hUTC CM培養之RCS RPE係用作檢定之陽性對照。BDNF、HGF或GDNF劑量依賴性地增加RCS RPE細胞中之吞噬。數據代表平均值±SEM(n=3)。****p<0.0001，***p<0.001，**p<0.01，*p<0.05，n.s.不顯著。
圖15A至圖15C用於RCS RPE中hUTC誘導之吞噬救援的RTK配體及橋分子。(圖15A)自未轉染之hUTC及經siRNA轉染之hUTC收集之細胞培養上清液的ELISA。(圖15B)RTK配體BDNF、HGF及GDNF之表現受到hUTC之siRNA轉染而靜默。收集基因剔除(Knockdown,KD)hUTC CM。RCS RPE係經KD hUTC CM培養24小時且隨後進行吞噬檢定。當BDNF、HGF或GDNF經剔除時，hUTC對RCS RPE吞噬之作用係經廢除。(圖15C)hUTC中橋分子MFG-E8、TSP-1及TSP-2之表現受到siRNA轉染而靜默。收集KD hUTC CM。將RCS RPE饋以經KD hUTC CM預培養24小時之OS並進行吞噬檢定。MFG-E8、TSP-1或TSP-2之剔除減少RCS RPE中hUTC媒介之OS吞噬救援。製備自未轉染及淩亂siRNA轉 染之hUTC之CM係用來作對照組。數據代表平均值±SEM，(B)及(C)之n=3，未轉染、模擬及淩亂siRNA轉染hUTC CM ELISA(A)之n=6。****p<0.0001，***p<0.001，**p<0.01，*p<0.05，n.s.不顯著。
圖16A至圖16D。hUTC分泌之橋分子結合至光受體OS。OS的免疫螢光(IF)染色，OS係經個別重組人類MFG-E8(124ng/mL)、Gas6(8.75ng/mL)、TSP-1(1.2ng/mL)或TSP-2(238ng/mL)(圖16A)、或hUTC CM(圖16B)、或對照培養基(圖16C)培養24小時，稍後進行視紫質與橋分子的雙重IF染色，視紫質係經Alexa Fluor 568共軛抗視紫質抗體染色，橋分子係經Alexa Fluor 488共軛抗MFG-E8、抗Gas6、抗TSP-1、抗TSP-2、小鼠IgG2A或小鼠IgG2B同型對照抗體染色。視紫質經染色之OS粒子亦呈重組橋分子蛋白質之各者或存在於hUTC CM中之分泌橋分子的陽性染色。(圖16D)抗視紫質抗體之特異性藉由以Alexa Fluor 568共軛抗視紫質抗體及Alexa Fluor 488共軛小鼠IgG2b,x同型對照抗體雙重IF染色OS來確認。上圖(圖16A至圖16D)，橋分子與同型抗體染色；下圖(圖16A至圖16D)，視紫質抗體染色。
圖17A至17F顯示hUTC與hUTC條件培養基防止氧化應力或損傷。圖17A至圖17B說明hUTC條件培養基防止含A2E之RPE細胞在430nm照射後無生存力。(圖17A)。使用雙色螢光檢定來檢定細胞死亡。hUTC條件培養基與非條件對照培養基(250μL/孔)係與富含A2E之ARPE-19細胞一起培養7天。非存活細胞之百分比係藉由雙色螢光檢定；5個重複來測定。圖17B顯示5%與10% FBS處理之集合數據。值為平均值+/-SEM。p<0.05；單向ANOVA與紐柯(Newman Keuls)多重比較測試。圖17C至17D說明hUTC條件培養基防止ARPE-19細胞與A2E光氧化相關聯之細胞生存力減少。(圖17C)。藉由MTT檢定細胞生存力。hUTC條件培養基與非條件對照培養基(250μL/孔)係與富含A2E之ARPE-19細 胞一起培養(7天，37℃，5% CO2，5% FBS)。條柱高度指出MTT吸光度且反映細胞生存力。圖17D顯示5%與10% FBS處理之集合數據。值為平均值+/-SEM；4個重複/2個實驗。* p>0.05；** p<0.05；單向ANOVA與紐柯(Newman Keuls)多重比較測試。圖17E至17F說明hUTC條件培養基防止ARPE-19細胞與急性H2O2相關聯之細胞生存力減少。藉由MTT(圖17E)與結晶紫(圖17D)檢定細胞生存力。y軸代表在550nm下之校正OD讀數。數據表示為平均值±標準偏差。雙向ANOVA之p<0.05。
本發明之其他特性與益處將因以下之詳細說明與實例而清楚易見。
本說明書中提及各種專利及其他出版物。這些出版物之各者之全部內容以引用方式併入本文中。在下列說明性實施例之詳細說明中，參照形成本說明書之一部分的隨附圖式。這些實施例係以足夠詳細之方式說明以讓熟習該項技術者能夠實行本發明，並會理解到尚可利用其他實施例，而且可在不偏離本發明之精神或範疇下作出邏輯結構、機械、電性與化學上的變化。為了避免非為所屬技術領域中具有通常知識者能夠實行本文中所述之實施例所需之細節，本說明書可能會省略某些所屬技術領域中具有通常知識者所習知之資訊。因此，以下實施方式不應理解為限制性意義，且說明性實施例之範疇由隨附申請專利範圍所限定。
定義
本說明書及申請專利範圍中所使用之各種用語如以下闡述所定義且意欲闡明本發明。
幹細胞(stem cell)為未分化之細胞，其係以單一細胞同時具有自我更新及分化以生產後裔細胞(progeny cell)的能力來定義，包括自我更新前驅(self-renewing progenitor)、非更新前驅(non-renewing progenitor)與最終分化細胞(terminally differentiated cell)。幹細胞之特徵亦在於其具有體外分化為多個胚層(內胚層、中胚層與外胚層)之各種細胞譜系之功能性細胞的能力，以及在移植後形成多個胚層之組織的能力，並且能夠在注入胚胞(blastocyst)後實質上促成大多數(如果不是全部)組織形成。
幹細胞依據其發展潛能分類如下：(1)全能性(totipotent)；(2)多能性(pluripotent)；(3)多潛能性(multipotent)；(4)少能性(oligopotent)；與(5)單能性(unipotent)。全能性細胞能夠形成所有胚胎與胚外細胞型。多能性細胞能夠形成所有胚胎細胞型。多潛能性細胞包括該些能夠形成細胞譜系亞群，但全部在特定組織、器官、或生理系統內之細胞(例如，造血幹細胞(HSC)可生產後裔，包括HSC(自我更新)、血液細胞限制少能性前驅細胞、及作為血液正常組分之所有細胞型及元件(例如，血小板))。少能性細胞可以形成比多潛能性幹細胞更受限之細胞譜系亞群；及單能性細胞能夠形成單一細胞譜系(例如生精幹細胞)。
幹細胞亦根據其獲得來源來分類。成體幹細胞(adult stem cell)通常為多潛能性未分化細胞，其在包含多重分化細胞型之組織中發現。成體幹細胞可自我更新。在正常環境下，其亦可分化以產生其始源組織之特化細胞型，並且亦可能產生其他組織型。誘導多能性幹細胞(iPS細胞)為轉化成多能性幹細胞之成體細胞。(Takahashi等人，Cell,2006；126(4)：663-676；Takahashi等人，Cell,2007；131：1-12)。胚胎幹細胞(embryonic stem cell)為來自胚胞階段胚胎之內細胞團(inner cell mass)的多能性細胞。胎體幹細胞(fetal stem cell)為源自胎體組織或膜之幹細胞。產後幹細胞(postpartum stem cell)為多潛能性或多能性細胞，其實質上源自生產 後所能取得之胚外組織，亦即胎盤及臍帶。已發現這些細胞擁有多能性幹細胞之特性特徵，包括快速增生及分化為多種細胞譜系之潛能。產後幹細胞可為血液衍生(例如該些得自臍帶血之幹細胞)或非血液衍生(例如得自臍帶及胎盤之非血液組織)。
胚胎組織通常定義為源自胚胎(在人類係指自受精至發育約六週之期間)之組織。胎體組織係指源自胎體之組織，胎體在人類係指自發育約六週至分娩之期間。胚外組織為與胚胎或胎體相關但非源自胚胎或胎體之組織。胚外組織包括胚外膜(絨毛膜、羊膜、卵黃囊及尿囊)、臍帶及胎盤(其自身形成自絨毛膜及母體底蛻膜)。
分化(Differentiation)為未特化(「未定向(uncommitted)」)或特化較低之細胞藉以獲得特化細胞(諸如舉例來說神經細胞或肌肉細胞)特徵的過程。已分化細胞為佔據細胞譜系內較高特化(「定向(committed)」)位置之細胞。用語定向(committed)當應用於分化過程時，係指細胞在分化路徑中已進行達到一點，在正常環境下達到該點之細胞將會持續分化為特定細胞型或細胞型亞群，並且在正常環境下無法分化為不同細胞型或回復為較低分化之細胞型。去分化(De-differentiation)係指細胞藉以回復至細胞譜系內較低特化(或定向)位置的過程。如本文中所使用，細胞之譜系(lineage)定義細胞之遺傳，即細胞係來自哪些細胞以及細胞可形成哪些細胞。細胞之譜系將細胞放置於發育及分化之遺傳方案(hereditary scheme)內。
廣義而言，前驅細胞(progenitor cell)為能夠產生較其本身更高分化之後裔，但又保有補充前驅池之能力的細胞。就此定義而言，幹細胞本身亦為前驅細胞，如同終末分化細胞之較直接前體細胞(more immediate precursor)。當提及本發明之細胞時，如以下所更詳述說明者，可使用此較廣之前驅細胞定義。狹義而言，前驅細胞通常定義為在分化路徑中作為中間者之細胞，即其係由幹細胞所形成並且在成熟細胞型或細胞型亞群之生 產中作為中間者。此類型之前驅細胞通常無法自我更新。因此，如果在本文中提及此類型之細胞，將會稱其為非更新前驅細胞(non-renewing progenitor cell)或中間前驅或前體細胞(intermediate progenitor or precursor cell)。
如本文中所使用，片語「分化成眼譜系或表型(differentiates into an ocular lineage or phenotype)」係指細胞變得部分或完全定向至特定眼表型，包括但不限於視網膜及角膜幹細胞、視網膜及虹膜之色素上皮細胞、光受體、視網膜神經節及其他視神經譜系(例如，視網膜神經膠細胞、微膠細胞、星狀細胞、繆氏細胞(Mueller cell))、形成水晶體之細胞、及鞏膜、角膜、角膜緣(limbus)及結膜之上皮細胞。片語「分化成神經譜系或表型(differentiates into a neural lineage or phenotype)」係指細胞變得部分或完全定向至CNS或PNS之特定神經表型，亦即，神經元或膠細胞，後一類別包括但不限於星狀細胞、寡樹突細胞、許旺氏細胞(Schwann cell)及微膠細胞。
本文所例示且較佳用於本發明之細胞通常稱為產後衍生細胞(或PPDC)。其有時亦可更具體地被稱為臍衍生細胞或胎盤衍生細胞(UDC或PDC)。此外，該些細胞可被描述為幹細胞或前驅細胞(progenitor cell)，後項用語係以廣義的方式來使用。用語衍生(derived)係用來指明細胞係得自其生物來源，且於體外生長或經其他方式調控(例如培養於生長培養基以擴增族群及/或生產細胞系(cell line))。臍幹細胞及胎盤幹細胞之體外調控以及本發明之臍衍生細胞及胎盤衍生細胞之獨有特性係詳述於後文中。藉由其他手段分離自產後胎盤及臍之細胞亦被認為適合用於本發明中。這些其他細胞在本文中稱為產後細胞(而非產後衍生細胞)。
使用各種用語來描述在培養物中之細胞。細胞培養物(cell culture)通常係指取自活體生物並且在受控制條件下生長(「在培養物中(in culture)」或「經培養(cultured)」)的細胞。初代細胞培養物(primary cell culture) 為直接取自生物且在第一次亞培養前之細胞、組織或器官的培養物。當細胞置於生長培養基中並處於有利細胞生長及/或分裂之條件下時，其在培養物中擴增從而導致更大的細胞群。當細胞在培養物中擴增時，細胞增生之速率有時係以細胞數目倍增所需的時間量來量測。此稱為倍增時間(doubling time)。
細胞系(cell line)為由初代細胞培養物之一或多個亞培養(subcultivation)所形成的細胞群。每一輪亞培養稱為一個繼代(passage)。當細胞經過亞培養時，將它們稱為已繼代。特定之細胞群或細胞系有時會以其繼代次數來指稱或表徵。例如，繼代十次的經培養細胞群可稱為P10培養物。初代培養物(在細胞自組織分離出來後的第一次培養物)係命名為P0。在第一次亞培養後，該些細胞係描述為二次培養物(P1或繼代1)。在第二次亞培養後，該些細胞即變成三次培養物(P2或繼代2)，依此類推。所屬技術領域中具有通常知識者將會理解到，在繼代期間會有多次族群倍增；因此，培養物之族群倍增次數大於其繼代次數。在繼代間隔期間的細胞擴增(即族群倍增次數)取決於許多因素，包括但不限於接種密度、基材、培養基、生長條件及繼代間隔時間。
用語生長培養基(Growth Medium)通常係指足以培養PPDC之培養基。詳言之，用於培養本發明之細胞的一種目前較佳培養基包含達爾伯克改質必需培養基(Dulbecco's Modified Essential Media)(在本文中亦縮寫為DMEM)。尤其較佳的是DMEM-低葡萄糖(在本文中亦稱為DMEM-LG)(Invitrogen,Carlsbad,Calif.)。DMEM-低葡萄糖較佳係補充有15%(v/v)胎牛血清(例如限定之胎牛血清，Hyclone,Logan Utah)、抗生素/抗黴劑(較佳50至100個單位/毫升青黴素、50至100微克/毫升鏈黴素、及0至0.25微克/毫升兩性黴素B；Invitrogen,Carlsbad,Calif.)、及0.001%(v/v)2-巰基乙醇(Sigma,St.Louis Mo.)。如以下實例中所使用，生長培養基 係指具有15%胎牛血清及抗生素/抗黴劑之DMEM-低葡萄糖(當包括青黴素/鏈黴素時，其較佳分別為50U/ml及50微克/ml；當使用青黴素/鏈黴素/兩性黴素時，其較佳分別為100U/ml、100微克/ml及0.25微克/ml)。在一些情況下，使用不同生長培養基，或提供不同補充劑，這些通常在文中指明為生長培養基之補充劑。
條件培養基(conditioned medium)為其中特定細胞或細胞群係經培養且隨後移除之培養基。當細胞培養於培養基中時，其可分泌可提供營養支持給其他細胞之細胞因子。此類營養因子包括但不限於荷爾蒙、細胞介素、細胞外基質(ECM)、蛋白質、囊泡、抗體、及顆粒。含有細胞因子之培養基為條件培養基。
通常，營養因子(trophic factor)係定義為促進細胞生存、生長、分化、增生及/或成熟之物質，或刺激細胞提高活性之物質。細胞之間經由營養因子的交互作用可發生在不同類型的細胞之間。藉助營養因子之細胞交互作用見於基本上所有的細胞型中，且為神經細胞型之通訊所尤其顯著的手段。營養因子亦可以自泌(autocrine)之方式作用，亦即，細胞可生產影響其自身生存、生長、分化、增生及/或成熟之營養因子。
當提及經培養脊椎動物細胞時，用語衰老(senescence)(還有複製性衰老(replicative senescence)或細胞衰老(cellular senescence))係指歸因於有限細胞培養物之性質；亦即，其無法生長超過有限的族群倍增次數(有時稱為海富利克界限(Hayflick's limit))。儘管細胞衰老最先係使用纖維母細胞樣細胞(fibroblast-like cell)來描述，但是可在培養物中成功生長之大部分正常人類細胞型均經歷細胞衰老。不同細胞型之體外壽命不同，但是最大壽命通常少於100次族群倍增(此為培養物中之所有細胞變衰老且因此使培養物無法分裂之倍增次數)。衰老並非取決於時序時間，而是由培養物所經歷之細胞分裂、或族群倍增之次數所量測。
用語眼(ocular)、眼科(ophthalmic)及視(optic)在本文中可互換使用以定義「眼睛的、或有關眼睛、或與眼睛相關(of,or about,or related to the eye)」。
用語眼變性病狀(ocular degenerative condition)(或病症(disorder))為包括性用語，涵蓋涉及細胞損傷、變性或損失之眼睛(包括眼睛與腦之間的神經連接)的急性及慢性病狀、病症或疾病。眼變性病狀可與年齡有關，或可因受傷或創傷所致，或可與特定疾病或病症有關。急性眼變性病狀包括但不限於與細胞死亡相關之病狀或影響眼睛的損害，包括由以下引起之病狀：腦血管機能不全、局灶性或瀰漫性腦創傷、瀰漫性腦損傷、傳染性或發炎性眼睛病狀、視網膜裂開或脫附、眼內病灶(唑傷穿透、壓迫、撕裂)或其他身體受傷(例如，物理或化學灼傷)。慢性眼變性病狀(包括進行性病狀)包括但不限於視網膜病變及其他視網膜/黃斑病症，諸如色素性視網膜炎(RP)、年齡相關性黃斑變性(AMD)、脈絡膜新生血管膜(CNVM)；視網膜病變，諸如糖尿病視網膜病變、閉塞性視網膜病變、鐮狀細胞視網膜病變及高血壓視網膜病變、中央視網膜靜脈阻塞、頸動脈狹窄、視神經病變，諸如青光眼及相關症候群；水晶體及外眼之病症例如角膜緣幹細胞缺乏(LSCD)，亦稱為角膜緣上皮細胞缺乏(LECD)，諸如發生於化學或熱受傷中、Stevens-Johnson二氏症候群、隱形眼鏡誘導之角膜病變、眼瘢痕性類天皰瘡、先天無肛膜或外胚層發育不良疾病、及多發性內分泌缺乏相關角膜炎。
用語治療眼變性病狀(treating an ocular degenerative condition)或眼變性病狀之治療(treatment of an ocular degenerative condition)係指緩解如本文所定義之眼變性病狀之作用，或延緩、暫停或逆轉眼變性病狀之進展，或延緩或預防眼變性病狀之發生。
用語有效量(effective amount)係指試劑或醫藥組成物諸如生長因子、分化劑、營養因子、細胞群或其他藥劑之濃度或量，該濃度或量可有效產生預期結果，包括如本文所述之體外或體內之細胞生長及/或分化，或治療眼變性病狀。關於生長因子，有效量可在約1奈克/毫升至約1微克/毫升之範圍內。關於向患者體內投予之PPDC，有效量可在少至數百或更少、至多達數百萬或更多之範圍內。在特定實施例中，有效量可在103至1111個細胞之範圍內，更特定言之為至少約104個細胞。應理解待投予之細胞數目將取決於待治療病症之細節，包括但不限於待治療之大小或總體積/表面積，以及投予位點與待治療區域之位置之靠近性，以及醫藥生物學家熟悉的其他因素而變化。
用語有效期間(effective period)(或時間(time))及有效條件(effective condition)係指對於劑或醫藥組成物而言，為達成其預期結果所必需或較佳的時間期間或其他可控條件(例如，體外方法之溫度、濕度)。
用語患者(patient)或對象(subject)係指用本文所述之醫藥組成物或根據本文所述之方法治療之動物，包括哺乳動物，較佳為人類。
用語醫藥上可接受之載劑(pharmaceutically acceptable carrier)(或培養基(medium))可與用語生物可相容之載劑或培養基(biologically compatible carrier or medium)互換使用，係指試劑、細胞、化合物、材料、組成物、及/或劑型，其不僅可與供治療性投予之細胞及其他藥劑相容，而且在合理的醫學判斷之範疇內適用於與人類及動物之組織接觸，而無過度毒性、刺激、過敏反應、或符合合理的利益/風險比的其他併發症。
在本文中使用若干關於細胞置換療法(cell replacement therapy)之用語。用語自體轉移(autologous transfer)、自體移植(autologous transplantation)、自體移接(autograft)及類似用語係指其中細胞捐贈者亦為細胞置換療法之接受者之治療。用語同種異體轉移(allogeneic transfer)、同種 異體移植(allogeneic transplantation)、同種異體移接(allograft)及類似用語係指其中細胞捐贈者與細胞置換療法之接受者為相同物種，但非相同個體之治療。捐贈者細胞與接受者組織相容性匹配之細胞轉移有時稱為同基因轉移(syngeneic transfer)。用語異種轉移(xenogeneic transfer)、異種移植(xenogeneic transplantation)、異種移接(xenograft)及類似用語係指其中細胞捐贈者與細胞置換療法之接受者為不同物種之治療。如本文中所使用之移植係指將自體、或同種異體捐贈者細胞置換療法引入至接受者。
如本文中所使用，用語「約(about)」在指稱一可測量的值(例如數量、持續時間及類似者)時，意欲涵蓋在指定值之±20%或±10%、更佳為±5%、甚至更佳為±1%、且仍更佳為±0.1%內的變異，若此類變異為適合執行所揭露之方法者。
說明
眼變性病狀涵蓋成因分歧之急性、慢性及進行性病症及疾病，共同特徵為特定或易受傷害之眼細胞群的功能異常或損失。此共同性使能夠開發用於修復或再生易受傷害、受損或失去之眼組織之類似治療方式，其中之一為基於細胞之療法。眼變性病狀之細胞療法的開發受限於相對較少類型的幹細胞或前驅細胞，包括眼衍生幹細胞本身(例如，視網膜及角膜幹細胞)、胚胎幹細胞及少數類型的成體幹細胞或前驅細胞(例如，神經、黏膜上皮及骨髓幹細胞)。分離自產後臍帶及胎盤之細胞已被識別為適用於此目的之前驅細胞之顯著新來源。(US 2005-0037491及US 2010-0272803)此外，由分離自產後胎盤及臍帶組織之細胞所產生之條件培養基提供另一種用於治療眼變性病狀之新來源。因此，在本文所述之各種實施例中，本發明之特徵在於用於修復及再生眼組織之方法及組成物(包括醫藥組成物)，該方法及組成物使用來自分離自產後組織之前驅細胞及 細胞群之條件培養基。本發明適用於眼變性病狀，但預期尤其適用於一些難以治療或治癒或無可得治療或療法之眼病症。這些眼病症包括但不限於年齡相關性黃斑變性、色素性視網膜炎、糖尿病性及其他視網膜病變。
預期衍生自前驅細胞(諸如根據所屬技術領域中已知之任何方法分離自產後臍帶或胎盤之細胞)之條件培養基適合用於本發明中。然而，在一實施例中，本發明使用衍生自如上文所定義之臍帶組織衍生細胞(hUTC)或胎盤組織衍生細胞(PDC)之條件培養基，該等細胞係衍生自較佳地根據下文所述之方法使之實質上不含血液之臍帶組織或胎盤。hUTC或PDC能夠在培養物中擴增且具有分化成其他表型之細胞的潛能。某些實施例之特徵在於由此類前驅細胞所製備之條件培養基、包含條件培養基之組成物、及使用組成物諸如醫藥組成物治療急性或慢性眼變性病狀患者之方法。本發明之產後衍生細胞係經其在培養物中之生長性質、其細胞表面標記、其基因表現、其生產某些生化營養因子之能力、及其免疫性質表徵。衍生自產後衍生細胞之條件培養基係經該些細胞所分泌之營養因子及橋分子表徵。
製備前驅細胞
用於本發明之組成物及方法中之細胞、細胞群及包含細胞溶解產物、條件培養基及其類似物之製劑係描述於本文，且詳細描述於美國專利第7,524,489號、及第7,510,873號、及美國公開申請案第2005/0058634號中，其皆以引用方式併入本文中。根據該些方法，將哺乳動物臍帶及胎盤在足月或不足月懷孕結束時或結束後不久例如在排出胎衣(after-birth)後回收。產後組織可在無菌容器例如燒瓶、燒杯、培養皿或袋中自生產地運輸至實驗室。該容器可具有溶液或培養基，包括但不限於鹽溶液如達爾伯克改質伊格爾培養基(Dulbecco’s Modified Eagle's Medium,DMEM)或磷酸 鹽緩衝鹽水(PBS)，或者任何用來運輸用於移植之器官的溶液如威斯康辛大學溶液(University of Wisconsin solution)或全氟化化合物溶液(perfluorochemical solution)。可將一或多種抗生素及/或抗黴劑(例如但不限於青黴素(penicillin)、鏈黴素(streptomycin)、兩性黴素B(amphotericin B)、建它黴素(gentamicin)與制黴菌素(nystatin))加至該培養基或緩衝液。產後組織可用抗凝劑溶液例如含肝素溶液來潤洗。較佳者為使該組織在萃取PPDC前保持在約4-10℃下。更佳者為使該組織在萃取PPDC前未經冷凍。
PPDC之分離較佳為在無菌環境中進行。臍帶可藉由該項技術領域中習知之手段來與胎盤分開。或者，臍帶與胎盤未經分開即可使用。較佳為在分離PPDC前自產後組織移除血液與碎屑。例如，產後組織可用緩衝液來清洗，諸如但不限於磷酸鹽緩衝鹽水。清洗緩衝液亦可包含一或多種抗黴劑及/或抗生素，諸如但不限於青黴素、鏈黴素、兩性黴素B、建它黴素及制黴菌素。
包含完整胎盤或臍帶、或其片段或區段之產後組織係藉由機械力(切碎或剪切力)來崩解。在目前較佳實施例中，分離程序亦利用酶消化法。許多種酶在該項技術領域中係習知可用來自複雜組織基質中分離出個別細胞以利於在培養物中生長。此類酶為市售可得，範圍從弱消化性(例如去氧核糖核酸酶及中性蛋白酶分散酶(dispase))到強消化性(例如木瓜酶及胰蛋白酶)皆有。相容於本文中之酶的非詳盡無遺清單包括黏液分解酶活性物、金屬蛋白酶(metalloprotease)、中性蛋白酶、絲胺酸蛋白酶(例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶或彈性蛋白酶)與去氧核糖核酸酶。目前較佳者為選自金屬蛋白酶、中性蛋白酶與黏液分解活性物之酶活性物。例如，膠原蛋白酶已知可用來自組織分離出各種細胞。去氧核糖核酸酶可消化單股DNA並且可使分離期間的細胞結塊(cell clumping)降至最低。較佳方法涉及用例如膠原蛋白酶及分散酶、或膠原蛋白酶、分散酶、及玻尿酸酶進行 酶處理，且提供此類方法，其中在某些較佳實施例中，膠原蛋白酶與中性蛋白酶分散酶之混合物係用於解離步驟中。更佳者為該些於至少一種來自溶組織芽胞梭菌(Clostridium histolyticum)之膠原蛋白酶以及蛋白酶活性物、分散酶與嗜熱菌蛋白酶中之任一者存在下來進行消化之方法。再佳者為同時使用膠原蛋白酶與分散酶酶活性物來進行消化之方法。同樣較佳者為包括除了膠原蛋白酶與分散酶活性物外使用玻尿酸酶活性物來進行消化之方法。熟悉該項技藝人士將會瞭解到，許多種此類酶處理在該項技術領域中皆為習知可用於自各種組織來源分離出細胞。舉例而言，酶組合之LIBERASETM Blendzyme 3(Roche)系列適合用於本發明方法中。其他酶來源為習知者，並且熟悉該項技藝人士亦可直接自此類酶之天然來源獲得這些酶。熟悉該項技藝人士亦擁有充足知識，能夠針對新的或其他酶或酶組合在用於分離本發明之細胞方面評估其實用性。較佳酶處理費時0.5、1、1.5或2小時或更久。在其他較佳實施例中，組織在解離步驟之酶處理期間係培養於37℃下。
在本發明之一些實施例中，產後組織係分開為包含各種組織態樣舉例而言例如胎盤之新生兒、新生兒/母體及母體態樣的區段。分開之區段接著根據本文中所述之方法藉由機械及/或酶解離來解離。新生兒或母體譜系之細胞可藉由該項技術領域中習知的任何手段來識別，例如藉由核型分析(karyotype analysis)或Y染色體之原位雜交。
經分離之細胞或PPDC自其所生長出之產後組織可用來起始或接種細胞培養物。將經分離之細胞轉移至無菌組織培養容器，並且容器未經塗布或經細胞外基質或配體如層黏蛋白、膠原蛋白(原生、變性或交聯)、明膠、纖連蛋白素與其他細胞外基質蛋白質塗布。PPDC係於任何能夠維持該等細胞生長之培養基中培養，諸如但不限於DMEM(高或低葡萄糖)、進階DMEM、DMEM/MCDB 201、伊格爾基礎培養基(Eagle’s basal medium)、哈姆F10培養基((Ham's F-10 medium,F10)、哈姆F-12培養基、伊思考夫改質達爾伯克培養基(Iscove’s modified Dulbecco’s medium)、間葉幹細胞生長培養基(Mesenchymal Stem Cell Growth Medium,MSCGM)、DMEM/F12、RPMI 1640及cellgro FREETM。培養基可補充一或多種組分，包括例如胎牛血清(FBS)(較佳為約2-15%(v/v))；馬血清(ES)；人血清(HS)；β-巰基乙醇(beta-mercaptoethanol,BME或2-ME)，較佳為約0.001%(v/v))；一或多種生長因子，例如血小板衍生生長因子(PDGF)、表皮生長因子(EGF)、纖維母細胞生長因子(FGF)、血管內皮生長因子(VEGF)、類胰島素生長因子-1(IGF-1)、白血球抑制因子(LIF)及紅血球生成素；胺基酸，包括L-纈胺酸；以及一或多種抗生素及/或抗黴劑以控制微生物污染，例如青黴素G、硫酸鏈黴素、兩性黴素B、建它黴素及制黴菌素，不論單獨或組合使用。培養基較佳包含生長培養基(DMEM-低葡萄糖、血清、BME、及抗生素)。
細胞係以允許細胞生長之密度接種於培養容器中。在一較佳實施例中，細胞在約0至約5體積百分比的CO2在空氣中培養。在一些較佳實施例中，細胞在約2至約25百分比的O2在空氣中、較佳在約5至約20百分比的O2在空氣中培養。細胞較佳在約25至約40℃下培養，且更佳在37℃下培養。細胞較佳於培養器中培養。培養容器中的培養基可為靜止或經攪拌，例如使用生物反應器。較佳為使PPDC在低氧化應力(oxidative stress)下生長(例如添加麩胱甘肽、維生素C、過氧化氫酶、維生素E、N-乙醯半胱胺酸)。如本文所用之「低氧化應力(Low oxidative stress)」係指對於所培養細胞無自由基傷害或最低自由基傷害之條件。
用於選擇最適當培養基、培養基製備與細胞培養技術之方法在該項技術領域為熟知者，並且係描述於各種不同來源中，包括Doyle等人，(編)，1995,Cell & TISSUE CULTURE：LABORATORY PROCEDURES, Johm Wiley & Sons,Chichester；與Ho及Wang(編)，1991,ANIMAL CELL BIOREACTORS,Butterworth-Heinemann,Boston，上述皆以引用方式併入本文中。
在培養分離之細胞或組織片段一段足夠時間後，PPDC將會生長出來，此係因自產後組織遷移出來或因細胞分裂所致，或者兩者皆是。在本發明的一些實施例中，PPDC係經繼代或移除至含有與初始使用之培養基相同或不同類型之新鮮培養基的分開培養容器中，其中細胞群可經有絲分裂擴增。本發明之細胞可在繼代0與衰老之間的任何時點使用。較佳為將細胞繼代約3與約25次之間，更佳為繼代約4至約12次，並且較佳為繼代10或11次。可執行選殖(Cloning)及/或次選殖(subcloning)以確認已分離出細胞的殖株族群(clonal population)。
在本發明之一些態樣中，存在於產後組織中的不同細胞型係經離拆(fractionated)為亞群，而PPDC可自該些亞群分離出來。此可使用細胞分離標準技術來達成，包括但不限於進行酶處理以將產後組織解離為其組分細胞，接著選殖及選擇特定細胞型，例如但不限於根據形態及/或生化標記來選擇；選擇性生長所欲之細胞(正向選擇)、選擇性破壞不欲之細胞(負向選擇)；根據混合族群中之差別細胞可凝集性來進行分離，例如使用黃豆凝集素；冷凍-解凍程序；在混合族群中之細胞的差別貼附性；過濾；傳統與區帶(zonal)離心；離心淘析(對流離心(counter-streaming centrifugation))；單元重力分離(unit gravity separation)；逆流分配(countercurrent distribution)；電泳；及螢光活化細胞分選(FACS)。有關殖株選擇及細胞分離技術之綜述，參見Freshney,1994,CULTURE OF ANIMAL CELLS：A MANUAL OF BASIC TECHNIQUES，第3版，Wiley-Liss,Inc.,New York，其以引用方式併入本文。
