SU545336A1 - Method for predicting chronic liver diseases - Google Patents

Method for predicting chronic liver diseases

Info

Publication number
SU545336A1
SU545336A1 SU2182126A SU2182126A SU545336A1 SU 545336 A1 SU545336 A1 SU 545336A1 SU 2182126 A SU2182126 A SU 2182126A SU 2182126 A SU2182126 A SU 2182126A SU 545336 A1 SU545336 A1 SU 545336A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
chronic liver
liver diseases
growth
predicting chronic
predicting
Prior art date
Application number
SU2182126A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анатолий Федорович Блюгер
Хацкель Мойсеевич Векслер
Жанна Павловна Тимошенко
Original Assignee
Рижский Медицинский Институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Рижский Медицинский Институт filed Critical Рижский Медицинский Институт
Priority to SU2182126A priority Critical patent/SU545336A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU545336A1 publication Critical patent/SU545336A1/en

Links

Description

1one

Изобретение относитс  к медицине, оно может найти применение дл  ирогнозирвани  хронических заболеваний печени.The invention relates to medicine, it can be used for the irognostication of chronic liver diseases.

Известен способ прогнозировани  хронических заболеваинй печени, заключающийс  в том, что берут биоитат печени, зафиксированный в специальные жпдкостп, готов т срез и микроскопическим путем изучают состо ние клеток печепи 1J. Однако известный способ не обеспечивает точпости и достоверности прогноза .There is a method for predicting chronic liver diseases, which consists in taking liver bioitat, recorded in a special train, preparing a cut and microscopically examining the state of cells 1J. However, the known method does not provide the accuracy and accuracy of the forecast.

Цель изобретени  - повышение точности ирогноза. Эта цель достигаетс  тем, что эксплантаты иечени больного культивируют в двух идентичных средах, в одну из которых ввод т австралийский антиген, ио окончанию культивировани  сравнивают площади зон роста оргапных культур: увеличение площади зоны роста экснлантата, нодвергнутого воздействию антигена, свидетельствует о благопри тном прогнозе, отсутствие - о неблагопри тном .The purpose of the invention is to improve the accuracy of the horn. This goal is achieved by cultivating the patient's explants in two identical media, in one of which the Australian antigen is inserted, and by the end of the cultivation the areas of growth of orgap cultures are compared: an increase in the area of growth of the transplant exposed to the antigen indicates a favorable prognosis the absence is about unfavorable.

Способ осуществл ют следующим образом.The method is carried out as follows.

Биопсироваииую ткаиь печени больного забирают в стерильиую чашку Петри на стерильную салфетку. После ироиолаокивани  биоптата в стерильном бюксе и разрезки его на отдельные фрагменты эксплантаты дел т па две части и каждую из них размещают иа миллипоровых фильтрах, расиоложенных над Biopsirovaya tkai liver of the patient is taken in a sterile Petri dish on a sterile napkin. After iriolization of the biopsy in a sterile tube and cutting it into separate fragments, the explants divide two parts and each of them is placed on a millipore filter placed above

отверсти ми колец из оргстекла, помещенных в чашки Конве . Оба чашки Конве  заполн ют питательной средой до верхнего кра  отверстий кольца.holes of plexiglass rings placed in conwe cups. Both Conwe cups are filled with nutrient medium to the upper edge of the holes in the ring.

Питательиую среду готов т следующим образом .The nutrient medium is prepared as follows.

Берут 60-70% среды 199, затем 30-40% сыворотки здорового донора АВ группы, 0,4% аскорбиновой кислоты и ио 100 ед. пенициллина и стрептомицина на 1 мл среды. В одну из чашек в питательную среду ввод т сыворотку, отмечавшую резко положптельную реакцию на австралийский антиген, интенсивностью три креста. Чашки Коиве  герметически закрывают стекл нной крышкой с помощью смазки, состо щей из воска и вазелина. Предварительно внутрь чашки нагнетают из газометра смесь кислорода (65%), углекислого газа (5%) и воздуха (35%). Эксилантаты культнвируют ири 37°С на границе раздела газ-иитательиа  среда в услови х, прпблилчеиных и условп м организма.They take 60-70% of medium 199, then 30-40% of serum of a healthy donor of the AV group, 0.4% of ascorbic acid, and io 100 units. penicillin and streptomycin in 1 ml of medium. In one of the cups, a serum was added to the nutrient medium, which marked a sharply positivity reaction to the Australian antigen, with an intensity of three crosses. Koive's cups are sealed with a glass lid using a lubricant consisting of wax and vaseline. Preliminary, a mixture of oxygen (65%), carbon dioxide (5%) and air (35%) is injected into the cup from the gasometer. The exciltants cultured at 37 ° C at the interface of the gas-imitative medium under the conditions and conditions of the organism.

