SU412247A1 - - Google Patents
Info
- Publication number
- SU412247A1 SU412247A1 SU1752613A SU1752613A SU412247A1 SU 412247 A1 SU412247 A1 SU 412247A1 SU 1752613 A SU1752613 A SU 1752613A SU 1752613 A SU1752613 A SU 1752613A SU 412247 A1 SU412247 A1 SU 412247A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- fermentation
- itaconic acid
- acid
- sugar
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
1one
Изобретение относитс к способу получени итаконовой кислоты с помощью микроорганизмов , примен емой дл получени полиакрилонитриловото волокна нитрон.This invention relates to a method for producing itaconic acid by means of microorganisms used to make polyacrylonitrileotope nitron fiber.
Известен способ получени итаконовой кислоты, предусматривающий глубинное выращивание посевного материала - культуры Aspergillus lerreus - продуцента кислоты на питательной среде, содержащей углеводы, например пищевой сахар, сахар-сырец, мелассу, кукурузный экстракт, необходимые минеральные соли, основную ферментацию на этой же питательной среде с последующим получением кристаллов итаконовой кислоты из ферментационного раствора (культуральной жидкости ), осветлением растворов активированным углем, фильтрацией, выпариванием и кристаллизацией.A method of producing itaconic acid is known, which involves deep cultivation of an inoculum — a culture of Aspergillus lerreus — an acid producer on a nutrient medium containing carbohydrates, for example, food sugar, raw sugar, molasses, corn extract, essential mineral salts, basic fermentation on the same nutrient medium the subsequent production of itaconic acid crystals from the fermentation solution (culture liquid), the clarification of the solutions with activated carbon, filtration, evaporation and crystallization oi
Цель изобретени - увеличение выхода итаконовой кислоты.The purpose of the invention is to increase the yield of itaconic acid.
Достигаетс это тем, что из вида terreus используют штамм Г-232, а выращивание посевного материала осуществл ют на питательной среде, содержащей преимущественно 3% углевода при рН среды 2,3-2,5.This is achieved by the fact that from the terreus species the strain G-232 is used, and the growth of the seed material is carried out on a nutrient medium containing predominantly 3% carbohydrate at a pH of 2.3-2.5.
Основную ферментацию осуществл ют при рН-5,5,5, при этом в процессе основной ферментации после разрастани мицели производ т двухкратную подкормку среды (черезThe main fermentation is carried out at a pH of 5.5.5, while during the main fermentation after the growth of the mycelium, the medium is fed twice (through
двое и четверо суток) до концентрации углевода в среде 90-100 г/л.two and four days) to the concentration of carbohydrate in the environment of 90-100 g / l.
Предлагаемый штамм Г-232 Aspergillus terreus получают в результате обработки природного штамма 718/9 Aspergillus terreus ультрафиолетовыми лучами и этиленимином. Культурные свойства штамма и характер роста изучались на питательных средах, примен емых дл культивировани Aspergillus terreus - модифицированной среде МойераКогхила , среде Чапека-Докса, сусло-агаре (солодовой среде), картофеле и специальных средах, используемых дл получени итаконовой кислоты.The proposed strain Aspergillus terreus G-232 is obtained by treating the natural strain 718/9 Aspergillus terreus with ultraviolet rays and ethyleneimine. Cultural properties of the strain and growth pattern were studied on nutrient media used for the cultivation of Aspergillus terreus — MoyerCoghil modified medium, Chapek-Dox medium, wort agar (malt medium), potatoes, and special media used to produce itaconic acid.
На модифицированной среде Мойера-Когхила изучалось строение гигантской колонии на п тые сутки.The structure of a giant colony on the fifth day was studied on a modified Moyer – Coghil medium.
Данный штамм имеет следующую характеристику .This strain has the following characteristics.