視需要更換培養基，例如使用例如吸量管小心將培養基自皿吸出，然後以新鮮培養基補足。持續培養直到皿中累積足夠細胞數目或密度。可將原始外植之組織區段取出，然後使用標準技術或使用細胞刮杓來讓剩餘細胞進行胰蛋白酶消化(trypsinized)。在胰蛋白酶消化後，將細胞收集、移至新鮮培養基然後如上述培養。在一些實施例中，培養基在胰蛋白酶消化後約24小時更換至少一次以移除任何飄浮細胞。培養物中剩餘之細胞被視為是PPDC。
PPDC可經凍存。因此，在以下更詳細描述之較佳實施例中，用於自體轉移之PPDC(無論是用於母親或嬰兒)可衍生自在嬰兒出生後之適當產後組織，接著經過凍存以使得之後需要移植該些細胞時可供使用。
前驅細胞之特徵
本發明之前驅細胞諸如PPDC可藉由下列加以表徵：例如生長特徵(例如族群倍增能力、倍增時間、到達衰老之繼代數)、核型分析(例如正常核型；母體或新生兒譜系)、流動式細胞測量術(例如FACS分析)、免疫組織化學法及/或免疫細胞化學法(例如偵測表位)、基因表現概況(例如基因晶片陣列分析；聚合酶連鎖反應(例如反轉錄酶PCR、即時PCR及傳統PCR))、蛋白質陣列分析、蛋白質分泌法(例如藉由血漿凝固檢定或PDC條件培養基分析(例如藉由酶聯免疫吸附檢定法(Enzyme Linked ImmunoSorbent Assay,ELISA)))、混合淋巴球反應(例如作為PBMC刺激作用之量測)及/或其他該項技術領域中所習知的方法。
衍生自臍組織之PPDC之實例係於2004年6月10日寄存於美國菌種保存中心(ATCC,10801 University Boulevard,Manassas,VA,20110)，且所獲派之ATCC存取號如下：(1)細胞株名稱UMB 022803(P7) 所獲派之存取號為PTA-6067；以及(2)細胞株名稱UMB 022803(P17)所獲派之存取號為PTA-6068。衍生自胎盤組織之PPDC之實例係寄存於美國菌種保存中心(ATCC,Manassas,Va.)，且所獲派之ATCC存取號如下：(1)細胞株名稱PLA 071003(P8)於2004年6月15日寄存且所獲派之存取號為PTA-6074；(2)細胞株名稱PLA 071003(P11)於2004年6月15日寄存且所獲派之存取號為PTA-6075；以及(3)細胞株名稱PLA 071003(P16)於2004年6月16日寄存且所獲派之存取號為PTA-6079。
在各種實施例中，PPDC擁有以下生長特徵中之一或多者：(1)它們需要L-纈胺酸以在培養物中生長；(2)它們能夠在含有約5%到至少約20%氧的氣氛中生長(3)它們具有在培養物中進行至少約40次倍增(在到達衰老前)的潛能；以及(4)它們在經塗布或未經塗布的組織培養容器上附著並擴增，其中經塗布之組織培養容器包含明膠、層黏蛋白、膠原蛋白、聚鳥胺酸、玻璃連接蛋白、或纖連蛋白素之塗層。
在某些實施例中，PPDC擁有正常核型，其在細胞繼代時維持。核型分析尤其可用於識別並區分衍生自胎盤之新生兒與母體細胞。核型分析方法為所屬技術領域中具有通常知識者可使用且習知者。
在其他實施例中，PPDC可藉由生產某些蛋白質來表徵，包括：(1)生產波形蛋白(vimentin)與α-平滑肌肌動蛋白(alpha-smooth muscle actin)中之至少一者；以及(2)生產CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α、PD-L2與HLA-A、B、C細胞表面標記中之至少一者，如藉由流動式細胞測量術所偵測。在其他實施例中，PPDC可藉由不生產下列之至少一者來表徵：CD31、CD34、CD45、CD80、CD86、CD117、CD141、CD178、B7-H2、HLA-G以及HLA-DR、DP、DQ細胞表面標記，如藉由流動式細胞測量術所偵測。尤其較佳者為生產波形蛋白與α-平滑肌肌動蛋白的細胞。
在其他實施例中，PPDC可藉由針對編碼下列之至少一者的基因之基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經增加來表徵：介白素8；內質網蛋白(reticulon)1；趨化激素(C--X--C模體)配體1(黑色素瘤生長刺激活性物，α)；趨化激素(C--X--C模體)配體6(顆粒性細胞趨化蛋白質2)；趨化激素(C--X--C模體)配體3；腫瘤壞死因子，α-誘發蛋白質3；C型凝集素超家族成員2；威爾姆斯(Wilms)腫瘤1；醛去氫酶1家族成員A2；腎素(renin)；氧化低密度脂蛋白受體1；智人(Homo sapiens)殖株IMAGE：4179671；蛋白質激酶C ζ；假想蛋白質DKFZp564F013；卵巢癌向下調控因子1；及殖株DKFZp547k1113之智人基因。在一實施例中，衍生自臍帶組織之PPDC可藉由針對編碼下列之至少一者的基因之基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經增加來表徵：介白素8；內質網蛋白(reticulon)1；或趨化激素(C--X--C模體)配體3。在另一實施例中，衍生自胎盤組織之PPDC可藉由針對編碼腎素或氧化低密度脂蛋白受體1之至少一者的基因之基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經增加來表徵。
在其他實施例中，PPDC可藉由針對編碼下列之至少一者的基因之基因表現(相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞)係經減少來表徵：矮小同源盒2；熱休克27kDa蛋白質2；趨化激素(C--X--C模體)配體12(基質細胞衍生因子1)；彈性蛋白(瓣上主動脈狹窄，威廉-波倫(Williams-Beuren)症候群)；智人mRNA；cDNA DKFZp586M2022(來自殖株DKFZp586M2022)；間葉同源盒2(生長休止特異性同源盒(growth arrest-specific homeo box))；sine oculis同源盒同源物1(果蠅(Drosophila))；αB水晶體蛋白；形態發生紊亂關聯活化物2(disheveled associated activator of morphogenesis 2)；DKFZP586B2420蛋白 質；類似於neuralin 1者；結合四素(tetranectin，纖維蛋白溶酶原(plasminogen)結合蛋白質)；src同源體3(SH3)與多半胱胺酸區(cysteine rich domain)；膽固醇25-羥化酶；矮小相關轉錄因子3(runt-related transcription factor 3)；介白素11受體，α；原膠原蛋白C-內肽酶增強子(procollagen C-endopeptidase enhancer)；捲曲同源物7(frizzled homolog 7)(果蠅)；假想基因BC008967；第三型膠原蛋白α1；固生蛋白C(tenascin C,hexabrachion)；易洛魁族同源盒蛋白質5(iroquois homeobox protein 5)；希菲斯特蛋白(hephaestin)；整合素β8；突觸囊泡醣蛋白(synaptic vesicle glycoprotein)2；神經胚細胞瘤，致腫瘤性抑制因子1；類胰島素生長因子結合蛋白質2，36kDa；智人cDNA FLJ12280 fis，殖株MAMMA1001744；類細胞介素受體因子1；鉀中間物/小電導鈣活化通道，次家族N，成員4；整合素β7；具有PDZ-結合模體之轉錄共活化物(TAZ)；sine oculis同源盒同源物2(果蠅)；KIAAI034蛋白質；囊泡相關膜蛋白質5(肌短蛋白(myobrevin))；含EGF類fibulin細胞外基質蛋白質(EGF-containing fibulin-like extracellular matrix protein)1；早期生長反應蛋白質(early growth response)3；無背端同源盒(distal-less homeo box)5；假想蛋白質FLJ20373；醛基-酮基還原酶家族1，成員C3(3-α羥類固醇去氫酶(3-alpha hydroxysteroid dehydrogenase)，II型)；雙聚醣(biglycan)；具有PDZ-結合模體之轉錄共活化物(TAZ)；纖連蛋白素1；腦啡肽前質(proenkephalin)；整合素，類β1(具有類EGF重複區)；智人mRNA全長插入物cDNA殖株EUROIMAGE 1968422；EphA3；KIAA0367蛋白質；利尿鈉胜肽受體C(natriuretic peptide receptor C)/鳥苷酸環化酶C(guanylate cyclase C)(心房利尿鈉胜肽受體C(atrionatriuretic peptide receptor C))；假想蛋白質FLJ14054；智人mRNA；cDNA DKFZp564B222(來自殖株DKFZp564B222)；BCL2/類腺病毒E1B 19kDa交互作用蛋白質3(adenovirus E1B 19kDa interacting protein 3-like)；AE結合蛋白質1；以及細胞色素c氧化酶次單元VIIa多肽1(肌肉)。
在其他實施例中，PPDC可藉由分泌選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2之橋分子來表徵。此外，衍生自臍帶組織之PPDC可藉由分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、FGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1b、I309、RANTES、MDC及TIMP1中之至少一者來表徵。在一些實施例中，衍生自臍帶組織之PPDC可藉由不分泌TGF-β2、ANG2、PDGFbb、MIP1a及VEGF中之至少一者來表徵，如藉由ELISA所偵測。在替代實施例中，衍生自胎盤組織之PPDC可藉由分泌MCP-1、IL-6、IL-8、GCP-2、HGF、KGF、HB-EGF、BDNF、TPO、MIP1a、RANTES及TIMP1中之至少一者，且不分泌TGF-β2、MIP1b、ANG2、PDGFbb、FGF及VEGF中之至少一者來表徵，如藉由ELISA所偵測。在進一步實施例中，PPDC不表現hTERT或端粒酶。
在較佳實施例中，細胞包含二或更多種以上列舉之生長、蛋白質/表面標記生產、基因表現或物質分泌之特徵。更佳者為該些包含三、四、或五或更多種該等特徵之細胞。再佳者為包含六、七或八或更多種該等特徵之PPDC。再佳者為該些包含所有上述特徵之細胞。
在特別較佳的實施例中，細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，該等細胞能夠在培養物中擴增、不生產CD117或CD45、且不表現hTERT或端粒酶。在一實施例中，細胞不生產CD117及CD45且可選地亦不表現hTERT及端粒酶。在另一實施例中，細胞不表現hTERT及端粒酶。在另一實施例中，細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織、能夠在培養物中擴增、不生產CD117或CD45、且不表現hTERT或端粒酶、且具有一或多種以下特徵：表現CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；不 表現CD31或CD34；相對於人類纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞，表現增加水準之介白素8或內質網蛋白1；且具有分化之潛能。
在本發明之數個態樣中所使用之目前較佳的細胞為具有上述特徵之產後細胞，並且尤其是其中該些細胞具有正常核型並且在繼代時維持正常核型者，而進一步是其中該些細胞表現下列各標記者：CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α及HLA-A、B、C，其中該些細胞生產免疫學上可偵測且對應上列標記之蛋白質。再佳者為除了前述者外不生產對應於任何下列標記之蛋白質之該些細胞：CD31、CD34、CD45、CD117、CD141或HLA-DR、DP、DQ如由流動式細胞測量術所偵測。在進一步較佳實施例中，該些細胞不表現hTERT或端粒酶。
具有譜系分化的潛能而導致各種表型之某些細胞係不穩定且因此可自行分化。目前較佳用於本發明的細胞為不會例如沿著神經譜系自行分化之細胞。當較佳細胞生長於生長培養基中時，生產在其表面上之細胞標記，及其各種基因之表現模式(如使用Affymetrix GENECHIP所測定)為實質上穩定的。經由多次族群倍增的繼代，該些細胞例如在其表面標記特徵方面仍保持實質上恆定。
然而，PPDC之一個特徵在於可藉由使其經歷分化誘導細胞培養條件來有意地誘導其分化成各種譜系表型。在治療某些眼變性病狀的用途中，可使用所屬技術領域中已知的一或多種方法誘導PPDC分化成神經表型。舉例而言，如本文所例示，可將PPDC接種於經層黏蛋白塗布之培養瓶中之含有B27(B27補充物，Invitrogen)、L-麩醯胺酸及青黴素/鏈黴素之Neurobasal-A培養基(Invitrogen,Carlsbad,Calif.)，其組合在本文稱為神經前驅擴增(NPE)培養基。NPE培養基可進一步補充有bFGF及/或EGF。或者，可藉由以下誘導PPDC體外分化：(1)將PPDC與神經前驅細胞共培養；或(2)使PPDC於神經前驅細胞條件培養基中生長。
PPDC分化成神經表型可藉由具有伸長突起之雙極細胞形態來證明。經誘導之細胞群可針對巢蛋白(nestin)之存在染色為陽性。經分化之PPDC可藉由偵測巢蛋白、TuJ1(BIII微管蛋白)、GFAP、酪胺酸羥化酶、GABA、04及/或MBP來評估。在一些實施例中，PPDC展現出形成神經球(neurosphere)之神經元幹細胞形成之三維體特徵的能力。
細胞群
本發明之另一態樣之特徵在於前驅細胞諸如產後衍生細胞之族群。產後衍生細胞可分離自胎盤或臍組織。在較佳實施例中，細胞群包含上文所述之PPDC，且這些細胞群係描述於下節中。
在一些實施例中，細胞群為異質性。本發明之異質性細胞群可包含至少約5%、10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%或95%的細胞。本發明之異質性細胞群可進一步包含前驅細胞(產後衍生細胞)、或其他前驅細胞，諸如上皮或神經前驅細胞，或其可進一步包含經完全分化之細胞。
在一些實施例中，該族群實質上為均質性，即實質上僅包含PPDC(較佳為至少約96%、97%、98%、99%或更多的細胞)。在一些實施例中，細胞群係均質性。在實施例中，本發明之均質性細胞群可包含臍衍生細胞或胎盤衍生細胞。臍衍生細胞之均質性族群較佳為不含母體譜系細胞。胎盤衍生細胞之均質性族群可為新生兒或母體譜系。細胞群之均質性可藉由任何該項技術領域中所習知的方法來達成，例如根據習知方法藉由細胞分選(例如流動式細胞測量術)或藉由殖株擴增達成。因此，較佳均質性PPDC族群可包含產後衍生細胞之殖株細胞系。當分離出具有高度所欲功能性之細胞殖株時，此類族群為尤其有用的。
本文亦提供在一或多種因子存在下，或在刺激幹細胞沿著所欲路徑(例如，神經、上皮)分化之條件下培養之細胞群。此類因子為所屬技術領域中已知的且熟悉該項技藝人士將會瞭解到，判定合適的分化條件可以常規實驗完成。此類條件之最佳化可藉由統計實驗設計及分析來完成，例如回應面方法論(response surface methodology)允許同時最佳化例如在生物培養物中的多個變數。目前較佳因子包括但不限於以下因子，諸如生長或營養因子、去甲基化劑、與神經或上皮譜系細胞共培養或於神經或上皮譜系細胞條件培養基中培養，以及所屬技術領域中已知用以刺激幹細胞沿著這些路徑分化的其他條件(關於可用於神經分化之因子，參見例如Lang,K.J.D.等人，2004,J.Neurosci.Res.76：184-192；Johe,K.K.等人，1996,Genes Devel.10：3129-3140；Gottleib,D.,2002,Ann.Rev.Neurosci.25：381-407)。
條件培養基
在一個態樣中，本發明提供來自經培養之前驅細胞諸如產後衍生細胞、或其他前驅細胞之條件培養基，其如下文所述用於體外及體內。此類條件培養基之使用允許由細胞分泌之有益營養因子同種異體地用於患者中，而無需引入可能引起排斥、或其他不良免疫反應之完整細胞。條件培養基係藉由於培養基中培養細胞(諸如細胞群)，隨後自培養基移除該些細胞來製備。在某些實施例中，產後細胞為UTC或PDC，更佳為hUTC。
由上文所述之細胞群所製備之條件培養基可按原樣使用、經進一步濃縮例如藉由超濾或凍乾、或甚至乾燥後使用、經部分純化後使用、如所述技術領域中已知與醫藥上可接受之載劑或稀釋劑組合使用、或與其他化合物諸如生物製品例如醫藥上可用的蛋白質組成物組合使用。條件培養基可在體外或體內單獨使用，或例如與自體或同基因活細胞一起使用。 條件培養基若經引入體內，可被引入局部治療位點、或引入遠端以提供例如需要的細胞生長或營養因子給患者。
先前已證明，人類臍帶組織衍生細胞改良視覺功能且改善視網膜變性(參見US 2010/0272803)。亦已證明，產後衍生細胞可在RCS模型中用於促進光受體救援且因此保留光受體。(參見US 2010/0272803)。將hUTC經視網膜下注射至RCS大鼠眼睛中改良視覺銳度且改善視網膜變性。
如本文所提供，製備hUTC條件培養基之各種製劑且評估其吞噬救援活性。發現接種密度及培養條件影響條件培養基之活性水準。以hUTC於血清中(CM1)而言，將hUTC以5,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% FBS+4mM L-麩醯胺酸)中，且培養24小時。將培養基更換成21mL DMEM/F12完全培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))，再將細胞培養54小時，收集培養物上清液並在-70℃下冷凍(凍存)。
以無血清培養基(CM1無血清)而言，在第2天將培養基以21mL DMEM/F12無血清培養基(DMEM：F12培養基+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))添補。具有或不具有血清之CM1使吞噬活性恢復(圖1A至圖1B及圖2)。以製備具有血清之CM1之相同程序製備另一條件培養基(CM2)，除了細胞係培養於每瓶具有63mL培養基之T225瓶，且在更換培養基之後培養時間為48小時。然而，此培養基不具活性。(圖3A)。以和CM2相同的條件製備CM3，但使用10,000個存活細胞/cm2，且CM3刺激失養性RPE中之吞噬。(圖3B至3D)。
在所測試之條件中，發現CM2缺乏活性(圖3A)。相較於CM1有54小時的培養時間，CM2的培養時間縮短為48h。相較於CM2，CM3係藉由將細胞接種密度加倍並維持更換培養基後之相同培養時間來製 備，且發現CM3具有活性。因此，為獲得活性CM，初始細胞接種密度及更換培養基後之細胞培養時間為兩個重要條件。
來自皇家外科學院(RCS)大鼠之視網膜色素上皮(RPE)細胞由於Mertk基因之突變而具有視桿細胞外節(ROS)之缺陷性吞噬。Mertk為受體酪胺酸激酶(RTK)家族之成員且被認為在RPE吞噬上有其角色。鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF)為FGF RTK之配體，經顯示可誘導來自RCS大鼠之經培養RPE細胞中之吞噬能力(McLaren，等人，FEBS Letters,1997；412：21-29)。在本發明之一實施例中，hUTC救援失養性RPE之吞噬係經由RTK配體之分泌、活化RTK傳訊及增強其他吞噬相關受體之傳訊。
在本發明之一實施例中，RTK配體BDNF、HB-EGF、PDGF-DD、蝶素A4、HGF、及蝶素B2對於RCS失養性RPE細胞吞噬具有救援作用。在一具體實施例中，BDNF、PDGF-DD、及蝶素B2具有陽性救援作用。(參見圖5A、6A至6B及7A至7B)。
非RTK配體活化與RTK不同之受體，且對吞噬不具有和RTK配體類似的作用(圖8A至8C及9)。已顯示hUTC分泌玻璃連接蛋白、內皮素-1、TGF-β1、及IL-6。玻璃連接蛋白之受體包括αvβ5及αvβ5整合素。Finnemann等人報告，RPE細胞對ROS之吞噬需要αvβ5整合素(Finnemann等人，1997，見前文)。儘管hUTC CM提高失養性RPE細胞之吞噬，但是內皮素-1、TGF-β1或IL-6(濃度200ng/mL)、及玻璃連接蛋白(各種濃度)對RCS RPE吞噬無作用(圖8A至8C，圖9)。
利用經條件培養基處理及未處理之失養性RPE之RNA分析所進行的基因表現概況顯示，hUTC表現15個RTK次家族內之多個RTK配體基因(圖10，及表1-1)。hUTC亦表現橋分子之基因，包括MFG-E8、Gas6、蛋白質S、TSP-1及TSP-2(表1-3)。RCS RPE表現18個RTK次家族中之基因(表1-2)。在18個RTK次家族中有15個次家族對應hUTC 中所表現之RTK配體基因。RCS RPE亦表現用於橋分子結合之受體基因，包括整合素αvβ3、αvβ5、Axl、Tyro3、MerTK及CD36(表1-4)。
使用RNA-Seq接著進行資訊學數據分析之RCS RPE細胞與hUTC兩者之轉錄體概況顯示，RCS RPE細胞表現多個RTK基因，而hUTC表現多個RTK配體之基因(表1-1至1-4及表2-1)。特定言之，七個RTK次家族之RTK配體具有相對高的基因表現水準。此等配體包括BDNF(腦衍生神經營養因子)及NT3(神經營養蛋白3)-Trk家族之配體、HGF(肝細胞生長因子)-Met家族之配體、PDGF-DD(血小板衍生生長因子D型)及PDGF-CC(血小板衍生生長因子C型)-PDGF家族之配體、蝶素B2-Eph家族之配體、HB-EGF(肝素結合表皮生長因子)-ErbB家族之配體、GDNF(膠細胞衍生神經營養因子)-Ret家族之配體、以及聚集蛋白(agrin)-Musk家族之配體。
在本發明之一實施例中，BDNF、NT3、HGF及GDNF係經分泌於hUTC條件培養基中，且其水準相較於來自正常人類皮膚纖維母細胞(NHDF)及ARPE-19細胞之水準為高，如在ELISA檢定中所量測。(圖11A至11C及11F)。在另一實施例中，相較於NHDF或ARPE-19，hUTC分泌低水準之PDGF-CC及PDGF-DD(圖11D、11E)。在進一步實施例中，蝶素B2及HB-EGF未於hUTC、NHDF及ARPE-19之條件培養基中偵測出，如在ELISA檢定中所量測。這些細胞不分泌這兩種蛋白質，或分泌水準低於ELISA檢定之偵測界限。hUTC、NHDF及ARPE-19條件培養基中之聚集蛋白水準類似於對照培養基中之水準；在所有條件培養基樣本中所偵測之聚集蛋白可能來自培養基。
基於RCS RPE細胞之基於RNA-Seq的轉錄體概況分析，經分泌於hUTC條件培養基中之橋分子及其他因子之水準進一步證明對吞噬之作用，及因此對細胞凋亡之作用。如所示，RCS RPE細胞表現迄今已識 別之辨識細胞凋亡細胞上「吃我(eat me)」信號之許多受體之基因。此等受體包括清道夫受體(SR-A、LOX-1、CD68、CD36、CD14)、整合素(αvβ3及αvβ5)、Axl及Tyro3之受體酪胺酸激酶、LRP-1/CD91及PS受體穩定素(Stabilin)1(表3-1；修改自Erwig L-P及Henson PM,Cell Death and Differentiation 2008；15：243-250)。此外，hUTC表現許多橋分子基因，包括TSP-1、TSP-2、界面活性蛋白質D(SP-D)、MFG-E8、Gas6、載脂蛋白H(apolipoprotein H)及膜聯蛋白1(annexin 1)。在本發明之一實施例中，hUTC於hUTC條件培養基中分泌MFG-E8、Gas6、TSP-1、TSP-2。(圖12A至12E及表3-2)。在另一實施例中，hUTC不分泌載脂蛋白H、SP-D或膜聯蛋白1(表3-2)。在某些實施例中，hUTC以顯著高於NHDF及ARPE-19之水準分泌MFG-E8及TSP-2。(圖12A及12D)。
在本發明之一態樣中，當對RCS RPE細胞饋以經hUTC CM預培養之ROS時，hUTC條件培養基刺激對ROS之吞噬。失養性RPE細胞之吞噬係經完全救援。如圖13A至13D中所示，未處理之失養性RPE細胞相較於正常RPE細胞具有減少之吞噬。在本發明之一實施例中，以hUTC CM預培養失養性RPE細胞救援吞噬。即使在檢定期間不存在hUTC CM之情況下，此亦會發生。在本發明之實施例中，吞噬相關受體及其傳訊路徑在預培養期間係經上調。當hUTC CM存在於吞噬檢定期間時，不管失養性RPE細胞是否經hUTC CM預處理，皆觀察到穩固增強之吞噬。在一實施例中，饋以經hUTC CM預處理之ROS之失養性RPE細胞恢復或救援吞噬。即使在吞噬檢定期間不存在hUTC CM之情況下，此亦會發生。在本發明之具體實施例中，hUTC CM可準備(prime)或改質ROS，其經由例如有利地促進吞噬之橋分子/調理素來增強ROS結合及內化。
在本發明之實施例中，橋分子MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2媒介RCS RPE細胞吞噬ROS。將失養性RPE細胞饋以經各種濃度之 MFG-E8、Gas6、TSP-1或TSP-2預培養之ROS並檢定其吞噬，顯示救援對ROS之吞噬(圖14A至圖14H)。在具體實施例中，hUTC條件培養基經由分泌例如MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2之橋分子媒介RCS RPE吞噬救援。
在一實施例中，RTK配體諸如BDNF、HGF及GDNF刺激RCS RPE中之hUTC媒介之吞噬救援。RTK配體BDNF、HGF及GDNF救援RCS RPE中之吞噬(圖14I至J)。重組RTK配體及橋分子蛋白可模擬hUTC CM之作用且恢復RCS RPE吞噬，且涉及RCS RPE中hUTC媒介之吞噬救援。
siRNA媒介基因靜默證明，hUTC中之BDNF、HGF、GDNF、MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2係經剔除(靜默)。模擬或淩亂siRNA轉染對這些因子之hUTC分泌無作用。靶向MFG-E8、TSP-1、TSP-2及HGF之siRNA產生幾乎100%剔除效率；觀察到BDNF及GDNF分別80%及65%之剔除(圖15A至15B)。剔除橋分子MFG-E8、TSP-1、TSP-2中之各者降低RCS RPE對OS之吞噬(圖15C)。在一具體實施例中，RTK配體BDNF、HGF及GDNF為RCS RPE中hUTC媒介之吞噬救援所需。在另一實施例中，橋分子諸如MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2為RCS RPE中hUTC媒介之吞噬救援所需。
細胞改質、組分及產物
前驅細胞諸如產後細胞亦可經基因改質以生產治療可用的基因產物，或生產用於治療腫瘤之抗癌藥物。基因改質可使用多種載體(vector)中之任一者實現，包括但不限於整合型病毒載體，例如，反轉錄病毒載體或腺相關病毒載體；非整合型複製載體，例如，乳突病毒載體、SV40 載體、腺病毒載體；或複製缺陷型病毒載體。將DNA引入至細胞中之其他方法包括使用脂質體、電穿孔、粒子槍、或藉由直接DNA注射。
宿主細胞較佳係經DNA轉形或轉染，該DNA受到一或多種適當的表現控制元件諸如啟動子或增強子序列、轉錄終止子、多腺苷酸化位點等其他元件，及可選擇的標記控制或與其操作性相連。任何啟動子可用於驅動插入基因之表現。舉例而言，病毒啟動子包括但不限於CMV啟動子/增強子、SV40、乳突病毒、艾司坦-巴爾病毒(Epstein-Barr virus)或彈性蛋白基因啟動子。在一些實施例中，用於控制關注基因之表現的控制元件可允許基因之調節表現，以使得產物僅於需要時在體內合成。若需要暫態表現，則組成性啟動子係較佳地用於非整合型及/或複製缺陷型載體中。或者，可誘導啟動子可用於當需要時驅動插入基因之表現。可誘導啟動子包括但不限於與金屬硫蛋白及熱休克蛋白質有關之啟動子。
在引入外來DNA之後，可允許經工程化之細胞生長於濃化培養基中且隨後切換至選擇性培養基。外來DNA中之可選擇的標記賦予選擇抗性且允許細胞將例如質體上之外來DNA穩定地整合至其染色體中且生長以形成細胞群落(foci)，其轉而可經選殖且擴增成細胞系。此方法可有利地用於工程化表現基因產物之細胞系。
細胞可經基因工程化以「敲除(knock out)」或「剔除(knock down)」在植入位點處促進發炎或排斥之因子之表現。以下討論用於減少靶標基因表現水準或靶標基因產物活性水準之負調控技術。如本文中所使用之「負調控(Negative modulation)」係指相對於靶標基因產物在調控處理不存在下之水準及/或活性，減少該靶標基因產物之水準及/或活性。神經元或膠細胞之天然基因之表現可使用許多技術來減少或敲除，包括例如藉由使用同源重組技術使基因失活來抑制表現。一般而言，編碼蛋白質之重要區域之外顯子(或位在該區域5'側之外顯子)由陽性可選擇的標記(例如neo) 中斷，防止由靶標基因生產正常mRNA且導致基因之失活。基因亦可藉由產生基因之一部分之刪除、或藉由刪除整個基因來失活。藉由使用具有兩個與靶標基因同源之區域且該兩區域在基因體中相隔遙遠之構建體，可將在該兩個區域之間的序列刪除(Mombaerts等人，1991,Proc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.88：3084-3087)。反義、DNA酶、核糖核酸酶、小干擾RNA(siRNA)及抑制靶標基因表現之其他此類分子亦可用於減少靶標基因活性之水準。舉例而言，抑制主要組織相容性基因複合體(HLA)表現之反義RNA分子已顯示在免疫反應方面最為多樣化。此外，三螺旋分子可被用於減少靶標基因活性之水準。這些技術由L.G.Davis等人(編)，1994,BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY，第2版，Appleton & Lange,Norwalk,CT詳細描述。
