TW201313898A - 同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 - Google Patents
同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 Download PDFInfo
- Publication number
- TW201313898A TW201313898A TW100135437A TW100135437A TW201313898A TW 201313898 A TW201313898 A TW 201313898A TW 100135437 A TW100135437 A TW 100135437A TW 100135437 A TW100135437 A TW 100135437A TW 201313898 A TW201313898 A TW 201313898A
- Authority
- TW
- Taiwan
- Prior art keywords
- sugar cane
- cellulose
- sugarcane
- fiber
- mesh
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本發明係有關於一種同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法,係將經榨汁後的甘蔗纖維洗清、瀝乾後,浸泡於逆滲透水8-12小時,再予以瀝乾,接著將該甘蔗纖維置於烘箱中烘至完全乾燥,乾燥後之甘蔗纖維素以研磨機磨碎,並以篩網過篩,取得適當顆粒大小之甘蔗纖維素,將取得之甘蔗纖維素顆粒於MYI培養基滅菌後進行芽孢桿菌培養;據此,即能增加芽孢桿菌之脂胜肽的伊枯草菌素A【iturin A】與表面素【surfactin】的產量。
Description
本發明係有關於一種同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法,尤其是指一種利用經榨汁後的甘蔗纖維於清洗、乾燥、研磨等處理之後,再進行芽孢桿菌之接種,以達到增加其脂胜肽的伊枯草菌素A【iturin A】與表面素【surfactin】之產量的目的。
查,液化澱粉芽孢桿菌對植物病害有不錯的抑制效果,且其產生的表面素【surfactin,參第一圖】及伊枯草菌素A【iturin,參第二圖】等二次代謝產物-脂胜肽化合物(抗生物質)也具有促進其抑制真菌及細菌的作用。此外,近來研究發現這些脂胜肽化合物不只在抑制病源菌生長上扮演了”殺手”及”競爭者”的角色,也扮演了促進根部菌落的生長以及增強寄主抵抗力的角色(Ongena and Jacques﹐2008)。
芽孢桿菌【Bacillus】的脂胜肽化合物生合成途徑是屬於非核醣體胜肽合成路徑【nonribosomal peptide synthase,NRSP】;其脂胜肽化合物依據其氨基酸序列分成:伊枯草菌素【iturins】以及表面素【surfactins】;其中,表面素【surfactins】具有很強的表面活性並具有抗細菌及抗病毒的效果,而伊枯草菌素【iturins】則是強力的抗真菌劑。脂胜肽化合物也因為所具有的表面活性劑的特性,因此被認為可應用於生物科技及生物製藥上。
這些脂胜肽化合物(抗生物質)產生於微生物生長週期的靜止期【stationary phase】且生長速率下降後開始產生,但若是處於環境壓力下,為了競爭以取得生長優勢便會在進入到靜止期前就開始合成(林﹐1999),且表面素【surfactins】合成於細胞大量增長的指數生長期【exponential phase】到靜止期之間,伊枯草菌素【iturins】及豐原素【fengycin】則合成於靜止期的後期(Raaijmakers et al﹒﹐2010),此外孢子的形成基因Spo0A也會影響並調節胜肽類抗生物質的合成(Marahiel et al﹒﹐1993)。脂胜肽化合物的生化合成有部分是僅限於某特定的芽胞桿菌種類【Bacillus species】,像是伊枯草菌素A僅限於枯草桿菌【B﹒subtilis】、液化澱粉芽孢桿菌【B﹒amyloliquefaciens】及短小芽孢杆菌【B﹒pumilus】;表面素及豐原素則產於較多不同的物種【species】,如芽孢乳酸菌【B﹒coagulans】(Huszcza and Burczyk﹐2006)、地衣桿菌【B﹒licheniformis】(Li et al﹒﹐2008)、巨大芽孢桿菌【B.megaterium】(Pueyo et al﹒﹐2009)、仙人掌桿菌【B﹒cereus】(Tsuge et al﹒﹐1999)、蘇力菌【B﹒thuringiensis】(Kim et al﹒﹐2004;Raaijmakers et al﹒﹐2010)等等。