1. Морфологические свойства. Модифицированна среда Мойера-Когхила . Состав среды, г:1. Morphological properties. Moyer-Koghil modified environment. The composition of the medium, g:
Лактоза10Lactose10
Сахар (песок)5Sugar (sand) 5
Фосфорнокислый калнй однозамещенный (КИгРО)0,06Calcium phosphate monosubstituted (KIGRO) 0,06
Сернокислый магнийMagnesium sulphate
(MgSO4)0,05(MgSO4) 0.05
Хлористый калнй (КС1) 0,1 Хлористый натрий (NaCl) Азотнокислый калий ( KNOa) Кукурузный экстракт Агар Вода до 1 л. У трехсуточной культуры конидиальны головки слегка выт нутой формы, диаметром 27-54 мк. Пузырьки (визикулы) грушевидной формы, диаметром 12-15 мк. 2/3 визикулы покрыты стеригмами. Стеригмы двуслойные Длина стеригм первого пор дка 5 мк, второ рого - 4 мк. Конидии гладкие, круглые, их средний диаметр 2,2 мк. Длина конидиеиос цев 60-105 мк, диаметр 3-4 мк. 2. Культуральные свойства. П тисуточна гигантска колони штамма Г-232, выраш,енна иа модифицированной сре де Мойера-Когхила при 32° С, имеет круглую форму диаметром 4,9 см. Край колонии ров ный, субстратный мицелий тонкий, гладкий в начале развити бесцветный, затем светлокоричневого цвета. Коиидиеносцы иизкие. Поверхность покрыта конидиальиыми головками песочного цвета. В центре колонии находитс густое конидиеношение диаметром 0,5 см. Наружна сторона колонии шириной 0,3 см аспорогенна . Продолжительность созревани конидий 12-14 суток при 29-30° С. Модифицированна среда Чапека-Докса. Состав среды, г: Сахароза30 Азотнокислый натрий (NaNOs)2,0 Фосфорнокислый калий двузамещенный (К2НРО4)1,0 Сернокислый магний ( MgS04 7 НаО)0,5 Хлористый калий (КС1)0,5 Сернокислое железо ( FeS04 - 7 НзО)0,01 Агар20 л Водадо 1 л. Субстратный мицелий средней толщины, плотный, складчатый. В начале развити бесцветный , затем бурый со слабожелтоватым оттенком, в субстрате образует черно-коричневый пигмент. Имеетс воздушный мицелий. Конидии песочного цвета. Сусло-агар (солодова среда). Субстратный мицелий тонкий, бесцветный. Воздушный мицелий высокий. Конидиальные головки образуютс на значительном рассто нии одна от другой. JKapтoфeльиый ломтик. Субстратный мицелий средней толщины, плотный, бледно-желтый , немного складчатый, конидии песочного цвета. Имеетс воздушный мицелий. 3.Антагонистические свойства. Aspergillus terreus Г-232 - слабый антагонист в отношении Bacterium соИ, Bacillus mesentericus. Bacillus megathericus. 4.Биохимические признаки. Селекционированный штамм Aspergillus terreus Г-232 хорошо сбраживает сахарозу при глубинном способе культивировани . Активность биосинтеза итакоиовой кислоты штамма Г-232 Aspergillus terreus на разных питательных средах приведена в таблице. Способ заключаетс в следующем. Выращивание посевного материала осуществл ют в посевных ферменторах на питательных средах с 3%-ным содержанием углевода, рН среды 5,0-5,5. Засев питательной среды производ т суспензией сухих конидий из расчета 0,7 г конидий на 1 м среды. Продолжительность цикла выращивани при :34-36°С составл ет 130-36 час. Затем посевной материал в количестве 6-10% по объему перенос т в основную среду (концентраци углевода 6-7%, рН 2,3-2,5) дл биосинтеза . Продолжительность цикла основной ферментации 60-72 час. При выращивании посевного материала и основной ферментации режим аэрации заклюаетс в следующих соотнощени х: 0,5 объема воздуха на 1 объем питательной среды в лагфазе и 0,8 объема воздуха на ;1 объем питательной среды в экспоненциальной и стационарной фазах роста. Цикл ферментации заканчивают при содержании неассимилированного в среде углевода 0,1-0,2%. После окончани цикла ферментации мицелий отдел ют фильтрацией от культуральной жидкости. Полученный раствор и промывные воды от мицели осветл ют активиованным углем, фильтруют и упаривают до онцентрации итаконовой кислоты 35-38%. Упаренный раствор кристаллизуют и получают «технические кристаллы с содержанием итаконовой кислоты до 96%. Дл получени кислоты реактивной чистоы требуетс двуразова кристаллизаци . Выход кристаллической итаконовой кислоы составл ет 80-85% от итаконовой кислоы в ферментативных растворах. В дальнейщем способ по сн етс примеами . Пример 1. Выращивание посевного маериала ведут иа среде следующего состава, л: Пищевой сахар или сахар-сырец 30,0 Сернокислый магний3,0 Азотнокислый аммоний2,7Kalny chloride (KC1) 0.1 Sodium chloride (NaCl) Potassium nitrate (KNOa) Corn extract Agar Water up to 1 l. In the three-day culture, the conidial heads are slightly elongated, 27–54 microns in diameter. Bubbles (visicules) of pear-shaped form, 12-15 microns in diameter. 