在其他態樣中，本發明提供自產後細胞製備之細胞溶解產物及細胞可溶部分，產後細胞較佳PPDC、或包含PPDC細胞之異質性或均質性細胞群、以及經基因改質或經刺激以沿著神經性路徑分化之PPDC或其族群。此類溶解產物及其部分具有許多用途。在體內使用細胞溶解產物可溶部分(亦即，實質上不含膜)例如允許將有益的細胞內環境(intracellular milieu)同種異體地用於患者，而不需引入最可能觸發排斥、或其他不良免疫反應之可察覺量的細胞表面蛋白質。溶解細胞之方法為所屬技術領域中所熟知且包括機械破裂、酶破裂、或化學破裂、或其組合之各種手段。此類細胞溶解產物可由在生長培養基中之細胞直接製備，因此含有分泌的生長因子及其類似物，或可由經例如PBS或其他溶液清洗而不含培養基之細胞製備。經清洗之細胞可以大於原始族群密度之濃度再懸浮(若較佳)。
在一實施例中，全細胞溶解產物係例如藉由使細胞破裂而稍後不分離細胞部分來製備。在另一實施例中，藉由所屬技術領域中已知的 常規方法，例如離心、過濾、或類似方法，將細胞膜部分與細胞之可溶部分分離。
由前驅細胞(諸如產後衍生細胞)群所製備之細胞溶解產物或細胞可溶部分可按原樣使用、經進一步濃縮例如藉由超濾或凍乾、或甚至乾燥後使用、經部分純化後使用、如所述技術領域中已知與醫藥上可接受之載劑或稀釋劑組合使用、或與其他化合物諸如生物製品例如醫藥上可用的蛋白質組成物組合使用。細胞溶解產物或其部分可在體外或體內單獨使用，或例如與自體或同基因活細胞一起使用。溶解產物若經引入體內，可被引入局部治療位點、或引入遠端以提供例如需要的細胞生長因子給患者。
在進一步實施例中，產後細胞較佳PPDC可於體外培養以生產高產率之生物產物。舉例而言，此類細胞不論是天然生產受關注的特定生物產物(例如，營養因子)，或經基因工程化以生產生物產物，皆可使用本文所述之培養技術選殖擴增。或者，細胞可於誘導分化成所要譜系之培養基中擴增。在任一情況下，由細胞生產且分泌至培養基中之生物產物可使用標準分離技術容易地自條件培養基分離，例如，諸如差別蛋白質沉澱、離子交換層析、膠濾層析、電泳、及HPLC等不及備舉。可使用「生物反應器(bioreactor)」以利用流動法饋送例如體外三維培養物。基本上，在新鮮培養基通過三維培養物時，生物產物被洗出培養物且隨後可自流出物進行如上文所述之分離。
或者，關注的生物產物可保留於細胞內，因此其收集可能需要將細胞進行如上文所述之溶解。隨後可使用上文所列舉之技術中之任一或多者將生物產物純化。
在另一實施例中，藉由於液體、固體或半固體基材上培養產後細胞(較佳PPDC)所生產之細胞外基質(ECM)係經製備、收集且用作為 植入活細胞至需要組織修復或置換之對象中之替代物。將細胞體外培養於如本文其他地方所述之三維架構上，且培養條件將使得所要量之ECM分泌至架構上。將細胞及架構移除，且ECM係經處理以供進一步使用，例如作為可注射製劑。為實現此目的，將架構上之細胞殺死且將任何細胞碎屑自架構移除。此製程可以許多不同方式進行。舉例而言，可將活組織置於不加冷凍保存劑之液態氮中驟冷凍，或可將組織浸沒於無菌蒸餾水中以使得細胞因滲透壓爆裂。
一旦細胞被殺死，細胞膜可能破裂且細胞碎屑藉由溫和清潔劑清洗諸如EDTA、CHAPS或兩性離子清潔劑處理來移除。或者，組織可經酶消化及/或用破壞細胞膜且允許移除細胞內容物之試劑萃取。此類酶之實例包括但不限於玻尿酸酶、分散酶、蛋白酶及核酸酶。清潔劑之實例包括非離子清潔劑，諸如，例如烷芳基聚醚醇(TRITON X-100)、辛苯氧基聚乙氧基乙醇(Rohm and Haas Philadelphia,Pa.)、BRIJ-35、聚乙氧基乙醇月桂醚(Atlas Chemical Co.,San Diego,Calif.)、聚山梨醇酯20(TWEEN 20)、聚乙氧基乙醇去水山梨醇單月桂酸酯(Rohm and Haas)、聚乙烯月桂醚(Rohm and Haas)；及離子清潔劑，諸如，例如十二烷基硫酸鈉、硫酸化高級脂族醇、於支鏈或非支鏈中含有7至22個碳原子之磺化烷烴及磺化烷基芳烴。
ECM之收集可以多種方式實現，其取決於例如新組織係形成於可生物降解或不可生物降解之三維架構上。舉例而言，若架構為不可生物降解者，則ECM可藉由使架構經歷超音波處理、高壓射水機、機械刮削、或用清潔劑或酶溫和處理、或以上之任何組合來移除。
若架構為可生物降解者，則ECM可例如藉由使架構降解或溶解於溶液中來收集。或者，若可生物降解架構係由其自身可與ECM一起注射之材料組成，則可將架構及ECM全部一起處理以用於稍後注射。或者，可藉由上文所述之用於自不可生物降解架構收集ECM之任何方法，將 ECM自可生物降解架構移除。所有收集製程係經較佳地設計，以使ECM不致變性。
在收集ECM之後，可將其進一步處理。舉例而言，可使用所述技術領域中熟知的技術諸如超音波處理，將ECM均質化成微細粒子，以使得其可通過外科針。若需要，ECM之組分可藉由γ照射來交聯。較佳地，ECM可經0.25至2百萬雷得之間照射，以使ECM滅菌及交聯。使用具有毒性的劑諸如戊二醛之化學交聯係可能但通常不佳的。
蛋白質諸如存在於ECM中之各種類型之膠原蛋白之量及/或比率，可藉由將本發明之細胞所生產之ECM與一或多種其他細胞型之ECM混合來調整。此外，可將生物活性物質諸如蛋白質、生長因子及/或藥品併入至ECM中。例示性生物活性物質包括組織生長因子，諸如TGF-β，及類似物，其促進注射位點之癒合及組織修復。此類額外劑可用於上文所述之任何實施例中，例如與全細胞溶解產物、可溶細胞部分、或經進一步純化的由細胞所生產之組分及產物一起利用。
醫藥組成物
在另一態樣中，本發明提供醫藥組成物，其於多種用於治療眼變性病狀之方法中使用前驅細胞諸如產後細胞(較佳PPDC)、其細胞群、由此類細胞所生產之條件培養基、及由此類細胞所生產之細胞組分及產物。某些實施例涵蓋包含活細胞(例如，單獨PPDC或PPDC與其他細胞型混合)之醫藥組成物。其他實施例涵蓋包含PPDC條件培養基之醫藥組成物。其他實施例可使用PPDC之細胞組分(例如，細胞溶解產物、可溶細胞部分、ECM、或前述任一者之組分)或產物(例如，由細胞天然生產或經由基因改質所生產之營養因子及其他生物因子、培養該些細胞之條件培養基)。在任一情況下，醫藥組成物可進一步包含其他活性劑，諸如消 炎劑、抗細胞凋亡劑、抗氧化劑、生長因子、神經營養因子或所屬技術領域中已知的神經再生、神經保護或眼科藥品。
可添加至醫藥組成物之其他組分之實例包括但不限於：(1)其他神經保護或神經有益藥品；(2)選定之細胞外基質組分，諸如所屬技術領域中已知的一或多種類型的膠原蛋白、及/或生長因子、富血小板血漿、及藥品(或者，PPDC可經基因工程化以表現且生產生長因子)；(3)抗細胞凋亡劑(例如，紅血球生成素(EPO)、EPO模擬體(mimetibody)、血小板生成素(thrombopoietin)、類胰島素生長因子(IGF)-I、IGF-II、肝細胞生長因子、凋亡蛋白酶抑制劑)；(4)消炎化合物(例如，p38 MAP激酶抑制劑、TGF-β抑制劑、斯他汀類(statins)、IL-6及IL-1抑制劑、PEMIROLAST、TRANILAST、REMICADE、SIROLIMUS、及非固醇類消炎藥品(NSAIDS)(諸如TEPOXALIN、TOLMETIN、及SUPROFEN))；(5)免疫抑制或免疫調節劑，諸如鈣調磷酸酶(calcineurin)抑制劑、mTOR抑制劑、抗增生劑、皮質類固醇及各種抗體；(6)抗氧化劑，諸如普洛布克(probucol)、維生素C與E、輔酶Q-10、麩胱甘肽、L-半胱胺酸及N-乙醯半胱胺酸；以及(6)局部麻醉劑等不及備舉。
本發明之醫藥組成物包含前驅細胞諸如產後細胞(較佳PPDC)、由該些細胞產生之條件培養基、或其組分或產物，其與醫藥上可接受之載劑或培養基調配。合適的醫藥上可接受之載劑包括水、鹽溶液(諸如林格氏溶液)、醇、油、明膠、及碳水化合物，諸如乳糖、直鏈澱粉、或澱粉、脂肪酸酯、羥甲基纖維素、及聚乙烯吡咯啶。此類製劑可經滅菌，且若有需要與輔助劑諸如潤滑劑、防腐劑、穩定劑、潤濕劑、乳化劑、用於影響滲透壓之鹽、緩衝劑、及著色劑混合。通常但不排他地，包含細胞組分或產物而非活細胞之醫藥組成物係經調配成液體。包含PPDC活細胞 之醫藥組成物一般係經調配成液體、半固體(例如，凝膠)或固體(例如，基質、支架及類似物，以適用於眼科組織工程)。
醫藥組成物可包含醫藥化學家或生物學家所熟悉之輔助劑組分。舉例而言，其可含有在一定範圍內的抗氧化劑，該些範圍取決於所使用之抗氧化劑之種類而異。普遍使用的抗氧化劑之合理範圍為約0.01重量/體積%至約0.15重量/體積%之EDTA、約0.01重量/體積%至約2.0重量/體積%之亞硫酸鈉、及約0.01重量/體積%至約2.0重量/體積%之偏二硫酸鈉。所屬技術領域中具有通常知識者可使用約0.1重量/體積%之濃度的上述各者。其他代表性化合物包括巰基丙醯基甘胺酸、N-乙醯基半胱胺酸、β-巰基乙胺、麩胱甘肽及類似物質，但亦可採用合適於眼投予之其他抗氧化劑，例如抗壞血酸及其鹽或亞硫酸鹽或偏二硫酸鈉。
可使用緩衝劑以將眼滴劑配方之pH保持在約4.0至約8.0之範圍內；以便使眼睛之刺激最小。至於直接玻璃體內或眼內注射，配方應在pH 7.2至7.5，較佳在pH 7.3至7.4。眼科組成物亦可包括適合用於向眼睛投予之張力劑。其中合適者為氯化鈉以使配方與0.9%鹽水溶液大致等滲。
在某些實施例中，醫藥組成物係與黏度增強劑一起調配。例示性劑為羥乙基纖維素、羥丙基纖維素、甲基纖維素、及聚乙烯吡咯啶酮。若需要，醫藥組成物可添加共溶劑。合適的共溶劑可包括甘油、聚乙二醇(PEG)、聚山梨醇酯、丙二醇、及聚乙烯醇。亦可包括防腐劑，例如，氯化烷基二甲基苄基銨、氯化苯釷、氯丁醇、乙酸苯汞、硝酸苯汞、硫柳汞、對羥苄酸甲酯、或對羥苄酸丙酯。
用於注射之配方較佳經設計用於單次使用投予且不含有防腐劑。可注射溶液應具有等於0.9%氯化鈉溶液(290至300毫滲莫耳之滲 透壓)之等滲度。此可藉由添加氯化鈉或如上文所列舉之其他共溶劑、或如上文所列舉之賦形劑諸如緩衝劑及抗氧化劑獲得。
眼前房之組織浸浴於前房液中，而視網膜係持續暴露於玻璃體。這些流體/凝膠以高度還原之氧還狀態存在，因為其含有抗氧化劑化合物及酶。因此，眼科組成物中包括還原劑可為有利的。合適的還原劑包括N-乙醯半胱胺酸、抗壞血酸或鹽形式、及亞硫酸鈉或偏二硫酸鈉，其中抗壞血酸及/或N-乙醯半胱胺酸或麩胱甘肽尤其適合用於可注射溶液。
包含細胞或條件培養基、或細胞組分或細胞產物之醫藥組成物可以所屬技術領域中已知的數種遞送方式中之一或多者遞送至患者眼睛。在可適合用於一些情況中之一個實施例中，組成物以眼滴劑或洗眼劑之形式局部遞送至眼睛。在另一實施例中，組成物可經由週期性眼內注射或藉由輸注於灌洗溶液諸如BSS或BSS PLUS(Alcon USA,Fort Worth,Tex.)中遞送至眼睛內之各種位置。或者，組成物可以所屬技術領域中具有通常知識者已知的其他眼科劑量形式施加，諸如預形成或原位形成凝膠或脂質體，例如Herrero-Vanrell之美國專利第5,718,922號中所揭露。在另一實施例中，組成物可經由隱形眼鏡(例如Lidofilcon B,Bausch & Lomb CW79或DELTACON(Deltafilcon A))或其他暫時停留在眼睛表面上的物體遞送至或遞送通過需要治療之眼睛之水晶體。在其他實施例中，可採用諸如膠原蛋白角膜護罩(例如BIO-COR可溶性角膜護罩，Summit Technology,Watertown,Mass.)之支持物。組成物亦可藉由輸注至眼球中來投予，該輸注係經由滲透泵(ALZET,Alza Corp.,Palo Alto,Calif.)之套管或藉由植入定時釋放膠囊(OCCUSENT)或可生物降解盤(OCULEX,OCUSERT)之任一者進行。此等投予途徑具有向眼睛提供醫藥組成物之連續供應之優點。此可有利於角膜之局部遞送。
包含於半固體或固體載劑中之活細胞之醫藥組成物一般經調配用於外科植入眼損傷或痛苦之部位。應理解，液體組成物亦可藉由外科程序投予，例如條件培養基。在具體實施例中，半固體或固體醫藥組成物可包含半透性凝膠、格架(lattice)、細胞支架及類似物，其可為不可生物降解者或可生物降解者。舉例而言，在某些實施例中，使外源性細胞與其周圍環境隔絕，但仍使該些細胞得以分泌且遞送生物分子至周圍細胞可為合意的或適當的。在這些實施例中，細胞可經調配成包含活的PPDC或含PPDC之細胞群之自主性植入物(autonomous implant)，該等活的PPDC或含PPDC之細胞群係由不可降解、選擇性可滲透之阻障圍繞以物理性分離移植細胞與宿主組織。此類植入物有時稱為「免疫保護性(immunoprotective)」，因為其具有防止免疫細胞及巨分子在醫藥誘導免疫抑制不存在下殺死移植細胞之能力(有關此類裝置及方法之綜述，參見例如P.A.Tresco等人，2000,Adv.Drug Delivery Rev.42：3-27)。
在其他實施例中，不同種類之可降解凝膠及網狀物(network)可用於本發明之醫藥組成物。舉例而言，尤其合適於持續釋放配方之可降解材料包括生物相容性聚合物，諸如聚(乳酸)、聚(乳-共-乙醇酸)、甲基纖維素、玻尿酸、膠原蛋白、及類似物。藥品遞送媒劑中可降解聚合物之結構、選擇及用途已綜述於數個出版物中，包括A.Domb等人，1992,Polymers for Advanced Technologies 3：279-291。Wong等人之美國專利第5,869,079號揭示可生物降解持續釋放眼植入物中親水性與疏水性實體之組合。此外，Guo等人之美國專利第6,375,972號、Chen等人之美國專利第5,902,598號、Wong等人之美國專利第6,331,313號、Ogura等人之美國專利第5,707,643號、Weiner等人之美國專利第5,466,233號及Avery等人之美國專利第6,251,090號各描述可用於遞送醫藥組成物之眼內植入物裝置及系統。
在例如用於修復神經病灶諸如損傷或切斷之視神經之其他實施例中，遞送於可生物降解(較佳生物可再吸收或生物可吸收)支架或基質之上或之中的細胞可為合意的或適當的。這些一般三維生物材料含有附著至支架、分散於支架內、或併入包埋於支架中之細胞外基質中之活細胞。一旦植入至身體之目標區域中，這些植入物變得與宿主組織整合，其中移植細胞逐漸變得確立(參見例如P.A.Tresco等人，2000，見前文；亦參見D.W.Hutmacher,2001,J.Biomater.Sci.Polymer Edn.12：107-174)。
可用於本發明中之支架或基質(有時統稱為「架構(framework)」)材料之實例包括非織物墊、多孔發泡體、或自組裝肽。非織物墊可例如使用包含乙醇酸及乳酸(PGA/PLA)之合成可吸收共聚物之纖維形成，其以商品名VICRYL(Ethicon,Inc.,Somerville,N.J)銷售。亦可利用由例如聚(ε-己內酯)/聚(乙醇酸)(PCL/PGA)共聚物組成之發泡體，其藉由諸如冷凍乾燥、或凍乾之製程形成，如美國專利第6,355,699號中所討論。亦可使用諸如自組裝肽(例如，RAD16)之水凝膠。原位形成可降解網狀物亦適用於本發明中(參見例如，Anseth,K.S.等人2002,J.Controlled Release 78：199-209；Wang,D.等人，2003,Biomaterials 24：3969-3980；He等人之美國專利公開案2002/0022676)。這些材料係經調配成適用於注射之流體，且隨後可藉由多種手段(例如，改變溫度、pH、暴露於光)誘導以原位或體內形成可降解水凝膠網狀物。
在另一實施例中，架構為毛氈(felt)，其可由自生物可吸收材料(例如，PGA、PLA、PCL共聚物或摻合物、或玻尿酸)製成之多絲纖維紗(multifilament yarn)組成。使用由捲曲、裁剪、分梳及針刺所組成之標準紡織加工技術將紗製成毛氈。在另一實施例中，細胞係經接種至可為複合結構之發泡體支架上。
在許多上文所提及之實施例中，可將架構模製成有用的形狀。此外應理解，可將PPDC培養於預形成、不可降解之外科或可植入裝置上，該培養方式為例如對應於用於製備例如含纖維母細胞GDC血管內線圈之方式(Marx,W.F.等人，2001,Am.J.Neuroradiol.22：323-333)。
在接種細胞之前，基質、支架或裝置可經處理以增強細胞附著。舉例而言，在接種之前，尼龍基質可用0.1莫耳乙酸處理且培養於聚離胺酸、PBS、及/或膠原蛋白中以塗布尼龍。聚苯乙烯可使用硫酸類似地處理。架構之外表面亦可經改質以改善細胞之附著或生長及組織之分化，諸如藉由血漿塗布架構或添加一或多種蛋白質(例如，膠原蛋白、彈性纖維、網狀纖維)、醣蛋白、醣胺聚醣(例如，硫酸肝素、軟骨素-4-硫酸鹽、軟骨素-6-硫酸鹽、硫酸皮膚素、硫酸角蛋白)、細胞基質及/或其他材料，諸如但不限於明膠、藻酸鹽、瓊脂、瓊脂糖、及植物膠等其他者。
含有活細胞之架構係根據所屬技術領域中已知的方法製備。舉例而言，細胞可自由生長於培養容器中至次長滿或長滿、自培養物剝離(lifted)且接種至架構上。若需要，可在接種細胞之前、之期間、或之後，將生長因子添加至培養基以觸發分化及組織形成。或者，架構本身可經改質以使得其上之細胞生長增強，或使得排斥植入物之風險減少。因此，可將一或多種生物活性化合物包括但不限於消炎劑、免疫抑制劑或生長因子添加至架構以用於局部釋放。
使用方法
前驅細胞諸如產後細胞(較佳hUTC或PDC)、或其細胞群、或由此類細胞所生產之條件培養基或其他組分或產物可以多種方式使用以支持且有利眼細胞及組織之修復及再生。此類用途涵蓋體外、離體及 體內方法。以下所闡述之方法係關於PPDC，但其他產後細胞亦可適用於該些方法中。
體外及離體方法
在一實施例中，前驅細胞諸如產後細胞(較佳hUTC或PDC)、及由其產生之條件培養基可於體外使用以篩選多種化合物之有效性及醫藥劑、生長因子、調節因子及類似物之細胞毒性。舉例而言，此類篩選可於實質上均質性PPDC族群上進行以評估欲與PPDC一起調配或共同投予以用於治療眼病症之候選化合物之效力或毒性。或者，出於評估新醫藥藥品候選者之效力之目的，此類篩選可於經刺激以分化成眼睛中所發現之細胞型之PPDC、或其前驅上進行。在此實施例中，PPDC保持在體外且暴露於欲測試之化合物。潛在細胞毒性化合物之活性可藉由其損傷或殺死培養物中之細胞的能力來量測。此可藉由活體染色技術容易地評估。
如上文所討論，PPDC可於體外培養以生產由細胞自然生產、或由細胞在經誘導以分化成其他譜系時所生產、或由細胞經由基因改質所生產之生物產物。舉例而言，發現TIMP1、TPO、KGF、HGF、FGF、HBEGF、BDNF、MIP1b、MCP1、RANTES、I309、TARC、MDC與IL-8皆分泌自生長於生長培養基中之臍衍生細胞。發現TIMP1、TPO、KGF、HGF、HBEGF、BDNF、MIP1a、MCP-1、RANTES、TARC、伊紅趨素(Eotaxin)、與IL-8皆分泌自培養於生長培養基中之胎盤衍生PPDC(參見實例)。
就此而言，本發明之實施例之特徵在於使用PPDC以生產條件培養基。自PPDC生產條件培養基可來自未分化之PPDC或來自在刺激分化之條件下培養之PPDC。此類條件培養基係經考慮用於例如上皮或神經 前體細胞之體外或離體培養，或用於體內以支持包含PPDC之均質性族群或包含PPDC及其他前驅之異質性族群之移植細胞。
出於多種目的可使用PPDC之細胞溶解產物、可溶細胞部分或組分、或其ECM或組分。如上文所提及，此等組分中之一些可用於醫藥組成物中。在其他實施例中，細胞溶解產物或ECM係用於塗布或以其他方式處理欲用於外科、或用於植入、或用於離體目的之物質或裝置，以促進在此類治療程序中所接觸之細胞或組織之癒合或生存。
如實例14及16中所述，已證明當PPDC與成體神經前驅細胞共培養生長時，PPDC具有支持該些細胞生存、生長及分化之能力。同樣，先前研究指出，PPDC可經由營養機制發揮支持視網膜細胞之功能。(US 2010-0272803)。因此，PPDC有利地用於體外共培養物中以提供營養支持給其他細胞，尤其神經細胞及神經和眼前驅(例如，神經幹細胞及視網膜或角膜上皮幹細胞)。至於共培養，將PPDC與所要其他細胞在兩種細胞型相接觸之條件下共培養可為合意的。此可例如藉由將細胞以異質性細胞群之形式接種於培養基中或接種至合適的培養基材上來達成。或者，首先可使PPDC生長至長滿，且隨後充當培養物中第二所要細胞型之基材。在此後者之實施例中，在共培養時期之後，可例如藉由膜或類似裝置將細胞進一步物理分離，以使得該其他細胞型可經移除且單獨使用。使用PPDC共培養以促進神經或眼細胞型之擴增及分化可具有在研究及臨床/治療領域中之適用性。舉例而言，可利用PPDC共培養以利培養物中之此類細胞之生長及分化，例如為了基礎研究目的或用於藥品篩選檢定。PPDC共培養亦可用於神經或眼前驅之離體擴增，以供稍後投予用於治療目的。舉例而言，神經或眼前驅細胞可自個體收集、與PPDC共培養離體擴增、隨後返回至該個體(自體轉移)或另一個體(同基因或同種異體轉移)。在此等實施例中，應理解在離體擴增之後，可將包含PPDC及前驅之混合細胞群向需 要治療之患者投予。或者，在自體轉移為適當的或合意的情況下，可將共培養細胞群在培養物中物理分離，使得能夠移除自體前驅以用於向患者投予。
體內方法
如實例中所闡述，條件培養基可有效地用於治療眼變性病狀。一旦移植至眼睛中之目標位置中，來自前驅細胞(諸如PPDC)之條件培養基原位提供營養支持給眼細胞。
來自前驅細胞(諸如PPDC)之條件培養基可與以下一起投予：其他有益的藥品、生物分子(諸如生長因子、營養因子)、條件培養基(來自前驅細胞或分化細胞培養物)、或其他活性劑(諸如消炎劑、抗細胞凋亡劑、抗氧化劑、生長因子、神經營養因子或如所屬技術領域中已知的神經再生或神經保護藥品)。當條件培養基與其他藥劑投予時，其可以單一醫藥組成物之形式一起投予，或與其他藥劑同時或依次(在投予其他藥劑之前或之後)投予之分開醫藥組成物。
可與前驅細胞(諸如PPDC)及條件培養基產物一起投予之其他組分之實例包括但不限於：(1)其他神經保護或神經有益藥品；(2)選定之細胞外基質組分，諸如所屬技術領域中已知的一或多種類型的膠原蛋白、及/或生長因子、富血小板血漿、及藥品(或者，細胞可經基因工程化以表現且生產生長因子)；(3)抗細胞凋亡劑(例如，紅血球生成素(EPO)、EPO模擬體(mimetibody)、血小板生成素(thrombopoietin)、類胰島素生長因子(IGF)-I、IGF-II、肝細胞生長因子、凋亡蛋白酶抑制劑)；(4)消炎化合物(例如，p38 MAP激酶抑制劑、TGF-β抑制劑、斯他汀類(statins)、IL-6及IL-I抑制劑、PEMIROLAST、TRANILAST、REMICADE、SIROLIMUS、及非固醇類消炎藥品(NSAIDS)(諸如TEPOXALIN、TOLMETIN、及 SUPROFEN))；(5)免疫抑制或免疫調節劑，諸如鈣調磷酸酶(calcineurin)抑制劑、mTOR抑制劑、抗增生劑、皮質類固醇及各種抗體；(6)抗氧化劑，諸如普洛布克(probucol)、維生素C與E、輔酶Q-10、麩胱甘肽、L-半胱胺酸及N-乙醯半胱胺酸；以及(6)局部麻醉劑等不及備舉。
液體或流體醫藥組成物可經投予至眼睛中更一般的位置(例如，局部地或眼內地)。
其他實施例涵蓋藉由投予醫藥組成物來治療眼變性病狀之方法，該些醫藥組成物包含來自前驅細胞(諸如PPDC)之條件培養基、或由該些細胞天然生產或經由細胞之基因改質生產之營養因子及其他生物因子。此外，這些方法可進一步包含投予其他活性劑，諸如生長因子、神經營養因子或如所屬技術領域中已知的神經再生或神經保護藥品。
用於投予來自前驅細胞(諸如PPDC)之條件培養基、或本文所述之任何其他醫藥組成物之劑量形式及方案係根據良好的醫療實踐得以發展，其考慮到個別患者之條件，例如，眼變性病狀之性質與程度、年齡、性別、體重及一般醫學病狀、及醫學從業者已知的其他因素。因此，欲向患者投予之醫藥組成物之有效量係藉由如所屬技術領域中已知的這些考量判定。
在開始細胞治療之前，以醫藥免疫抑制患者可為合意的或適當的。此可經由使用全身或局部免疫抑制劑來實現，或可藉由遞送於囊封裝置中之細胞來實現，如上文所述。這些及其他用於減少或消除對移植細胞之免疫反應之手段為所屬技術領域中已知的。替代地，條件培養基可自經基因改質以減少其免疫原性(immunogenicity)之PPDC製備，如上文所提及。
移植細胞於活體患者中之生存可經由使用多種掃描技術來判定，例如，電腦化斷層(CAT或CT)掃描、磁共振成像(MRI)或正電子 發射斷層攝影(PET)掃描。判定移植之生存亦可藉由移除組織且目視或經由顯微鏡檢查該組織來進行事後分析。或者，細胞可用對神經或眼細胞或其產物(例如，神經傳遞質)具特異性之染色劑處理。移植細胞亦可藉由事先併入示蹤染料諸如玫瑰紅或螢光素標記微球、快藍(fast blue)、鐵微粒、雙苯甲醯胺或基因引入之報告基因產物，諸如β-半乳糖苷酶或β-葡萄醣醛酸酶來識別。
將移植細胞或條件培養基功能性整合至眼組織或對象中可藉由檢查受損或患病之眼功能的恢復來評估。舉例而言，治療黃斑變性或其他視網膜病變之有效性可藉由視覺銳度之改善及評估立體眼底彩色相片之異常及分級來判定。(年齡相關性眼睛疾病研究調查小組，NEI,NIH,AREDS報告第8號，2001,Arch.Ophthalmol.119：1417-1436)。
套組及存庫(Bank)
在另一態樣中，本發明提供套組，其於多種如上所述用於眼再生及修復之方法中利用前驅細胞(諸如PPDC)、及細胞群、由該些細胞(較佳PPDC)所製備之條件培養基及其組分及產物。當用於治療眼變性病狀、或其他計劃治療時，該些套組可包括一或多種細胞群或條件培養基(包括至少產後細胞或衍生自產後細胞之條件培養基)、及醫藥上可接受之載劑(液體、半固體或固體)。套組亦可選地可包括例如藉由注射投予細胞及條件培養基之手段。套組進一步可包括使用細胞及條件培養基之說明書。經製備用於野外醫院用途，諸如軍事用途之套組可包括全程序供應(full-procedure supply)，其包括組織支架、手術用縫線、及類似物，其中細胞或條件培養基與急性受傷之修復結合使用。如本文所述之用於檢定及體外方法之套組可含有例如以下中之一或多者：(1)PPDC或其組分、或PPDC 之條件培養基或其他產物；(2)用於實踐體外方法之試劑；(3)適當時選用的其他細胞或細胞群；及(4)用於指導體外方法之說明書。
在另一態樣中，本發明亦提供用於存庫(banking)本發明之組織、細胞、細胞群、條件培養基、及細胞組分。如上文所討論，細胞及條件培養基易於凍存。因此本發明提供凍存細胞於存庫中之方法，其中該些細胞經冷凍儲存且與基於細胞之免疫、生化及基因性質之細胞的完整表徵相關聯。冷凍細胞可經解凍及擴增或直接用於自體、同基因、或同種異體治療，其取決於程序之要求及患者之需要。較佳地，關於每一凍存樣本之資訊儲存於電腦中，其可基於外科醫師、程序及患者之要求來搜尋，其中合適的匹配係基於細胞或族群之表徵來得到。較佳地，使本發明之細胞生長且擴增至所要量之細胞，且治療性細胞組成物係在基質或支持物存在或不存在下分開製備或以共培養之形式製備。儘管對於一些應用而言，使用新鮮製備之細胞可為較佳的，但是可藉由將細胞冷凍且將資訊輸入於電腦中以將電腦條目與樣本相關聯來將剩餘物凍存且存庫。即使在不需要將來源或捐贈者與此類細胞之接受者匹配的情況中，出於免疫目的，存庫系統使其易於將例如存庫細胞之所需生化或基因性質與治療需要匹配。在找到與所需性質相匹配之存庫樣本後，可擷取樣本且製備以供治療使用。如本文所述所製備之細胞溶解產物、ECM或細胞組分亦可經凍存或以其他方式保留(例如，藉由凍乾)且根據本發明存庫。
提供以下實例以更詳細描述本發明。該等實例意欲說明而非限制本發明。
以下縮寫可出現於實例以及說明書與申請專利範圍中之其他地方：ANG2(或Ang2)為血管生成素(angiopoietin)2；APC為抗原呈現細胞；BDNF為腦衍生神經營養因子(brain-derived neurotrophic factor)；bFGF為鹼性纖維母細胞生長因子(basic fibroblast growth factor)；bid(BID)為「一 日兩次」(每天兩次)；CK18為細胞角蛋白(cytokeratin)18；CNS為中樞神經系統；CXC配體3為趨化激素受體配體(chemokine receptor ligand)3；DMEM為達爾伯克(Dulbecco's)最低必需培養基；DMEM：lg(或DMEM：Lg、DMEM：LG)為具有低葡萄糖之DMEM；EDTA為乙二胺四乙酸；EGF(或E)為表皮生長因子(epidermal growth factor)；FACS為螢光活化細胞分選(fluorescent activated cell sorting)；FBS為胎牛血清；FGF(或F)為纖維母細胞生長因子(fibroblast growth factor)；GCP-2為顆粒性細胞趨化蛋白質(granulocyte chemotactic protein)-2；GDNF為膠細胞衍生神經營養因子(glial cell-derived neurotrophic factor)；GF AP為膠細胞纖維酸性蛋白質(glial fibrillary acidic protein)；HB-EGF為肝素結合表皮生長因子(heparin-binding epidermal growth factor)；HCAEC為人類冠狀動脈內皮細胞(Human coronary artery endothelial cell)；HGF為肝細胞生長因子(hepatocyte growth factor)；hMSC為人類間葉幹細胞(Human mesenchymal stem cell)；HNF-1α為肝細胞特異性轉錄因子(hepatocyte-specific transcription factor)；HVVEC為人類臍靜脈內皮細胞(Human umbilical vein endothelial cell)；I309為趨化激素及CCR8受體之配體；IGF-1為類胰島素生長因子(insulin-like growth factor)1；IL-6為介白素(interleukin)6；IL-8為介白素8；K19為角蛋白(keratin)19；K8為角蛋白8；KGF為角質細胞生長因子(keratinocyte growth factor)；LIF為白血病抑制因子(leukemia inhibitory factor)；MBP為髓鞘鹼性蛋白(myelin basic protein)；MCP-1為單核細胞趨化蛋白質(monocyte chemotactic protein)1；MDC為巨噬細胞衍生趨化激素(macrophage-derived chemokine)；MIP1α為巨噬細胞發炎蛋白質(macrophage inflammatory protein)1α；MIP1β為巨噬細胞發炎蛋白質1β；MMP為基質金屬蛋白酶(matrix metalloprotease,MMP)；MSC為間葉幹細胞(mesenchymal stem cell)；NHDF為正常人類皮膚纖維母細胞(Normal Human Dermal Fibroblast)；NPE為神經前驅細胞擴增 培養基(Neural Progenitor Expansion media)；NT3為神經營養蛋白(neurotrophin)3；04為寡樹突細胞(oligodendrocyte)或膠細胞分化標記(glial differentiation marker)04；PBMC為周邊血液單核細胞(Peripheral blood mononuclear cell)；PBS為磷酸鹽緩衝鹽水(phosphate buffered saline)；PDGF-CC為血小板衍生生長因子(platelet derived growth factor)C；PDGF-DD為血小板衍生生長因子D；PDGFbb為血小板衍生生長因子bb；PO為「經口」(經由嘴巴)；PNS為周邊神經系統(peripheral nervous system)；Rantes(或RANTES)為調控活化、正常T細胞表現與分泌(regulated on activation,normal T cell expressed and secreted)；rhGDF-5為重組人類生長及分化因子(recombinant human growth and differentiation factor)5；SC為皮下(subcutaneously)；SDF-1α為基質衍生因子(stromal-derived factor)1α；SHH為聲蝟(sonic hedgehog)；SOP為標準作業程序；TARC為胸腺與活化調控趨化激素(thymus and activation-regulated chemokine)；TCP為組織培養塑膠(Tissue culture plastic)；TCPS為組織培養聚苯乙烯；TGFβ2為轉形生長因子(transforming growth factor)β2；TGF β-3為轉形生長因子β-3；TIMP1為基質金屬蛋白酶組織抑制因子(tissue inhibitor of matrix metalloproteinase)1；TPO為血小板生成素(thrombopoietin)；TUJ1為BIII微管蛋白(Tubulin)；VEGF為血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor)；vWF為馮威里氏因子(von Willebrand factor)；及αFP為α-胎蛋白(fetoprotein)。
