TW201412685A - ［１２３ｉ］標記碘辛基芬布芬醯胺化合物之製備方法及其應用 - Google Patents

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Abstract

本發明提供一種製備[123I]碘辛基芬布芬醯胺的方法，此化合物具有15%的放射性化學產率、37 GBq/μmol的專一活性及95%的放射化學純度。本發明另提供一種將[123I]碘辛基芬布芬醯胺作為單光子放射斷層掃描的追蹤劑以評估環氧合酶分佈的方法，其是藉由碘同位素標定化合物與環氧合酶結合之特性以及發炎反應與腫瘤病灶的正相關性進行評估腫瘤發生及轉移之用途。

Description

[ 123 I]標記碘辛基芬布芬醯胺化合物之製備方法及其應用
本發明係關於一種[123I]碘辛基芬布芬醯胺的製備方法及其應用。
非類固醇抗發炎藥物(Non steroid anti inflammatory drugs，NSAIDs)已被公認其具有抗發炎的效果。NSAIDs所含括的藥物種類繁多，諸如aspirin(阿司匹林)、naproxen(那普洛辛)、diclofenac sodium(二克氯吩鈉)、ibuprofen(布洛芬)、fenbufen(芬布芬)等皆是。臨床上發炎反應與腸癌症風險增加有關；因此，使用NSAIDs或預防癌症係一已知的概念。
發炎反應的機制主要是與催化脂質的一個主要酵素環氧合酶(Cyclooxygenase，COX)有關，此酵素主要是經由兩個連續的步驟將花生四烯酸(Arachidonic Acid)轉化為前列腺素H2(Prostaglandins H2，PGH2)。PGH2為前列腺系列-2(series-2 prostanoids)的前趨物，因此COX在發炎反應一連串信號的中扮演重要的角色。COX有兩個活性位點：一個連接血紅素，其具有過氧化酶(peroxidase)的活性，負責將前列腺素G2(Prostaglandins G2，PGG2)還原為PGH2；另一個活性位點，把花生四烯酸轉化為氫過氧基過氧化物(hydroperoxy endoperoxide)PGG2，此反應是經由前述過氧化酶的活性位點所產生的酪胺酸自由基(tyrosine radical)從花生四烯酸奪取氫原子，兩個O2分子與花生四烯酸自由基發生反應，而產生PGG2，一開始是由COX氧化PGG2，之後是由過氧化酶反應為一個不穩定的過氧化物中間PGH2。這兩個反應在不同空間進行但皆為機制上耦合的活性位點，COX活性位點位在長的疏水通道末端，其寬廣區是靠近膜結合區塊當延伸到蛋白質內部時縮 窄；過氧化酶活性位點位在靠近血紅素輔因子的表面。在很多腫瘤細胞中，COX為前列腺素表現量之上調酵素。
目前在哺乳類動物COX有三種型式已被報導過，分別是COX-1、COX-2及COX-3，(1)COX-1主要作用為家務(house-keeping)酵素且在大部分的組織中表現；(1)COX-2是在生理條件下的一種高度誘導酶；(3)COX-3為COX-1的剪接突變(Splice mutation)，其保留的內含子且具有移碼突變(frameshift mutation)，因此有時會稱為COX-b或COX-1變異型(COX-1v)。COX-1存在於人體大部分的組織，如：胃黏膜、腎臟、血小板等，COX-2主要存在於巨噬細胞及滑膜細胞等，當人體受到傷害時COX-2便會表現出來造成發炎反應，NSAIDs會抑制COX的活性，也間接抑制了前列腺素、前列腺環素及血栓素之產生而達到止痛消炎的作用。除了抗發炎的作用外，長期投與NSAIDs後顯示有預防癌症的效果，然而，使用非專一性anti-COX抑制劑藥物(如：anti-COX-1抑制劑)總是伴隨有胃潰瘍的副作用，因而開始發展anti-COX-2抑制劑以克服上述的副作用，但COX-2抑制劑會引發心血管相關的問題，所以進一步限制了它們的使用。由於COX機制有諸如雙功能酵素及兩個活性位點的複雜性，因此具有獨特抑制功能的新試劑還在發展階段。
近期，發炎反應及腫瘤病程的影像引起高度的重視，若COX-1抑制劑或COX-2抑制劑作為正電子發射斷層掃描(Positron Emission Tomography，PET)或單光子放射斷層掃瞄(Single Photon Emission Computer Tomography，SPECT)應用的診斷影像追蹤劑，只需在短時間內投與患者非常低的濃度(低於治療劑量的1/100)，所以細胞毒性不會造成問題。因此，在過去幾十年中，利用COX-1及COX-2的專一性抑制劑的結構特點開發了各種PET及SPECT的追蹤劑，但只有極少 數放射性藥物已經成功的應用在發炎反應中，這可能的原因歸咎於COX-2的不穩定性或是由於放射性藥物用於檢測COX-2過度表現的絕對量是非常低。