其中,表面素係由七個胜肽連接至一個含有12-16個碳的β—羥基【β-hydroxy】脂肪酸的環狀內脂環結構(如第一圖),其為強效的生物界面活性劑,並具有良好的乳化性及起泡性,不易被蛋白酶水解,並能穩定存在的環狀酯胜肽,可以和細胞磷脂層做緊密的結合,且干擾細胞膜的完整性,使離子孔洞形成,而藉由滲透壓失衡達到抑菌效果,此外,並具有溶血、抗病毒及抗菌活性,其作用效果和劑量成正比(Ongena and Jacques﹐2008)。其中,伊枯草菌素A【iturins A】可與表面素【surfactins】形協同作用,伊枯草菌素A【iturins A】吸附並滲透到表面素【surfactins】分子膜內,二者之間相行交互作用,更可提高抗真菌的效果(曾﹐2009)。生物體上不同的固醇物組成會使生物胞膜對表面素【surfactins】的易感性近而有所不同,有部分存在磷脂層的固醇分子會減弱表面素【surfactins】所造成結構不穩定的影響,也因為如此,所以表面素【surfactins】對於真菌沒有顯著的毒性(Carrillo et al﹒﹐2003)。
此外微生物為了找到更多的營養源,會在植物根部間以鞭毛做移動,此時表面素【surfactitn】的生物界面活性則可幫助細菌散布(Daniels et al﹒﹐2004);並有研究指出鉀離子可刺激表面素分泌,其中表面素【surfacitn】對於枯草菌菌株6051【B﹒subtilis strain 6051】的移動上扮演了重要的角色,由使用突變株的菌種實驗中可以得知,如果沒有生物界面活性劑【biosurfactants】的產生,那微生物就不會有移動現象(Kinsinger et al﹒﹐2003),表面素【surfactins】也可幫助修飾微生物表面疏水性質,使之容易附著至固形物表面,然而修飾效果會因為微生物表面疏水性質的不同以及脂胜肽物質的種類及濃度(Ahimou et al﹒﹐2000)而有所不同。在一些研究當中也證實表面素【surfactins】和生物膜的形成有關,若去除芽孢桿菌的表面素【surfactins】表現基因便會使之無法形成健全的生物膜、菌落生長速度會下降及降低對楊桃細菌性葉斑病【Pseudomonas syringae】的病害抗性。
伊枯草菌素【Iturin】係由七個胜肽相互連接至一個含有14-17個碳的β-羥基【β-hydroxy】脂肪酸【參第二圖】,伊枯草菌素A、C【iturin A、C】、bacillomycin D、F、L【芽孢桿菌黴素D、F、L】及mycosubtilin【抗霉枯草菌素】為主要的6種變異構型,分子量約介於1044-1081之間(Maget-Dana and Peypoux﹐1994),由環胜肽【cyclic peptide】所組成的親水端跟β-胺基酸【β-amino acid】所組成的疏水端,使伊枯草菌素【iturins】具有兩性特性,也屬生物界面活性劑,其伊枯草菌素【iturins】具有很強的溶血特性,在體外試驗當中具有很強的抗真菌特性可以對抗大部分的酵母菌及真菌,但抗菌效果則有限且無法抗病毒(Moyne et al﹒﹐2001;Hiradate et al﹒﹐2002),其主要作用機制為與病原真菌胞膜的固醇分子形成複合體,使離子傳導孔隙增大鉀離子流出,進而導致菌絲分解並抑制孢子發芽而達防治效果。且由枯草桿菌【Bacillus subtilis RB14】所產的伊枯草菌素A【iturins A】可對抗由立枯絲核菌【Rhizoctonia solani】所導致的蕃茄猝倒病(Asaka and Shoda﹐1996)。
目前可透過有機氮的添加促進伊枯草菌素A【iturins A】的產量,其中又以大豆分離蛋白效果最佳;其中,1 g大豆分離蛋白的添加可使伊枯草菌素A【iturins A】產量達5591μg(Mizumoto and Shoda﹐2007;曾﹐2009)。
今,發明人即是鑒於伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】具有促進抑制真菌、細菌及病毒的作用,且可促進根部菌落的生長以及增強寄主的抵抗力,而能被廣泛應用於農業病害、生物科技及生物製藥上,因此有增加脂胜肽之伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的必要性。
即本發明之主要目的,係為提供一種能同時增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的生產方法。
本發明同時增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的生產方法,至少包括以下步驟:
(A)先將甘蔗榨汁,並取其經榨汁後的甘蔗纖維;
(B)將選取的甘蔗纖維洗清並瀝乾;
(C)將瀝乾的甘蔗纖維於逆滲透水中浸泡一預設時間,再予以瀝乾;
(D)使再次瀝乾的甘蔗纖維乾燥;
(E)將乾燥後之甘蔗纖維磨碎並過篩,以取得預設顆粒大小之甘蔗纖維素;
(F)將MYI培養基滅菌,且將取得之甘蔗纖維素顆粒於該MYI培養基中進行芽孢桿菌培養。
依此步驟,即能增加芽孢桿菌之脂胜肽的伊枯草菌素A【iturin A】與表面素【surfactin】的產量。
為令本發明所運用之技術內容、發明目的及其達成之功效有更完整且清楚的揭露,茲於下詳細說明之,並請一併參閱所揭之圖式及圖號:
請參第一圖,為本發明同時增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的生產方法流程步驟圖,其步驟為:
(A)將甘蔗(Saccharum officinarum)原汁液榨出以得組成分含有38~45%(w/w)纖維素、20~28%(w/w)半纖維素以及15~25%(w/w)木質素的甘蔗纖維;
(B)將經步驟(A)後所取得之甘蔗纖維以清水洗清,其清洗之次數至少2次,並將清洗後之甘蔗纖維瀝乾;
(C)將經步驟(B)清洗與瀝乾後的甘蔗纖維浸泡於逆滲透水【RO】中至少一預設時間,再予以瀝乾;其中浸泡之時間為8-12小時;
(D)接著將經過步驟(C)浸泡及瀝乾處理程序後之甘蔗纖維予以乾燥;其乾燥的方式是將甘蔗纖維置於60~85℃之烘箱中烘至完全乾燥之狀態;
(E)將經過步驟(D)之乾燥處理後的甘蔗纖維磨碎且過篩,以取得預設顆粒大小之甘蔗纖維素;其中,甘蔗纖維是以研磨機進行磨碎作業,而研磨後不同顆粒大小之纖維素以篩網孔徑大小分布為20網目【mesh】(篩網孔徑大小0﹒850mm)~40網目【mesh】(篩網孔徑大小0﹒425mm)篩網過篩,以得到粒徑最大為0﹒850mm之甘蔗纖維素;
(F)將MYI培養基滅菌,且將取得之甘蔗纖維素顆粒於該MYI培養基中進行芽孢桿菌培養;其中,甘蔗纖維素的添加量為0﹒5~2%(w/w)。且該MYI培養基是包含:0﹒1~1﹒5%(w/w)酵母粉【yeast powder】、0﹒1~1﹒0%酵母抽出物【yeast extract】、0﹒5~1﹒5%(w/w)糖蜜【molasses】、0﹒1~0﹒5%(w/w)大豆分離蛋白【isolated soy protein】、無機鹽類【mineral salts】;其中,該無機鹽類是由1﹒5mM的MgSO4.7H2O【硫酸鎂】混合0﹒75mM的KH2PO4【磷酸二氫鉀】而成。MYI培養基的建立是用來生產高濃度孢子>1010,並且其具有較高的抗紫外線活性。
據此,依上述步驟實施,即能增加芽孢桿菌之脂胜肽的伊枯草菌素A【iturin A】與表面素【surfactin】的產量。
其中,在步驟(F)將甘蔗纖維素顆粒於該MYI培養基中進行芽孢桿菌培養前,須先將芽孢桿菌之菌株以NA培養基活化20-24小時後,接著轉以LB培養基活化20-24小時後,才將之做為種源【液態種源】,並以3%(v/v)為接種濃度。
而就液化澱粉芽孢桿菌之菌株的菌體保存與種源培養方法進一步說明如下:
<菌體保存>
將農藥所提供之菌種進行菌種保存,以接種環挑選單一菌落接種至50ml的LB液態培養基中,置於30℃震盪培養箱,於200rpm轉速下培養24小時以活化菌株,取4ml菌液與1ml已滅菌的95%甘油均勻混合,取100μl分裝至微量離心管中,並儲存於-70℃冰箱中保存以供後續實驗使用。
<種源培養方法>
將上述保存之菌液回溫後,用接種環沾取菌液接種至LB培養液【Luria-Bertani】固態斜面培養基,放置於直立式恆溫培養箱30℃培養活化。
將LB培養液【Luria-Bertani】及洋菜【Agar】溶於純水中,以微波加熱使粉末完全溶解,並分裝至玻璃試管中,使用硬橡皮塞(中間有直徑4mm孔洞,孔洞中以棉花填滿)封住瓶口,將試管置入滅菌釜中以121℃、1﹒2kg/cm2滅菌15分鐘,滅菌後將試管口墊高1cm使液面傾斜;待培養基冷卻凝固後,以接種環勾取菌株由試管底部培養基以Z字型往上方畫,接種完成後置於培養箱30℃培養24小時,以成固態種源。
將斜面培養基上的菌落,以接種環挑選單一菌落並接種至LB液態培養基當中,置於30℃震盪培養箱以200rpm培養20-24小時活化做為液態種源。
以下再透過實際之試驗,證實本發明所據以訴求之生產方法確實能達到增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的效果:
<選用菌種>
實施例一:液態澱粉芽孢桿菌【Bacillus amyloliquefaciens】BCRC 910395(DSM 21836)
實施例二:液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910498
實施例三:液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910203
實施例四:枯草桿菌S3 64670【Hsieh﹐F﹒C﹒﹐Lin﹐T﹒C﹒﹐Meng﹐M﹒*﹐and Kao﹐S﹒S﹒*2008﹒Comparing methods for identifying Bacillus Strains capable of producing the antifungal lipopeptide iturin A﹒Current Microbiology 56:1-5﹒;Hsieh﹐F﹒C﹒﹐Li﹐M﹒C﹒﹐Lin﹐T﹒C﹒﹐andKao﹐S﹒S﹒*2004﹒Rapid detection and characterization of surfactin-producing Bacillus subtilis and closely related species based on PCR﹒Current Microbiology 49:186-191﹒】
<二次代謝物分析方法>
1、萃取
取10ml發酵液以9000rpm、4℃離心20分鐘後,使之分成上清液與菌體兩部份,取上清液並以5N HCl滴定至pH值為2﹒0±0﹒05,此時原本澄清的液體會成混濁狀,再以9000rpm、4℃離心20分鐘後,取底部之固形物,加入1ml甲醇溶解固形物,以9000rpm離心10分鐘取上清液,如此即可得二次代謝物粗萃液,將此粗萃液以0﹒45μm過濾膜過濾後便可以高性能液相層析儀【HPLC】進行分析。