以下實例進一步說明但不限制本發明。
實例1 以臍衍生細胞條件培養基救援 體外失養性RPE細胞之吞噬活性之作用
已充分確定，來自皇家外科學院(RCS)大鼠之視網膜色素上皮(RPE)細胞由於Mertk基因之無效突變而表現出視桿細胞外節(ROS)吞噬受損。(Feng W.等人，J Biol Chem.2002,10：277(19)：17016-17022)。已顯示，將人類臍組織衍生細胞(hUTC)經視網膜下注射至RCS大鼠眼睛中改良視覺銳度且似乎改善視網膜變性。(US 2010/0272803)。在此實例中，以衍生自hUTC之條件培養基(CM)處理，使體外失養性RPE細胞恢復對ROS之吞噬。
檢測hUTC條件培養基以：1)評估使用hUTC CM新製劑對失養性RPE吞噬之影響；2)將可接受品質之RNA自經CM處理及未處理失養性RPE分離以用於藉由RNA-Seq之基因表現分析；3)檢測選定RTK配體是否可增加無法使用Mertk傳訊路徑之RCS大鼠的RPE吞噬水準；及4)測試活化非RTK之不同受體之其他非RTK配體是否可展現出類似功能。
材料和方法
人類臍組織衍生細胞(hUTC)獲自以下實例6至18中所述、及詳細描述於美國專利第7,524,489號與第7,510,873號、及美國公開申請案第2005/0058634號中之方法，各以引用方式併入本文中。簡言之，捐贈者同意活產後捐贈之人類臍帶係得自國家疾病研究交換中心(National Disease Research Interchange,Philadelphia,PA)。將組織絞碎且用酶消化。在用含有50U/mL膠原蛋白酶(Sigma,St.Louis)之混合物的達爾伯克改質伊格爾培養基(DMEM)-低葡萄糖(Lg)(Invitrogen,Carlsbad,CA)培養基幾乎完全消化之後，將細胞懸浮液過濾通過70[tm過濾器，且將上清液以350g離心。將分離之細胞於DMEM-Lg中清洗數次且以5,000個細胞/cm2之密度接種於含有15%(v/v)FBS(Hyclone,Logan,Utah)及4mM L-麩醯胺酸(Gibco, Grand Island,NY)之DMEM-Lg培養基中。當細胞達到大致70%長滿時，使用TrypLE(Gibco,Grand Island,NY)繼代。在數次繼代之後收集細胞並存庫。
RPE細胞之初代培養：RPE細胞獲自6至11日齡之色素正常(RCS rdy+/p+)(同源異基因對照)或失養性(RCS rdy-/p+)大鼠。角膜緣之前的眼睛前部係經移除。小心移除視網膜且將眼杯於4%(w/v)分散酶(0.8U/mg,Roche Diagnostics,Mannheim,Germany)中培養20至30分鐘。將RPE片移除、懸浮於生長培養基(DMEM+10% FBS[新紙20%]+Pen(200U/ml)/Strep(200μg/ml))中、以胰蛋白酶處理研製、且接種於8孔腔室玻片孔中或接種於放置於24孔盤之孔中的圓形玻璃蓋玻片上。將細胞在37℃下於5% v/v CO2中培養。
RPE細胞之磺醯玫瑰紅(sulforhodamine)染色：將RPE培養物保持在含有磺醯玫瑰紅(40μg/ml最終濃度)之生長培養基中24h至72h。在添加ROS之前將細胞染色36h至48h。在添加ROS之前6h至18h，將含磺醯玫瑰紅之培養基移除，且將培養物保持於更換數次之新鮮生長培養基中。
大鼠光受體OS之分離：眼睛在光起始之後數小時獲自2至4週齡或6至8週齡的Long Evans大鼠。將視網膜分離、用Polytron(8mm產生器)或Dounce玻璃均質機均質化、層疊於27%至50%線性蔗糖梯度之頂部、且在4℃下以38,000rpm於SW41轉子(240,000xg)中離心1小時。將頂部兩個ROS帶收集、用HBSS稀釋、且以7000rpm於HB-4轉子(8000 xg)中離心10分鐘使ROS成團塊。
ROS之FITC染色：將ROS團塊再懸浮於每團塊約1ml之無血清培養基(僅MEM基礎培養基)中。添加FITC儲備液(2mg/ml於0.1M碳酸氫鈉中，pH 9.0-9.5)至最終濃度10μg/ml且在室溫下培養1h。 將經FITC染色之ROS於微量離心機中以8000rpm離心10分鐘以成團塊、再懸浮於生長培養基(MEM20)中、計數、且稀釋至最終濃度107/ml。
hUTC條件培養基(CM)：三組hUTC條件培養基(CM)及對照培養基係經製備及用於吞噬檢定測試。
1. 具有血清之CM1製劑
在第1天，將hUTC以5,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% FBS+4mM L-麩醯胺酸)中。細胞於37℃下、5% CO2培養器中培養24小時。在第2天，吸出培養基、用DPBS清洗兩次、且補充21mL之DMEM/F12完全培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))。再培養細胞54小時。亦將對照培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))單獨培養54h。在第4天，收集細胞培養物上清液及對照培養基，在RT下以250g離心5分鐘，以3mL/管等分於凍存管中，且立即冷凍於-70℃冰箱。
2. 無血清之CM1製劑
在第1天，將hUTC以5,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% FBS+4mM L-麩醯胺酸)中。細胞於37℃下、5% CO2培養器中培養24小時。在第2天，吸出培養基、用DPBS清洗兩次、且補充21mL之DMEM/F12無血清培養基(DMEM：F12培養基+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))。再培養細胞54h。亦將無血清對照培養基(DMEM：F12培養基+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))單獨培養54h。在第4天，收集細胞培養物上清液及對照培養基，在RT下以250g離心5分鐘，以3mL/管等分於凍存管中，且立即冷凍於-70℃冰箱。
3. CM2製劑
與具有血清之CM1製劑相同且hUTC以5,000個存活細胞/cm2接種之製劑，除了細胞培養瓶為每瓶具有63mL培養基之T225瓶，且在更換培養基之後培養時間為48小時。
4. CM3製劑
與CM2相同之製劑，除了hUTC接種密度增加至10,000個存活細胞/cm2，且在更換培養基之後培養時間為48小時。
吞噬檢定：在檢定之前，將5×104個磺醯玫瑰紅染色之RPE細胞接種於多孔板中、保持於MEM+20%(v/v)FBS中6日，隨後保持於MEM+5%(v/v)FBS 24h(每樣本有2或更多個重複)。在添加ROS之前3h添加新鮮培養基，且檢定係藉由以FITC-ROS(107/ml於MEM+20%(v/v)FBS中)覆蓋培養物且在37℃下培養3至19h(通常8h)。在培養結束時，將細胞劇烈清洗以移除未結合之ROS且以2%(w/v)多聚甲醛(Sigma,St.Louis,MO)固定。
RPE吞噬ROS在以下規程方面係經最佳化：初代RPE之製備及培養、ROS之製備、及吞噬檢定本身。
RTK配體：所使用之RTK配體為：重組人類蝶素B2(目錄號pro-937，批號1112PEFNB2，ProSpec-Tany TechnoGene Ltd.,Israel)、重組人類BDNF(目錄號248-BD-025/CF，批號NG4012051，R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)、重組人類HB-EGF(目錄號259-HE-050/CF，批號JI3012021,R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)、重組人類HGF(目錄號PHG0254，批號73197181A，Life Technologies,Carlsbad,CA)、重組人類蝶素A4(目錄號E199，批號1112R245，Leinco Technologies,Inc.,St.Louis, MO)、及重組人類PDGF-DD(目錄號1159-SB-025/CF，批號OTH0412071，R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)。個別RTK配體儲備液之重構係根據供應商之資料表：重組人類BDNF及HB-EGF分別以100μg/mL及250μg/mL重構於無菌PBS中。重組人類HGF以500μg/mL重構於無菌蒸餾水中。重組人類蝶素A4以100μg/mL重構於無菌PBS中。重組人類PDGF-DD以100μg/mL重構於無菌4mM HCl中。經重構之儲備液係經等分且冷凍於-70℃冰箱。
將培養基更換成MEM+5%(v/v)FBS(MEM5)，且將配體以200ng/ml添加至失養性細胞，培養24h，接著在配體存在下添加ROS，且使細胞進行吞噬檢定。正常RPE重複係預培養於MEM5中且進行吞噬檢定作為對照。
非RTK配體：所使用之非RTK配體為：重組人類玻璃連接蛋白(目錄號2308-VN-050，批號NBH0713021，R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)、重組人類TGF-β1(目錄號240-B-010/CF，批號AV5412113，R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)、重組人類IL-6(目錄號206-IL-010/CF，批號OJZ0712041，R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN)、及人類內皮素-1(目錄號hor-307，批號1211PEDN112，ProSpec-Tany TechnoGene Ltd.,Israel)。個別非RTK配體儲備液之重構係根據供應商之資料表：重組人類玻璃連接蛋白及IL-6分別以100μg/mL重構於無菌PBS中。重組人類TGF-β1以100μg/mL重構於無菌4mM HCl中。重組人類內皮素-1以100μg/mL重構於無菌18MΩ-cm H2O中。經重構之儲備液係經等分且冷凍於-70℃冰箱。
條件培養基之吞噬救援活性檢定：將失養性(D)RPE重複以各自1ml條件培養基培養約24h。至於對照，同源異基因對照(N)RPE重複係培養於對照培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep (50μg/ml))中相同時間。在培養之後，將條件培養基及對照培養基移除，以新鮮MEM5替換，且使RPE進行吞噬檢定。
檢測非RTK配體對RCS RPE細胞吞噬之作用之檢定：hUTC CM3係用作檢定之陽性對照。在內皮素-1、TGF-β1及IL-6之測試方面，失養性(D)RPE係以各自1ml條件培養基培養24h。隨後將條件培養基移除，以新鮮MEM+5%(v/v)FBS(MEM5)替換，並進行吞噬檢定(於MEM5中饋以ROS 8h)。至於其他對照，將正常與失養性RPE培養於MEM5中24h且進行吞噬檢定。失養性RPE細胞係經重組人類內皮素-1、TGF-β1或IL-6以200ng/mL培養於MEM5中24h，隨後添加ROS於含有重組人類內皮素-1、TGF-β1或IL-6之MEM5中(添加ROS時不更換培養基)以進行吞噬檢定。
在玻璃連接蛋白之測試方面，ROS係在37℃下以對照培養基(DMEM+10% FBS)或條件培養基於CO2細胞培養器中預培養24h。同時，ROS係於MEM+20%(v/v)FBS(MEM20)中以各種濃度之人類重組玻璃連接蛋白(4、2、1、0.5μg/ml)分別在37℃下於CO2細胞培養器中預培養24h。在培養之後，將ROS離心沉降而不清洗，再懸浮於MEM20中，且在MEM5存在下饋至失養性RPE細胞以進行吞噬檢定。至於對照組，將單獨正常RPE或單獨失養性RPE培養於MEM20中，隨後在未處理ROS(再懸浮於MEM20中且饋至RPE細胞)存在下更換成MEM5以進行吞噬檢定。
成像及定量：藉由相位差及螢光顯微鏡法，使用裝備有落射螢光光學、螢光顯微鏡、及數位攝影機之倒立顯微鏡檢測活RPE細胞。結合至細胞表面之FITC-ROS、經攝入之FITC-ROS、及吞噬溶酶體之識別係如McLaren等人(Invest Ophthalmol Vis Sci.,1993；34(2)：317-326.)中所定義。經結合及攝入之ROS之定量係於蓋玻片上之固定細胞上進行。以250x 放大率用適當的過濾器及柵格(視野大小(field size)，40×40μm)進行計數。計數代表性視野(每培養物10至15個視野)中之各種類型的細胞，且將數據表達為來自2至3個分開實驗之每個時間點所獲得之集合值之平均值。藉由司徒頓t檢定(Student's t-test)檢驗成對數據之統計顯著性，且統計顯著性被定於p<0.05。
檢定接受標準：吞噬之絕對水準在實驗中取決於多種因素而有所不同，包括經分離之RPE及經製備之ROS的品質。特別使用相同譜系(亦即，相同收集及製備之時間)之RPE，以比較不同處理對細胞之作用。若正常吞噬水準相較於失養性吞噬水準之關係為大致1：0.3，則判斷檢定為合理的。
相對吞噬：相對吞噬為失養性RPE吞噬水準相較於作為參考點之同源異基因對照(正常)吞噬水準所顯示者。吞噬水準可被表達為ROS平均數/視野、或ROS平均數/細胞。
RNA之分離。將hUTC以5,000個細胞/cm2接種且於含有15%(v/v)FBS(Hyclone,Logan,Utah)及4mM L-麩醯胺酸(Gibco,Grand Island,NY)之DMEM-Lg培養基中生長24小時，接著將培養基更換成含有10%(v/v)FBS之DMEM：F12培養基且再生長48小時。隨後收集細胞以用於總RNA萃取及DNA移除，使用Qiagen RNAeasy萃取及柱上DNAse套組(Qiagen,Valencia,CA)。使用NanoDrop 1000分光光度計(Thermo Fisher Scientific,'Waltham,MA)及Agilent 2100生物分析儀(Agilent Technologies,Santa Clara,CA)測定樣本中RNA之完整性及量。由Expression Analysis Inc.,Durham,NC進行文庫製備及定序。根據製造商之說明書使用Illumina之TruSeq RNA-Seq樣本製備套組製備RNA文庫且以Illumina之HiSeq 2000定序。使用軟體ArrayStudio 6.1版將定序讀數對映於參考人類基因體 (GRCh37修補(patch)8)。使用每百萬對映讀數每千鹼基轉錄本之片段(FPKM)計算基因表現。
在分離之後，首先將RCS RPE細胞重複三次接種於96孔板中約一週，將培養基更換成hUTC條件培養基或對照培養基之時間點視為0h。使用Trizol(Life Technologies,Carlsbad,CA)且根據製造商之規程分別於2、4、8及24h萃取RNA。將各時間點自三重複萃取之RNA集合為一個樣本。樣本之濃度與260/280吸光度比係以分光光度法測定。
失養性RPE之重複(各約2.4×104)係經條件培養基處理或不處理，如以下方案所示：
結果 條件培養基測試
如方法中所述，測試三種條件培養基製劑(CM1、CM2、CM3)對失養性RPE的吞噬救援活性及與正常RPE之比較。
CM1：CM1係測試兩次(圖1A及圖1B)，一次使用褐色正常RPE，另一次使用色素RPE。觀察吞噬救援活性。應注意到，在圖1A中，色素失養性RPE之吞噬基礎水準幾乎為褐色套頭(tan hooded)正常RPE之水準的50%，超過接受範圍(<正常吞噬水準之30%)。亦測試無血清之CM1培養基之作用(圖2)。具有及不具有無血清之CM1的失養性細胞之間的差異具統計顯著性。
CM2：測試CM2且發現缺乏活性(圖3)。
CM3：在第1天更換培養基之後，CM2(無活性)之培養時間為48h而CM1(活性)之培養時間為54h。為獲得活性條件培養基，初始細胞接種密度及更換培養基後之細胞培養時間為應考慮之兩個態樣。相較於CM2，CM3係藉由將細胞接種密度加倍並維持更換培養基後之相同培養時間來製備。將CN3檢定多次以確認活性之存在(圖4A、圖4B、圖4C)，顯示高達100%之吞噬救援活性。
RCS RPE中之吞噬
分離自RCS大鼠眼睛之RPE細胞係經體外培養以用於吞噬檢定。將來自正常同源異基因對照大鼠眼睛之未處理RPE細胞用作對照以顯示正常吞噬水準。當RCS RPE與hUTC共培養(圖4A)或經hUTC條件培養基(CM)處理(圖4B)時，RCS RPE中之缺陷性吞噬恢復至正常RPE之水準。當RCS RPE係饋以經hUTC CM預培養之OS並在hUTC CM不存在下進行吞噬時，該等細胞之OS吞噬係經救援(圖4C)。如所證明，hUTC分泌特定因子以促進RPE吞噬。
RTK配體檢定
BDNF及HB-EGF檢定：將失養性RPE二重複用BDNF及HB-EGF處理，並如方法中所述檢定其以及正常對照之吞噬(圖5A、圖5B)。每個樣本觀察十至十二次。失養性細胞傾向於顯示相較於正常細胞高於平常之吞噬率，但此不妨礙結果之解釋。BDNF顯示之吞噬救援活性高於CM3。
PDGF-DD、蝶素A4、及HGF檢定：每次取樣所計數之細胞數目係按每視野(圖6A、圖6C、圖6D)及每細胞(圖6B、圖6E)來表達。結果未受影響，因為每一框所計數之細胞數目為恆定的。相較於未處理之對照，PDGF-DD(圖6A)、蝶素A4(圖6C)及HGF(圖6D)皆上調失養性RPE細胞中之吞噬。PDGF-DD顯示最高救援作用(高於CM3)。
蝶素B2檢定：蝶素B2顯示極高、高於CM3的吞噬救援活性。每視野(圖7A)及每細胞(圖7B)兩種結果係經測定。
非RTK配體檢定
內皮素-1、TGF-β1或IL-6對RCS RPE吞噬之作用：失養性RPE細胞係經內皮素-1、TGF-β1或IL-6處理，並如材料與方法中所述檢定其以及正常對照之吞噬(圖8A至圖8C)。每個樣本觀察十次。圖8A及圖8B顯示兩次分開之檢定。圖8B中正常及失養性RPE細胞之基礎吞噬水準低於圖8A中者，其歸因於分離自大鼠之細胞變異及ROS之不同製備；由於正常吞噬水準相較於失養性吞噬水準之關係為大致1：0.3，因此認為檢定有效。為了與圖8A中之結果比較，將圖8C中之數據正規化，以使得正常及失養性RPE細胞之吞噬水準與圖8A者相同。hUTC CM3提高失養性RPE細胞之吞噬，然而內皮素-1、TGF-β1或IL-6在檢定中所測試之濃度(200ng/mL)下對RCS RPE吞噬無作用。
玻璃連接蛋白對RCS RPE吞噬之作用：將失養性RPE細胞饋以用各種濃度之玻璃連接蛋白預培養之ROS，並如材料與方法中所述檢定其以及正常對照之吞噬(圖9)。每個樣本觀察十次。
至於用於本研究之對照培養基及hUTC條件培養基，對照培養基含有10% FBS，對照培養基中之玻璃連接蛋白之量為約500ng/ml。hUTC條件培養基可含有比對照培養基更多之玻璃連接蛋白，因為hUTC組成性地分泌玻璃連接蛋白。與經hUTC CM3預處理之ROS相反，經對照培養基預處理之ROS似乎對失養性RPE吞噬無作用。所有測試濃度之玻璃連接蛋白具有與對照培養基類似之作用。此等結果與先前出版物中所報告之結果一致(Edwards等人，J Cell Physiol.1986,127：293-296；Miceli等人，Invest Ophthalmol Vis Sci.,1997；38(8)：1588-1597)。玻璃連接蛋白為血清之活性組分，且引起經培養之人類捐贈者眼睛分離RPE細胞的血清刺激ROS攝取(Miceli等人，1997)。然而，在大鼠RPE細胞中，血清對正常RPE吞噬與失養性RCS RPE吞噬之作用不同。Edwards等人顯示，經培養之RCS大鼠RPE細胞與正常同源異基因對照RPE細胞在無血清培養基中吞噬可相比之少量ROS。培養基中存在20%血清大幅提高(6倍)正常RPE細胞中之吞噬，但對RCS RPE細胞則無作用(Edwards等人，J Cell Physiol.1986,127：293-296)。
當前結果連同文獻報告一起指出，玻璃連接蛋白並不涉及hUTC CM媒介之RCS RPE細胞吞噬增強。
經條件培養基處理之失養性RPE的RNA分離
如方法中所述，進行數輪此實驗以獲得必要的RNA樣本。RNA樣本係用於由Expression Analysis,Inc.進行之RNA定序。在實驗1中，樣本8及9之RIN分數未達RNA定序標準。將該兩個樣本自定序清單移除。 在實驗2中，樣本1之RIN分數未達RNA定序標準且係自定序清單移除。(定序結果如下)。
實驗1
實驗2
hUTC表現RTK配體基因及橋分子基因係由基於RNA-Seq的hUTC轉錄體分析顯示。偵測15個RTK次家族之多個RTK配體之基因表現(表1-1)。各RTK次家族之RTK配體基因之表現水準係基於每百萬 對映讀數每千鹼基轉錄本之片段(FPKM)之數值加以分類及繪圖(圖10；表1-1)。亦偵測包括MFG-E8、Gas6、蛋白質S、TSP-1及TSP-2之橋分子之基因表現(表1-3)。
RCS RPE中對應RTK次家族及橋分子受體之基因表現顯示，RTK次家族可基於激酶域序列被分組成20個次家族(Robinson DR，等人，Oncogene.2000；19(49)：5548-5557)。偵測RCS RPE中20個RTK次家族中之18個的基因表現(表1-2)。在18個RTK次家族中有15個次家族對應hUTC中所表現之RTK配體基因。亦偵測RCS RPE中報告用於橋分子結合(Kevany BM，等人，Physiology,2010；25(1)：8-15)之受體之基因表現(表1-4)，包括整合素avP3、avP5、Axl、Tyro3、MerTK、及CD36。
實例2 hUTC條件培養基中之受體酪胺酸激酶(RTK)配體量測
使用RNA-Seq及資訊學數據分析之RCS RPE細胞與hUTC兩者之轉錄體概況顯示，RCS RPE細胞表現多個RTK基因，而hUTC表現多個RTK配體之基因(表2-1)。在hUTC中具有相對高的基因表現水準之七個RTK次家族之RTK配體係於hUTC條件培養基中量測，以與正常人類皮膚纖維母細胞(NHDF)及ARPE-19細胞之條件培養基比較。此等配體包括BDNF及NT3(Trk家族之配體)、HGF(Met家族之配體)、PDGF-DD及PDGF-CC(PDGF家族之配體)、蝶素B2(Eph家族之配體)、HB-EGF(ErbB家族之配體)、GDNF(Ret家族之配體)、以及聚集蛋白(Musk家族之配體)。
材料和方法
hUTC(Lot NB12898P7製備自PDL20研究庫，第7頁)、ARPE-19細胞(繼代3)及NHDF(繼代10)係用於本研究。
人類BDNF ELISA套組(目錄號DBD00，批號311655，標準偵測範圍：62.5-4000pg/mL；靈敏度：20pg/mL)、人類HGF ELISA套組(目錄號DHG00，批號307319，標準偵測範圍：125-8000pg/mL；靈敏度：<40pg/mL)、人類PDGF-CC ELISA套組(目錄號DCC00，批號309376，標準偵測範圍：62.5-4000pg/mL；靈敏度：4.08pg/mL)、人類PDGF-DD ELISA套組(目錄號DDD00，批號310518，標準偵測範圍：31.3-2000pg/mL；靈敏度：1.67pg/mL)係來自R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN。HB-EGF ELISA套組(目錄號ab100531，批號GR135979-1，標準偵測範圍：16.4-4000pg/mL；靈敏度：<20pg/mL)及NT3 ELISA套組(目錄號ab100615，批號GR141281-1，標準偵測範圍：4.12-3000pg/mL；靈敏度：<4pg/mL)係來自abcam,Cambridge,MA。人類GDNF ELISA套組(目錄號RAB0205，批號0919130270，標準偵測範圍：2.74-2000pg/mL；靈敏度：2.74pg/mL)係來自Sigma,St.Louis,MI。人類蝶素B2 ELISA套組(目錄號MBS916324，批號R21199424，標準偵測範圍：15.6-1000pg/mL；靈敏度：15.6pg/mL) 及聚集蛋白ELISA套組(目錄號MBS454684，批號EDL201310110，標準偵測範圍：31.2-2000pg/mL；靈敏度：<13.6pg/mL)係來自MyBioSource,Inc.,San Diego,CA。
hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基之製備：在第1天，將hUTC、ARPE-19及NHDF分別以10,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之15mL hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% v/v FBS+4mM L-麩醯胺酸)中。細胞於37℃下5% CO2培養器中培養24h。在第2天，吸出培養基且補充21mL DMEM/F12完全培養基(DMEM/F12培養基+10% v/v FBS+50U/ml Pen/50μg/ml Strep)。再培養細胞48h。亦將對照培養基(DMEM/F12完全培養基)單獨培養48h。在第4天，收集細胞培養物上清液及對照培養基，在4℃下以250g離心5分鐘，以0.5mL/管等分於凍存管中，且立即冷凍於-70℃冰箱。冷凍樣本係經解凍以供ELISA使用。
結果
於hUTC條件培養基中所量測之選定RTK配體水準係概述於表2-2中。
亦將於hUTC條件培養基中所量測之選定RTK配體水準與NHDF及ARPE-19條件培養基中之配體水準比較，配體水準經正規化至pg/mL/1×106個細胞。每48h每百萬個hUTC細胞分泌72.7pg/mL BDNF，相較於每48h每百萬個NHDF及ARPE-19細胞分別分泌20.4pg/mL及16.2pg/mL BDNF(圖11A)。對照培養基中BDNF之量不可偵測。(圖11G)。
hUTC及NHDF分泌少量NT3(圖11B)。ARPE-19條件培養基及對照培養基中NT3之量不可偵測。
每48h每百萬個hUTC細胞分泌23.7pg/mL HGF，相較於NHDF及ARPE-19分別分泌3.9pg/mL及0.4pg/mL NHDF(圖11C)。對照培養基中HGF之量不可偵測。(圖11G)。
hUTC CM中PDGF-CC及PDGF-DD之量相較於NHDF及ARPE-19 CM中之量係顯示於圖11D及圖11E中。對照培養基中分別偵測出0.3pg/mL PDGF-CC及3.1pg/mL PDGF-DD。
每48h每百萬個hUTC細胞分泌9.5pg/mL GDNF，相較於NHDF分泌8.5pg/mL GDNF。每48h每百萬個ARPE-19細胞僅釋放痕量1.3pg/mL GDNF(圖11F)。對照培養基中GDNF之量不可偵測。(圖11G)。
hUTC、NHDF、及ARPE-19之條件培養基中蝶素B2及HB-EGF之水準低於ELISA之偵測界限(分別為15.6pg/mL及20pg/mL)。hUTC、NHDF及ARPE-19條件培養基中之聚集蛋白水準類似於對照培養基。
在RCS RPE吞噬檢定中，使用200ng/mL之劑量之BDNF、HGF、PDGF-DD、蝶素-B2及HB-EGF所進行之測試皆顯示救援RCS RPE細胞吞噬的陽性作用。(實例1)。然而，條件培養基中hUTC所分泌之此等配體之實際濃度低於所測試之水準。
實例3 hUTC條件培養基中之橋分子
RCS RPE細胞及hUTC兩者之轉錄體概況顯示，RCS RPE細胞表現辨識細胞凋亡細胞上之「吃我」信號的受體基因。(Erwig L-P,Cell Death and Differentiation 2008；15：243-250)。此等受體包括清道夫受體(SR-A、LOX-1、CD68、CD36、CD14)、整合素(αvβ3及αvβ5)、Axl及Tyro3之受體酪胺酸激酶、LRP-1/CD91、及PS受體穩定素1。此外，hUTC表現許多橋分子基因，包括TSP-1、TSP-2、界面活性蛋白質D(SP-D)、MFG-E8、Gas6、載脂蛋白H(apolipoprotein H)、及膜聯蛋白1(annexin 1)。檢測hUTC條件培養基中之橋分子分泌，且將水準與來自ARPE-19及正常人類皮膚纖維母細胞(NHDF)之該些水準比較。
材料和方法