近期研究指出，放射性氟丁基利尿酸醯胺([18F]FBuEA)在大鼠肝臟中只能在腫瘤病灶產生冷點的影像，此暗示醫師或治療者無法觀察是否有放射性累積，因為只有熱點影像才能看出放射累積的強度、及器官發炎或損壞的嚴重程度。
有鑑於此，本發明是利用製備NSAIDs之一芬布芬的衍生物作為追蹤劑，此放射性化合物的合成設計主要是依據三苯環與聯苯環的骨架分別以COX-1與COX-2酵素作為特定標靶。本發明特別是從快速的平行合成液相分子庫(parallel solution phase synthesis derived library)進行細胞篩選與結構及活性(SAR)研究而發現的辛基芬布芬醯胺(OFA)的抗氧化劑檢測(如：NO)，OFA的抗發炎反應的效果是微小的。因此，本發明選擇OFA作為用於活體內的COX-2影像的放射性標記，特別是針對OFA用於活體內SPECT熱點影像的放射性碘標記。
本發明以單光子發射器之放射性標記辛基芬布芬醯胺，使其具有將發炎反應及癌症病灶兩者成像的能力，因此，針對辛基芬布芬醯胺衍生物做放射性碘標記。在辛基芬布芬醯胺的結構中芳香環的碳上可作為合適的放射性碘之位置，經由放射性碘與有機錫化合物交換作用可以完成反應，製成[123I]碘辛基芬布芬醯胺(式1化合物)。
本發明提供一種製備式1化合物的方法， 該步驟包含：(a)提供一具有式3化合物；以及 (b)將該式3化合物與[123I]標記碘化試劑及過氧化氫反應生成式1化合物；該[123I]標記碘化試劑係[123I]標記碘化鈉；其中，該式3化合物是由式2化合物 與雙三苯基膦二氯化鈀(bis(triphenylphosphine)palladium dichloride)及一錫烷基化合物反應生成；其中該錫烷基化合物係六甲基二錫(Sn2(CH3)6)。
本發明之一實施例中，該式2化合物係由式4化合物 與苯并三氮唑-基-N,N,N',N'-四甲基脲六氟磷酸鹽(O-benzotriazole-yl-N,N,N',N'-tetramethyl-uronium-hexafluoro phosphate,HBTU)、二異丙基乙胺(diisopropyl ethylamine)及1-胺基辛烷(1-amine octane)反應生成。
本發明之又一實施例中，該式4係由式5化合物 與丁二酸酐(succinic anhydride)及AlCl3反應生成。
本發明提供一種製備式1化合物的方法，此方法所製備的化合物具有15%的放射性化學產率、37 GBq/μmol的專一活性及95%的放射化學純度。
本發明另提供一種利用式1化合物作為影像成像系統之追蹤劑以檢測腫瘤早期發炎之用途，該式1化合物係與環氧合酶COX-1或COX-2結合產生一信號；其中成像系統係為單光子放射電腦斷層掃描(SPECT)；其中該腫瘤為肝腫瘤；其中信號為一放射線訊號之熱點(hot spot)，其中該放射線訊號之熱點與該腫瘤病灶嚴重度呈正相關。
基於上述，本發明提供一種製備放射性式1化合物的方法以及一種 利用式1化合物評估環氧合酶分佈的方法，以測定環氧合酶的酵素活性及分佈情形。本發明可應用於單光子放射斷層掃描，藉由環氧合酶分布與腫瘤發生的正相關性進行評估腫瘤發生及轉移等用途。
此外，本發明使用HPLC以膠體過濾管柱進行IOFA結合至COX-1及COX-2酵素的結合測試，顯示選擇性比為1：1.4，表示OFA對COX-2比COX-1為較優先的選擇。並進行體外非放射性的抑制測試及活體小動物影像實驗，式1化合物在正常大鼠中單光子放射斷層掃瞄影像顯示較低的吸收且放射性的均勻分布在肝臟中。相較之下，在以硫代乙醯胺(Thioacetamide，TAA)誘發膽管癌(Cholangiocarcionma)大鼠中，式1化合物的單光子放射斷層掃瞄影像中產生腫瘤病灶的熱點顯示較高的吸收且放射性非均勻的堆積，暗示式1化合物的CCA大鼠動物模式之影像產生之熱點與癌症病灶呈正相關。在COX-1及COX-2酵素的免疫組織化學染色法中，顯示在腫瘤大鼠中兩個COX酵素的表現量比在相同情況下在正常大鼠中為提升的。因而證實本發明所製備的式1化合物能夠作為SPECT的追蹤劑，用以檢測發炎反應與腫瘤病灶的發生。
為讓本發明之上述特徵和優點能夠更明顯易懂，下文特舉實施例，並配合所附圖式作詳細說明如下。