2/3 of the visicles are covered with sterigmas. Double-layer sterigma. First-order sterigm length is 5 microns, the second is 4 microns. Conidia are smooth, round, their average diameter is 2.2 microns. The length of the conidium is 60-105 microns, the diameter is 3-4 microns. 2. Cultural properties. The daily giant colony of strain G-232, enriched with a modified medium de Moyer-Coghil at 32 ° C, has a circular shape with a diameter of 4.9 cm. The colony edge is even, the substrate mycelium is thin, smooth at the beginning of development is colorless, then light brown colors. Koiidiophores iizkie. The surface is covered with conidial sand-colored heads. In the center of the colony there is a thick condition of 0.5 cm in diameter. The outer side of the colony is 0.3 cm wide and is asporogenic. The duration of conidia maturation is 12-14 days at 29-30 ° C. The modified environment of Čapek-Doksa. The composition of the medium, g: Sucrose30 Sodium nitrate (NaNOs) 2.0 Phosphate potassium disubstituted (K2HPO4) 1.0 Magnesium sulphate (MgS04 7 NaO) 0.5 Potassium chloride (KC1) 0.5 Ferrous sulphate (FeS04 - 7 НЗО) 0 , 01 Agar20 l Vodado 1 l. Substrate mycelium of medium thickness, dense, folded. At the beginning of development it is colorless, then brown with a slightly yellowish tinge, in the substrate forms a black-brown pigment. There is aerial mycelium. Conidia sand color. Wort agar (malt medium). Substrate mycelium thin, colorless. Aerial mycelium high. Conidial heads are formed at a considerable distance from one another. J kaptofeliy slice. Substrate mycelium of medium thickness, dense, pale yellow, slightly folded, sand-colored conidia. There is aerial mycelium. 3. Antagonistic properties. Aspergillus terreus G-232 is a weak antagonist against Bacterium SOI, Bacillus mesentericus. Bacillus megathericus. 4. Biochemical characteristics. The selected strain of Aspergillus terreus G-232 well ferments sucrose in the deep mode of cultivation. The activity of the biosynthesis of itacoic acid strain Aspergillus terreus G-232 on different nutrient media is given in the table. The method is as follows. Growing seed is carried out in seed fermentors on nutrient media with a 3% carbohydrate content, pH of the medium is 5.0-5.5. The nutrient medium is sown with a suspension of dry conidia at the rate of 0.7 g of conidia per 1 m of medium. The duration of the growing cycle at: 34-36 ° C is 130-36 hours. Then, seed in an amount of 6-10% by volume is transferred to the basic medium (carbohydrate concentration 6-7%, pH 2.3-2.5) for biosynthesis. The duration of the main fermentation cycle is 60-72 hours. When growing seed and main fermentation, the aeration mode consists of the following ratios: 0.5 volume of air per 1 volume of nutrient medium in lag phase and 0.8 volume of air per; 1 volume of nutrient medium in exponential and stationary phases of growth. The fermentation cycle is completed when the content of carbohydrate unassimilated in the medium is 0.1-0.2%. After the fermentation cycle is completed, the mycelium is separated by filtration from the culture fluid. The resulting solution and washings from the mycelium are clarified with activated charcoal, filtered and evaporated to a concentration of itaconic acid of 35-38%. One stripped off solution is crystallized and get "technical crystals with the content of itaconic acid up to 96%. Duplex crystallization is required to produce a pure reactive acid. The yield of crystalline itaconic acid is 80-85% of itaconic acid in enzyme solutions. The following is illustrated by examples. Example 1. Growing seed crops are carried out in a medium of the following composition, l: Food sugar or raw sugar 30.0 Magnesium sulphate 3.0 Ammonium nitrate 2.7
Кукурузный экстракт:Corn extract:
дл сахарной среды6,0for sugar 6,0
дл сахара-сырца3,0for raw sugar 3.0
рН среды 5,0-5,5.pH of 5.0-5.5.
(Процесс выращивани осуществл ют при температуре 34-36° С в течение 30-36 час. Посевной материал в количестве 5-10% от объема, вз тый в конце экспоненциальной фазы роста и содержащий ,22-24 г/л сухого мицели , перевод т в основную среду дл биосинтеза.(The growing process is carried out at a temperature of 34-36 ° C for 30-36 hours. The seed in the amount of 5-10% by volume, taken at the end of the exponential growth phase and containing 22-24 g / l dry mycelium, translated t to basic medium for biosynthesis.
Среда дл биосинтеза содержит, г/л: Пищевой сахар или сахар-сырец 70-80,0 Сернокислый магний3,0Medium for biosynthesis contains, g / l: Food sugar or raw sugar 70-80.0 Magnesium sulphate 3.0
Азотнокислый аммоний2,0Ammonium nitrate2.0
Кукурузный экстракт: дл сахарной среды2,3Corn extract: for sugar environment2,3
дл сахара-сырцане добавл ютfor raw sugar, add
рН среды 2,3-2,6.pH of 2.3-2.6.