hUTC(PDL20，主細胞庫編號25126057)、ARPE-19細胞(繼代3)(ATCC,Manassas,VA)及NHDF(繼代11)(Lonza,South Plainfield,NJ)係用於本研究。
人類Gas6 ELISA套組(目錄號SK00098-01，批號20111218)及人類SP-D ELISA套組(目錄號SK00457-01，批號20111135)係來自Aviscera Bioscience,Santa Clara,CA。人類Gas6 ELISA套組之標準偵測範圍為62.5-8000pg/mL，靈敏度為31pg/ml。人類SP-D ELISA套組之標準偵測範圍為78-5000pg/mL，靈敏度為30pg/ml。人類MFG-E8 ELISA套組(目錄號DFGE80，批號307254，標準偵測範圍：62.5-4000pg/mL；靈敏度：4.04pg/mL)、人類TSP-1 ELISA套組(目錄號DTSP10，批號307182，標準偵測範圍：7.81-500ng/mL；靈敏度：0.355ng/mL)、人類TSP-2 ELISA套組(目錄號DTSP10，批號307266，標準偵測範圍：0.31-20ng/mL；靈 敏度：0.025ng/mL)係來自R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN。載脂蛋白H人類ELISA套組(目錄號ab108814，批號GR126938，標準偵測範圍：0.625-40ng/mL，靈敏度：0.6ng/mL)係來自Abcam,Cambridge,MA。人類膜聯蛋白I(ANX-I)ELISA套組(目錄號MBS704042，批號N10140947，標準偵測範圍：0.312-20ng/mL；靈敏度：0.078ng/mL)係來自MyBioSource,Inc.,San Diego,CA。
hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基之製備：在第1天，將hUTC、ARPE-19及NHDF分別以10,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之15mL hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% FBS+4mM L-麩醯胺酸)中。於37℃下5% CO2培養器中培養24h。在第2天，吸出培養基且補充18mL DMEM/F12完全培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))。再培養細胞48h。亦單獨培養對照培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))48h。在第4天，收集細胞培養物上清液及對照培養基，在4℃下以250g離心5分鐘，以0.5mL/管等分於凍存管中，且立即冷凍於-70℃冰箱。冷凍樣本係經解凍以供ELISA使用。
結果
每48h每百萬個hUTC細胞分泌77.2ng MFG-E8，相較於每48h每百萬個ARPE-19及NHDF細胞分別分泌7.6ng及17.5ng MFG-E8(圖12A)。hUTC條件培養基中MFG-E8之濃度為15.5ng/mL。對照培養基中MFG-E8之量不可偵測。(圖12E)。
每48h每百萬個hUTC細胞分泌352.8pg Gas6，相較於ARPE-19分泌183.9pg及NHDF分泌1101pg(圖12B)。hUTC條件培養基中Gas6之濃度為70.6pg/mL。對照培養基中Gas6之量不可偵測。(圖11G)。
每48h每百萬個hUTC細胞分泌759.2ng TSP-1，相較於每48h每百萬個ARPE-19細胞分泌4744.68ng TSP-1及NHDF細胞分泌 2487.55ng TSP-1(圖12C)。hUTC條件培養基中TSP-1之濃度為151.8ng/mL。對照培養基中偵測出4.0ng/mL TSP-1。(圖12E)。
每48h每百萬個hUTC細胞分泌44.2ng TSP-2，相較於NHDF分泌30ng TSP-2。每48h每百萬個ARPE-19細胞釋放可忽略量0.08ng TSP-2(圖12D)。hUTC條件培養基中TSP-2之濃度為8.8ng/mL。對照培養基中偵測出痕量TSP-2(0.02ng/mL)。(圖12E)。
hUTC、ARPE-19及NHDF之條件培養基中載脂蛋白H之水準類似於對照培養基中之水準(6.8ng/mL)。hUTC、ARPE-19及NHDF條件培養基以及對照培養基中SP-D及膜聯蛋白I之水準低於ELISA之偵測界限(分別為<30pg/mL及<78pg/mL)。該些細胞不分泌這兩種蛋白質，或分泌水準低於偵測界限。
在hUTC條件培養基中所檢測之橋分子及其濃度之概述列舉於表3-2中。
在所量測之橋分子中，MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2係涉及RCS RPE細胞中由hUTC所媒介之吞噬救援之候選橋分子。
經橋分子調理之ROS之結合可活化整合素及RTK傳訊路徑，其可補償Mertk傳訊之不存在，且引起吞噬之救援。
實例4 hUTC條件培養基及橋分子對於RCS RPE細胞吞噬視桿細胞外節(ROS)之 作用
hUTC條件培養基對吞噬ROS之直接作用係藉由對RCS RPE細胞饋以經hUTC條件培養基預培養之ROS來檢測。(US 2010/0272803)。失養性RPE細胞之吞噬係經完全救援。此處，研究存在於或經分泌於hUTC條件培養基中之橋分子之作用。目前，ROS上所識別之唯一「吃我」信號為磷脂醯絲胺酸(PS)(Finnemann等人，PNAS,2012；109(21)：8145-8148)。
材料和方法
用於RPE分離、RPE細胞之初代培養、RPE細胞之磺醯玫瑰紅染色、大鼠ROS之分離、ROS之FITC染色、吞噬檢定、成像與定量、檢定接受標準、及相對吞噬水準之程序描述於實例1中。
hUTC條件培養基(CM)：hUTC CM3係用於本研究。在第1天，將hUTC以10,000個存活細胞/cm2接種於T75細胞培養瓶中之hUTC生長培養基(DMEM低葡萄糖+15% FBS+4mM L-麩醯胺酸)中。於37℃下5% CO2培養器中培養24小時。在第2天，吸出培養基且補充21mL DMEM/F12完全培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))。再培養細胞48小時。亦單獨培養對照培養基(DMEM：F12培養基+10% FBS+Pen(50U/ml)/Strep(50μg/ml))48h。在第4天，收集細胞培養物上清液及對照培養基，在RT下以250g離心5分鐘，以3mL/管等分於凍存管中，且立即冷凍於-70℃冰箱。
重組人類橋分子：重組人類MFG-E8(目錄號2767-MF-050，批號MPP2012061)、重組人類Gas6(目錄號885-GS-050，批號GNT5013011)、重組人類TSP-1(目錄號3074-TH-050，批號MVF3613041)、重組人類TSP-2(目錄號1635-T2-050，批號HUZ1713021) 全部獲自R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN。個別蛋白質儲備液之重構係根據供應商之資料表：重組人類MFG-E8、TSP-1及TSP-2分別以100μg/mL於無菌PBS中重構。重組人類Gas6以100μg/mL重構於無菌水中。經重構之儲備液係經等分且冷凍於-70℃冰箱。
橋分子對RCS RPE細胞吞噬之作用：ROS係在37℃下以對照培養基(DMEM+10% FBS)或CM3於CO2細胞培養器中預培養24h。同時，ROS係於對照培養基中以各種濃度之人類重組MFG-E8、Gas6、TSP-1或TSP-2在37℃下於CO2細胞培養器中預培養24h。在培養之後，將ROS離心沉降而不清洗，再懸浮於MEM5中，且在MEM5存在之情況下饋至失養性RPE細胞以進行吞噬檢定。至於對照組，將單獨正常RPE或單獨失養性RPE培養於MEM20中，隨後在未處理ROS(再懸浮於MEM20中且饋至RPE細胞)存在下更換成MEM5以進行吞噬檢定。
RTK配體對RCS PRE細胞吞噬之作用：RCS RPE係經重組人類BDNF、HGF及GDNF個別地培養24小時，且隨後添加OS以進行吞噬檢定。經hUTC CM培養之RCS RPE係用作陽性對照。
siRNA剔除：針對人類BDNF、HGF、GDNF、MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2之On-TARGETplus人類siRNA-SMARTpool，以及ON-TARGETplus Non-targeting pool(淩亂siRNA池)係購自GE Dharmacon(Lafayette,CO)。使用DharmaFECT轉染試劑(GE Dharmacon)，將25nM之各siRNA池分別併入hUTC。
免疫螢光染色之抗體：橋分子(人類MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2)之未共軛單株抗體，以及小鼠IgG2A與IgG2B同型對照抗體係獲自R&D Systems,Inc.,Minneapolis,MN。此等抗體由Life Technologies(Eugene,OR)來與Alexa Fluor 488螢光團共軛。未共軛之單株抗視紫質抗體(EMD Millipore Corp.,Temecula CA)由Life Technologies(Eugene,OR)來與 Alexa Fluor 568共軛。未共軛之小鼠IgG2b，x同型對照抗體係獲自Biolegend公司(San Diego,CA)且由Life Technologies(Eugene,OR)來與Alexa Fluor 488螢光團共軛。其係作為Alexa Fluor 568共軛抗視紫質抗體之同型對照抗體。Alexa Eluor 488共軛小鼠IgG2A係作為Alexa Fluor 488共軛抗人類MFG-E8、Gas6、或TSP-2抗體之同型對照抗體。Alexa Fluor 488共軛小鼠IgG2B係作為Alexa Fluor 488共軛人類TSP-1抗體之同型對照抗體。
免疫螢光：將10×106 OS在37℃下於1mL hUTC CM、1mL對照培養基、或1mL含有124ng/mL MFG-E8、8.75ng/mL Gas6、1.2μg/mL TSP-1或238ng/mL TSP-2之對照培養基中培養24小時。使OS成團塊、清洗且包埋於Tissue-Tek O.C.T化合物(Sakura Finetek USA,Inc.,Torrance,CA)中。使用低溫恆溫器(Leica CM1950,Leica Microsystems,Inc.,Buffalo Grove,Illinois)以獲得10 iAm系列切片。將該些切片轉移至玻片上用於免疫螢光染色。將OS片之圈起位置在室溫下用阻斷緩衝液(blocking buffer)(10%(v/v)山羊血清、1%(v/v)BSA、及0.1%(v/v)Triton x 100於PBS中)處理1小時且隨後在4℃下用Alexa Fluor 568共軛抗視紫質抗體及Alexa Fluor 488共軛抗MFG-E8、抗Gas6、抗TSP-1、抗TSP-2、或小鼠IgG2A或IgG2B同型對照抗體雙重染色2小時。在用PBS清洗三次之後，將切片固定於Vectashield封片劑(Vector Laboratories,Inc.,Burlingame,CA)中且用裝備有落射螢光之Zeiss照相顯微鏡III型(Carl Zeiss,Oberkochen,Germany)評估。使用Kodak 290數位照相機擷取影像且使用Kodak Microscopy Documentation System 290 Photoshop影像分析軟體(Eastman Kodak,Rochester,NY)分析。以250x放大率用適當的過濾器獲得影像。
結果
如圖13A與圖13B(實驗1)及圖13C與13D(實驗2)中所示，未處理失養性RPE細胞相較於正常RPE細胞減少吞噬。在檢定期間不存在hUTC條件培養基之情況下，用hUTC條件培養基預培養失養性RPE細胞完全救援吞噬。當hUTC條件培養基存在於吞噬檢定期間時，不管失養性RPE細胞是否經hUTC條件培養基預處理，皆觀察到更為穩固增強之吞噬。饋以經hUTC條件培養基預處理之ROS的失養性RPE細胞在吞噬檢定期間不存在hUTC條件培養基下顯示吞噬之恢復。
將失養性RPE細胞饋以經各種濃度之MFG-E8(15.5ng/mL；31ng/mL；62ng/mL；124ng/mL)、Gas6(70pg/mL；350pg/mL；1750pg/mL；8750pg/mL)、TSP-1(152ng/mL；304ng/mL；608ng/mL；1216ng/mL)或TSP-2(8.8ng/mL；26.4ng/mL；79.2ng/mL；237.6ng/mL)預培養之ROS並檢定其吞噬(圖14A至圖14D)。每個樣本觀察十次。吞噬ROS藉由對RCS RPE細胞饋以經MFG-E8、Gas6、TSP-1或TSP-2預培養之ROS而救援。
MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2中之各者劑量依賴性增加RCS RPE細胞中之吞噬水準(圖14E至圖14H)。類似地，BDNF、HGF及GDNF劑量依賴性增加RCS RPE細胞中之吞噬失準，其中HGF即使在最低劑量下之作用仍最強。當以較高濃度施加時，BDNF、HGF及GDNF能夠救援RCS RPE中之吞噬(圖14I至J)。此等結果顯示，重組RTK配體及橋分子蛋白可模擬hUTC CM之作用且恢復RCS RPE吞噬，且涉及RCS RPE中hUTC媒介之吞噬救援。
BDNF、HGF、GDNF、MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2係藉由siRNA媒介基因靜默於hUTC中剔除。不靶向任何基因之淩亂siRNA池係用來作為基因剔除對照。各因子之剔除效率藉由量測細胞培養物上清液中各因子之水準來檢測，該些細胞培養物上清液係收集自經siRNA轉染 之hUTC(圖15A)。模擬或淩亂siRNA轉染對這些因子之hUTC分泌無作用。靶向MFG-E8、TSP-1、TSP-2及HGF之siRNA產生幾乎100%剔除效率；觀察到BDNF及GDNF分別80%及65%之剔除(圖15A)。在hUTC中靶向Gas6之siRNA不起作用(數據未顯示)。CM係自siRNA轉染之hUTC生產且施加至RCS RPE以識別RTK配體與橋分子剔除之作用。將RCS RPE用生產自經靶向BDNF、HGF或GDNF之siRNA轉染的hUTC之CM培養(圖15B)，或饋以生產自經靶向MFG-E8、TSP-1或TSP-2之siRNA轉染的hUTC之CM預處理的OS(圖15C)。製備自未轉染及淩亂siRNA轉染之hUTC之CM係用來作為剔除對照CM。RTK配體各者之個別剔除相較於剔除對照CM廢除hUTC CM對吞噬救援之作用(圖15B)。剔除橋分子中之各者降低RCS RPE對OS之吞噬(圖15C)。此等RTK配體與橋分子為RCS RPE中hUTC媒介之吞噬救援所需。
每一個別橋分子與視紫質之雙染色確保OS受到評估。視紫質係位於光受體OS中之視色素且為OS染色之標誌(Szabo K，等人Cell Tissue Res.2014；356(1)：49-63)。經個別重組人類橋分子預培養之視紫質染色(Alexa Fluor 568共軛，紅色)粒子經四種橋分子抗體(Alexa Fluor 488共軛，綠色)之各者染色呈陽性，但Alexa Fluor 488共軛小鼠IgG2A或IgG2B同型對照抗體染色則不呈陽性(圖16A)。經hUTC CM培養之OS獲得類似結果(圖16B)，然而經對照培養基培養之OS則未觀察到任何橋分子染色(圖16C)。抗視紫質抗體之特異性藉由以Alexa Fluor 568共軛抗視紫質抗體及Alexa Fluor 488共軛小鼠IgG2b,x同型對照抗體雙重染色OS粒子來確認。僅抗視紫質抗體染色之OS呈陽性(圖16D)。hUTC CM中之橋分子MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2與視紫質共定位於OS上證明橋分子結合至OS。
實例5 hUTC防止RPE之氧化損傷
氧化應力可影響視網膜色素上皮之健康。研究hUTC及hUTC條件培養基對改良暴露於氧化損傷之RPE細胞之健康的作用。
材料和方法
過氧化氫(H2O2)、結晶紫及噻唑基藍四唑鎓溴化物(MTT)獲自Sigma-Aldrich(St Louis,MO)。
哈姆F10培養基、青黴素-鏈黴素溶液(5000個單位/mL青黴素/5000μg/mL鏈黴素)、胰蛋白酶-EDTA溶液(0.05%)、低葡萄糖DMEM、L-麩醯胺酸200mM獲自Life Technologies。
Hyclone FBS及甲醛購自Thermo Scientific。異丙醇、冰乙酸及鹽酸購自Fisher Scientific(Pittsburgh,PA)。乙醇獲自Decon Labs Inc.(King of Prussia,PA)。PBS獲自Lonza(South Plainfield,NJ)。
ARPE生長培養基：達爾伯克改質伊格爾培養基(DMEM；具有4.5g/L葡萄糖及丙酮酸鈉而無L-麩醯胺酸及酚紅)(Mediatech,Inc.A Coming Subsidiary,Manassas,VA)補充有5%或10%熱失活胎牛血清(FBS,Life Technologies,Grand Island,NY)、1X最低必需培養基非必需胺基酸(MEM-NEAA,Life Technologies)及0.01mg/mL建它黴素試劑溶液(Life Technologies)。
含有10μM A2E之5% ARPE生長培養基：DMEM(Mediatech,Inc.A Corning Subsidiary)補充有5%熱失活FBS(Life Technologies)、1X MEM-NEAA(Life Technologies)、0.01mg/mL建它黴素試劑溶液(Life Technologies)及10μM A2E(由Janet Sparrow博士之實驗室製備)。
hUTC完全培養基：DMEM低葡萄糖(Life Technologies)補充有15% Hyclone® FBS(Thermo Scientific,Logan,Utah)及4mML-麩醯胺酸(Life Technologies)。
hUTC FBS培養基：達爾伯克改質伊格爾培養基(DMEM)(Mediatech,Inc.A Corning Subsidiary,Manassas,VA)，補充有5%或10%熱失活FBS(Life Technologies)、1X MEM-NEAA(Life Technologies)、0.01mg/mL建它黴素試劑溶液(Life Technologies)及4mML-麩醯胺酸(Mediatech,Inc.A Corning Subsidiary)。
hUTC條件培養基：將hUTC(研究庫NB12898P6，PDL20)在37℃、5% CO2下以5000個細胞/cm2接種於2個T75培養瓶中之hUTC條件培養基(15mL)中。接種後24小時，將培養基自各瓶移除且將細胞以15mL 1X37達爾伯克磷酸鹽緩衝鹽水(DPBS)清洗3次。在第三次清洗之後，將15mL 5%或10% FBS hUTC培養基添加至各瓶。亦將15mL 5%及10% FBS hUTC培養基添加至2個空T75瓶中來充當對照。將所有瓶放回37℃、5% CO2 48小時。48小時之後，將培養基自各瓶移除且在4℃下以250×g離心5分鐘。將培養基放置於冰上且隨後等分且儲存在-80℃下。
用於A2E研究之ARPE-19細胞培養物：在第1天，將ARPE-19細胞以40,000個細胞/孔之密度接種於8孔NuncTM Lab-TekTM II腔室玻片(Nalge Nunc International Corporation,Rochester,NY)中最終體積300μL 10% ARPE生長培養基中。接種後24小時(第2天)，將細胞上之培養基移除且以300μL 5% ARPE生長培養基替換。一週之後(第9天)，再次將培養基移除且以新鮮5% ARPE生長培養基替換。在第14天，將培養基移除且以含有10μM A2E之新鮮5% ARPE生長培養基替換。在第17及21天，再次將培養基移除且以新鮮含A2E之培養基替換。在第24天， 將含A2E之培養基移除且以新鮮5% ARPE生長培養基替換，且使細胞靜止五天。
在第29天，將培養基自各孔移除且以250μL 5或10% hUTC條件培養基或對照培養基(未暴露於細胞之5%及10% FBS hUTC培養基)替換。在第32及35天，將條件培養基及對照培養基自細胞移除且以新鮮條件培養基或對照培養基替換。
在第36天，將所有培養基自各孔移除且將細胞用1X DPBS清洗一次。稍後將200μL新鮮DPBS添加至各孔且將細胞暴露於由鎢絲鹵素來源遞送之430nm光20分鐘。在光暴露之後，將DPBS移除且進行細胞生存力檢定。
用於A2E研究之MTT檢定：藉由代謝(MTT，3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑鎓溴化物)比色微滴定檢定(Roche Diagnostics Corporation,Indianapolis,IN)量測細胞毒性。為進行MTT檢定，將20μL MTT標記試劑(Roche Diagnostics Corporation)添加至各孔中之0.2mL 5%培養基中。在培養4小時之後，將另一200μL增溶溶液添加至各孔用於隔夜培養。在以13,000rpm離心2分鐘之後，在570nm下以分光光度法量測上清液(SpectaMax MJ,Molecular Devices,Sunnyvale,CA)。還原MTT在570nm下之吸光度降低指出細胞生存力減弱。以Prism軟體分析數據。
用於A2E研究之Dead Red檢定：在標記之後藉由允許標記細胞凋亡細胞核之螢光排除檢定(fluorescence exclusion assay)定量非存活細胞，細胞凋亡細胞核係由於在細胞死亡之後期階段細胞膜完整性喪失所致。在光暴露之後，將細胞放回至5% ARPE生長培養基中。在藍光暴露之後八小時，死亡細胞之細胞核係以膜不透性染料Dead Red(Life Technologies；1/500稀釋，15min培養)染色且將所有細胞核以4',6'-二胺基-2-苯基吲哚(DAPI)(Life Technologies)染色。簡言之，將細胞用預熱(37 ℃)的漢克斯氏平衡鹽溶液(1X)HBSS(Life Technologies)清洗兩次。將250μL Dead Red工作溶液(8μL Dead Red儲備液+4mL HBSS)在室溫下添加至各孔中15分鐘。在15分鐘之後，將細胞用HBSS清洗兩次。在室溫下將300μL 4%甲醛製備之1X DPBS添加至各孔中30分鐘。將細胞用1X DPBS清洗3次且在室溫下用DAPI(以1：300製備於1X DPBS)工作溶液培養5分鐘。將細胞用1X DPBS清洗3次。固定玻片且加蓋載玻片，且藉由計數各孔中照明區域內至少5個顯微鏡視野中DAPI染色及Dead-Red染色之細胞核來檢定重複物。值係表示為Dead-Red染色細胞核/DAPI染色細胞核×100。
用於H 2 O 2 研究之細胞培養物：使ARPE-19細胞(美國菌種保存中心；Manassas,VA)在37℃、5% CO2下以單層形式生長於在T75瓶中之含有10% FBS及50個單位/mL青黴素/50μg/mL鏈黴素之哈姆F10培養基中。在與hUTC共培養之實驗中，ARPE19細胞係於T-75瓶中生長至80-90%長滿且稍後接種於24孔細胞培養板中。使ARPE-19細胞生長於10% FBS生長培養基中直至接種之後第3天，此時將培養基改變成基礎培養基(哈姆F10培養基補充有2% FBS及50個單位/mL青黴素/50μg/mL鏈黴素)。
將hUTC以5000個細胞/cm2在hUTC完全生長(低葡萄糖DMEM補充有15% FBS及4mM L-麩醯胺酸)中接種至細胞培養插入物(孔大小1μm)上24小時。將插入物轉移至生長於細胞培養板72小時之ARPE-19細胞且於hUTC完全培養基中生長。將插入物移除且將製備於無血清哈姆F10培養基中之ARPE-19細胞以H2O2(0-1500μM)處理9小時。
用於H 2 O 2 研究之結晶紫細胞生存力檢定：藉由結晶紫攝取測定相對細胞生存力。在處理之後，將細胞固定於4%於PRS中之多聚甲醛 中且於0.1%結晶紫、10%乙醇之溶液中染色。在用水清洗之後，將剩餘染色劑溶解於10%乙酸中且用微板讀數儀量測在550nm下之吸光度。
用於H 2 O 2 研究之MTT檢定：將細胞在37℃下用0.25mg/mL於無血清培養基中之MTT培養3小時。隨後將培養基移除且添加酸性異丙醇(每1mL異丙醇1μL濃HCl)以增溶所產生之藍色甲(formazan)(MTT代謝產物)。藍色甲之密度係使用微板讀數儀在550nm下量測，背景波長為630nm。
結果
hUTC條件培養基防止富含A2E之RPE細胞遭受藍光誘導之損傷。ARPE-19生存力係於照射後藉由用膜不透性染料Dead Red標記細胞且用DAPI染色標記所有細胞核來評估。於數位影像中計數之細胞核提供存活與非存活細胞之百分比(圖17A至圖17B)。在430nm照明不存在下，10μM A2E對ARPE-19生存力無作用。用對照培養基培養且經歷430nm照明之細胞顯示高水準非存活細胞(約50%)。相反地，用hUTC條件培養基處理導致非存活細胞之數目減少(約20%)。
亦藉由MTT檢定量測細胞生存力(圖17C至圖17D)，其基於健康細胞將黃色四唑鎓鹽MTT切斷成紫色甲晶體之能力。甲之生產與培養物中存活細胞之數目成比例。用條件培養基處理且暴露於光之ARPE-19細胞顯示相較於添加10μM A2E且未暴露於光之ARPE-19細胞的生存力減少。用5或10% hUTC條件培養基處理之細胞顯示生存力高於暴露於對照培養基之細胞。
在總H2O2處理之後，藉由結晶紫及MTT檢定測定ARPE19細胞生存力(圖17E至圖17F)。與hUTC共培養之ARPE-19細胞相較於未處理之對照細胞顯示在用1500μM H2O2處理之後生存力得以改善。
實例6 自產後組織衍生細胞
此實例描述自胎盤及臍帶組織製備產後衍生細胞。在足月或不足月生產後獲得產後臍帶及胎盤。細胞係收集自五位不同捐贈者之臍帶及胎盤組織。測試不同的細胞分離方法產生具有以下潛能之細胞的能力：1)分化成具有不同表型之細胞的潛能，此為幹細胞共有之特徵；或2)提供可用於其他細胞及組織之營養因子之潛能。
方法及材料
臍細胞分離：臍帶係得自國家疾病研究交換中心(NDRI,Philadelphia,Pa.)。組織係在正常分娩後獲得。細胞分離規程係在層流櫃(laminar flow hood)中無菌執行。為了移除血與碎屑，將臍帶於抗黴劑及抗生素(100個單位/毫升青黴素、100微克/毫升鏈黴素、0.25微克/毫升兩性黴素B)存在之磷酸鹽緩衝鹽水(PBS；Invitrogen,Carlsbad,Calif.)中清洗。接著在150cm2組織培養盤上並且於50毫升的培養基(DMEM-低葡萄糖或DMEM-高葡萄糖；Invitrogen)存在下機械解離組織，直到將組織切碎為細泥。將切碎的組織轉移至50毫升錐形管(每管約5公克的組織)。
隨後將組織於DMEM-低葡萄糖培養基或DMEM-高葡萄糖培養基中消化，各培養基含有如上文所述之抗黴劑及抗生素。在一些實驗中，使用膠原蛋白酶與分散酶的酶混合物(「C：D」)(膠原蛋白酶(Sigma,St Louis,Mo.)，500個單位/毫升；與分散酶(Invitrogen)，50個單位/毫升，在DMEM-低葡萄糖培養基中)。在其他實驗中，使用膠原蛋白酶、分散酶與玻尿酸酶的混合物(「C：D：H」)(膠原蛋白酶，500個單位/毫升；分散酶，50個單位/毫升；與玻尿酸酶(Sigma)，5個單位/毫升，在DMEM-低葡萄糖 中)。使含有組織、培養基與消化酶的錐形管在37℃下在迴轉式振盪器(Environ,Brooklyn,N.Y)中以225rpm培養2小時。
在消化後，將組織以150xg離心5分鐘，且將上清液吸出。將團塊再懸浮於20毫升的生長培養基(DMEM-低葡萄糖(Invitrogen)、15百分比(v/v)胎牛血清(FBS；定義牛血清(defined bovine serum)；批號AND18475；Hyclone,Logan,Utah)、0.001%(v/v)2-巰基乙醇(Sigma)、每100毫升1毫升如上文所述之抗生素/抗黴劑。使細胞懸浮液通過70微米尼龍細胞濾器(BD Biosciences)過濾。使額外5毫升包含生長培養基的潤洗液通過濾器。接著使細胞懸浮液通過40微米的尼龍細胞濾器(BD Biosciences)，然後用額外5毫升的生長培養基潤洗液來趕出。
將濾液再懸浮於生長培養基(總體積50毫升)中然後以150xg離心5分鐘。將上清液吸出然後將細胞再懸浮於50毫升的新鮮生長培養基中。將此過程再重複兩次。
在最終離心後，將上清液吸出然後將細胞團塊再懸浮於5毫升的新鮮生長培養基中。使用台盼藍染色來測定存活細胞數目。接著在標準條件下培養細胞。
將分離自臍帶的細胞以5,000個細胞/cm2接種於經明膠塗布T-75cm2培養瓶(Corning Inc.,Corning,N.Y.)上並且於具有如上文所述之抗生素/抗黴劑的生長培養基中。2天後(在各種實驗中，細胞培養2至4天)，將用過的培養基自瓶吸出。用PBS清洗細胞三次以去除碎屑與血衍生細胞。接著用生長培養基補充細胞並讓其生長至長滿(自繼代0至繼代1約10日)。在後續繼代時(自繼代1至2等等)，細胞在4至5日後達到次長滿(75至85百分比長滿)。針對這些後續繼代，以5000個細胞/cm2接種細胞。使細胞在加濕培養器中於5百分比二氧化碳及大氣氧氣、37℃下生長。
胎盤細胞分離：胎盤組織係獲自NDRI(Philadelphia,Pa.)。該些組織係來自孕婦且在正常外科分娩時獲得。胎盤細胞係如臍細胞分離所述分離。
以下實例應用於自胎盤組織分離母體衍生及新生兒衍生之分開細胞群。
細胞分離規程係在層流櫃(laminar flow hood)中無菌執行。將胎盤組織在有抗黴劑及抗生素(如上文所述)存在之磷酸鹽緩衝鹽水(PBS；Invitrogen,Carlsbad,Caiif.)中清洗以移除血及碎屑。隨後將胎盤組織解剖成三區：頂線(新生兒側或態樣)、中線(混合的細胞分離新生兒及母體)及底線(母體側或態樣)。
將分開的區個別於具有抗生素/抗黴劑之PBS中清洗數次以進一步移除血及碎屑。接著在150cm2組織培養盤上於50毫升的DMEM-低葡萄糖存在下機械解離各區，直到將各區切碎為細泥。將泥轉移至50毫升錐形管中。各管含有大致5公克組織。將組織於含有抗黴劑及抗生素(100U/毫升青黴素、100微克/毫升鏈黴素、0.25微克/毫升兩性黴素B)及消化酶之DMEM-低葡萄糖或DMEM-高葡萄糖培養基中消化。在一些實驗中，使用膠原蛋白酶與分散酶的酶混合物(「C：D」)，其於DMEM-低葡萄糖培養基中含有500個單位/毫升之膠原蛋白酶(Sigma,St Louis,Mo.)與50個單位/毫升之分散酶(Invitrogen)。在其他實驗中，使用膠原蛋白酶、分散酶與玻尿酸酶的混合物(C：D：H)(膠原蛋白酶，500個單位/毫升；分散酶，50個單位/毫升；與玻尿酸酶(Sigma)，5個單位/毫升，在DMEM-低葡萄糖中)。使含有組織、培養基與消化酶的錐形管在37℃下在迴轉式振盪器(Environ,Brooklyn,NY)中以225rpm培養2小時。
在消化後，將組織以150xg離心5分鐘，將所得上清液吸出。將團塊再懸浮於20毫升具有青黴素/鏈黴素/兩性黴素B之生長培養基中。 使細胞懸浮液過濾通過70微米的尼龍細胞濾器(BD Biosciences)，用額外5毫升的生長培養基潤洗液來趕出。使總細胞懸浮液通過40微米的尼龍細胞濾器(BD Biosciences)，接著用額外5毫升的生長培養基作為潤洗液。
將濾液再懸浮於生長培養基(總體積50毫升)中然後以150xg離心5分鐘。將上清液吸出然後將細胞團塊再懸浮於50毫升的新鮮生長培養基中。將此過程再重複兩次。在最終離心後，將上清液吸出然後將細胞團塊再懸浮於5毫升的新鮮生長培養基中。使用台盼藍排除測試來測定細胞計數。接著在標準條件下培養細胞。
LIBERASE細胞分離：於具有LIBERASE(Boehringer Mannheim Corp.,Indianapolis,Ind.)(每毫升2.5毫克，Blendzyme 3；Roche Applied Sciences,Indianapolis,Ind.)與玻尿酸酶(5個單位/毫升，Sigma)之DMED-低葡萄糖培養基中將細胞自臍帶組織分離。組織消化與細胞分離係如以上之其他蛋白酶消化所述，但使用LIBERASE/玻尿酸酶混合物代替C：D或C：D：H酶混合物。用LIBERASE消化組織會使來自產後組織迅速擴增的細胞族群得以分離出來。
使用其他酶組合之細胞分離：對於使用不同酶組合以自臍帶分離出細胞的程序進行比較。用於消化比較之酶包括：i)膠原蛋白酶；ii)分散酶；iii)玻尿酸酶；iv)膠原蛋白酶：分散酶混合物(C：D)；v)膠原蛋白酶：玻尿酸酶混合物(C：H)；vi)分散酶：玻尿酸酶混合物(D：H)；與vii)膠原蛋白酶：分散酶：玻尿酸酶混合物(C：D：H)。觀察利用這些不同酶消化條件之細胞分離的差異(表6-1)。
自臍帶中之殘餘血液分離細胞：進行其他嘗試以藉由不同方式將細胞池自臍帶分離。在一個例子中，將臍帶切片然後用生長培養基清洗以排出血塊與凝膠狀材料。收集血、凝膠狀材料與生長培養基之混合物 然後以150xg離心。將團塊再懸浮並接種於經明膠塗布培養瓶上之生長培養基中。透過這些實驗，分離出會迅速擴增的細胞群。
自臍帶血分離細胞：亦自獲自NDR1之臍帶血樣本分離細胞。此處所使用之分離規程為Ho等人之國際專利申請案WO 2003/025149中者(Ho,T.W.，等人，「Cell Populations Which Co-Express CD49C and CD90」，申請號PCT/US02/29971)。將臍帶血(NDRI,Philadelphia PA)樣本(分別為50毫升與10.5毫升)與裂解緩衝液(經過濾器滅菌之155mM氯化銨、10毫莫耳碳酸氫鉀、0.1毫莫耳EDTA、緩衝至pH 7.2(所有組分皆來自Sigma,St.Louis,Mo.))混合。使細胞以1：20臍帶血對裂解緩衝液的比例溶解。使所生成的細胞懸浮液渦動5秒鐘，然後在環境溫度下培養2分鐘。將溶解產物離心(以200xg離心10分鐘)。將細胞團塊再懸浮於完全最低必需培養基(Gibco,Carlsbad,Calif.)中，該培養基含有10百分比胎牛血清(Hyclone,Logan Utah)、4毫莫耳麩醯胺酸(Mediatech,Hemdon,Va.)、每100毫升100個單位青黴素與每100毫升100微克鏈黴素(Gibco,Carlsbad,Calif.)。將再懸浮之細胞離心(以200xg離心10分鐘)、將上清液吸出然後在完全培養基中清洗細胞團塊。將細胞直接接種至T75培養瓶(Corning,N.Y.)、T75經層黏蛋白塗布培養瓶或T175經纖連蛋白素塗布培養瓶(均來自Becton Dickinson,Bedford,Mass.)。
使用不同酶組合與生長條件分離細胞：為了要判定細胞群是否可在不同條件下分離並且在分離後是否可立即在各種條件下擴增，根據以上提供之程序使用C：D：H的酶組合，將細胞在含有或未含0.001百分比(v/v)2-巰基乙醇(Sigma,St.Louis,Mo.)的生長培養基中消化。在多種條件下接種如此分離之胎盤衍生細胞。所有細胞皆於青黴素/鏈黴素存在下生長。(表6-2)。
使用不同酶組合與生長條件分離細胞：在所有條件下，細胞在繼代0與1之間附著及擴增良好(表6-2)。條件5至8與13至16中之細胞皆顯示在接種後良好增生多達4次繼代，將這些細胞在此時點凍存且存庫。
結果
使用不同酶組合之細胞分離：C：D：H組合提供最佳分離後細胞產率，並且比起其他條件在培養中產生擴增更多代的細胞(表6-1)。單獨使用膠原蛋白酶或玻尿酸酶無法獲得可擴增的細胞群。未試圖判定此結果是否專屬於所測試之膠原蛋白。
使用不同酶組合與生長條件分離細胞：在所有針對酶消化與生長所測試的條件下，細胞皆在繼代0與1之間附著及擴增良好(表6-2)。實驗條件5至8與13至16中之細胞皆在接種後良好增生多達4次繼代，將這些細胞在此時點凍存。所有細胞皆經凍存以備進一步研究。
自臍帶中之殘餘血分離細胞：已成核細胞附著且生長快速。以流動式細胞測量術分析這些細胞，而這些細胞與透過酶消化所得之細胞相似。
自臍帶血分離細胞：製劑含有紅血球及血小板。在前3個星期期間沒有已成核細胞之附著與分裂。在接種後3個星期更換培養基但仍未觀察到細胞附著與生長。
概述：可使用膠原蛋白酶(基質金屬蛋白酶)、分散酶(中性蛋白酶)與玻尿酸酶(分解玻尿酸之黏液分解酶)的酶組合，將細胞群自臍帶及胎盤組織有效地衍生出來。亦可使用名為Blendzyme之LIBERASE。特定言之，亦可使用Blendzyme 3並搭配玻尿酸酶來分離細胞，Blendzyme 3為膠原蛋白酶(4 Wunsch單位/g)與嗜熱菌蛋白酶(1714酪蛋 白單位/g)。當在明膠塗布之塑膠上的生長培養基中培養時，這些細胞迅速擴增許多個繼代。
亦自臍帶中的殘餘血分離出細胞，但該殘餘血並非臍帶血。自組織洗出的血塊中之所以存在於所用之條件下會貼附與生長之細胞，可能是因為細胞在解剖過程期間釋出。
實例7 產後衍生細胞之核型分析
細胞療法所用之細胞系較佳為均質性並且不含任何汙染細胞型。細胞療法所用之細胞應具有正常染色體數目(46)及結構。為了要識別出均質性且不含非產後組織來源之細胞的胎盤及臍帶衍生細胞系，對於細胞樣本之核型進行分析。
方法及材料
在含有青黴素/鏈黴素之生長培養基中培養來自男新生兒之產後組織的PPDC。選用來自男新生兒(X,Y)的產後組織以能夠區別新生兒衍生細胞與母體衍生細胞(X,X)。將細胞以每平方公分5,000細胞接種於T25培養瓶(Corning Inc.,Corning,N.Y.)中的培養基中並且擴增至80%長滿。將含有細胞之T25培養瓶用生長培養基填充至頸部。由快遞員將樣本送至臨床細胞遺傳學實驗室(估計實驗室至實驗室交通時間為一小時)。在中期(metaphase)分析細胞，此時染色體係最佳可視化。在所計數之二十個處於中期的細胞中，有五個分析出具有正常均質性核型數目(兩個)。如果觀察到兩個核型，即將細胞樣本歸類為均質性。如果觀察到超過兩個核型，即將細胞樣本歸類為異質性。當識別出異質性核型數目(四個)時，即計數額外中期細胞並加以分析。
結果
所有送交染色體分析的細胞樣本皆判讀為展現正常外觀。16個經分析之細胞系中的三個展現異質性表型(XX與XY)，從而指示存在有同時衍生自新生兒與母體來源的細胞(表7-1)。將衍生自組織胎盤-N之細胞自胎盤之新生兒態樣分離。在繼代零，此細胞系顯現出均質性XY。然而，在繼代九，該細胞系為異質性(XX/XY)，指出先前未偵測出的母體來源細胞存在。
概述：染色體分析識別出核型顯現為正常(由臨床細胞遺傳學實驗室判讀)的胎盤及臍帶衍生細胞。核型分析亦識別出不含母體細胞的細胞系，此係由均質性核型來判定。
實例8 藉由流動式細胞測量術評估人類產後衍生細胞表面標記
藉由流動式細胞測量術來表徵細胞表面蛋白質或「標記」可用來判定細胞系的身份(identity)。表現的一致性可由多個捐贈者來判定，並且在暴露於不同處理與培養條件的細胞中判定。自胎盤及臍分離出的產後衍生細胞(PPDC)系係經表徵(藉由流動式細胞測量術)，從而提供用於識別這些細胞系的概況。
方法及材料
培養基及培養容器：將細胞培養於具有青黴素/鏈黴素之生長培養基(Gibco Carlsbad,Calif.)中。使細胞在經血漿處理之T75、T150與T225組織培養瓶(Corning Inc.,Corning,N.Y.)中培養直到長滿。培養瓶的生長表面係藉由在室溫下培養2%(w/v)明膠(Sigma,St.Louis,Mo.)20分鐘來塗布明膠。
抗體染色及流動式細胞測量術分析：將瓶中之貼附細胞於PBS中清洗且用胰蛋白酶/EDTA脫附。將細胞收集、離心，且以每毫升1×107 的細胞濃度再懸浮於3%(v/v)FBS於PBS中。根據製造商規範，將關注的細胞表面標記之抗體(請見後文)加至一百微升的細胞懸浮液然後將混合物在黑暗中在4℃下培養30分鐘。在培養之後，將細胞用PBS清洗且離心以移除未結合的抗體。將細胞再懸浮於500微升PBS中且藉由流動式細胞測量術分析。流動式細胞測量術分析係用FACScaliburTM儀器(Becton Dickinson,San Jose,Calif.)來執行。表8-1列舉所使用之細胞表面標記之抗體。
胎盤與臍比較：在繼代8將胎盤衍生細胞與臍衍生細胞進行比較。
繼代對繼代比較：在繼代8、15、及20分析胎盤衍生細胞及臍衍生細胞。
捐贈者對捐贈者比較：為了比較捐贈者之間的差異，將來自不同捐贈者之胎盤衍生細胞彼此比較，且將來自不同捐贈者之臍衍生細胞彼此比較。
表面塗層比較：將培養於經明膠塗布培養瓶上的胎盤衍生細胞與培養於未經塗布培養瓶上之胎盤衍生細胞進行比較。將培養於經明膠塗布培養瓶上的臍衍生細胞與培養於未塗布培養瓶上之臍衍生細胞進行比較。
消化酶比較：對於四種用於分離與製備細胞的處理進行比較。將藉由用1)膠原蛋白酶；2)膠原蛋白酶/分散酶；3)膠原蛋白酶/玻尿酸酶；與4)膠原蛋白酶/玻尿酸酶/分散酶之處理分離自胎盤之細胞進行比較。
胎盤層比較：將衍生自胎盤組織之母體態樣之細胞與衍生自胎盤組織之絨毛區之細胞以及衍生自胎盤之新生胎兒態樣之細胞進行比較。
結果
胎盤與臍比較：藉由流動式細胞測量術分析之胎盤衍生細胞及臍衍生細胞顯示CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α及HLA-A、B、C之陽性表現，此係由相對於IgG對照組的螢光值增加來指示。這些細 胞之CD31、CD34、CD45、CD117、CD141、與HLA-DR、DP、DQ的可偵測表現為陰性，此係由螢光值與IgG對照組可相比來指示。考慮到陽性曲線之螢光值之變異。陽性曲線之平均值(亦即CD13)及範圍(亦即CD90)顯示一些變異，但曲線顯現正常，證實為均質性族群。兩個曲線個別展現大於IgG對照組之值。
繼代對繼代比較-胎盤衍生細胞：藉由流動式細胞測量術分析之繼代8、15、及20之胎盤衍生細胞皆陽性表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α及HLA-A、B、C，如相對於IgG對照組的螢光值增加所反映。該些細胞之CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ的表現為陰性，具有與IgG對照組一致的螢光值。
繼代對繼代比較一臍衍生細胞：藉由流動式細胞測量術分析之繼代8、15與20之臍衍示生細胞皆表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C，由相對於IgG對照組的螢光增加來指示。這些細胞為CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ陰性，此係由螢光值與IgG對照組一致來指示。
捐贈者對捐贈者比較一胎盤衍生細胞：藉由流動式細胞測量術分析分離自分開捐贈者之胎盤衍生細胞各表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C，其中螢光值相對於IgG對照組增加。該些細胞為CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ表現陰性，此係由螢光值與IgG對照組一致來指示。
捐贈者對捐贈者比較-臍衍生細胞：藉由流動式細胞測量術分析分離自分開捐贈者之臍衍生細胞各顯示CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C之陽性表現，此係反映在螢光值相對於IgG對照組增加。這些細胞之CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ的表現為陰性，具有與IgG對照組一致的螢光值。
明膠表面塗層對胎盤衍生細胞之作用：藉由流動式細胞測量術分析在經明膠塗布或未經塗布培養瓶上擴增之胎盤衍生細胞皆表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C，如相對於IgG對照組的螢光值增加所反映。這些細胞為CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ表現陰性，此係由螢光值與IgG對照組一致來指示。
明膠表面塗層對臍衍生細胞之作用：藉由流動式細胞測量術分析在明膠上或未經塗布培養瓶上擴增之臍衍生細胞皆陽性表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C，其相對於IgG對照組具有增加的螢光值。這些細胞之CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ的表現為陰性，具有與IgG對照組一致的螢光值。
用於製備細胞之酶消化程序對細胞表面標記概況之作用：藉由流動式細胞測量術分析之使用各種消化酶所分離之胎盤衍生細胞皆表現CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α與HLA-A、B、C，如藉由相對於IgG對照組之螢光值增加所指示。這些細胞為CD31、CD34、CD45、 CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ表現陰性，如藉由螢光值與IgG對照組一致來指示。
胎盤層比較：藉由流動式細胞測量術分析之分別分離自胎盤之母體、絨毛、及新生兒層的細胞顯示CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α及HLA-A、B、C之陽性表現，如藉由相對於IgG對照組的螢光值增加所指示。這些細胞為CD31、CD34、CD45、CD117、CD141與HLA-DR、DP、DQ表現陰性，如藉由螢光值與IgG對照組一致來指示。
概述：胎盤衍生細胞及臍衍生細胞的流動式細胞測量術分析結果已建立這些細胞系的身份。胎盤衍生細胞及臍衍生細胞為CD10、CD13、CD44、CD73、CD90、PDGFr-α、HLA-A、B、C陽性，且為CD31、CD34、CD45、CD117、CD141及HLA-DR、DP、DQ陰性。此身份在變項包括捐贈者、繼代、培養容器表面塗層、消化酶與胎盤層的變異間皆一致。觀察到在個別螢光值直方圖曲線平均值與範圍上有一些變異，但在所有測試條件下的所有陽性曲線皆為正常並且表現出大於IgG對照組的螢光值，因而確認該些細胞包含具有該些標記之陽性表現的均質性族群。
實例9 產後組織表型的免疫組織化學特徵
人類產後組織(即臍帶及胎盤)中所發現的細胞之表型係以免疫組織化學法分析。
方法及材料
組織製備：將人類臍帶及胎盤組織收集且在4℃下浸漬固定於4%(w/v)多聚甲醛中隔夜。使用針對下列表位的抗體來執行免疫組織化學法：波形蛋白(1：500；Sigma,St.Louis,Mo.)、肌間線蛋白(desmin，1：150，對抗兔而生成；Sigma；或1：300，對抗小鼠而生成；Chemic on,Temecula,Calif.)，α-平滑肌肌動蛋白(SMA；1：400；Sigma)，細胞角蛋白18(CK18；1：400；Sigma)，馮威里氏因子(vWF；1：200；Sigma)與CD34(人類CD34 Class III；1：100；DAKOCytomation,Carpinteria,Calif)。此外，測試以下標記：抗人類GROα--PE(1：100；Becton Dickinson,Franklin Lakes,N.J)、抗人類GCP-2(1：100；Santa Cruz Biotech,Santa Cruz,Calif)、抗人類氧化LDL受體1(ox-LDL R1；1：100；Santa Cruz Biotech)與抗人類NOGO-A(1：100；Santa Cruz Biotech)。用解剖刀修剪經固定之樣品，然後將其置於在含乙醇之乾冰浴上的OCT包埋化合物(Tissue-Tek OCT；Sakura,Torrance,Calif)內。接著使用標準低溫恒溫器(Leica Microsystems)將冷凍之包埋塊切片(10μm厚)然後固定於玻片上以備染色。
免疫組織化學：類似於先前研究執行免疫組織化學(例如，Messina，等人，2003,Exper.Neurol.184：816-829)。用磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)清洗組織切片然後將其暴露於含PBS、4%(v/v)山羊血清(Chemic on,Temecula,Calif)與0.3%(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma)的蛋白質阻斷液中 1小時以獲取細胞內抗原。在感興趣表位會位於細胞表面(CD34、ox-LDL R1)上的情況中，省略該程序的所有步驟中之Triton以避免表位流失。再者，在一級抗體係對抗山羊(GCP-2,ox-LDL R1,NOGO-A)而生成的情況中，整個程序中使用3%(v/v)驢血清來取代山羊血清。接著在室溫下將一級抗體(稀釋於阻斷液中)施用於切片歷時4小時。將一級抗體溶液移除，用PBS清洗培養物，然後施用二級抗體溶液(在室溫下1小時)，該二級抗體溶液含有阻斷劑以及山羊抗小鼠IgG--Texas Red(1：250；Molecular Probes,Eugene,Oreg.)及/或山羊抗兔IgG-Alexa 488(1：250；Molecular Probes)或驢抗山羊IgG--FITC(1：150；Santa Cruz Biotech)。清洗培養物，然後施用10微莫耳DAPI(Molecular Probes)10分鐘以可視化細胞核。
在免疫染色後，在Olympus倒立落射螢光顯微鏡(Olympus,Melville,N.Y.)上使用適當螢光濾光片來可視化螢光。高於對照組染色的螢光信號即代表陽性染色。使用數位彩色攝影機與ImagePro軟體(Media Cybernetics,Carlsbad,Calif.)來擷取代表影像。針對三重染色的樣本，一次僅使用一個發射濾光片來拍攝各影像。接著使用Adobe Photoshop軟體(Adobe,San Jose,Calif.)來製備分層合成影像(Layered montage)。
結果
臍帶特徵：波形蛋白、肌間線蛋白、SMA、CK18、vWF與CD34標記係表現於臍帶內發現之細胞亞群中。特定而言，vWF與CD34 表現限制於臍帶內所含之血管。CD34+細胞係位於最內層(管腔側)上。波形蛋白表現係發現於整個臍帶基質與血管中。SMA限於動脈及靜脈的基質與外壁，但血管本身則不含。僅在血管內觀察到CK18與肌間線蛋白，且肌間線蛋白限於中層及外層。
胎盤特徵：波形蛋白、肌間線蛋白、SMA、CK18、vWF與CD34標記全部在胎盤內觀察到且為區域特異性。
GROα、GCP-2、ox-LDL RI、及NOGO-A組織表現：此等標記皆未在臍帶或胎盤組織內觀察到。
概述：人類臍帶及胎盤內的細胞中皆會表現波形蛋白、肌間線蛋白、α-平滑肌肌動蛋白、細胞角蛋白18、馮威里氏因子與CD 34。
實例10 使用寡核苷酸陣列分析產後組織衍生細胞
Affymetrix GENECHIP陣列係用來比較臍衍生與胎盤衍生細胞與纖維母細胞、人類間葉幹細胞與另一個衍生自人類骨髓之細胞系的基因表現概況。此分析提供產後衍生細胞之特徵並識別這些細胞的獨特分子標記。
方法及材料
細胞之分離及培養：人類臍帶與胎盤係得自國家疾病研究交換中心(NDRI,Philadelphia,Pa.)，來自正常足月分娩並且獲得患者同意。如實例6中所述接受組織並分離細胞。將細胞培養於經明膠塗布的組織培養塑膠培養瓶上之生長培養基(使用DMEM-LG)中。培養物係在37℃下以5% CO2培養。
人類皮膚纖維母細胞係購自Cambrex Incorporated(Walkersville,Md.；批號9F0844)與ATCC CRL-1501(CCD39SK)。將兩個細胞系在DMEM/F12培養基(Invitrogen,Carlsbad,Caiif.)中培養，培養基含有10%(v/v)胎牛血清(Hyclone)與青黴素/鏈黴素(Invitrogen)。使細胞生長於標準組織處理塑膠上。
人類間葉幹細胞(hMSC)係購自Cambrex Incorporated(Walkersville,Md.；批號2F1655、2F1656與2F1657)並根據製造商規範在MSCGM培養基(Cambrex)中培養。使細胞在37℃下以5% CO2生長於標準組織培養塑膠上。
人類髂骨崤骨髓係接受自NDRI並獲得患者同意。骨髓係根據Ho等人(W003/025149)所概述之方法來處理。將骨髓與裂解緩衝液(155mM NH4Cl、10mM KHCO3與0.1mM EDTA，pH 7.2)混合，並且混合比例為1份骨髓對20份裂解緩衝液。使細胞懸浮液渦動、在環境溫度下培養2分鐘然後以500xg離心10分鐘。將上清液丟棄，並將細胞團塊再懸浮於補充10%(v/v)胎牛血清與4mM麩醯胺酸之最低必需培養基α(Invitrogen) 中。將細胞再次離心然後將細胞團塊再懸浮於新鮮培養基中。使用台盼藍排除法(Sigma,St.Louis,Mo.)來計數存活單核細胞。將單核細胞以5×104個細胞/cm2接種於組織培養塑膠瓶中。將細胞在37℃下以5% CO2、在標準大氣O2或在5% O2下培養。將細胞培養5日並且未進行培養基更換。在5日的培養後將培養基與非貼附細胞移除。將貼附細胞維持於培養中。
mRNA之分離及GENECHIP分析：將活性生長之細胞培養物用細胞刮杓自培養瓶移除於冷PBS中。將細胞以300xg離心5分鐘。將上清液移除，然後將細胞再懸浮於新鮮PBS並再次離心。將上清液移除，然後立即將細胞團塊冷凍並儲存在-80℃下。將細胞mRNA萃取出來然後轉錄為cDNA，隨後將其轉錄成cRNA且經生物素標記。使經生物素標記之cRNA與HG-U133A GENECHIP寡核苷酸陣列(Affymetrix,Santa Clara,Calif.)雜交。雜交與數據收集係根據製造商規範來執行。分析係使用「Significance Analysis of Microarrays」(SAM)第1.21版電腦軟體(Stanford University；Tusher,V.G.等人，2001,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 98：5116-5121)執行。
結果
分析了十四個不同細胞群。細胞以及繼代資訊、培養基材與培養基係列於表10-1。
數據藉由主組分分析(Principle Component Analysis)評估，分析在細胞中有差別表現的290個基因。此分析允許族群之間相似性之相對比較。
表10-2顯示計算用於細胞對比較之歐幾里德距離(Euclidean distance)。歐幾里德距離係根據基於290個基因的細胞比較結果，這些基因在不同細胞型間有差別表現。歐幾里德距離與290個基因之表現之間的相似性成反比(亦即，距離越大，存在的相似性越小)。
表10-2.細胞對的歐幾里德距離。
表10-3、10-4與10-5顯示在胎盤衍生細胞中增加表現(表10-3)、在臍衍生細胞中增加表現(表10-4)及在臍與胎盤衍生細胞中減少表現(表10-5)之基因。標題「探針組ID」之欄係指製造商對於定位於晶片上具體位點上之數種寡核苷酸探針組之識別碼，該些探針組與經列名之基因(「基因名稱」欄)雜交，該等基因包含可在NCBI(GenBank)數據庫內以指定存取號(「NCBI存取號」欄)查找之序列。
表10-6、10-7與10-8顯示在人類纖維母細胞(表10-6)、ICBM細胞(表10-7)與MSC(表10-8)中增加表現之基因。
概述：本檢測係為了提供衍生自臍帶與胎盤之產後細胞的分子特徵而執行。此分析包括衍生自三個不同臍帶與三個不同胎盤的細胞。此檢測亦包括兩個不同的皮膚纖維母細胞系、三個間葉幹細胞系與三個髂骨崤骨髓細胞系。這些細胞所表現之mRNA係使用寡核苷酸陣列來分析，該陣列含有22,000個基因的探針。結果顯示，290個基因在這五種不同細胞型中有差別表現。這些基因包括十個在胎盤衍生細胞中特異地增加的基因，以及七個在臍帶衍生細胞中特異地增加的基因。發現相較於其他細胞型，四十四個基因具有在胎盤與臍帶中特異地較低的表現水準。選定基因之表現已藉由PCR來確認(參見以下實例)。此等結果證明，產後衍生細胞具有獨特的基因表現概況，例如相較於骨髓衍生細胞及纖維母細胞。
實例11 產後衍生細胞之細胞標記
在前述實例中，衍生自人類胎盤及人類臍帶之細胞的相似性及差異性係藉由比較其基因表現概況與衍生自其他來源之細胞的基因表現概況來評估(使用寡核苷酸陣列)。識別六個「簽名」基因：氧化LDL受體1、介白素-8、凝乳酶、內質網蛋白、趨化激素受體配體3(CXC配體3)、及顆粒性細胞趨化蛋白質2(GCP-2)。此等「簽名」基因在產後衍生細胞中以相對高的水準表現。
進行此實例中所述之程序以驗證微陣列數據且找出基因與蛋白質表現之間的一致性/不一致性，以及建立一系列可靠的檢定以用於偵測胎盤衍生細胞與臍衍生細胞之唯一識別符。
方法及材料
細胞：胎盤衍生細胞(三個分離株，包括一個經核型分析所識別主要為新生兒之分離株)、臍衍生細胞(四個分離株)、及正常人類皮膚纖維母細胞(NHDF；新生兒及成人)，生長於經明膠塗布之T75培養瓶中具有青黴素/鏈黴素之生長培養基中。間葉幹細胞(MSCS)係生長於間葉幹細胞生長培養基Bullet套組(MSCGM；Cambrex,Walkerville,Md.)中。
至於IL-8規程，將細胞自液態氮解凍且以5,000個細胞/cm2接種於經明膠塗布之培養瓶中，於生長培養基中生長48小時且隨後於10毫升血清饑餓培養基[DMEM--低葡萄糖(Gibco,Carlsbad,Calif.)、青黴素/鏈黴素(Gibco,Carlsbad,Calif.)及0.1%(w/v)牛血清白蛋白(BSA；Sigma,St.Louis,Mo.)]中再生長8小時。在此處理之後，萃取RNA且將上清液以150xg離心5分鐘以移除細胞碎屑。隨後將上清液冷凍在-80℃下以供ELISA分析。
ELISA檢定之細胞培養物：將衍生自胎盤與臍之產後細胞，以及衍生自人類新生兒包皮之人類纖維母細胞培養在經明膠塗布之T75培養瓶中的生長培養基中。將細胞在繼代11時冷凍於液態氮中。將細胞解凍且轉移至15毫升離心管。在以150xg離心5分鐘之後，將上清液丟棄。將細胞再懸浮於4毫升培養基中且計數。使細胞以375,000個細胞/培養瓶生長於含有15毫升生長培養基之75cm2培養瓶中24小時。將培養基更換成血清饑餓培養基8小時。在培養結束時以14,000xg離心5分鐘來收集血清饑餓培養基(且保存在-20℃下)。
為了估計各培養瓶中細胞之數目，各培養瓶中添加2毫升胰蛋白酶/EDTA(Gibco,Carlsbad,Calif)。在將細胞自培養瓶脫附之後，用8毫升生長培養基中和胰蛋白酶活性。將細胞轉移至15毫升離心管且以150x離心5分鐘。移除上清液且將1毫升生長培養基添加至各管以再懸浮細胞。使用血球計估計細胞數目。
ELISA檢定：由細胞分泌至血清饑餓培養基之IL-8之量係使用ELISA檢定(R&D Systems,Minneapolis,Minn.)來分析。所有檢定皆根據製造商所提供之說明書來測試。
總RNA分離：將RNA自長滿之產後衍生細胞及纖維母細胞萃取出或就IL-8表現而言自如上文所述處理之細胞萃取。根據製造商之說明書(RNeasy® Mini Kit；Qiagen,Valencia,Calii)，將細胞用350微升含有β-巰基乙醇(Sigma,St.Louis,Mo.)之緩衝液RLT溶解。根據製造商之說明書(RNeasy® Mini Kit；Qiagen,Valencia,Calif)，將RNA萃取出且使其經歷DNase處理(2.7U/樣本)(Sigma St.Louis,Mo.)。用50微升經DEPC處理水將RNA沖提出來然後儲存於-80℃下。
反轉錄：RNA亦自人類胎盤及臍萃取出。將組織(30毫克)懸浮於700微升含有2-巰基乙醇之緩衝液RLT中。將樣本機械均質化且根據製造商之規範進行RNA萃取。用50微升經DEPC處理水將RNA萃取出來然後儲存於-80℃下。使用隨機六聚物以TaqMan®反轉錄試劑(Applied Biosystems,Foster City,Calif.)來反轉錄RNA，反轉錄在25℃下歷時10分鐘、在37℃下歷時60分鐘、且在95℃下歷時10分鐘。樣本儲存於-20℃。
藉由cDNA微陣列識別為在產後細胞中所獨特調節之基因(簽名基因--包括氧化LDL受體、介白素-8、凝乳酶、及內質網蛋白)係使用即時及傳統PCR進一步研究。
即時PCR：使用Assays-on-Demand®基因表現產物對cDNA樣本執行PCR：使用具有ABI Prism 7000 SDS軟體之7000序列偵測系統(Applied Biosystems,Foster City,Calif.)，根據製造商之說明書(Applied Biosystems,Foster City,Calif.)，將氧化LDL受體(Hs00234028)；凝乳酶(Hs00166915)；內質網蛋白(Hs003825 15)；CXC配體3(Hs00171061)；GCP-2(Hs00605742)；IL-8(Hs00174103)；及GAPDH(Applied Biosystems,Foster City,Calif.)與cDNA及TaqMan® Universal PCR主混合物混合。熱循環條件為開始50℃歷時2min及95℃歷時10min，接著為40個95℃歷時15sec及60℃歷時1min之循環。根據製造商之規範分析PCR數據(Applied Biosystems關於ABI Prism 7700序列偵測系統之使用者佈告#2)。