如上述反應式I所示：4-碘聯苯(4-idobiphenyl)與丁二酸酐(succinic anhydride)及AlCl3反應生成式4化合物[4-(4'-碘基雙苯基-4-基)-4-氧基丁酸(4-(4'-iodobiphenyl-4-yl)-4-oxobutanoic acid)]，式4化合物與苯并三氮唑-基-N,N,N',N'-四甲基脲六氟磷酸鹽(O-benzotriazole-yl-N,N,N',N'-tetramethyl-uronium-hexafluorophosphate,HBTU)、二異丙基乙胺(diisopropyl ethylamine)及1-胺基辛烷(1-amine octane)反應生成式2化合物[4-(4'-碘基雙苯基-4-基)-N-辛基-4-氧代丁醯胺(4-(4'-iodobiphenyl-4-yl)-N-octyl-4-oxobutanamide]，式2化合物 與六甲基二錫(hexamethylditin)反應生成式3化合物[N-辛基-4-氧代-4-(4'-(三甲基錫烷基)雙苯基-4-基)丁醯胺(N-octyl-4-oxo-4-(4'-(trimethylstannyl)biphenyl-4-yl)butanamide]，式3化合物與放射性NaI及過氧化氫反應生成式1化合物[4-(4'-[123I]基雙苯基-4-基)-N-辛基-4-氧代丁醯胺(4-(4'-[123I]iodobiphenyl-4-yl)-N-octyl-4-oxobutanamide])。
實驗前準備
所有的試劑及溶液皆購買自Sigma-Aldrich、Malingkrodt、Acros、Alfa、Tediao或Fluka。反應前先將CH2Cl2、甲苯以CaH2脫水及MeOH以Mg脫水並蒸餾備用；將二甲基甲醯胺(DMF)與1,4-二氧陸圜(dioxane)於減壓下蒸餾。有機錫的式3化合物的製備在氮氣正壓下於乾燥的玻璃器皿中進行；薄層層析(Tin layer chromatography，TLC)以MERCK TLC矽膠60F254覆膜片進行，起始原料及產物以UV光(254 nm)顯色，並以5%對甲氧苯甲醛(p-anisaldehyde)、茚三酮(ninhydrin)或鉬酸銨鈰(ceric ammonium molybdate)於加熱下染色作進一步確認；快速層析是以Geduran Si 60矽膠(230-400 mesh)進行，熔點是以MEL-TEMP測量並未經校正；使用高磁場核磁共振儀(VARIAN UnityInova 500 MHz)測量NMR光譜，其包含1H-NMR(500 MHz)及13C-NMR(125MHz,DEPT-135)，用於NMR的氘代溶劑(D-solvent)包含CD3OD、CDCl3及C6D6，其購自劍橋同位素公司(Cambridge Isotope Laboratories,Inc.)；利用VARIAN 901-MS液相層析四極桿暨飛行時間(quadrupole-time of flight，Q-Tof)質譜儀ESI-MS光譜進行低解析磁場式質譜(Low Resolution Mass Spectrometry，LRMS)；利用VARIAN高效液相層析儀(HPLC)(型號：prostar series ESI/APCI)進行高解析磁場式質譜(High Resolution Mass Spectrometry，HRMS)耦合 VARIAN 901-MS(FT-ICR Mass)及三重四極桿(triple quadrpole)的質量。
商品化的比色COX(ovine)抑制劑篩選檢測試劑組購買自Cayman Chemical Ltd(760111)，此檢測試劑包含COX-1及COX-2兩種檢測試劑，依據產品的說明這兩個酵素專一性的活性為相同的。商品化的PTFE(0.45μm)濾芯購買自Millipore。
[123I]碘化鈉同位素係在台灣NERI在EBCO TR30迴旋加速器(30 MeV)經由124Xe(p,2n)123Cs轉變為123Xe轉變為123I所產生。所有的放射物質在120 μA束電流下進行，平均集成電流在300 μAh的目標。在放射線之後，目標物冷卻4至6個小時使123Cs衰退至123Xe再更進一步轉換為123I；以第一次稀釋的NH4OH(0.0016N，500mL)沖洗目標物，接著再以濃的NH4OH(0.16N，4mL)洗滌；洗滌液立即注入至第一個萃取匣，其為鹼性氧化鋁萃取匣(alumina B cartidge)且在乙酸(5.8N，10mL)的條件下。之後在注入至第二個樹脂(AG150W-x8)管柱，使用NaOH(1N，4mL)洗滌；結合洗滌液(2-3 mL)，其體積約在0.3 mL至0.6 mL的範圍內可供後續放射性實驗使用。符合台灣核能署的規定，在抽氣罩內充分通風以濾膜進行放射性標記123I的操作。
