SU382682A1 - Питательная среда для выращивания микроорганизмов - Google Patents

Питательная среда для выращивания микроорганизмов

Info

Publication number
SU382682A1
SU382682A1 SU1675773A SU1675773A SU382682A1 SU 382682 A1 SU382682 A1 SU 382682A1 SU 1675773 A SU1675773 A SU 1675773A SU 1675773 A SU1675773 A SU 1675773A SU 382682 A1 SU382682 A1 SU 382682A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
medium
brucella
vaccine
casein
hydrolyzate
Prior art date
Application number
SU1675773A
Other languages
English (en)
Inventor
Н. А. Михайлов М. М. Иванов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to SU1675773A priority Critical patent/SU382682A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU382682A1 publication Critical patent/SU382682A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

1
Изобретение относитс  к области ветериларии .
Известно использование питательной среды дл  выращивани  микроорганизмов, приготовленной из м са, рыбы, частично из казеина.
Однако такие питательные среды дороги, трудоемки в приготовлении, нестандартны, так как м со дл  этих целей чаще всего используетс  мороженое.
Предлагаема  питательна  среда дл  выращивани  бруцеллезных микробов с целью увеличени  концентрации микробных тел, обладающих длительной жизнеспособностью и иммуногенными свойствами, содержит гидролизаты из обрата молока и казеина, в ее состав введен кукурузный экстракт и компоненты вз ты в следующем количестве (на 1 л), гидролизата обрата молока и казеина (ка амин«ый азот) 100-120 мг/°/о в равных соотношени х , пептона сухого 5 г, поваренной соли 5 г, глицерина 10 мл, глюкозы 10 г, кукурузного экстракта 5-7 мл (в зависимости от содержани  процента фосфора), водопроводной воды до 1 л.
приготовление гидролизата из обрата. 1 л обрата молока подогревают до 45° С, подщелачивают 20%-ным раствором соды (ГхаНСОз) до рН 7,8 и добавл ют 1 г сухого панкреатина или 10 г измельченной поджелудочной железы крупного рогатого скота.
Фермент предварительно развод т в небольшом количестве теплой водопроводной воды. Через 15-20 мин после внесени  панкреатина или поджелудочной железы добавл ют
10 мл хлороформа, затем бутыли закрывают резиновыми пробками, завернутымн в марлевые салфетки, и став т в термостат при 40° С на четверо суток. Содержимое бутылей перемеШИвают через каждые 5-б час.
В процессе гидролиза ел едневно провер ют рП н, в случае снижени  его до 7,2-7,4, снова подщелачивают 20%-;ным раствором воды до рН 7,6-7,8. Пробку после встр хивани  бутылей слегка приоткрывают дл  удалени  паров хлороформа. Через 4 суток бутыли вынимают из термостата, содерл нмое фильтруют через бумажный фильтр, устанавливают нейтральный рН или слабощелочной (7,0-7,2), стерилизуют при 0,5 атм 30 мин.
Хран т при 5-8° С в бутыл х, закрытых резиновой пробкой, и используют но мере надобности дл  приготовлени  питательных сред. В готовом гидролизате должно содержатьс  аминного азота 400-500 .«г/%, оби .;егэ азота - 700-800 лгг/%.
Приготовление гидролизата из казеина. Берут 1 кг пищевого кислотного казеина ТУ-15354, заливают 10 л дистиллированной  ли Бодопроводной воды, подогретой до 40° С,
Б };оторой предварительно раствор ют 100 г
углекислого натри  (NaaCOs). Казеин тщательно перемешивают до полного растворени , поддержива  при этом температуру около 40° С, добавл ют 300 г фарша поджелудочной железы, устанавливают рН 7,6-7,8 20%ным раствором едкого натра (NaOH) и добавл ют 100 мл (%) хлороформа. Гидролиз ведут при 37° С в течение 14-16 суток, при этом содержимое бутылей ежедневно перемешивают и коитролируют рН, который должен быть в пределах 7,4-7,6. Регулируют рН 20%-ны;м раствором едкого натра.