После засева среда содержит 2-3 г/л сухого мицели . Биосинтез итаконовой кислоты ведут при температуре 134-35° С в течепие 60-72 час. По истечении этого срока культуральный раствор содержит 30-40 г/л итаконовой кислоты, 0,1-0,2% неассимилированного грибом сахара, 9-11 г/л сухого мицели .After seeding, the medium contains 2-3 g / l of dry mycelium. The biosynthesis of itaconic acid is carried out at a temperature of 134-35 ° C for 60-72 hours. After this period, the culture solution contains 30–40 g / l of itaconic acid, 0.1–0.2% sugar unassimilated by the fungus, 9–11 g / l of dry mycelium.
После отфильтровывани мицели растворы направл ют на химическую переработку.After filtering the mycelium, the solutions are sent for chemical processing.
Пример 2. Мелассна среда дл выращивани посевного материала характеризуетс следующими показател ми, г/л:Example 2. Molasses medium for growing seed is characterized by the following indicators, g / l:
Сахар мелассы30,0Sugar molasses 30,0
Азотнокислый аммоний1-2Ammonium Nitrate1-2
рП 5,0-5,5.RP 5.0-5.5.
Услови выращивани посевного материала аналогичны услови м в примере 1.The growing conditions for the inoculum are similar to those in Example 1.
Среда дл основной ферментации содержит , г/л:The medium for the main fermentation contains, g / l:
Сахар мелассы30-35Sugar molasses 30-35
Азотнокислый аммоний1-1,5Ammonium Nitrate1-1.5
рН среды 2,3-2,5.pH of 2.3-2.5.
Характерной чертой биосинтеза итаконовой кислоты на мелассной среде вл етс A characteristic feature of itaconic acid biosynthesis on molasses media is
подкормка погруженной культуры в течение цикла.feeding submerged culture during the cycle.
Обычно осуществл ют две подкормки. Первую - на вторые сутки после разрастани мицели , вторую - на четвертые сутки. В обоих случа х с целью повыщени выхода итаконовой кислоты концентрацию сахара довод т в среде до 9-10%. Биосинтез ведут при температуре 34-35° С. Продолжительность всего цикла ферментации составл ет 6-7 суток.Usually, two supplements are made. The first - on the second day after the growth of the mycelium, the second - on the fourth day. In both cases, in order to increase the yield of itaconic acid, the sugar concentration is adjusted in the medium to 9-10%. Biosynthesis is carried out at a temperature of 34-35 ° C. The duration of the whole fermentation cycle is 6-7 days.
В конце цикла ферментации культуральный раствор содержит 40-50 г/л итаконой кислоты. At the end of the fermentation cycle, the culture solution contains 40-50 g / l of itacanoic acid.
Предмет изобретени Subject invention
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1752613A SU412247A1 (en) | 1972-02-21 | 1972-02-21 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU1752613A SU412247A1 (en) | 1972-02-21 | 1972-02-21 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU412247A1 true SU412247A1 (en) | 1974-01-25 |
Family
ID=20504524
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1752613A SU412247A1 (en) | 1972-02-21 | 1972-02-21 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU412247A1 (en) |
-
1972
- 1972-02-21 SU SU1752613A patent/SU412247A1/ru active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4555485A (en) | Production of edible protein containing substances | |
SU695565A3 (en) | Method of preparing clavulic acid and its salts | |
US2576932A (en) | Fermentation process for production of vitamin b12 | |
SU507634A1 (en) | Method for producing lysine | |
US2363227A (en) | Fermentation process for the production of riboflavin | |
EP0032830B1 (en) | Preparation of 2-keto-l-gulonic acid | |
JP2003517268A (en) | Mutant strain of the microorganism Penicillium oxalicum, Armenica Armeniaca | |
SU412247A1 (en) | ||
SU521849A3 (en) | The method of obtaining cephalosporin | |
US4245048A (en) | Process for producing coenzyme Q10 | |
US4371622A (en) | Micromonospora culture | |
US3940315A (en) | Production of citric acid by submerged fermentation | |
US4054489A (en) | Method of preparing l-glutamic acid and its sodium salt | |
SU908092A1 (en) | Method of obtaining riboflavin | |
SU1631070A1 (en) | Strain of fungus aspergillus foetidus - producing inlulinase | |
NO122362B (en) | ||
US3701715A (en) | Method for the production of glucose oxidase | |
JP4268857B2 (en) | Production method of D-glucosamine by microorganisms | |
SU1097673A1 (en) | Method for preparing gluocamylase from protein fodder | |
SU975799A1 (en) | Strain of fungus aspergillus niger l-4 producer of citric acid | |
SU603659A1 (en) | Method of obtaining 2-keto-d-calcium gluconate | |
SU1409658A1 (en) | Method of producing seeding material for obtaining citric acid by surface fermentation | |
US3843465A (en) | Production of citric acid from hydrocarbons | |
SU507644A1 (en) | Nutrient medium for cultivation of lytic enzyme producers | |
SU939550A1 (en) | Process for producing glutamic acid |