SU597235A1 - Method of producing erythrocytic plague diagnosticum - Google Patents
Method of producing erythrocytic plague diagnosticum Download PDFInfo
- Publication number
- SU597235A1 SU597235A1 SU762338652A SU2338652A SU597235A1 SU 597235 A1 SU597235 A1 SU 597235A1 SU 762338652 A SU762338652 A SU 762338652A SU 2338652 A SU2338652 A SU 2338652A SU 597235 A1 SU597235 A1 SU 597235A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- plague
- diagnosticum
- producing
- erythrocytic
- blood cells
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Description
Изобретение относитс к медицин ской микробиологии, в частности к спо собам получени эритроцитарных диагностикумов дл индикации, идентификации возбудителей чумного микроба и серологической диагностики вызываемых ими заболеваний.The invention relates to medical microbiology, in particular, to methods for obtaining erythrocyte diagnostics for indication, identification of pathogens of the plague microbe and serological diagnosis of the diseases caused by them.
Известен способ приготовлени анти генного эритроцитарного диагностикума, дл получени которого в качестве сенситина дл эритроцитов примен ют фракцию 1 Бейкера (капсульный антиген ) без предварительной ее актива ции.A known method of preparing an antigen erythrocyte diagnosticum, for which Baker fraction 1 (capsular antigen) is used as sensitin for erythrocytes without its prior activation.
Однако с помощью этого диагностикума удаетс идентифицировать только капсульные (типичные) штаммы чумного микроба.However, using this diagnosticum only capsular (typical) strains of the plague microbe can be identified.
Целью изобретени вл етс получение эритроцитарного диагностикума, ко торый позвол ет идентифицировать как капсульные (типичные), так и бескапThe aim of the invention is to obtain an erythrocyte diagnosticum, which makes it possible to identify both capsular (typical) and capsuleless
сульнью (атипичные) штаммы чумного микробз.Salt (atypical) strains of plague microbz.
Эта цель достигаетс применением в качес1ве сенситина дл эритроцитов фракции V чумного микроба.This goal is achieved by using the fraction V of the plague microbe as sensitin for erythrocytes.
Методика выделени фракции V и приготовлени На ее основе эритроцитарного диагностикума заключаетс в следующем ;The procedure for isolating the V fraction and preparation. On its basis, the erythrocyte diagnosticum is as follows;
Фракцию Y выдел ют из бескапсульного и атоксичного варианта ЕВ при помоа (И наргс ающих концентраций анионного поверхностно-активного вещества - дезоксихолата натри (ДОХ). После 4-кратного воздействи малых концентраций ДОХ (от 0,00ь до 0,32) на бактериальную массу и последующего удалени надосадочных жидкостей в ее остаток добавл ют ДОХ до 1,285й. В надосадочную жидкость добавл ют 5 объемов ацетона, осадок диализуют и лиофильно высушивают. Полученную такимThe fraction Y is isolated from the capsule-free and toxic version of the EB when it is used (and increased concentrations of anionic surfactant sodium deoxycholate (DOX). After 4-fold exposure to low concentrations of DOX (from 0.00 to 0.32) on the bacterial mass and the subsequent removal of the supernatants, the residue is added to DOX to 1.285. 5 volumes of acetone are added to the supernatant, the precipitate is dialyzed and lyophilized.
образом фракцию V используют в качестве сенситина дл эритроцитов.Thus, fraction V is used as sensitin for erythrocytes.
Лл получени диагностикума берут формалинизированные эритроциты барана , которые обрабатывают раствором та Нина в разведении 1:l600QO в течение 13 мин при 37°С„ Затем эритроциты осаждают путем центрифугировани в течение 3 мин при 2UUO об/мин. Осадок эритроцитов трижды отмывают 20-30кратными количествами физиологическо го раствора рН-°7, и довод т их до 2, концентрации этим же раствором, Необходимое количество фракции V развод т физиологическим раствором :До концентрации 1000 мкг/мл и добавл ют ДОХ с таким расчетом, чтобы его конечна концентраци составл ла %, После 13-20 мин контакта при комнат ной температуре смесь фракции V и ДОХ добавл ют в эритроциты из расчета 10 мкг на 1 мл 2,3-2 танизированнь1х эритроцитов. После встр хивани роЦиты помещают в холодильник при .: на Ib-lii ч. За 2 ч до конца сенсио - .лисации ь эритроциты добавл ют формалин до //. Затем эритроциты осаж;г .0Т iT,T;:- :(( V , -;;p);ai ;|,лг; „ ;саДОКTo obtain a diagnosticum, formalinized sheep erythrocytes are taken, which are treated with a solution of Nina at a dilution of 1: l600QO for 13 min at 37 ° C. Then the erythrocyte is precipitated by centrifugation for 3 min at 2UU rpm. The erythrocyte sediment is washed three times with 20-30 times the amount of physiological solution pH-° 7, and adjusted to 2, the concentration with the same solution. The necessary amount of fraction V is diluted with saline: To a concentration of 1000 µg / ml and add DOX with this calculation so that its final concentration is%. After 13–20 min of contact at room temperature, a mixture of fraction V and DOX is added to red blood cells at the rate of 10 µg per 1 ml of 2.3–2 tanned red blood cells. After shaking, the roCites are placed in a fridge at: ib-lii h. For 2 hours before the end of the sensation procedure, erythrocytes add formalin before //. Then the erythrocytes precipitate; g .0T iT, T;: -: ((V, - ;; p); ai; |, lg; "; saDOK
трижды промывают большими количествами нормальной кроличьей сыворотки, разведенной 1:230 физиологическим раствором. Осадок эритроцитов довод т до 10 концентрации сахарозо-желатозной средой (З желатозы + /,j% сахэ розы на дистиллированной воде), разливают по мл в ампулы или пенициллиновые флаконы и подвергают лиофильному высушиванию в любом вакуум-сушильном аппарате. Остаточна влажность не должна превышать более 3%с Ампулы и флаконы с высушенными эритроцитамиwashed three times with large amounts of normal rabbit serum diluted 1: 230 with saline. The erythrocyte sediment is adjusted to 10 with a concentration of a sucrose-gelatin medium (3 gelatosis + /, j% sahe roses on distilled water), poured into ml ampoules or penicillin vials and subjected to freeze drying in any vacuum drying apparatus. Residual moisture should not exceed more than 3% with ampoules and vials of dried red blood cells
с запаивают или герметически закупорива ют. Приготовленный таким образом диагностикум можно хрмчить при комнатной температуре.sealed or hermetically sealed. The diagnosticum prepared in this way can be grmchit at room temperature.
