SU545336A1 - Method for predicting chronic liver diseases - Google Patents
Method for predicting chronic liver diseasesInfo
- Publication number
- SU545336A1 SU545336A1 SU2182126A SU2182126A SU545336A1 SU 545336 A1 SU545336 A1 SU 545336A1 SU 2182126 A SU2182126 A SU 2182126A SU 2182126 A SU2182126 A SU 2182126A SU 545336 A1 SU545336 A1 SU 545336A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- chronic liver
- liver diseases
- growth
- predicting chronic
- predicting
- Prior art date
Links
Description
1one
Изобретение относитс к медицине, оно может найти применение дл ирогнозирвани хронических заболеваний печени.The invention relates to medicine, it can be used for the irognostication of chronic liver diseases.
Известен способ прогнозировани хронических заболеваинй печени, заключающийс в том, что берут биоитат печени, зафиксированный в специальные жпдкостп, готов т срез и микроскопическим путем изучают состо ние клеток печепи 1J. Однако известный способ не обеспечивает точпости и достоверности прогноза .There is a method for predicting chronic liver diseases, which consists in taking liver bioitat, recorded in a special train, preparing a cut and microscopically examining the state of cells 1J. However, the known method does not provide the accuracy and accuracy of the forecast.
Цель изобретени - повышение точности ирогноза. Эта цель достигаетс тем, что эксплантаты иечени больного культивируют в двух идентичных средах, в одну из которых ввод т австралийский антиген, ио окончанию культивировани сравнивают площади зон роста оргапных культур: увеличение площади зоны роста экснлантата, нодвергнутого воздействию антигена, свидетельствует о благопри тном прогнозе, отсутствие - о неблагопри тном .The purpose of the invention is to improve the accuracy of the horn. This goal is achieved by cultivating the patient's explants in two identical media, in one of which the Australian antigen is inserted, and by the end of the cultivation the areas of growth of orgap cultures are compared: an increase in the area of growth of the transplant exposed to the antigen indicates a favorable prognosis the absence is about unfavorable.
Способ осуществл ют следующим образом.The method is carried out as follows.
Биопсироваииую ткаиь печени больного забирают в стерильиую чашку Петри на стерильную салфетку. После ироиолаокивани биоптата в стерильном бюксе и разрезки его на отдельные фрагменты эксплантаты дел т па две части и каждую из них размещают иа миллипоровых фильтрах, расиоложенных над Biopsirovaya tkai liver of the patient is taken in a sterile Petri dish on a sterile napkin. After iriolization of the biopsy in a sterile tube and cutting it into separate fragments, the explants divide two parts and each of them is placed on a millipore filter placed above
отверсти ми колец из оргстекла, помещенных в чашки Конве . Оба чашки Конве заполн ют питательной средой до верхнего кра отверстий кольца.holes of plexiglass rings placed in conwe cups. Both Conwe cups are filled with nutrient medium to the upper edge of the holes in the ring.
Питательиую среду готов т следующим образом .The nutrient medium is prepared as follows.
Берут 60-70% среды 199, затем 30-40% сыворотки здорового донора АВ группы, 0,4% аскорбиновой кислоты и ио 100 ед. пенициллина и стрептомицина на 1 мл среды. В одну из чашек в питательную среду ввод т сыворотку, отмечавшую резко положптельную реакцию на австралийский антиген, интенсивностью три креста. Чашки Коиве герметически закрывают стекл нной крышкой с помощью смазки, состо щей из воска и вазелина. Предварительно внутрь чашки нагнетают из газометра смесь кислорода (65%), углекислого газа (5%) и воздуха (35%). Эксилантаты культнвируют ири 37°С на границе раздела газ-иитательиа среда в услови х, прпблилчеиных и условп м организма.They take 60-70% of medium 199, then 30-40% of serum of a healthy donor of the AV group, 0.4% of ascorbic acid, and io 100 units. penicillin and streptomycin in 1 ml of medium. In one of the cups, a serum was added to the nutrient medium, which marked a sharply positivity reaction to the Australian antigen, with an intensity of three crosses. Koive's cups are sealed with a glass lid using a lubricant consisting of wax and vaseline. Preliminary, a mixture of oxygen (65%), carbon dioxide (5%) and air (35%) is injected into the cup from the gasometer. The exciltants cultured at 37 ° C at the interface of the gas-imitative medium under the conditions and conditions of the organism.