2、高性能液相層析儀分析
於高效能液相層析管柱中,以乙腈【acetontril】:10mM醋酸銨【ammonium acetate】=3:2(v/v)為移動相【Mobile phase】,流速為0﹒8mL/min,在220與280nm波長的條件下進行HPLC分析,並以200至360nm的波長做全波長掃描,再以PDA軟體進行分析鑑定。標準品配置則是將10μg伊枯草菌素A【iturins A】及10μg表面素【surfactins】分別溶於1mL甲醇【methanol】中,並稀釋成不同的濃度,在220與280nm波長的條件下以HPLC分析並以200至360nm的波長掃描。
<實施例一>液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)培養基中添加不同顆粒大小之纖維素
將榨汁後具有組成分含有42%纖維素、25%半纖維素以及20%木質素的甘蔗纖維以清水清洗2次,瀝亁後,再以逆滲透水浸泡8-12小時,放置於65℃烘箱烘至完全乾燥。乾燥後之甘蔗纖維以研磨機磨碎,研磨後之甘蔗纖維素以不同孔徑大小之篩網過篩,取得不同顆粒大小之甘蔗纖維素。添加1%不同顆粒大小之甘蔗纖維素於MYI培養基滅菌後進行液化澱粉芽孢桿菌培養。其中,所添加之甘蔗纖維素的顆粒大小分別為4-12mesh(篩網孔徑4﹒75-1﹒70mm)、12-20mesh(篩網孔徑1﹒70-0﹒850mm)、20-40mesh(篩網孔徑0﹒850-0﹒425mm)、40-100mesh(篩網孔徑0﹒425-0﹒150mm)及100mesh以上(篩網孔徑0﹒150mm以上)。
請參第四、五圖為顯示本實施例一液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加1%不同顆粒大小甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】產量(濃度)時間曲線圖,由該第四、五圖可知,在液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)中添加1%不同顆粒大小甘蔗纖維素後,確實能顯著提高液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)二次代謝產物中脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】的產量,其中並以添加顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素有較高的代謝物產量,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】的濃度分別從50mg/L與780mg/L提升至175mg/L與1550mg/L。
<實施例二>液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)培養基中添加不同濃度之20-40mesh甘蔗纖維素
由<實施例一>中得到添加20-40mesh顆粒大小之甘蔗纖維素可使液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)有較高的代謝物產量;而本實施例即是進一針對添加20-40mesh顆粒大小之甘蔗纖維素,但添加濃度不同進行觀察二次代謝產物中脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】的產量(濃度)。在本實驗當中,添加於MYI液態培養基中顆粒大小為20-40mesh的甘蔗纖維素的添加濃度分別為0﹒5%、1%、1﹒5%及2%,培養過程中發酵液的pH值會隨著培養時間的增加而上升,在菌數量上可觀察到隨培養時間增加各組的菌數量是持續上升的,添加甘蔗纖維素其pH值與菌數相較於未添加纖維素組並無顯著的差異。
請參第六、七圖為顯示本實施例二液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加不同濃度顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】產量(濃度)時間曲線圖;由該第六、七圖可知,培養時間至第9天其添加2%濃度之20-40mesh的甘蔗纖維素可得液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)代謝物產量最高,其伊枯草菌素A【iturins A】之產量為254﹒31±25﹒35mg/L,表面素【surfactins】之產量為1843﹒24±370﹒02mg/L,各為未添加甘蔗纖維素組的4﹒6及2﹒1倍產量。
<實施例三>液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910498培養基中添加2%濃度之20-40mesh甘蔗纖維素