傳統PCR：使用ABI PRISM 7700(Perkin Elmer Applied Biosystems,Boston,Mass.,USA)執行傳統PCR以確認即時PCR之結果。使用2微升cDNA溶液、1xAmpliTaq Gold通用混合物PCR反應緩衝液(Applied Biosystems,Foster City,Calif.)及在94℃下初始變性歷時5分鐘來執行PCR。擴增係針對各引子組最佳化。針對IL-8、CXC配體3、及內質網蛋白(94℃歷時15秒、55℃歷時15秒及72℃歷時30秒持續30個循環)；針對凝乳酶(94℃歷時15秒、53℃歷時15秒及72℃歷時30秒持續38個循環)；針對氧化LDL受體與GAPDH(94℃歷時15秒、55℃歷時15秒及72℃歷時30秒持續33個循環)。擴增所使用之引子列舉於表11-1中。最終PCR反應中之引子濃度為1微莫耳，除了GAPDH為0.5微莫耳。GAPDH引子與即時PCR相同，除了未將製造商之TaqMan®探針添加至最終PCR反應。將樣本於2%(w/v)瓊脂糖凝膠上運行(run)且用溴化乙錠(Sigma,St.Louis,Mo.)染色。使用667 Universal Twinpack膜(VWR International,South Plainfield,N.J.)，使用焦距Polaroid照相機(VWR International,South Plainfield,N.J.)擷取影像。
免疫螢光：將PPDC在室溫下用冷4%(w/v)多聚甲醛(Sigma-Aldrich,St.Louis,Mo.)固定10分鐘。使用臍衍生細胞及胎盤衍生細胞各者在繼代0(P0)(分離後直接使用)的一個分離株，及臍衍生細胞及胎盤衍生細胞之繼代11(P 11)(兩個胎盤衍生細胞分離株、兩個臍衍生細胞分離株)及纖維母細胞(P 11)。使用針對以下表位的抗體執行免疫細胞化學：波形蛋白(1：500,Sigma,St.Louis,Mo.)、肌間線蛋白(1：150；Sigma--對抗兔而生成；或1：300；Chemicon,Temecula,Calif--對抗小鼠而生成)、α-平滑肌肌動蛋白(SMA；1：400；Sigma)，細胞角蛋白18(CK18；1：400；Sigma)，馮威里氏因子(vWF；1：200；Sigma)與CD34(人類CD34 Class III；1：100；DAKOCytomation,Carpinteria,Calif)。此外，於繼代11產後細胞上測試以下標記：抗人類GRO α--PE(1：100；Becton Dickinson,Franklin Lakes,N.J.)、抗人類GCP-2(1：100；Santa Cruz Biotech,Santa Cruz,Calif)、抗人類氧化LDL受體1(ox-LDL R1；1：100；Santa Cruz Biotech)與抗人類NOGA-A(1：100；Santa Cruz,Biotech)。
用磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)清洗培養物然後將其暴露於含PBS、4%(v/v)山羊血清(Chemic on,Temecula,Calif)與0.3%(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma,St.Louis,Mo.)的蛋白質阻斷液中30分鐘以獲取細胞內抗原。當感興趣表位係位於細胞表面(CD34、ox-LDL R1)上時，省略該程序的所有步驟中之Triton X-100以避免表位流失。再者，在一級抗體係對抗山羊(GCP-2、ox-LDL R1、NOGO-A)而生成的情況中，全程會使用3%(v/v)驢血清來取代山羊血清。接著在室溫下將一級抗體(稀釋於阻斷液中)施用於培養物歷時1小時。將一級抗體溶液移除，用PBS清洗培養物，然後施用二級抗體溶液(在室溫下1小時)，該二級抗體溶液含有阻斷劑以及山羊抗小鼠IgG--Texas Red(1：250；Molecular Probes,Eugene,Oreg.)及/或山羊抗兔IgG-Alexa 488(1：250；Molecular Probes)或驢抗山羊IgG--FITC(1：150,Santa Cruz Biotech)。隨後清洗培養物，然後施用10微莫耳DAPI(Molecular Probes)10分鐘以可視化細胞核。
在免疫染色後，在Olympus®倒立落射螢光顯微鏡(Olympus,Melville,N.Y.)上使用適當螢光濾光片來可視化螢光。在所有情況下，陽性染色代表高於對照組染色的螢光訊號，其中遵照上文所概述的全部程序，除了施加一級抗體溶液。使用數位彩色攝影機與ImagePro®軟體(Media eybernetics,Carlsbad,Calif)來擷取代表影像。針對三重染色的樣本，一次僅使用一個發射濾光片來拍攝各影像。接著使用Adobe Photoshop®軟體(Adobe,San Jose,Calif)來製備分層合成影像(Layered montage)。
製備細胞以進行FACS分析：將培養瓶中之貼附細胞於磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)(Gibco,Carlsbad,Calif)中清洗且用胰蛋白酶/EDTA(Gibco,Carlsbad,Calif)脫附。將細胞收集、離心，且以每毫升1×10 7的細胞濃度再懸浮於3%(v/v)FBS於PBS中。將一百微升等分遞送至錐形管中。細胞內抗原經染色之細胞係用Perm/Wash緩衝液(BD Pharmingen,San Diego, Calif)穿透。將抗體按製造商規範添加至等分中且將細胞在4℃下於黑暗中培養30分鐘。在培養之後，將細胞用PBS清洗且離心以移除過量抗體。將需要二級抗體之細胞再懸浮於100微升3% FBS中。按製造商規範添加二級抗體且將細胞在4℃下於黑暗中培養30分鐘。在培養之後，將細胞用PBS清洗且離心以移除過量二級抗體。將經清洗之細胞再懸浮於0.5毫升PBS中且藉由流動式細胞測量術分析。使用以下抗體：氧化LDL受體1(sc-5813；Santa Cruz,Biotech)、GROa(555042；BD Pharmingen,Bedford,Mass.)、小鼠IgG1κ(P-4685及M-5284；Sigma)、驢抗山羊IgG(sc-3743；Santa Cruz,Biotech.)。流動式細胞測量術分析係用FACScaliburTM(Becton Dickinson San Jose,Calif.)來執行。
結果
在來自衍生自人類胎盤、成體及新生兒纖維母細胞與間葉幹細胞(MSC)之細胞的cDNA上所執行之針對選定「簽名」基因之即時PCR之結果指出，氧化LDL受體及凝乳酶兩者在胎盤衍生細胞中相較於其他細胞以較高水準表現。獲自即時PCR之數據係藉由AACT方法分析且以對數標度之形式表達。臍衍生細胞中內質網蛋白與氧化LDL受體表現水準相較於其他細胞為較高的。在產後衍生細胞與對照組之間未發現CXC配體3及GCP-2之表現水準有顯著差異。即時PCR之結果係藉由傳統PCR確認。PCR產物之定序進一步驗證這些觀察。使用上表11-1中所列舉之傳統PCR CXC配體3引子，發現產後衍生細胞與對照組之間CXC配體3之表現水準沒有顯著差異。
產後細胞介素IL-8之生產在經生長培養基培養及經血清饑餓培養之產後衍生細胞兩者中均提高。所有即時PCR數據皆用傳統PCR及藉由定序PCR產物來驗證。
當檢測生長於無血清培養基中之細胞的上清液中IL-8之存在時，最高量在衍生自臍細胞及胎盤細胞之一些分離株之培養基中偵測出(表11-2)。在衍生自人類皮膚纖維母細胞之培養基中未偵測出IL-8。
亦藉由FACS分析檢測胎盤衍生細胞的氧化LDL受體、GCP-2及GROα之生產。經測試細胞為GCP-2陽性。此方法未偵測到氧化LDL受體及GRO。
亦藉由免疫細胞化學分析測試胎盤衍生細胞之選定蛋白質之生產。在分離後(繼代0)，立即將衍生自人類胎盤之細胞用4%多聚甲醛固定且暴露於針對六種蛋白質之抗體：馮威里氏因子、CD34、細胞角蛋白18、肌間線蛋白、α-平滑肌肌動蛋白、及波形蛋白。經染色細胞呈現α-平滑肌肌動蛋白及波形蛋白陽性。此模式直到繼代11仍保留。在繼代0時僅一些細胞(<5%)為細胞角蛋白18染色陽性。
衍生自人類臍帶之細胞在繼代0時藉由免疫細胞化學分析探查到選定蛋白質之生產。在分離後(繼代0)，立即將細胞用4%多聚甲醛固定且暴露於針對六種蛋白質之抗體：馮威里氏因子、CD34、細胞角蛋 白18、肌間線蛋白、α-平滑肌肌動蛋白、及波形蛋白。臍衍生細胞為α-平滑肌肌動蛋白及波形蛋白陽性，其中染色模式直到繼代11仍一致。
概述：對於以下四種基因，已確立藉由微陣列與PCR(即時及傳統兩者)所量測之基因表現水準之間的一致性：氧化LDL受體1、凝乳酶、內質網蛋白、及IL-8。這些基因之表現在PPDC中的mRNA水準上受到差別調節，其中IL-8在蛋白質水準上亦受差別調節。藉由FACS分析，在衍生自胎盤之細胞中的蛋白質水準上未偵測出氧化LDL受體之存在。藉由FACS分析，GCP-2及CXC配體3於胎盤衍生細胞中在mRNA水準上之差別表現未經確認，但是在蛋白質水準上偵測出GCP-2。儘管此結果未由最初獲自微陣列實驗之數據反映出，但是此可能由於方法之靈敏度不同所致。
在分離後(繼代0)，立即染色衍生自人類胎盤之細胞呈現α-平滑肌肌動蛋白及波形蛋白陽性。此模式亦在繼代11的細胞中觀察到。波形蛋白及α-平滑肌肌動蛋白表現可在繼代(在生長培養基中及在這些程序中所利用之條件下)細胞中保留。在繼代0之衍生自人類臍帶之細胞係經探查α-平滑肌肌動蛋白及波形蛋白之表現，且兩者皆為陽性。此染色模式直到繼代11仍保留。
實例12 產後衍生細胞之體外免疫評估
體外評估產後衍生細胞(PPDC)之免疫特徵以預測這些細胞在體內移植後可能引發之免疫反應(若有的話)。藉由流動式細胞測量術檢定PPDC中HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86、及B7-H2之存在。這些蛋白質係由抗原呈現細胞(APe)表現且為純真CD4+ T細胞之直接刺激所需(Abbas及Lichtman,CELLULAR AND MOLECULAR IMMUNOLOGY，第5版(2003)Saunders,Philadelphia，第171頁)。亦藉由流動式細胞測量術分析細胞系中HLA-G(Abbas及Lichtman,2003，見前文)、CD 178(Coumans，等人，(1999)Journal of Immunological Methods 224,185-196)、及PD-L2(Abbas及Lichtman,2003，見前文；Brown，等人(2003)The Journal of Immunology,170：1257-1266)之表現。認為存在於胎盤組織中的細胞所表現之這些蛋白質媒介子宮內胎盤組織之免疫豁免狀態。為了預測胎盤與臍衍生細胞系於體內引發免疫反應之程度，於單向混合淋巴球反應(MLR)中測試細胞系。
方法及材料
細胞培養：於用2%明膠(Sigma,St.Louis,Mo.)塗布之T75培養瓶(Corning Inc.,Corning,N.Y.)中之含有青黴素/鏈黴素之生長培養基中培養細胞至長滿。
抗體染色：將細胞於磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)(Gibco,Carlsbad,Calif)中清洗且用胰蛋白酶/EDTA(Gibco,Carlsbad,Mo.)脫附。將細胞收集、離心，且以每毫升1×107的細胞濃度再懸浮於3%(v/v)FBS於PBS中。按製造商規範將抗體(表12-1)添加至一百微升細胞懸浮液中且在4℃下於黑暗中培養30分鐘。在培養之後，將細胞用PBS清洗且離心以移除未結合的抗體。將細胞再懸浮於五百微升PBS中且使用FACSCaliburTM儀器(Becton Dickinson,San Jose,Calif.)藉由流動式細胞測量術分析。
混合淋巴球反應：將標記為細胞系A之繼代10臍衍生細胞與標記為細胞系B之繼代11胎盤衍生細胞之凍存小瓶於乾冰上送至CTBR(Senneville,Quebec)以使用CTBR SOP No.CAC-031進行混合淋巴球反應。自多個男性及女性自願捐贈者收集周邊血液單核細胞(PBMC)。用絲裂黴素C處理刺激物(捐贈者)同種異體PBMC、自體PBMC、及產後細胞系。將自體及經絲裂黴素C處理之刺激物細胞添加至回應物(接受者)PBMC且培養4天。在培養之後，將[3H]-胸苷添加至各樣本中且培養18小時。在收集細胞之後，萃取放射性標記DNA，且使用閃爍計數器量測[3H]-胸苷併入。
同種異體捐贈者刺激指數(SIAD)係經計算為：接收者之平均增生加上經絲裂黴素C處理之同種異體捐贈者之平均增生除以接收者之基線增生。PPDC刺激指數係經計算為：接收者之平均增生加上經絲裂黴素C處理之產後細胞系之平均增生除以接收者之基線增生。
結果
混合淋巴球反應(胎盤衍生細胞)：七個人類自願血液捐贈者係經篩選以識別出在與其他六個血液捐贈者進行混合淋巴球反應時會展現穩固增生反應的單一同種異體捐贈者。此捐贈者係經選擇為同種異體陽性對照組捐贈者。剩餘六個血液捐贈者係選擇為接受者。將同種異體陽性對照組捐贈者及胎盤衍生細胞系用絲裂黴素C處理且與六個個別同種異體接收者培養於混合淋巴球反應中。反應係使用兩個細胞培養盤重複三次執行，每盤具有三個接收者(表12-2)。平均刺激指數之範圍為1.3(盤2) 至3(盤1)，且同種異體捐贈者陽性對照組之範圍為46.25(盤2)至279(盤1)(表12-3)。
混合淋巴球反應(臍衍生細胞)：六個人類自願血液捐贈者係經篩選以識別出在與其他五個血液捐贈者進行混合淋巴球反應時會展現穩固增生反應的單一同種異體捐贈者。此捐贈者係經選擇為同種異體陽性對照組捐贈者。剩餘五個血液捐贈者係選擇為接受者。將同種異體陽性對照組捐贈者及胎盤細胞系用絲裂黴素C處理且與五個個別同種異體接收者培養於混合淋巴球反應中。反應係使用兩個細胞培養盤重複三次執行，每盤具有三個接收者(表12-4)。平均刺激指數之範圍為6.5(盤1)至9(盤2)，且同種異體捐贈者陽性對照組之範圍為42.75(盤1)至70(盤2)(表12-5)。
抗原呈現細胞標記(胎盤衍生細胞)：藉由流動式細胞測量術所分析之胎盤衍生細胞之直方圖顯示HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86、及B7-H2之陰性表現，如藉由與IgG對照組一致的螢光值所說明，這表示胎盤細胞系缺乏直接刺激CD4+ T細胞所需之細胞表面分子。
免疫調節標記(胎盤衍生細胞)：藉由流動式細胞測量術所分析之胎盤衍生細胞之直方圖顯示PD-L2之陽性表現，如藉由相對於IgG 對照組螢光值增加所說明，以及CD178及HLA-G之陰性表現，如藉由與IgG對照組一致的螢光值所說明。
抗原呈現細胞標記(臍衍生細胞)：藉由流動式細胞測量術所分析之臍衍生細胞之直方圖顯示HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86、及B7-H2之陰性表現，如藉由與IgG對照組一致的螢光值所說明，這表示臍細胞系缺乏直接刺激CD4+ T細胞所需之細胞表面分子。
免疫調節細胞標記(臍衍生細胞)：藉由流動式細胞測量術所分析之臍衍生細胞之直方圖顯示PD-L2之陽性表現，如藉由相對於IgG對照組螢光值增加所說明，以及CD178及HLA-G之陰性表現，如藉由與IgG對照組一致的螢光值所說明。
概述：在用胎盤衍生細胞系進行之混合淋巴球反應中，平均刺激指數之範圍為1.3至3，且同種異體陽性對照組之平均刺激指數之範圍為46.25至279。在用臍衍生細胞系進行之混合淋巴球反應中，平均刺激指數之範圍為6.5至9，且同種異體陽性對照組之平均刺激指數之範圍為42.75至70。胎盤及臍衍生細胞系對於刺激蛋白質HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ、CD80、CD86、及B7-H2之表現為陰性，如藉由流動式細胞測量術所量測。胎盤及臍衍生細胞系對於免疫調節蛋白質HLA-G及CD178之表現為陰性且對於PD-L2之表現為陽性，如藉由流動式細胞測量術所量測。同種異體捐贈者PBMC含有表現HLA-DR、HLA-DQ、CD8、CD86、及B 7-H2之抗原呈現細胞，從而允許純真CD4+ T細胞之刺激。胎盤及臍衍生細胞上不存在直接刺激純真CD4+ T細胞所需之抗原呈現細胞表面分子及存在免疫調節蛋白質PD-L2，可說明於MLR中相較於同種異體對照組，這些細胞所展現之刺激指數較低。
實例13 由產後衍生細胞分泌之營養因子
對於來自胎盤及臍衍生細胞之選定營養因子的分泌係經量測。所偵測之選定因子包括：(1)已知具有血管生成活性之因子，諸如肝細胞生長因子(HGF)(Rosen等人(1997)Ciba Found.Symp.212：215-26)、單核細胞趨化蛋白質1(MCP-1)(Salcedo等人(2000)Blood 96；34-40)、介白素-8(IL-8)(Li等人(2003)J.Immunol.170：3369-76)、角質細胞生長因子(KGF)、鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF)、血管內皮生長因子(VEGF)(Hughes等人(2004)Ann.Thorac.Surg.77：812-8)、基質金屬蛋白酶1(TIMP1)、血管生成素2(ANG2)、血小板衍生生長因子(PDGF-bb)、血小板生成素(TPO)、肝素結合表皮生長因子(HB-EGF)、基質衍生因子1α(SDF-1α)；(2)已知具有神經營養/神經保護活性之因子，諸如腦衍生神經營養因子(BDNF)(Cheng等人(2003)Dev.Biol.258；319-33)、介白素-6(IL-6)、顆粒性細胞趨化蛋白質-2(GCP-2)、轉形生長因子β2(TGFβ2)；及(3)已知具有趨化激素活性之因子，諸如巨噬細胞發炎蛋白質1α(MIP1a)、巨噬細胞發炎蛋白質1β(MIP1b)、單核細胞化學吸引因子-1(MCP-1)、Rantes(調控活化、正常T細胞表現與分泌)、I309、胸腺與活化調控趨化激素(TARe)、伊紅趨素(Eotaxin)、巨噬細胞衍生趨化激素(MDC)、IL-8。
方法及材料
細胞培養物：將胎盤與臍之PPDC以及衍生自人類新生兒包皮之人類纖維母細胞培養於經明膠塗布之T75培養瓶中的具有青黴素/鏈黴素之生長培養基中。將細胞在繼代11時凍存並儲存於液態氮中。在解凍細胞後，將生長培養基加至細胞，接著轉移至15毫升離心管中然後以150xg離心細胞5分鐘。捨棄上清液。將細胞沉澱物再懸浮於4毫升生長培養基中，然後計數細胞。使細胞以375,000個細胞/75cm2接種於含有15毫升生 長培養基之培養瓶中且培養24小時。將培養基更換為無血清培養基(DMEM-低葡萄糖(Gibco)、0.1%(w/v)牛血清白蛋白(Sigma)、青黴素/鏈黴素(Gibco))歷時8小時。在培養結束時以14,000xg離心5分鐘來收集無血清條件培養基，然後儲存在-20℃下。
為了要評估各培養瓶中的細胞數目，用PBS清洗細胞然後使用2毫升胰蛋白酶/EDTA脫附。藉由加入8毫升生長培養基來抑制胰蛋白酶活性。將細胞以150xg離心5分鐘。將上清液移除然後將細胞再懸浮於1毫升的生長培養基中。使用血球計估計細胞數目。
ELISA檢定：使細胞在37℃下生長於5%二氧化碳與大氣氧氣中。亦使胎盤衍生細胞(批次101503)生長於5%氧氣或β-巰基乙醇(BME)中。各細胞樣本所生產之MCP-1、IL-6、VEGF、SDF-1α、GCP-2、IL-8及TGF-β2之量係以ELISA檢定(R&D Systems,Minneapolis,Mn.)來量測。所有檢定皆依據製造商說明書來執行。
SearchLight TM多工ELISA檢定：趨化激素(MIP1a、MIP1b、MCP-1、Rantes、1309、TARC、伊紅趨素(Eotaxin)、MDC、IL8)、BDNF與血管生成因子(HGF、KGF、bFGF、VEGF、TIMP1、ANG2、PDGF-bb、TPO、HB-EGF)皆使用SearchLightTM Proteome Arrays(Pierce Biotechnology Inc.)來量測。Proteome Arrays為多工三明治法ELISA，用於進行每孔二至16種蛋白質的定量量測。藉由將四至16種不同捕捉抗體(capture antibody)以2×2、3×3、或4×4圖案點樣至96孔盤的各孔中而生產陣列。在進行三明治法ELISA程序後，將整個盤成像以捕捉盤上各孔內之各點樣處所產生的化學發光信號。在各點樣處所產生的信號量係正比於原始標準品或樣本中的目標蛋白質之量。
結果
ELISA檢定：MCP-1及IL-6係由胎盤及臍衍生細胞以及皮膚纖維母細胞分泌(表13-1)。SDF-1α係由培養於5% O2中之胎盤衍生細胞及纖維母細胞所分泌。GCP-2及IL-8係由臍衍生細胞及在BME或5% O2存在下培養之胎盤衍生細胞所分泌。GCP-2亦由人類纖維母細胞所分泌。TGF-β2未由ELISA檢定偵測出。
SearchLight TM多工ELISA檢定：TIMP1、TPO、KGF、HGF、FGF、HBEGF、BDNF、MIP1b、MCP1、RANTES、I309、TARC、MDC與IL-8皆分泌自臍衍生細胞(表13-2及13-3)。TIMP1、TPO、KGF、HGF、HBEGF、BDNF、MIP1a、MCP-1、RANTES、TARC、Eotaxin、與IL-8皆分泌自胎盤衍生細胞(表13-2及13-3)。未偵測到Ang2、VEGF或PDGF-bb。
實例14 產後衍生細胞之短期神經分化
檢測胎盤與臍衍生細胞(統稱為產後衍生細胞或PPDC)分化成神經譜系細胞之能力。
方法及材料
產後細胞之分離與擴增：將來自胎盤與臍組織之PPDC如實例6中所述分離且擴增。
修改的伍德柏-布萊克(Woodbury-Black)規程(A)：此檢定改編自最初執行以測試骨髓基質細胞之神經誘導潛能(1)之檢定。將臍衍生細胞(022803)P4與胎盤衍生細胞(042203)P3解凍且以5,000個細胞/cm2培養擴增於生長培養基中直到達到次長滿(75%)。隨後將細胞進行胰蛋白酶消化且以每孔6,000個細胞接種於Titretek II玻片(VWR International,Bristol,Conn.)上。在對照組方面，間葉幹細胞(P3；1F2155；Cambrex,Walkersville,Md.)、造骨細胞(P5；CC2538；Cambrex)、脂肪衍生細胞(Artecel，美國專利第6,555,374 B1號)(P6；捐贈者2)與新生兒人類皮膚纖維母細胞(P6；CC2509；Cambrex)亦在相同條件下接種。
最初將所有細胞於DMEM/F12培養基(Invitrogen,Carlsbad,Calif.)中擴增4天，該培養基含有15%(v/v)胎牛血清(FBS；Hyclone,Logan,Utah)、鹼性纖維母細胞生長因子(bFGF；20奈克/毫升；Peprotech,Rocky Hill,N.J.)、表皮生長因子(EGF；20奈克/毫升；Peprotech)與青黴素/鏈黴素(Invitrogen)。四天後，將細胞於磷酸鹽緩衝鹽水(PBS；Invitrogen)中潤洗且隨後培養於DMEM/F12培養基+20%(v/v)FBS+青黴素/鏈黴素中24小時。24小時後，將細胞用PBS潤洗。隨後使細胞於包含DMEM/FI2(無血清)之誘導培養基中培養1至6小時，該培養基含有200mM丁基化羥基甲氧苯、10μM氯化鉀、5毫克/毫升胰島素、10μM毛喉素(forskolin)、4μM丙戊酸、與2μM氫皮質酮(所有化學品皆來自Sigma,St.Louis,Mo.)。隨後將細胞固定於100%冰冷甲醇中且執行免疫細胞化學(參見以下方法)以評估人類巢蛋白表現。
修改的伍德柏-布萊克規程(B)：將PPDC(臍(022803)P11；胎盤(042203)P11)與成體人類皮膚纖維母細胞(1F1853,P11)解凍且以5,000個細胞/cm2培養擴增於生長培養基中直到達到次長滿(75%)。隨後將細胞進行胰蛋白酶消化且以與(A)類似的密度接種，但是接種至(1)24孔經組織培 養物處理之盤(TCP,Falcon brand,VWR International)、(2)TCP孔+2%(w/v)明膠(在室溫下吸附1小時)、或(3)TCP孔+20μg/毫升吸附小鼠層黏蛋白(在37℃下吸附最少2小時；Invitrogen)。
和(A)中完全相同，細胞最初係經擴增且在前述時間框下轉換培養基。如前述在5天6小時固定一組培養物，但此次在室溫下使用冰冷的4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)歷時10分鐘。在第二組培養物中，將培養基移除且轉換成神經前驅擴增培養基(NPE)，其由含有B27(B27補充物；Invitrogen)、L-麩醯胺酸(4mM)、及青黴素/鏈黴素(Invitrogen)之Neurobasal-A培養基(Invitrogen)組成。將NPE培養基用視黃酸(RA；1μM；Sigma)進一步補充。4天後將此培養基移除且在室溫下將培養物用冰冷的4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)固定10分鐘，並針對巢蛋白、GFAP、與TuJ1蛋白質表現進行染色(參見表14-1)。
兩階段分化規程：將PPDC(臍(042203)P11、胎盤(022803)P11)、成體人類皮膚纖維母細胞(P11；1F1853；Cambrex)解凍且以5,000個細胞/cm2培養擴增於生長培養基中直到達到次長滿(75%)。隨後將細胞進行胰蛋白酶消化且以2,000個細胞/cm2接種，但在補充有bFGF(20奈克/毫升；Peprotech,Rocky Hill,N.J.)與EGF(20奈克/毫升；Peprotech)之NPE培 養基[整個培養基組成物進一步稱為NPE+F+E]存在下接種至經層黏蛋白(BD Biosciences,Franklin Lakes,N.J.)塗布之24孔盤上。同時，亦將分離自海馬體(P4；(062603))之成鼠神經前驅接種至經層黏蛋白塗布之24孔盤上之NPE+F+E培養基中。將所有培養物保持在此類條件下歷時6天之時期(在該時間期間餵養細胞一次)，此時將培養基轉換成表14-2中所列舉之分化條件再歷時7天之時期。將培養物在室溫下用冰冷的4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)固定10分鐘，且針對大鼠巢蛋白、GF AP、及TuJ1蛋白質表現進行染色。
多重生長因子規程：將臍衍生細胞(P11；(042203))解凍且以5,000個細胞/cm2培養擴增於生長培養基中直到達到次長滿(75%)。隨後將細胞進行胰蛋白酶消化且以2,000個細胞/cm2接種至有NPE+F(20奈克/毫升)+E(20奈克/毫升)存在之24孔經層黏蛋白塗布之盤(BD Biosciences)上。此外，一些細胞含有NPE+F+E+2% FBS或10% FBS。在四天「分化前(pre-differentiation)」條件之後，將所有培養基移除且將樣本轉換成NPE培養基，該培養基補充有聲蝟(SHH；200奈克/毫升；Sigma,St.Louis,Mo.)、FGF8(100奈克/毫升；Peprotech)、BDNF(40奈克/毫升；Sigma)、GDNF(20奈克/毫升；Sigma)、及視黃酸(1μM；Sigma)。在培養基更換後七天，在室溫下將培養物用冰冷的4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)固定10分鐘，且針對人類巢蛋白、GFAP、TuJ1、肌間線蛋白、及α-平滑肌肌動蛋白表現進行染色。
神經前驅共培養規程：將成鼠海馬前驅(062603)以神經球或單一細胞(10,000個細胞/孔)接種至經層黏蛋白塗布之24孔盤(BD Biosciences)上之NPE+F(20奈克/毫升)+E(20奈克/毫升)中。
分開地，將臍衍生細胞(042203)P11與胎盤衍生細胞(022803)P11解凍且以5,000個細胞/cm2培養擴增於NPE+F(20奈克/毫升)+E(20奈克/毫升)中歷時48小時之時期。隨後將細胞進行胰蛋白酶消化且以2,500個細胞/孔接種至神經前驅之現有培養物上。此時，將現有培養基交換成新鮮培養基。四天後，將培養物在室溫下用冰冷的4%(w/v)多聚甲醛(Sigma) 固定10分鐘，且針對人類核蛋白(hNuc；Chemicon)進行染色(上文表14-1)以識別PPDC。
免疫細胞化學：使用表14-1中所列舉之抗體執行免疫細胞化學。用磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)清洗培養物然後將其暴露於含PBS、4%(v/v)山羊血清(Chemicon,Temecula,Calif)與0.3%(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma)的蛋白質阻斷液中30分鐘以獲取細胞內抗原。接著在室溫下將一級抗體(稀釋於阻斷液中)施用於培養物歷時1小時。接著，將一級抗體溶液移除，用PBS清洗培養物，然後施用二級抗體溶液(在室溫下1小時)，該二級抗體溶液含有阻斷溶液以及山羊抗小鼠IgG--Texas Red(1：250；Molecular Probes,Eugene,OR)及山羊抗兔IgG-Alexa 488(1：250；Molecular Probes)。隨後清洗培養物，然後施用10微莫耳DAPI(Molecular Probes)10分鐘以可視化細胞核。
在免疫染色後，在Olympus倒立落射螢光顯微鏡(Olympus,Melville,N.Y.)上使用適當螢光濾光片來可視化螢光。在所有情況下，陽性染色代表高於對照組染色的螢光訊號，其中遵照上文所概述的全部程序，除了施加一級抗體溶液。使用數位彩色攝影機與ImagePro軟體(Media Cybernetics,Carlsbad,Calit)來擷取代表影像。針對三重染色的樣本，一次僅使用一個發射濾光片來拍攝各影像。接著使用Adobe Photoshop軟體(Adobe,San Jose,Calif)來製備分層合成影像(Layered montage)。
結果
修改的伍德柏-布萊克規程(A)：在於此神經誘導組成物中培養之後，所有細胞型轉形成具有雙極形態及伸長突起之細胞。亦觀察到其他更大的非雙極形態。此外，所誘導之細胞群為巢蛋白染色陽性，巢蛋白為多潛能神經幹細胞與前驅細胞之標記。