По окоичании иериода культивировани  биоптатов - через 20-30 суток фильтры с эксплаитатами фиксируют в течение 30 мин 96%-ным этанолом, крас т гематоксилином и заливают в бальзам. С помощью светового мпкроскоиа пропзвод т морфометрпческую оценку характера роста ткани печеии. С помощью микрометрической окул риой линейкиAfter circulating the iriod of biopsy cultivation, after 20-30 days, filters with exploits are fixed for 30 minutes with 96% ethanol, dyed with hematoxylin and poured into balm. Using a light microscopic method, morphometric evaluation of the nature of the growth of pechea tissue was made. With the help of the micrometer ruler

в случае необходимости производ т замер зон роста. Наход т соотношение площади зоны роста к площади эксплантата. Коэффициент контрол  и опыта сравнивают между собой. При наличии стимул ции роста клеток печени в культуре, в питательную среду которой до культивировани  был внесен австралийский антиген, устанавливают прогноз хронического заболевани  печени удовлетворительным, а при отсутствии стимул ции роста клеток печени - неблагопри тным.if necessary, growth zones are measured. The ratio of the area of growth zone to the area of the explant is found. The coefficient of control and experience are compared with each other. In the presence of stimulation of the growth of liver cells in culture, in the nutrient medium of which the Australian antigen was introduced before culture, the prognosis of chronic liver disease is satisfactory, and in the absence of stimulation of the growth of liver cells, the prognosis is poor.

Claims (1)

1. Н. Popper, Rev Invest. Clin. Med, 1962, 15 14, 311.1. N. Popper, Rev Invest. Clin. Med, 1962, 15, 14, 311.
SU2182126A 1975-10-17 1975-10-17 Method for predicting chronic liver diseases SU545336A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU2182126A SU545336A1 (en) 1975-10-17 1975-10-17 Method for predicting chronic liver diseases

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU2182126A SU545336A1 (en) 1975-10-17 1975-10-17 Method for predicting chronic liver diseases

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU545336A1 true SU545336A1 (en) 1977-02-05

Family

ID=20634917

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU2182126A SU545336A1 (en) 1975-10-17 1975-10-17 Method for predicting chronic liver diseases

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU545336A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR860000897B1 (en) Producing method of human erythropoietin
KR870001149B1 (en) Human colony stimulating material manufacturing method
KR860001588B1 (en) Process for the production of human epidermal growth factor
WO2019182358A1 (en) Method and system for hair regrowth using 3d organoid system of hair follicle stem cell
Stonington et al. Culture of cells as a monolayer derived from the epithelium of the human prostate: A new cell growth technique
CN109392843A (en) Oophoroma Transplanted tumor model and application are constructed based on organoid method
KR860000900B1 (en) Producing method of human luteinizing hormone
SU1801391A1 (en) Device for biopsy analysis
SU545336A1 (en) Method for predicting chronic liver diseases
CN105087466B (en) The culture medium and method that inducing umbilical cord mesenchymal stem breaks up to corneal epithelial cell
Schenck et al. Method for isolating single cells and preparation of clones from human bone marrow cultures.
CN100465279C (en) Prepn and application of epiderm or hair follicle stem cell from souce of human early embryo
CN105233280A (en) DC-based glioma holoantigen vaccine and preparation method thereof
Smiley et al. A comparison of secondary palate development with different in vitro techniques
CN109792972B (en) In-vitro culture method for cysticercus cellulosae
CN110959579A (en) Construction method and application of patient-derived lymphoma immunodeficiency mouse transplantation tumor model
KR860001576B1 (en) Process for the production of human multiplication-stimulating activity
Zilber et al. Transformation of embryonic human cells by Rous sarcoma virus
Jansson et al. Search for mycoplasma in rheumatoid arthritis.
Hotchin The cultivation of Novikoff rat hepatoma cells in vitro
SU522848A1 (en) Method for the diagnosis of liver disease
SU1193168A1 (en) Method of obtaining man's epiderma cell culture
CN106967683A (en) The method for cultivating pluripotential hemopoietic stem cell
SU686733A1 (en) Method of obtaining monoclonal immunoglobuline
SU1493260A1 (en) Method of producing cultural antigen from truchinella spiralis