По окоичании иериода культивировани биоптатов - через 20-30 суток фильтры с эксплаитатами фиксируют в течение 30 мин 96%-ным этанолом, крас т гематоксилином и заливают в бальзам. С помощью светового мпкроскоиа пропзвод т морфометрпческую оценку характера роста ткани печеии. С помощью микрометрической окул риой линейкиAfter circulating the iriod of biopsy cultivation, after 20-30 days, filters with exploits are fixed for 30 minutes with 96% ethanol, dyed with hematoxylin and poured into balm. Using a light microscopic method, morphometric evaluation of the nature of the growth of pechea tissue was made. With the help of the micrometer ruler
в случае необходимости производ т замер зон роста. Наход т соотношение площади зоны роста к площади эксплантата. Коэффициент контрол и опыта сравнивают между собой. При наличии стимул ции роста клеток печени в культуре, в питательную среду которой до культивировани был внесен австралийский антиген, устанавливают прогноз хронического заболевани печени удовлетворительным, а при отсутствии стимул ции роста клеток печени - неблагопри тным.if necessary, growth zones are measured. The ratio of the area of growth zone to the area of the explant is found. The coefficient of control and experience are compared with each other. In the presence of stimulation of the growth of liver cells in culture, in the nutrient medium of which the Australian antigen was introduced before culture, the prognosis of chronic liver disease is satisfactory, and in the absence of stimulation of the growth of liver cells, the prognosis is poor.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU2182126A SU545336A1 (en) | 1975-10-17 | 1975-10-17 | Method for predicting chronic liver diseases |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU2182126A SU545336A1 (en) | 1975-10-17 | 1975-10-17 | Method for predicting chronic liver diseases |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU545336A1 true SU545336A1 (en) | 1977-02-05 |
Family
ID=20634917
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU2182126A SU545336A1 (en) | 1975-10-17 | 1975-10-17 | Method for predicting chronic liver diseases |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU545336A1 (en) |
-
1975
- 1975-10-17 SU SU2182126A patent/SU545336A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR860000897B1 (en) | Producing method of human erythropoietin | |
KR870001149B1 (en) | Human colony stimulating material manufacturing method | |
KR860001588B1 (en) | Process for the production of human epidermal growth factor | |
WO2019182358A1 (en) | Method and system for hair regrowth using 3d organoid system of hair follicle stem cell | |
Stonington et al. | Culture of cells as a monolayer derived from the epithelium of the human prostate: A new cell growth technique | |
CN109392843A (en) | Oophoroma Transplanted tumor model and application are constructed based on organoid method | |
KR860000900B1 (en) | Producing method of human luteinizing hormone | |
SU1801391A1 (en) | Device for biopsy analysis | |
SU545336A1 (en) | Method for predicting chronic liver diseases | |
CN105087466B (en) | The culture medium and method that inducing umbilical cord mesenchymal stem breaks up to corneal epithelial cell | |
Schenck et al. | Method for isolating single cells and preparation of clones from human bone marrow cultures. | |
CN100465279C (en) | Prepn and application of epiderm or hair follicle stem cell from souce of human early embryo | |
CN105233280A (en) | DC-based glioma holoantigen vaccine and preparation method thereof | |
Smiley et al. | A comparison of secondary palate development with different in vitro techniques | |
CN109792972B (en) | In-vitro culture method for cysticercus cellulosae | |
CN110959579A (en) | Construction method and application of patient-derived lymphoma immunodeficiency mouse transplantation tumor model | |
KR860001576B1 (en) | Process for the production of human multiplication-stimulating activity | |
Zilber et al. | Transformation of embryonic human cells by Rous sarcoma virus | |
Jansson et al. | Search for mycoplasma in rheumatoid arthritis. | |
Hotchin | The cultivation of Novikoff rat hepatoma cells in vitro | |
SU522848A1 (en) | Method for the diagnosis of liver disease | |
SU1193168A1 (en) | Method of obtaining man's epiderma cell culture | |
CN106967683A (en) | The method for cultivating pluripotential hemopoietic stem cell | |
SU686733A1 (en) | Method of obtaining monoclonal immunoglobuline | |
SU1493260A1 (en) | Method of producing cultural antigen from truchinella spiralis |