所得之式1化合物以HPLC進行純化，HPLC包含有溶煤輸送系統Water 510泵浦、linear UVIS偵測器(254 nm)in series Berthhold g-flow偵測器、在ZORBAX SIL管柱(250mm×9.4 mm,5 μm)以每分鐘3 mL的速度下MeOH/CHCl3=1/99移動相。[123I]碘辛基芬布芬的品質測試係以與相同上述HPLC條件進行。用於放射性配體結合檢測，購買自Tosoh Bioscience LLC的TSKgel G3000PWxl 7.5×300(mm)具有10 μL的粒子大小的膠體過濾管柱，HPLC的設定為：使用PBS緩衝液的洗滌液並以每分鐘1 mL的速度進行整個實驗。式1化合物與式2化合物標準品以HPLC共注射(coinjection)來確認。比較質量對UV光吸的標 準曲線計算在254 nm下相對於化合物2標準品UV光吸收波峰的面積。只有低於36 GBq/μmol的專一性的活性可備準確地量測出。以Capintec R15C劑量校正器量測放射性。
本發明參與動物及活體實驗皆符合台灣國家健康暨醫療研究中心(NHMRC)規定，係使用台灣動物研究中心(台灣長庚紀念醫院)Sprague-Dawley(SD)雄性大鼠(約49周)，整個實驗的期間大鼠在相同且有食物及飲水的環境下飼養，本發明使用正常的大鼠作為對照組及以硫代乙醯胺(Tetradecylthioacetic acid，TTA)-誘發的膽管癌(cholangiocarcionma，CCA)大鼠。
大鼠以吸入異氟烷(isoflurane，Forthane,Abott)進行麻醉，在每分鐘200 mL氧氣供應下進行影像研究。使用單光子放射斷層掃瞄系統(X-SPECT/CT,Gamma Media,Northridge,CA,USA)進行小動物影像研究。
較佳實施例 實施例1：製備4-(4'-碘基雙苯基-4-基)-4-氧基丁酸(4-(4'-iodobiphenyl-4-yl)-4-oxobutanoic acid；式4化合物)
在CH2Cl2(45 mL)中之丁二酸酐(succinic anhydride)(893 mg，9.0 mmol)及AlCl3((2.52 g,18.8 mmol，2.1 eq))混合物在室溫下攪拌20分鐘至混合物變為乳白色糊狀，將此黏稠的混合物移至冰水浴在黑暗中攪拌2分鐘，加入商品化的4-碘聯苯(4-idobiphenyl)(2.5 g，9.0 mmol)混合物轉變為暗綠色，攪拌1個小時，利用薄層層析(Thin layer chromatography，TLC)(丙酮：正己烷=3：7)觀察碘聯苯的消耗(R f =0.87)與式4化合物的生成(R f =0.21)。接著該混合物倒入至與冰(500 g)混合的HCl(12N，250 mL)，攪拌至暗綠色消失形成黃色的懸浮固體，使用Büchner漏斗過濾混合物，收集殘留的固體，該固體 溶解於NaOH水溶液(1N，250 mL)中，加入EtOAc分段處理並去除不需要的雜質，收集水溶液層並加入HCl(12 N)用以酸化溶液直到有固體沉澱，將混合物移至Büchner漏斗以蒸餾水洗滌去除多餘的酸，在減壓下乾燥殘餘物且獲得黃色固體的式4化合物(產率89%，3.0 g)。
式4化合物之分子量、理化特性、光譜、質譜及核磁共振光譜分別表示如下：Cl6H13IO3[M]+=379.99,ESI+Q-TOF MS,M=380.0(m/z),[M+Na]+=403.0,[2M+Na]+=782.9；1H-NMR(500 MHz,CD3OD)：δ 2.89(t,J=6.5 Hz,2H,aliphatic),3.50-3.53(m,2H,aliphatic),7.62-7.65(m,2H,Ar),7.83-7.85(m,1H,Ar),7.91-7.93(m,2H,Ar),7.99(d,J=7.5Hz,1H,Ar),8.24(d,J=8.0 Hz,2H,Ar)。
實施例2：製備4-(4'-碘基雙苯基-4-基)-N-辛基-4-氧代丁醯胺(4-(4'-iodobiphenyl-4-yl)-N-octyl-4-oxobutanamide；式2化合物，本案亦縮寫為IOFA)
含有式4化合物的DMF(15 mL)中依序加入苯并三氮唑-基-N,N,N',N'-四甲基脲六氟磷酸鹽(O-benzotriazole-yl-N,N,N',N'-tetramethyl-uronium-hexafluorophosphate,HBTU)(998 mg，2.6 mmol)及二異丙基乙胺(diisopropyl ethylamine)(680 mg，0.9 mL，5.2 mmol，2 eq)，攪拌30分鐘，加入商品化的1-胺基辛烷(1-amine octane)(510 mg，3.9 mmol，1.5 eq)攪拌15分鐘，TLC(丙酮：正己烷=3：7)觀察攪拌式4化合物的消耗(R f =0.21)與式2化合物的生成(R f =0.56)。在高真空下以60℃將混合物濃縮，在水性HCl(1 N，30 mL×2)及CHCl3(50 mL)之間分段處理殘餘物，在減壓下收集濃縮的有機層，使用快速色層析法以丙酮/CHCl3=1：29的洗滌液純化殘餘物以獲得嗅覺上有類似塑膠味道的淡黃色固體的式2化合物(產率73%，938 mg)。 