請參第八、九圖,其為顯示本實施例三液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7及9天後,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】產量(濃度)柱形圖。由該第八、九圖可知,培養時間至第7天及第9天其添加2%濃度之20-40mesh的甘蔗纖維素可得液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498代謝物伊枯草菌素A【iturins A】及表面素【surfactins】之產量均較未添加甘蔗纖維素之標準品高。
<實施例四>液態澱粉芽孢桿菌BCRC 910203培養基中添加2%濃度之20-40mesh甘蔗纖維素
請參第十、十一圖,其為顯示本實施例四液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7及9天後,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】產量(濃度)柱形圖。由該第十、十一圖可知,培養時間至第7天及第9天其添加2%濃度之20-40mesh的甘蔗纖維素可得液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910203代謝物伊枯草菌素A【iturins A】及表面素【surfactins】之產量均較未添加甘蔗纖維素之標準品高。
<實施例五>
枯草桿
菌S3 64670培養基中添加2%濃度之20-40mesh甘蔗纖維素
請參第十二、十三圖,其為顯示本實施例五枯草桿菌S3 64670添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7及9天後,其伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】產量(濃度)柱形圖。由該第十二、十三圖可知,培養時間至第7天及第9天其添加2%濃度之20-40mesh的甘蔗纖維素可得枯草桿菌S3 64670代謝物伊枯草菌素A【iturins A】及表面素【surfactins】之產量均較未添加甘蔗纖維素之標準品高。
以上所舉者僅係本發明之部份實施例,並非用以限制本發明,致依本發明之創意精神及特徵,稍加變化修飾而成者,亦應包括在本專利範圍之內。
綜上所述,本發明實施例確能達到所預期之使用功效,又其所揭露之具體技術手段,不僅未曾見諸於同類產品中,亦未曾公開於申請前,誠已完全符合專利法之規定與要求,爰依法提出發明專利之申請,懇請惠予審查,並賜准專利,則實感德便。
無
第一圖:表面素結構圖
第二圖:伊枯草菌素A結構圖
第三圖:本發明之步驟流程圖
第四圖:為顯示本實施例一液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加1%不同顆粒大小甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其伊枯草菌素A產量(濃度)時間曲線圖
第五圖:為顯示本實施例一液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加1%不同顆粒大小甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其表面素產量(濃度)時間曲線圖
第六圖:為顯示本實施例二液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加不同濃度顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其伊枯草菌素A產量(濃度)時間曲線圖
第七圖:為顯示本實施例二液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910395(DSM 21836)添加不同濃度顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養,其表面素產量(濃度)時間曲線圖
第八圖:其為顯示本實施例三液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7及9天後,其伊枯草菌素A產量(濃度)柱形圖
第九圖:其為顯示本實施例三液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7及9天後,其表面素產量(濃度)柱形圖
第十圖:其為顯示本實施例四液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7天後,其伊枯草菌素A與表面素產量(濃度)柱形圖
第十一圖:其為顯示本實施例四液化澱粉芽孢桿菌BCRC 910498添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養9天後,其伊枯草菌素A與表面素產量(濃度)柱形圖
第十二圖:其為顯示本實施例五枯草桿菌S3 64670添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養7天後,其伊枯草菌素A與表面素產量(濃度)柱形圖