修改的伍德柏-布萊克規程(B)：當在組織培養塑膠(TCP)盤上重複時，未觀察到巢蛋白表現，除非將層黏蛋白預吸附至培養物表面。為進一步評估巢蛋白表現細胞是否可隨後繼續產生成熟神經元，將PPDC與纖維母細胞暴露於NPE+RA(1μM)中，RA為已知可誘導神經幹細胞與前驅細胞分化成此類細胞(2,3,4)之培養基組成物。將細胞針對TuJ1(不成熟與成熟神經元之標記)、GFAP(星狀細胞之標記)、及巢蛋白進行染色。在此類條件下未偵測出TuJ1，也未觀察到具有神經元形態之細胞。此外，PPDC不再表現巢蛋白及GF AP，如藉由免疫細胞化學所判定。
兩階段分化：將臍與胎盤PPDC分離株(以及分別作為陰性及陽性對照組細胞型之人類纖維母細胞與嚙齒動物神經前驅)接種於經層黏蛋白(神經促進)塗布之盤上且暴露於已知促進神經前驅分化成神經元與星狀細胞之13種不同生長條件(與兩種對照組條件)。此外，添加兩種條件以檢測GDF5與BMP7對PPDC分化之影響。一般而言，採取兩步驟分化方式，其中首先將細胞放置於神經前驅擴增條件中歷時6天之時期，接著放置於全分化條件歷時7天。在形態學上，臍與胎盤衍生細胞兩者在此程序之整個時程皆展現細胞形態之基本改變。然而，未觀察到神經元或星狀細胞形狀之細胞，除了在對照組、神經前驅接種之條件中。免疫細胞化學(對人類巢蛋白、TuJ1、與GFAP為陰性)確認形態學之觀察。
多重生長因子：在暴露於各種神經分化劑一週之後，將細胞針對指示神經前驅(人類巢蛋白)、神經元(TuJ1)、與星狀細胞(GFAP)之標記進行染色。在第一階段中生長於不含血清之培養基的細胞具有與該些含血清(2%或10%)之培養基中的細胞不同之形態，指出潛在的神經分化。特定言之，在將臍衍生細胞暴露於EGF與bFGF，接著暴露於SHH、FGF8、GDNF、BDNF、與視黃酸之兩步程序之後，細胞顯示類似於所培養的星狀細胞之形態的伸長突起。當2% FBS或10% FBS包括在分化之第一階段中 時，細胞數目增加且細胞形態與高密度對照組培養物無異。人類巢蛋白、TuJ1、或GFAP的免疫細胞化學分析未證明潛在的神經分化。
神經前驅與PPDC共培養：PPDC係經接種至兩天前接種於神經擴增條件(NPE+F+E)中的大鼠神經前驅之培養物上。儘管經接種之PPDC之視覺確認證明這些細胞係以單一細胞接種，但是接種後4天(總計6天)的人類特異性核染色(hNuc)顯示，其趨向於捲成球狀(ball up)且避免與神經前驅接觸。此外，當PPDC附著時，這些細胞展開且似乎受到大鼠來源的分化神經元之神經支配，表示PPDC可能已分化成肌細胞。此觀察係基於在相位差顯微鏡下之形態。另一觀察為，一般大型細胞本體(大於神經前驅)擁有類似神經前驅之形態，其中薄突起以多個方向跨出。hNuc染色(發現於一半的細胞核中)顯示，在一些情況下，這些人類細胞可與大鼠前驅融合且採取其表型。僅含有神經前驅之對照組孔相較於含有臍或胎盤PPDC之共培養孔，具有較少總前驅及明顯分化之細胞，此進一步表示，臍與胎盤衍生細胞兩者均影響神經前驅之分化及行為，其作用係藉由釋放趨化激素與細胞介素，或藉由接觸媒介作用。
概述：進行多個規程以判定PPDC分化成神經譜系細胞之短期潛能。這些包括形態學之相位差成像與針對巢蛋白、TuJ1、及GFAP(分別為與多潛能神經幹細胞及前驅細胞、不成熟及成熟神經元、及星狀細胞相關聯的蛋白質)之免疫細胞化學之組合。
實例15 產後衍生細胞之長期神經分化
評估臍與胎盤衍生細胞(統稱為產後衍生細胞或PPDC)進行長期分化成神經譜系細胞之能力。
方法及材料
PPDC之分離與擴增：如先前實例中所述將PPDC分離與擴增。
PPDC細胞解凍與接種：將先前生長於生長培養基中之PPDC冷凍等分(臍(022803)P11；(042203)P11；(071003)P12；胎盤(101503)P7)解凍且以5,000個細胞/cm 2接種於經層黏蛋白(BD,Franklin Lakes,N.J.)塗布之T-75培養瓶中之含有B27(B27補充物，Invitrogen)、L-麩醯胺酸(4mM)、及青黴素/鏈黴素(10毫升)之Neurobasal-A培養基(Invitrogen,Carlsbad,Calif.)，其組合在本文中稱為神經前驅擴增(NPE)培養基。將NPE培養基用bFGF(20奈克/毫升，Peprotech,Rocky Hill,N.J.)及EGF(20奈克/毫升，Peprotech,Rocky Hill,N.J.)進一步補充，本文稱為NPE+bFGF+EGF。
對照組細胞接種：此外，將成體人類皮膚纖維母細胞(P11,Cambrex,Walkersville,Md.)與間葉幹細胞(P5,Cambrex)解凍且以相同細胞接種密度接種於經層黏蛋白塗布之T-75培養瓶中之NPE+bFGF+EGF中。作為進一步對照組，使纖維母細胞、臍與胎盤PPDC生長於生長培養基中歷時所有培養物所指定的時期。
細胞擴增：每週將所有培養物之培養基用新鮮培養基替換一次且觀察細胞之擴增。大致上，各培養物由於在NPE+bFGF+EGF中生長受限，在一個月期間內僅繼代一次。
免疫細胞化學：在一個月期間之後，將所有培養瓶在室溫下用冷4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)固定10分鐘。使用針對TuJ1(BIII微管蛋白；1：500；Sigma,St.Louis,Mo.)及GFAP(膠細胞纖維酸性蛋白質；1：2000；DakoCytomation,Carpinteria,Calif.)之抗體執行免疫細胞化學。簡言之，用磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)清洗培養物然後將其暴露於含PBS、4%(v/v)山羊血 清(Chemic on,Temecula,Calif.)與0.3%(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma)的蛋白質阻斷液中30分鐘以獲取細胞內抗原。接著在室溫下將一級抗體(稀釋於阻斷液中)施用於培養物歷時1小時。接著，將一級抗體溶液移除，用PBS清洗培養物，然後施用二級抗體溶液(在室溫下1小時)，該二級抗體溶液含有阻斷劑以及山羊抗小鼠IgG--Texas Red(1：250；Molecular Probes,Eugene,OR)及山羊抗兔IgG-Alexa 488(1：250；Molecular Probes)。隨後清洗培養物，然後施用10微莫耳DAPI(Molecular Probes)10分鐘以可視化細胞核。
在免疫染色後，在Olympus倒立落射螢光顯微鏡(Olympus,Melville,N.Y.)上使用適當螢光濾光片來可視化螢光。在所有情況下，陽性染色代表高於對照組染色的螢光訊號，其中遵照上文所概述的全部程序，除了施加一級抗體溶液。使用數位彩色攝影機與ImagePro軟體(Media Cybernetics,Carlsbad,Calif.)來擷取代表影像。針對三重染色的樣本，一次僅使用一個發射濾光片來拍攝各影像。接著使用Adobe Photoshop軟體(Adobe,San Jose,Calif.)來製備分層合成影像(Layered montage)。
結果
NPE+bFGF+EGF培養基延緩PPDC之增生且更改其形態。在接種之後，一亞群之PPDC立即附著至經層黏蛋白塗布之培養瓶。此可能因為細胞隨冷凍/解凍過程變化而死亡或由於新的生長條件。附著的細胞採用不同於在生長培養基中所觀察到的細胞之形態。
臍衍生細胞之殖株表現神經元蛋白質：培養物係於解凍/接種後一個月固定且針對神經元蛋白質TuJ1及GFAP(在星狀細胞中發現之中間絲)進行染色。儘管發現生長於生長培養基中之所有對照組培養物及生長於NPE+bFGF+EGF培養基中之人類纖維母細胞及MSC為TuJ1-/GFAP-，但是在臍與胎盤PPDC中偵測出TuJ1。在具有及不具有類神經元形態之細胞中觀察到表現。所有培養物中皆未觀察到GFAP之表現。表現TuJ1且具有類神經元形態之細胞的百分比小於或等於總族群之1%(n=3個經測試的臍衍生細胞分離株)。儘管未定量，但是TuJ1+且不具有神經元形態之細胞在臍衍生細胞培養物中之百分比高於在胎盤衍生細胞培養物中之百分比。這些結果似乎具有特異性，因為生長培養基中之年齡匹配的對照組不表現TuJ1。
概述：用於自臍衍生細胞產生經分化之神經元(基於TuJ1表現與神經元形態)之方法係經發展。儘管早於一個月的體外培養未檢測出TuJ1之表現，但是很明顯，至少一小族群的臍衍生細胞可經由預設分化(default differentiation)或經由在暴露於補充有L-麩醯胺酸、鹼性FGF、與EGF之最低培養基一個月的長期誘導而形成神經元。
實例16 用於神經前驅支持之PPDC營養因子
臍與胎盤衍生細胞(統稱為產後衍生細胞或PPDC)經由非接觸依賴性(營養)機制對成體神經幹細胞與前驅細胞存活及分化之影響係經檢測。
方法及材料
成體神經幹細胞與前驅細胞分離：Fisher 344成鼠係藉由CO2窒息接著頸椎脫位術殺死。使用骨鉗將全部大腦完整移除，且基於在大腦之運動與體感覺區域之後的冠狀切口將海馬體組織解剖(Paxinos,G.& Watson,C.1997.The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates)。組織係於含有B27(B27補充物；Invitrogen)、L-麩醯胺酸(4mM；Invitrogen)、及青黴素/鏈黴素(Invitrogen)之Neurobasal-A培養基(Invitrogen,Carlsbad,Calif.)中清洗，其組合在本文稱為神經前驅擴增(NPE)培養基。將NPE培養基用bFGF(20奈克/毫升，Peprotech,Rocky Hill,N.J.)及EGF(20奈克/毫升，Peprotech,Rocky Hill,N.J.)進一步補充，本文稱為NPE+bFGF+EGF。
在清洗之後，移除上覆腦膜，且將組織用解剖刀切碎。收集切碎之組織且添加75%總體積之胰蛋白酶/EDTA(Invitrogen)。亦添加DNase(100微升/8毫升總體積，Sigma,St.Louis,Mo.)。接著，使組織/培養基依序通過18號針頭、20號針頭、與最終25號針頭各一次(所有針頭皆來自Becton Dickinson,Franklin Lakes,N.J.)。將混合物在250g下離心3分鐘。移除上清液，添加新鮮NPE+bFGF+EGF且將團塊再懸浮。使所得細胞懸浮液通過40微米細胞濾器(Becton Dickinson)，接種於經層黏蛋白塗布之T-75培養瓶(Becton Dickinson)或低團簇24孔盤(Becton Dickinson)上，且生長於NPE+bFGF+EGF培養基中直到獲得概述研究所需之足夠細胞數目。
PPDC接種：先前生長於生長培養基中之產後衍生細胞(臍(022803)P12、(042103)P12、(071003)P12；胎盤(042203)P12)係以5,000個細胞/跨孔插入物(transwell insert)(適用24孔盤之大小)接種且於生長培養基中於插入物中生長一週之時期以達成長滿。
成體神經前驅接種：生長為神經球或單一細胞之神經前驅係以大致2,000個細胞/孔之密度接種至經層黏蛋白塗布之24孔盤上之 NPE+bFGF+EGF中歷時一天之時期以促進細胞附著。一天後，根據以下方案添加含有產後細胞之跨孔插入物：
a. 跨孔(臍衍生細胞於生長培養基中，200微升)+神經前驅(NPE+bFGF+EGF，1毫升)
b. 跨孔(胎盤衍生細胞於生長培養基中，200微升)+神經前驅(NPE+bFGF+EGF，1毫升)
c. 跨孔(成體人類皮膚纖維母細胞[1 F 1853；Cambrex,Walkersville,Md.]P12於生長培養基中，200微升)+神經前驅(NPE+bFGF+EGF，1毫升)
d. 對照組：單獨神經前驅(NPE+bFGF+EGF，1毫升)
e. 對照組：單獨神經前驅(僅NPE，1毫升)。
免疫細胞化學：在共培養物中7天之後，將所有條件在室溫下用冷4%(w/v)多聚甲醛(Sigma)固定10分鐘之時期。使用針對表14-1中所列舉之表位的抗體來執行免疫細胞化學。簡言之，用磷酸鹽緩衝鹽水(PBS)清洗培養物然後將其暴露於含PBS、4%(v/v)山羊血清(Chemic on,Temecula,Calif.)與0.3%(v/v)Triton(Triton X-100；Sigma)的蛋白質阻斷液中30分鐘以獲取細胞內抗原。接著在室溫下將一級抗體(稀釋於阻斷液中)施用於培養物歷時1小時。接著，將一級抗體溶液移除，用PBS清洗培養物，然後施用二級抗體溶液(在室溫下1小時)，該二級抗體溶液含有阻斷溶液以及山羊抗小鼠IgG--Texas Red(1：250；Molecular Probes,Eugene,OR)及山羊抗兔IgG-Alexa 488(1：250；Molecular Probes)。隨後清洗培養物，然後施用10微莫耳DAPI(Molecular Probes)10分鐘以可視化細胞核。
在免疫染色後，在Olympus倒立落射螢光顯微鏡(Olympus,Melville,N.Y.)上使用適當螢光濾光片來可視化螢光。在所有情況下，陽性染色代表高於對照組染色的螢光訊號，其中遵照上文所概述的全部程序， 除了施加一級抗體溶液。使用數位彩色攝影機與ImagePro軟體(Media Cybernetics,Carlsbad,Calif.)來擷取代表影像。針對三重染色的樣本，一次僅使用一個發射濾光片來拍攝各影像。接著使用Adobe Photoshop軟體(Adobe,San Jose,Calif.)來製備分層合成影像(Layered montage)。
神經前驅分化之定量分析：海馬神經前驅分化之定量係經檢測。每個條件計數最少1000個細胞，或若更少，則計數該條件中所觀察到的細胞總數。對於給定染色劑為陽性的細胞百分比係藉由將陽性細胞數目除以藉由DAPI(核)染色所判定之細胞總數來評估。
質譜分析及2D凝膠電泳：為了識別獨特的、因共培養而分泌之因子，將在培養物固定之前所取得的條件培養基樣本在-80℃下冷凍隔夜。隨後將樣本施加至超濾自旋裝置(截留MW為30kD)。將滯留物(Retentate)施加至免疫親和層析法(抗Hu-白蛋白；IgY)(免疫親和不將白蛋白自樣本移除)。藉由MALDI分析濾液。將通過液(pass through)施加至Cibachron Blue親和層析法。藉由SDS-PAGE及2D凝膠電泳分析樣本。
結果
PPDC共培養刺激成體神經前驅分化：在與臍或胎盤衍生細胞培養之後，經共培養之衍生自成鼠海馬體之神經前驅細胞展現沿著中樞 神經系統中所有三大譜系的顯著分化。在共培養五天之後清楚觀察到此作用，其中許多細胞發展出複雜突起且喪失屬於前驅細胞分裂表徵之相明亮特徵。相反地，在bFGF及EGF不存在下單獨生長之神經前驅外觀不健康且存活受限。
在程序完成之後，將培養物針對指示未分化幹細胞及前驅細胞(巢蛋白)、不成熟及成熟神經元(TuJ1)、星狀細胞(GFAP)、及成熟寡樹突細胞(MBP)之標記進行染色。沿著所有三種譜系之分化係經確認，儘管對照組條件並未展現顯著分化，如大部分細胞保留巢蛋白陽性染色所證明。儘管臍及胎盤衍生細胞皆誘導細胞分化，但是與胎盤衍生細胞之共培養物中的所有三種譜系之分化程度小於與臍衍生細胞之共培養物中。
與臍衍生細胞共培養之後的分化神經前驅之百分比係經定量(表16-2)。臍衍生細胞顯著提高成熟寡樹突細胞(MBP)之數目(24.0%相較於兩種對照組條件之0%)。此外，共培養提高培養物中GFAP+星狀細胞與TuJ1+神經元的數目(分別為47.2%與8.7%)。這些結果係經巢蛋白染色之確認，指示在共培養之後喪失前驅狀態(13.4%相較於對照組條件4之71.4%)。
雖然分化似乎亦受成體人類纖維母細胞影響，但是此類細胞無法促進成熟寡樹突細胞之分化，也不能產生可察覺量的神經元。儘管未定量，但是纖維母細胞似乎確實增強神經前驅之生存。
獨特化合物之識別：檢測來自臍及胎盤衍生共培養物之條件培養基，與適當對照組(NPE培養基±I.7%血清，來自與纖維母細胞之共培養的培養基)之差異。潛在之獨特化合物係經識別且自其各自2D凝膠切除。
概述：成體神經前驅細胞與臍或胎盤PPDC之共培養導致該些細胞之分化。此實例中所表現的結果指示，在與臍衍生細胞共培養之後，成體神經前驅細胞之分化尤其突出。特定言之，在臍衍生細胞之共培養物中產生顯著百分比的成熟寡樹突細胞。
實例17 產後衍生細胞之移植
衍生自產後臍及胎盤之細胞可用於再生性治療。對藉由用可生物降解材料將產後衍生細胞(PPDC)移植至SCID小鼠中所生產之組織進行評估。所評估之材料為Vicryl非織物、35/65 PCL/PGA發泡體、及RAD 16自組裝肽水凝膠。
方法及材料
細胞培養：胎盤及臍衍生細胞係生長於經明膠塗布之培養瓶中之生長培養基(DMEM-低葡萄糖(Gibco,Carlsbad Calif.)、15%(v/v)胎牛血清(批號SH30070.03；Hyclone,Logan,Utah)、0.001%(v/v)β巰基乙醇(Sigma,St.Louis,Mo.)、青黴素/鏈黴素(Gibco))中。
樣本製備：將一百萬個存活細胞接種於15微升生長培養基中至5mm直徑、2.25mm厚Vicryl非織物支架(64.33毫克/cc；批號3547-47-1)或5mm直徑35/65 PCL/PGA發泡體(批號3415-53)上。使細胞 附著兩小時，之後添加更多生長培養基以覆蓋支架。使細胞於支架上生長隔夜。亦將不具有細胞的支架培養於培養基中。
RAD16自組裝肽(3D Matrix,Cambridge,MA)係以無菌1%(w/v)水溶液之形式獲得，將其與1 x 106個細胞於10%(w/v)蔗糖(Sigma,St Louis,Mo.)、10mM HEPES於達爾伯克改質培養基(DMEM；Gibco)中以1：1混合，之後立即使用。細胞於RAD 16水凝膠中之最終濃度為1 x 106個細胞/100微升。
測試材料(N=4/Rx)
a. Vicryl非織物+1×106個臍衍生細胞
b. 35/65 PCL/PGA發泡體+1×106個臍衍生細胞
c. RAD 16自組裝肽+1×106個臍衍生細胞
d. Vicryl非織物+1×106個胎盤衍生細胞
e. 35/65 PCL/PGA發泡體+1×106個胎盤衍生細胞
f. RAD 16自組裝肽+1×106個胎盤衍生細胞
g. 35/65 PCL/PGA發泡體
h. Vicryl非織物
動物準備：根據動物福利法案(Animal Welfare Act)之現行規定操作及飼養動物。藉由遵守動物福利法規(9 CFR)且符合Guide for the Care and Use of Laboratory Animals,7th edition中所公布的現行標準來實現對上文公共法案之遵守。
小鼠(小家鼠(Mus Musculus))/Fox Chase SCID/雄性(Harlan Sprague Dawley,Inc.,Indianapolis,Ind.)，5週齡：SCID小鼠之所有操作皆在層流櫃中進行。將小鼠個別稱重且用60毫克/kg KETASET(鹽酸氯胺酮，Aveco Co.,Inc.,Fort Dodge,Iowa)與10毫克/kg ROMPUN(xylazine,Mobay Corp.,Shawnee,Kans.)及鹽水之混合物進行腹膜內注射來麻醉。在導入麻醉 之後，使用動物電剪將動物自背頸區域至背腰區域之整個背部的毛髮剃光。隨後將該區域用氯己定二乙酸鹽(chlorhexidine diacetate)刷洗，用醇潤洗，乾燥，然後用1%有效碘(available iodine)之帶碘化合物(iodophor)水溶液塗抹。將眼科軟膏施加至眼睛以預防在麻醉期間組織乾燥。
皮下移植技術：在小鼠背部做出四個皮膚切口，各大致1.0cm長。兩個頭側位點(cranial site)係橫向地定位於背外側胸腔、手觸摸肩胛骨下邊緣後方約5-mm之區域，其中一個在脊柱左側，另一個在脊柱右側。另外兩個位點係橫向地定位於後薦腰(caudal sacro-Iumbar)處、手觸摸髂骨崤後方約5-mm之臀肌區域，中線兩側各一。根據試驗計劃，將植入物隨機放置於這些位點中。使皮膚與下伏結締組織分離以製成小口袋，將植入物放入(或將RAD16注射入)切口後方約1-cm處。將適當測試材料植入至皮下空間。將皮膚切口用金屬夾封閉。
動物安置：在整個研究時程中，將小鼠個別安置於微型隔離籠中，溫度範圍為64℉至79℉，相對濕度為30%至70%，且保持大致12小時亮/12小時暗循環。將溫度與相對濕度盡可能地保持在所述範圍內。食物由經照射的Pico Mouse Chow 5058(Purina Co.)組成且無限制飲水。
小鼠在其指定期間藉由二氧化碳來進行安樂死。將皮下植入位點連同其上覆皮膚切除且冷凍以用於組織學研究。
組織學：將切除皮膚連同植入物用10%中性緩衝福馬林(Richard-Allan Kalamazoo,Mich.)固定。將樣本連同上覆及相鄰組織由中間對切，使用常規方法用石臘處理及包埋切割表面。使用常規方法，藉由薄片切片機獲得五微米組織切片且用蘇木精與曙紅(Poly Scientific Bay Shore,N.Y.)染色。
結果
30天後，經植入SCID小鼠皮下之發泡體(無細胞)中有極小的內生長。相反地，含有臍衍生細胞或胎盤衍生細胞之植入發泡體中充滿廣泛的組織。於Vicryl非織物支架中觀察到一些組織內生長。接種臍或胎盤衍生細胞之非織物支架顯示基質沉積及成熟血管增加。
概述：合成性可吸收非織物/發泡體盤(5.0mm直徑×1.0mm厚)或自組裝肽水凝膠係經衍生自人類臍或胎盤的細胞接種，且雙側皮下植入於SCID小鼠之背脊部。結果證明，產後衍生細胞可大幅增加可生物降解支架中高品質的組織形成。
實例18 臍組織衍生細胞中之端粒酶表現
端粒酶的功能是合成端粒重複序列(telomere repeat)，端粒重複序列用來保護染色體完整性並延長細胞的複製壽命(Liu,K，等人，PNAS,1999；96：5147-5152)。端粒酶由兩個組分所組成，即端粒酶RNA模板(hTER)與端粒酶反轉錄酶(hTERT)。端粒酶的調控係由hTERT而非hTER的轉錄來決定。hTERT mRNA的即時聚合酶連鎖反應(PCR)因而是一種已獲認可的細胞端粒酶活性測定方法。
細胞分離。執行即時PCR實驗以測定人類臍帶組織衍生細胞的端粒酶生產。根據上文所述之實例製備人類臍帶組織衍生細胞。一般而言，得自國家疾病研究交換中心(Philadelphia,Pa.)的臍帶在正常分娩後會經過清洗以去除血液與碎屑然後進行機械解離。隨後將組織在37℃下用包括膠原蛋白酶、分散酶與玻尿酸酶之消化酶培養於培養基中。根據上文實例中所述之方法培養人類臍帶組織衍生細胞。間葉幹細胞與正常皮膚纖維母細胞(cc-2509批號9F0844)係得自Cambrex,Walkersville,Md。多能性人類睪丸胚胎性癌(畸胎瘤)細胞系nTera-2細胞(NTERA-2 cl.Dl)(參見Plaia 等人，Stem Cells,2006；24(3)：531-546)係購自ATCC(Manassas,Va.)並且將其根據上文中所述之方法來培養。
總RNA分離。使用RNeasy®套組(Qiagen,Valencia,Ca.)將RNA自細胞萃取出來。用50微升經DEPC處理水將RNA沖提出來然後儲存於-80℃下。使用隨機六聚物以TaqMan®反轉錄試劑(Applied Biosystems,Foster City,Ca.)來反轉錄RNA，反轉錄在25℃下歷時10分鐘、在37℃下歷時60分鐘、且在95℃下歷時10分鐘。將樣本儲存在-20℃下。
即時PCR。使用Applied Biosystems Assays-On-DemandTM(亦已知為TaqMan® Gene Expression Assays)根據製造商規範(Applied Biosystems)在cDNA樣本上執行PCR。此商用套組廣泛用來檢定人類細胞中的端粒酶。簡言之，使用7000序列偵測系統(搭載ABI prism 7000 SDS軟體(Applied Biosystems))，將hTert(人類端粒酶基因)(Hs00162669)及人類GAPDH(內部對照組)與cDNA及TaqMan® Universal PCR主混合物混合。熱循環條件初始為50℃歷時2分鐘然後95℃歷時10分鐘，接著進行40次95℃歷時15秒鐘然後60℃歷時1分鐘的循環。依據製造商規範來分析PCR數據。
人類臍帶組織衍生細胞(ATCC存取號PTA-6067)、纖維母細胞及間葉幹細胞係針對hTert及18S RNA來檢定。如表18-1中所示，hTert及因此端粒酶皆未在人類臍帶組織衍生細胞中偵測到。
人類臍帶組織衍生細胞(分離株022803，ATCC存取號PTA-6067)及nTera-2細胞皆經檢定，結果顯示在兩批人類臍帶組織衍生細胞中皆無端粒酶表現，然而畸胎瘤細胞系則顯示高表現水準(表18-2)。
因此，可做出本發明之人類臍組織衍生細胞不表現端粒酶之結論。
本說明書中提及各種專利及其他出版物。這些出版物之各者之全部內容以引用方式併入本文中。
儘管上文已藉由實例與較佳實施例說明本發明之各種態樣，但是應理解，本發明之範疇並不由前文描述限定，而是以下根據專利法原理正確解讀的申請專利範圍來限定。
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Claims (26)

  1. 一種治療視網膜變性之方法，其包含向對象之眼睛投予產後衍生細胞群，其中該細胞群分泌橋分子，且其中該等橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
  2. 一種向對象之眼睛投予產後衍生細胞群之方法，其中該細胞群分泌橋分子，且其中該等橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
  3. 如請求項1或2所述之方法，其中該產後衍生細胞群包含人類臍帶組織衍生細胞，該等人類臍帶組織衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織。
  4. 如請求項3所述之方法，其中分離自實質上不含血液之人類臍帶組織之該細胞群能夠在培養物中擴增、具有分化成至少一種神經表型之細胞的潛能、在繼代之後維持正常核型、且具有以下特徵：a)在培養物中進行40次族群倍增的潛能；b)生產CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；c)不生產CD31、CD34、CD45、CD117及CD141，以及d)相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞，增加編碼介白素8與內質網蛋白1之基因的表現。
  5. 如請求項1或2所述之方法，其中該細胞群分泌受體酪胺酸激酶(RTK)營養因子。
  6. 如請求項5所述之方法，其中該等營養因子為BDNF、NT3、HGF、PDGF-CC、PDGF-DD及GDNF。
  7. 如請求項4所述之方法，其中該細胞群分泌受體酪胺酸激酶(RTK)營養因子。
  8. 如請求項7所述之方法，其中該等營養因子為BDNF、NT3、HGF、PDGF-CC、PDGF-DD及GDNF。
  9. 一種條件培養基，其藉由如請求項1至3中任一項所述之方法製備。
  10. 一種減輕或防止視網膜細胞或組織遭受氧化損傷之方法，其包含向對象之眼睛投予產後衍生細胞群，其中該等產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織。
  11. 一種救援視網膜變性中之視網膜色素上皮(RPE)細胞功能異常之方法，該方法包含向對象之眼睛投予產後衍生細胞群，其中該等產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，其中該細胞群分泌橋分子，且其中該等橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
  12. 一種用於減少視網膜變性中之光受體細胞損失之方法，該方法包含向對象之眼睛投予有效減少光受體細胞損失之量的產後衍生細胞群，其中該等產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，其中該產後衍生細胞群分泌橋分子，且其中該等橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
  13. 如請求項11或12所述之方法，其中該產後衍生細胞群分泌受體酪胺酸激酶(RTK)營養因子。
  14. 如請求項13所述之方法，其中該等營養因子為BDNF、NT3、HGF、PDGF-CC、PDGF-DD及GDNF。
  15. 如請求項10、11或12所述之方法，其中該產後衍生細胞群係與至少一種其他藥劑一起投予。
  16. 一種用於減少視網膜變性中之光受體細胞損失之方法，其包含向對象之眼睛投予包含產後衍生細胞群之組成物，其中該組成物係以有效減少光受體細胞損失之量投予，其中該等產後衍生細胞係分離自實質上不含血液之人類臍帶組織，其中產後衍生細胞分泌橋分子，且其中該等橋分子係選自MFG-E8、Gas6、TSP-1及TSP-2。
  17. 如請求項16所述之方法，其中該產後衍生細胞群分泌受體酪胺酸激酶(RTK)營養因子。
  18. 如請求項17所述之方法，其中該等營養因子為BDNF、NT3、HGF、PDGF-CC、PDGF-DD及GDNF。
  19. 如請求項15所述之方法，其中該組成物為醫藥組成物。
  20. 如請求項19所述之方法，其中該醫藥組成物包含醫藥上可接受之載劑。
  21. 如請求項11、12或16所述之方法，其中該視網膜變性為年齡相關性黃斑變性。
  22. 如請求項21所述之方法，其中該年齡相關性黃斑變性為乾性年齡相關性黃斑變性。
  23. 如請求項10、11、12或16所述之方法，其中分離自實質上不含血液之人類臍帶組織之該細胞群能夠在培養物中擴增、具有分化成至少一種神經表型之細胞的潛能、在繼代之後維持正常核型、且具有以下特徵：a)在培養物中進行40次族群倍增的潛能；b)生產CD10、CD13、CD44、CD73及CD90；c)不生產CD31、CD34、CD45、CD117及CD141，以及d)相對於纖維母細胞、間葉幹細胞或髂骨崤骨髓細胞之人類細胞，增加編碼介白素8與內質網蛋白1之基因的表現。
  24. 如請求項4所述之方法，其中該細胞群為HLA-A、HLA-B、HLA-C陽性，及HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ陰性。
  25. 如請求項23所述之方法，其中該細胞群為HLA-A、HLA-B、HLA-C陽性，及HLA-DR、HLA-DP、HLA-DQ陰性。
  26. 如前述請求項中任一項所述之方法，其中向該眼睛投予係選自向眼睛之內部投予或投予於該眼睛後面。
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