使用HPLC以MeOH/CHCl3=1：99洗滌液分餾樣本，t R =17.3分鐘，純化後產物為白色固體，式4化合物之分子量、理化特性、光譜、質譜及核磁共振光譜分別表示如下：mp：181-182℃；C24H30INO2[M]+=491.1,ESI+Q-TOF MS,M=491.1(m/z),[M+H]+=492.1,[M+Na]+=514.1；HRMS-ESI，計算值：[M+H]+=492.13995,[M+Na]+=514.12189；實測值：[M+H]+=492.13955,[M+Na]+=514.12173；1H-NMR(500 MHz,CDCl3)：δ 0.87(t,J=7.0 Hz,3H,octyl,CH3),1.26-1.32(m,10H,octyl,CH2),1.50(t,J=7.0 Hz,2H,octyl,CH2),2.62(t,J=6.5 Hz,2H,aliphatic,CH2),3.24(q,J=7.0 Hz,2H,octyl,CH2),3.39(t,J=7.0 Hz,2H,aliphatic,CH2),5.77(bs,1H,amide),7.35(d,J=8.5 Hz,2H,Ar),7.63(d,J=8.0 Hz,2H,Ar),7.79(d,J=8.5 Hz,2H,Ar),8.05(d,J=8.5 Hz,2H,Ar)；13C-NMR(125 MHz,CDCl3)：δ 14.07(octyl-CH3),22.62(octyl,CH2),26.88(octyl,CH2),29.18(octyl,CH2),29.23(octyl,CH2),29.59(octyl,CH2),30.37(octyl,CH2),31.76(NH-CO-CH2),34.21(Ar-CO-CH2),39.68(CO-NH-CH2),94.28(Ar,C-I),127.00(Ar,CH),128.78(Ar,CH),129.00(Ar,CH),135.61(Ar,C-CO),138.06(Ar,CH),139.32(Ar,C-Ar),144.69(C-Ar),171.88(NH-CO),198.64(Ar-CO)。
實施例3：製備N-辛基-4-氧代-4-(4'-(三甲基錫烷基)雙苯基-4-基)丁醯胺(N-octyl-4-oxo-4-(4'-(trimethylstannyl)biphenyl-4-yl)butanamide；式3化合物)
含有式2化合物(100 mg，0.2 mmol)的1,4-二氧陸圜(1 mL)中依序加入雙(聯三苯基膦)二氯化鈀(bis(triphenylphosphine)palladium dichloride)(5 mg，0.007 mmol，0.03 eq)及六甲基二錫(hexamethylditin)(237mg，0.15 mL，0.72 mmol，3.6 eq)，前述混 合物加熱至85℃並攪拌15分鐘，TLC(丙酮/CHCl3=1：19)觀察攪拌式2化合物的消耗(R f =0.50)與式3化合物的生成(R f =0.55)。含有式2化合物與移除碘基副產物之混合物經由矽藻土過濾，且濾出物在減壓下濃縮，所獲得的殘餘物使用快速色層析法EtOAc/正己烷=2：8洗滌液純化，以獲得白色膏狀的式3化合物(產率56%，61 mg)。
使用HPLC EtOAc/正己烷=1：1洗滌液分餾獲得分析的樣本，t R =11.0分鐘，嗅覺上有塑膠及酸組合物氣味。式3化合物之分子量、理化特性、光譜、質譜及核磁共振光譜分別表示如下：C27H39NO2Sn[M]+=525.20(41.5%),527.20(75.4%),528.20(44.8%),529.20(100.0%),ESI+Q-TOF MS,[M+H]+=526.0(29%),528.1(71%),529.0(43%),530.1(100%)；HRMS-ESI，計算值：[M+H]+=530.20810,[M+Na]+=552.19005；實際值：[M+H]+=530.20767,[M+Na]+=552.19021；1H-NMR(500 MHz,C6D6)：δ 0.25(t,J=27.5 Hz,9H,Sn-CH3),0.89(t,J=7.5 Hz,3H,aliphatic),1.14-1.20(m,8H,aliphatic),1.25-1.30(m,4H,aliphatic),2.39(t,J=6.5 Hz,2H,aliphatic),3.12-3.17(m,4H,aliphatic),5.11(bs,1H,amide),7.15-7.50(m,6H,Ar),7.95(d,J=8.5Hz,2H,Ar)；13C-NMR(125 MHz,CDCl3)：δ -9.55(Sn-CH3),14.06(octyl-CH3),22.61(octyl,CH2),26.88(octyl,CH2),29.17(octyl,CH2),29.23(octyl,CH2),29.57(octyl,CH2),30.41(octyl,CH2),31.75(NHCO-CH2),34.22(NHCO-CH2),39.66(CONH-CH2),126.70(Ar,CH),127.17(Ar,CH),128.66(Ar,CH),135.23(Ar,C-CO),136.40(Ar,CH),139.62(Ar,C-Sn),142.69(Ar,C-Ar),145.95(Ar,C-Ar),171.97(CO-NH),198.70(Ar-CO)。
實施例4：具非放射性NaI與有機錫式3化合物之預放射性標記測試
將內含有NaI(7.8 mg，0.052 mmol，7.5 eq)及二次蒸餾水(0.5 mL)的小玻璃瓶(50 mL)進行超音波處理2分鐘，加入水的乙酸/30%H2O2(1：1.5 v/v)溶液並進行超音波處理1分鐘，接著加入有機錫式3化合物(4 mg，0.007 mmol，1 eq)於CH2Cl2(2 mL)溶液，此有機錫式3化合物為前驅物，可用作非放射性碘化反應(127I)以及放射性碘化反應(123I)。將混合物進行超音波處理20分鐘，加入驟冷(quenching)試劑Na2S2O3(0.1 M，10 mL)，然後混合物使用額外的H2O(5 mL)及CH2Cl2(10 mL)進行分段處理，收集有機層後注入至中性氧化鋁萃取匣(neutral alumina cartidge)，接著以CH2Cl2及MeOH溶液(2：1,v/v,10 mL)洗滌，之後在減壓下濃縮，殘餘物使用HPLC(Si-100)CH2Cl2：MeOH=99：1洗滌液純化以供分餾作用：非放射性碘標幟產物式2化合物t R =17.2分鐘；脫錫副產物(OFA)t R =18.2分鐘；觀察式2化合物的放射化學標記部分。在減壓之下濃縮，獲得所需的式2化合物(產率50%，2 mg)。
實施例5：製備具放射性之4-(4'-[ 123 I]基雙苯基-4-基)-N-辛基-4-氧代丁醯胺(4-(4'-[ 123 I]iodobiphenyl-4-yl)-N-octyl-4-oxobutanamide；式1化合物)
含Na[123I]I(aq)(75 mCi)的H2O(少於0.6 mL)混合物中依序加入醋酸(3.5 mL)及硫酸(0.06 mL)攪拌1分鐘，並加入比率為2：3(v/v)的冰醋酸及H2O2水溶液(30%wt)混合溶液(3.5 mL)且以強力攪拌約1分鐘。加入於CH2Cl2(1 mL)溶液的有機錫式3化合物(9 mg)，在室溫下強力攪拌20分鐘，加入Na2S2O3(2 M，0.8 m)進行驟冷反應，然後混合物進行分段處理並收集有機層，殘餘水溶液層再進一步以CH2Cl2(1 mL)萃取兩次，以Na2SO4處理結合的有機層接著進行重力過濾，濾出物注入至CH2Cl2-預處理的中性氧化鋁固相萃取匣，接著以 CH2Cl2及MeOH(3 mL，2：1v/v)的混合液洗滌，在減壓下濃縮濾出物，使用HPLC以MeOH/CHCl3=1：99的洗滌液更進一步純化殘餘物，t R =15.0分鐘(放射性)。把多次的注射中分離所得的式1化合物分餾物集中在減壓下濃縮以獲得具有15%放射化學產率的式1化合物(8.1 mCi，衰變修正)。放射性為36 GBq/μmole及放射化學純度為99%。膽管癌腫瘤大鼠注射劑量為0.76 mCi/1 mL和控制組大鼠注射劑量為1.39 mCi/1 mL。
本發明之式2化合物必須經由主要中間產物式3化合物通過金屬-鹵素轉換(haloexchange)才能反應產生式1化合物，所以需要足夠量的式2化合物來製備出中間產物式3化合物。圖1為HPLC純化之式1化合物(15.05分鐘)的圖譜，使用正相管柱(Si-100)，紅線：放射性，藍線：在254 nm的放射線訊號。
實施例6：藉由酵素作受質轉移的比較性抑制的生物檢測(Competitve inhibition of the substrate transfer，CIST) 6.1非放射性抑制測試
以乙醇進行一連串的稀釋至最終使用濃度來製備之抑制劑，用於控制組濃度範圍從10-3到103 μM；SC560及SC58125從10-1到105 μM分別用於IOFA、芬布芬、二氧嘧啶核苷(Uridine)。抑制百分比計算公式為：{1-[(受質的吸收-無酵素的吸收)-(抑制劑的吸收-無酵素的吸收)/(受質的吸收-無酵素的吸收)]}x 100%