第十三圖:其為顯示本實施例五枯草桿菌S3 64670添加2%濃度、顆粒大小為20-40mesh之甘蔗纖維素後經MYI培養基培養9天後,其伊枯草菌素A與表面素產量(濃度)柱形圖
無
Claims (10)
- 一種同時增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的生產方法,該方法為於MYI培養基中進行芽孢桿菌培養時,加入組成分含有38~45%(w/w)纖維素、20~28%(w/w)半纖維素以及15~25%(w/w)木質素的甘蔗纖維於MYI培養基中。
- 一種同時增加芽孢桿菌之脂胜肽伊枯草菌素A【iturins A】與表面素【surfactins】之產量的生產方法,該方法至少包括以下步驟:
(A)將甘蔗(Saccharum officinarum)原汁液榨出以得組成分含有38~45% (w/w)纖維素、20~28%(w/w)半纖維素以及15~25%(w/w)木質素的甘蔗纖維;
(B)將經步驟(A)所得之甘蔗纖維以清水洗清並瀝乾;
(C)將經步驟(B)的甘蔗纖維浸泡於溶液中,再予以瀝乾;
(D)將經過步驟(C)之甘蔗纖維予以乾燥;
(E)將經過步驟(D)之甘蔗纖維磨碎且過篩,以得到顆粒狀之甘蔗纖維素;
(F)將MYI培養基滅菌,且將經過步驟(E)取得之甘蔗纖維素添加於該MYI培養基中進行芽孢桿菌培養。 - 如申請專利範圍第2項所述之方法,其中於步驟(B)中,該甘蔗纖維清洗之次數至少2次。
- 如申請專利範圍第2項所述之方法,其中於步驟(C),該甘蔗纖維是浸泡於逆滲透水【RO】中。
- 如申請專利範圍第4項所述之方法,其中於步驟(C),該甘蔗纖維浸泡的時間為8-12小時。
- 如申請專利範圍第2項所述之方法,其中於步驟(D),該甘蔗纖維是置於60~85℃之烘箱中烘至完全乾燥。
- 如申請專利範圍第2項所述之方法,其中於步驟(E),該甘蔗纖維研磨後所得之甘蔗纖維素的粒徑為20網目【mesh】(篩網孔徑大小0﹒850mm)~40網目【mesh】(篩網孔徑大小0﹒425mm)。
- 如申請專利範圍第2項所述之方法,其中於步驟(F),甘蔗纖維素的添加量為0﹒5~2%。
- 如申請專利範圍第1或2項所述之方法,其中,該MYI培養基是包含:0﹒1~1﹒5%(w/w)酵母粉【yeast powder】、0﹒1~1﹒0%酵母抽出物【yeast extract】、0﹒5~1﹒5%(w/w)糖蜜【molasses】、0﹒1~0﹒5%(w/w)大豆分離蛋白【isolated soy protein】及無機鹽類【mineral salts】。
- 如申請專利範圍第8項所述之方法,其中,該無機鹽類是由1﹒5mM的MgSO4.7H2O【硫酸鎂】混合0﹒75mM的KH2PO4【磷酸二氫鉀】而成。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
TW100135437A TW201313898A (zh) | 2011-09-30 | 2011-09-30 | 同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
TW100135437A TW201313898A (zh) | 2011-09-30 | 2011-09-30 | 同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
TW201313898A true TW201313898A (zh) | 2013-04-01 |
Family
ID=48802354
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
TW100135437A TW201313898A (zh) | 2011-09-30 | 2011-09-30 | 同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
TW (1) | TW201313898A (zh) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114807274A (zh) * | 2022-04-11 | 2022-07-29 | 海南康植肽生物科技有限公司 | 一种杆菌霉素d的高效制备方法及应用 |
-
2011
- 2011-09-30 TW TW100135437A patent/TW201313898A/zh unknown
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN114807274A (zh) * | 2022-04-11 | 2022-07-29 | 海南康植肽生物科技有限公司 | 一种杆菌霉素d的高效制备方法及应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP2764126B1 (fr) | Biosurfactants produite par une nouvelle souche de bacillus subtilis, composition les comprenant, procede d'obtention et application | |