Предлагаемый способ обес 1ечиваетThe proposed method provides
0 идентификацию как каг;сульныл (типимных ) , так и бескапсульных (агипичных ) атоксичных штаммов чумного микроба . Это позвол ет с большой достоверностью примен ть его в практике0 identifying both cag, sulnyl (typical), and capsule-free (agipichny) atoxic strains of the plague microbe. This allows using it with great confidence in practice.
5 эпизоотологического обследовани природных очагов чумы, а также дл и.ндикации и идентификации типичных и де фектных в антигенной отношении штам5 epizootological examination of natural foci of plague, as well as for identification and identification of typical and antigenically defective strains
: Ч- МНОГО M.iKO-/Ji;: H- MANY M.iKO- / Ji;
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU762338652A SU597235A1 (en) | 1976-04-12 | 1976-04-12 | Method of producing erythrocytic plague diagnosticum |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU762338652A SU597235A1 (en) | 1976-04-12 | 1976-04-12 | Method of producing erythrocytic plague diagnosticum |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU597235A1 true SU597235A1 (en) | 1992-05-07 |
Family
ID=20653721
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU762338652A SU597235A1 (en) | 1976-04-12 | 1976-04-12 | Method of producing erythrocytic plague diagnosticum |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU597235A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD2790C2 (en) * | 2004-08-04 | 2006-02-28 | Национальный Научно-Практический Центр Превентивной Медицины Министерства Здравоохранения Республики Молдова | Process for obtaining a diagnostic erythrocytic pertussic preparation |
-
1976
- 1976-04-12 SU SU762338652A patent/SU597235A1/en active
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD2790C2 (en) * | 2004-08-04 | 2006-02-28 | Национальный Научно-Практический Центр Превентивной Медицины Министерства Здравоохранения Республики Молдова | Process for obtaining a diagnostic erythrocytic pertussic preparation |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kenny et al. | Eaton pleuropneumonia-like organism (Mycoplasma pneumoniae) complement-fixing antigen: Extraction with organic solvents | |
Liu et al. | The roles of various fractions of Pseudomonas aeruginosa in its pathogenesis | |
Krakówka et al. | Infection of the pleura by Aspergillus fumigatus | |
Goodwin et al. | Immunity in experimentally induced enzootic pneumonia of pigs | |
Miller et al. | The effect of a streptococcus pyogenes teichoic acid on the immune response of mice | |
Bichowsky-Slomnicki et al. | Biological activities in extracts of Pasteurella pestis and their relation to the “pH 6 antigen” | |
Edwards | The isolation of antigens associated with farmer's lung | |
Nakhla et al. | Studies on the antigen in β-haemolytic streptococci that cross-reacts with an antigen in human myocardium | |
SU597235A1 (en) | Method of producing erythrocytic plague diagnosticum | |
Turner et al. | Hemagglutinating virus isolated from cat scratch disease | |
KR900000546B1 (en) | Method for making e 87 ag antigen and monoclonal antibody of pseudomonas aeruginosa | |
Baer et al. | The Immunochemistry of Blood Group O: I. The Production of Precipitating and Agglutinating Antibodies in Chickens to Various Human and Hog Blood Group Substances | |
JPH0118080B2 (en) | ||
Tanaka et al. | HISTOCHEMICAL STUDIES ON THE CELLULAR DISTRIBUTION OF ENDOTOXIN OF SALMONELLA EXTERITIDIS IN MOUSE TISSUES | |
Miles | A serological investigation in hepatitis using the complement-fixation reaction | |
US3318775A (en) | Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine | |
Sigurdsson | A specific antigen recovered from tissue infected with M. paratuberculosis (Johne's bacillus) | |
Stoker et al. | The application of the conglutinating complement absorption test to virus systems | |
MR et al. | Preparation of dried antigen and antiserum for the agglutination-inhibition test for virus influenza. | |
GG et al. | Studies on immunity in anthrax. I. Variation in the serum T-agglutinin during anthrax infection in the rabbit. | |
SU889003A1 (en) | Method of producing diagnostic pseudotuberculosis serum | |
CN111620947B (en) | Preparation method of divalent sea snake poison resisting serum | |
SU448864A1 (en) | The method of obtaining antilles to the Australian antigen | |
Ames et al. | Cystine Inhibition of the Succinoxidase System. III. Effect of Dialysis. | |
KR960003898B1 (en) | Preparation process of rickettsia tsutsugamushi antigen |