使用COX-2專一抑制劑(SC-58125)及COX-2非專一抑制劑(SC-560)作為正對照組。分析結果顯示式2化合物藉由COX-1及COX-2對比色受質的還原為邊緣的競爭性抑制。圖2為在表1化合物的各種濃度時，COX-1(參圖2(A))及COX-2(參圖2(B))催化受質轉移的抑制作用，二氧嘧啶核苷(uridine)為負對照組，SC-560為COX-1專 一抑制劑及SC58125為COX-2專一抑制劑。
6.2放射性結合物測試
實驗在0.2 mL微量小管中進行，為達平衡直立10分鐘。商品化儲存溶液(200 μL)為等分試劑(10 μL)，加入30 μL tris緩衝液(0.1 M，pH=8.0)，COX-1或COX-2各40 μL與EtOH中含有放射追蹤劑式1化合物溶液(濃度範圍從6 μCi/10 μL到70 μCi/10 μL)一起加入tris緩衝液(50)中，全部混合液(100 μL)在25℃溫育15分鐘接著以HPLC純化使用，用於HPLC分析的洗滌狀態為PBS緩衝液(0.1 M，pH=7.3)及設定流速為每分鐘1 mL。
此檢測基礎為以HPLC放射性配體與酵素之間結合與未結合的滯留時間的不同。先以HPLC分析結合產物的混合物，引入從儲存溶液 (200μL)分出的最小量的酵素(10 μL)以確定放射性配體-酵素複合物的形成進行分析，放射性配體式1化合物的非極性可能會限制HPLC極性洗滌液的使用，而以水性的PBC緩衝液不會影響式1化合物的滯留時間。
圖3為式1化合物與(A)COX-1及(B)COX-2的結合實驗所產生的混合物之HPLC圖譜；結合產率=5分鐘波峰的面積/(5分鐘波峰的面積+13.6分鐘波峰的面積)，CPS：每秒計數。圖3(A)式1化合物-COX-1(t R =5.0分鐘)及殘留的式1化合物(t R =13.6分鐘)，結合產率為56%，剩餘率為44%(13.6分鐘)；圖3(B)式1化合物-COX-2(t R =5.0分鐘)及殘留的式1化合物(t R =13.6分鐘)，結合產率為79%，剩餘率為21%(13.6分鐘)。
非放射性測試顯示，於受質轉移之比較性抑制中，式2化合物對二種COX而言無影響力亦不是選擇性的抑制劑，而使用HPLC放射性結合檢測顯示式2化合物對COX-2比COX-1為較優先的選擇，其COX-2比COX-1親和力比為1.4：1(76%比56%)。
實施例7：小動物CT/SPECT影像研究
膽管癌(Cholangiocarcionma，CCA)大鼠以式1化合物(0.76 mCi/1 mL)尾巴靜脈注射，1個小時單光子放射斷層掃瞄(Single Photon Emission Computer Tomography，SPECT)影像數據(如圖4(A))；正常大鼠注射式1化合物(1.39 mCi/1 mL)之後成像(如圖4(B))，此係於核能研究中心進行研究，從影像研究的原始數據再進一步以臨床前多樣態數據分析軟體第3.2版分析(Preclinical Multi-Modality Data Analysis software；PMOD Technologies Ltd,Zurich,Switzerland)。
兩次注射藉由加入不同體積溶劑作調整以達到相同專一活性，而正常大鼠接收到過量的專一活性。投與式1化合物30分鐘後在正常大鼠中放射性的分布顯示為均勻的影像，主要是分佈在肝臟部份在心臟。相較之下，在CCA腫瘤大鼠的肝臟中有放射性不均勻的堆積，特別是在大鼠的影像中顯示照片中相當於指標所指示的熱點(hot-spot)的區域為圖4(B)右下角白點(相同大鼠死亡後所拍攝)，根據臨床上的鑑定，白點部份表示有癌症病灶。將兩隻大鼠的肝臟樣本以免疫染色對COX-1及COX-2做進一部分析，明顯地只在CCA腫瘤大鼠中發現COX-1及COX-2呈陽性反應，正常大數中沒有發現。因此，說明癌症與腫瘤發展有關。部份證實為表示有癌症病灶。
圖4(A)正常大鼠的SPECT/電腦斷層掃描(Computerized tomography，CT)影像為使用式1化合物注射後從10分鐘到30分鐘的平均動態影像。注射劑量：1.39 mCi/1mL，LV：肝臟。圖4(B)為CCA大鼠(服用TAA 24週)的SPECT/CT影像為使用式1化合物注射後從10分鐘到30分鐘的平均動態影像。注射劑量：0.76 mCi/1mL，LV：肝臟，H：心臟，T：腫瘤。放射性分佈表示腫瘤的存在，在SPECT影像中指示兩個熱點表示腫瘤病灶，其亦相當於右下角的照片中觀察到指標所指示的白點。圖5為免疫組織染色法之影像：(A)正常大鼠的正常膽管的COX-1免疫染色呈陰性反應(x400)；(B)膽管癌大鼠的COX-1免疫染色呈陽性反應(x400)；(C)正常大鼠的正常膽管的COX2免疫染色呈陰性反應(x400)；(D)膽管癌大鼠的COX-2免疫染色呈陽性反應(x400)。