US10757946B2 (en) | Microbial inoculant formulations | |
Jeong et al. | Isolation and characterization of metabolites from Bacillus licheniformis MH48 with antifungal activity against plant pathogens | |
Song et al. | Antifungal activity of the lipopeptides produced by Bacillus amyloliquefaciens anti-CA against Candida albicans isolated from clinic | |
SK13062001A3 (sk) | Biologicky čistá kultúra, prostriedok, izolovaný metabolit, supernatant, čiastočne vyčistená frakcia, vo vode rozpustná látka, spôsob produkcie fungicídneho supernatantu, spôsob čiastočného vyčistenia supernatantu, spôsob zvýšenia insekticídnej aktivity | |
CN111019866B (zh) | 一种普洱茶树叶片内生芽孢杆菌及其应用 | |
CN102505002A (zh) | 一种用于烤烟快速增香的微生物菌株及烟叶发酵的应用 | |
CN110791448B (zh) | 一株甘蔗内生芽孢杆菌及其应用 | |
Nartey et al. | Antagonistic and plant growth promotion effects of Mucor moelleri, a potential biocontrol agent | |
Song et al. | Biological control of gray mold of tomato by Bacillus altitudinis B1-15 | |
CN108277186B (zh) | 一种作为农药表面活性剂的地衣芽孢杆菌及其应用 | |
WO2024104076A1 (zh) | 具有高生物防腐性能的瑞士乳杆菌发酵产物及其制备方法和应用 | |
KR101756683B1 (ko) | 바실러스 아밀로리퀘파시엔스 균주, 이를 포함하는 미생물 제제 및 이를 포함하는 생물 농약 | |
CN102492639B (zh) | 利用rna聚合酶突变提高环脂肽类抗生素产量的突变体及制法和应用 | |
WO2009037399A2 (fr) | Procede de production de spores et de metabolites provenant de microorganismes d'origine fongique et leurs utilisations | |
TW201313898A (zh) | 同時增加芽孢桿菌之脂胜肽iturin A與surfactin產量的生產方法 | |
CN108130278B (zh) | 马齿苋菌核青霉及其在制备抗青枯菌药物中的应用 | |
CN105218670B (zh) | 一种来源于坚强芽孢杆菌的发酵产物免疫蛋白及其制备工艺 | |
CN101168731A (zh) | 一种甲基对硫磷降解菌及其酶制剂的制备方法 | |
CN105779349B (zh) | 一种溶解池塘优势甲藻—锥状斯氏藻的蜡样芽孢杆菌菌株jzbc1及其应用 | |
Chen et al. | Enhanced survival of fluidized bed-dried microencapsulated Saccharomyces cerevisiae cells in the presence of Hongqu rice distiller's grain peptides | |
CN112608369A (zh) | 一种具有抑菌活性的细菌素及其生产方法及用途 | |
Siddiqui | Effects of cell suspension and cell· free culture filtrate of Pseudomonas aeruginosa in the control of root rot-root kont disease complex of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) | |
Schmaltz et al. | Biomolecules in modern and sustainable agriculture | |
Shanmugaraju et al. | Partial purification and characterization of Anti-MRSA peptide from marine Pseudomonas aeruginosa |