綜上所述，本發明提供一種製備式1化合物的方法，此化合物具有15%的放射性化學產率、37 GBq/μmol的專一活性。更進一步使用HPLC以膠體過濾管柱進行式1化合物對COX-1及COX-2的結合親合力測試，結果顯示式1化合物對COX-2結合親和力較好。藉由酵素作受質轉移的 比較性抑制的生物檢測(CIST)顯示出與芬布芬相同的邊緣活性(marginal bioactivity)，放射性結合特性造成後續活體內的影像產生，目前的CIST測試無法評估用於這個交互作用可能存在的COX的結合位點。
結果從在CCA腫瘤大鼠非侵略性的式1化合物的SPECT影像及死亡後的照片兩者顯示熱點與癌症病灶的白點呈正相關；且免疫組織染色法之影像，在CCA腫瘤大鼠肝臟中COX酵素的表現量明顯比正常大鼠高，式1化合物的放射性堆積與腫瘤有關的特點說明這些影像可以用在腫瘤的診斷上，且由於組織學染色顯示COX-1及COX-2酵素存在與發炎有關，本發明中熱點可顯示COX酵素的主要活性，故熱點為目標器官之發炎區域。基於式1化合物對COX-2的結合親和力推測在CCA腫瘤大鼠肝臟中的腫瘤病灶與發炎有關連。
因此，本發明提供一種利用式1化合物評估環氧合酶(COX)分佈的方法，以測定環氧合酶的酵素活性及分佈情形。本發明可應用於單光子放射斷層掃描，藉由環氧合酶分布與腫瘤發生的正相關性，可用以評估腫瘤發生及轉移，以及可檢測腫瘤病灶早期的發炎現象，本案化合物為非類固醇抗發炎化合物，具有製程簡單，成本低之優點等用途。
雖然本發明已以實施例揭露如上，然其並非用以限定本發明，任何所屬技術領域中具有通常知識者，在不脫離本發明之精神和範圍內，當可作些許之更動與潤飾，故本發明之保護範圍當事後付之申請專利範圍所界定者為準。
圖1、HPLC純化之式1化合物(15.05分鐘)的圖譜，使用正相管柱(Si-100)，紅線：放射性，藍線：在254 nm的放射線訊號。
圖2、為藉由COX-1(A)及COX-2(B)在各種濃度化合物存在時催化轉移的抑制作用，二氧嘧啶核苷(uridine)為負對照組，SC-560為COX-1專一抑制劑、及SC58125為COX-2專一抑制劑。
圖3、為式1化合物與(A)COX-1及(B)COX-2的結合所產生的混合物之HPLC圖譜。
圖4(A)、正常大鼠的SPECT/CT影像為使用式1化合物注射後從10分鐘到30分鐘的平均動態影像。注射劑量：1.39 mCi/1mL，LV：肝臟。
圖4(B)、為CCA大鼠(服用TAA 24週)的SPECT/CT影像為使用式1化合物注射後從10分鐘到30分鐘的平均動態影像。注射劑量：0.76 mCi/1mL，LV：肝臟，H：心臟，T：腫瘤。
圖5、免疫組織染色法之影像：(A)正常大鼠的正常膽管的COX-1免疫染色呈陰性反應(x400)；(B)膽管癌大鼠的COX-1免疫染色呈陽性反應(x400)；(C)正常大鼠的正常膽管的COX-2免疫染色呈陰性反應(x400)；(D)膽管癌大鼠的COX-2免疫染色呈陽性反應(x400)。

Claims (10)

  1. 一種製備式1化合物的方法， 其步驟包含：(a)提供一具有式3化合物；以及 (b)將該式3化合物與[123I]標記碘化試劑及過氧化氫反應生成式1化合物；其中，該式3化合物是由式2化合物 與雙三苯基膦二氯化鈀(bis(triphenylphosphine)palladium dichloride)及一錫烷基化合物反應生成。
  2. 如申請專利範圍第1項所述之方法，其中該錫烷基化合物係六甲基 二錫(Sn2(CH3)6)。
  3. 如申請專利範圍第1項所述之方法，其中該[123I]標記碘化試劑係[123I]標記碘化鈉。
  4. 如申請專利範圍第1項所述之方法，其中該式2化合物係由式4化合物 與苯并三氮唑-基-N,N,N',N'-四甲基脲六氟磷酸鹽(O-benzotriazole-yl-N,N,N',N'-tetramethyl-uronium-hexafluoro-phosphate)、二異丙基乙胺(diisopropyl ethylamine)及1-胺基辛烷(1-amine octane)反應生成。
  5. 如申請專利範圍第1項所述之方法，其中該式1化合物係作為影像成像系統之追蹤劑。
  6. 一種式1化合物作為影像成像系統之追蹤劑以檢測腫瘤早期發炎之用途，該化合物係與環氧合酶COX-1或COX-2結合產生一信號。
  7. 如申請專利範圍第6項所述之用途，其中該影像成像系統係為單光子放射電腦斷層掃描(SPECT)。
  8. 如申請專利範圍第6項所述之用途，其中該腫瘤為肝腫瘤。
  9. 如申請專利範圍第6項所述之用途，其中該信號為一放射線訊號之熱點(hot spot)。
  10. 如申請專利範圍第9項所述之用途，其中該放射線訊號之熱點與該腫瘤病灶嚴重度呈正相關。
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