В конце гидролиза рН снижаетс  до 7,0-7,2, а амидный азот повышаетс  до 700- 900 жг/%. Если аминный азот достиг указанного уровн , бутыли охлаждают до комнатной температуры, затем на трое суток помеш ,ают в холодильник при 5-7° С дл  отстаивани . Отсто вшийс  гидролизат декантируют и фильтруют через ватно-марлевый фильтр или полотно бельтинг. К остатку нерасшепленных белков прибавл ют дистиллированной или водопроводной воды столько, сколько было декантировано гидролизата, затем подкисл ют сол ной кислотой до 1рН - 6,3 и кип т т в течение 10 мин. После кип чени  охлаждают , отстаивают, фильтруют сначала через вату, потом через полотно бельтинг.
Обе порции фильтратов смешивают, консервируют прибавление.м 1 % хлороформа, хран т при 5-7° С в бутыл х, закрытых резиновой пробкой, и используют по мере надобности дл  приготовлени  питательной среды.
В готовом гидролизате должно содерл атьс , жг/%:
Аминного азота 700-850,
Обшего азота 1100-1200.
Приготовление жидкой обрато-казеиновой питательной среды.
Компоненты среды вз ты в следующих количествах на 1 л:
Гидролизата обрата молока и казеина (да алшнный азот) в равных соотнощени х 100-120 .
Пептона (сухого)5 г
Поваренной соли (NaCl)5 г
Глицерина Q мл
Кукурузного экст1ракта (в зависимости от его качества)5-7 мл
Глюкозы на сухое вещество10 г
Водопроводной водыдо 1 л
Примечание: При добавлении 2,5-3,5% агарагара получают плотную среду. Прк добавлении 1,5-1,7% агар-агара получают среду, пригодную дл  определени  количества живых бруцелл в сухой бруцеллезной вакцине культуральным методом.
До стерилизации смесь перечисленных компонентов подщелачивают 10%-ным раствором едкого натра и устанавливают рН до 6,7-6,8. После стерилизации в готовой среде
рН должен быть 6,5-6,6. Количество необходи .мого гидролизата дл  приготовлени  1 л среды в расчете на амииный азот вычисл ют по формуле:
5V « 1000
л мл,
где а - количество мг1% аминного азота, необходимого дл  приготовлени  среды;
b - количество лгг/э/о аминного азота, содержащегос  в примен е.мом гидролизате;
X - искомое количество гидролизата.
,.гг 100- 1000 „„„
1оПример. 200 мл; или
оОи
„ 120 1000 ... 500 -240л....
Определ е.м, какое количество гидролизата обрата следует вз ть на 1 л среды, если в нем содержитс  лг/Vo аминного азота. В данном случае 200 мл, но так как его
берут в равном соотношении с гидролизато .м из казеина, то следует вз ть на 1 л ореды 100 мл.
Все компоненты среды, за исключением глюкозы, смешивают в варочном котле, подщелачивают 10%-ным раствором едкого натра до рН 6,7 - 6,8. Смесь кип т т при помешивании до полного растворени  всех компонентов , затем к смеси прибавл ют гор чую водопроводную воду до первоначального
объема. Готовую среду фильтруют через фильтр-пластины и одновременно перекачиваЕот в реактор дл  стерилизации. Стерилизуют среду при 120° С (1 атм) 40-45 мин. После стерилизации в жидкой среде рН
должен быть 6,4 - 6,6.
По сравнению с м сными средами, предлагаема  среда имеет более однородный состав белка. Готова  ареда по содержанию а.минокислот приближаетс  к полусинтетической и
используетс  дл  выращивани  микробов без пеногасител , так как при культивировании почти не пенитс . Использование достаточно полного набора аминокислот в среде обеспечивает полноценное физиологическое и морфологрмеское развитие микробной клетки, что обусловливает сравнительно высокий выход микробной м.ассы с единицы объема питательной среды, т. е. 55-60 млрд микробных тел в 1 мл, а в лабораторном реакто)ре с автоматическим регулированием рН накопление микробной массы составл ло 70-80 млрд микробных тел в 1 мл по бруцеллезному стандарту мутности при наличии высокого процента живых бруцелл типичной морфологии .
В цел х подтверждени  стабильности результатов по накоплению микробной массы, получаемой при глубинном выращивании бруцеллезной культуры, готов т шесть серий
ферментативного гидролизата из обрата (2, 4,
6, 7, 8, 9) и три серии ферментативного гидролизата казеина (1, 3, 5), из которых в дальнейшем готов т жидкую питательную среду дл  глубинного культивировани  вакционного штамм.а бруцелла абортус 19. Как опытна , так и контрольна  среда содержит 100-120 уиг/% аминного азота; в обоих средах после стерилизации устанавливаетс  рН 6,4 - 6,6 (дл  жидкой среды). В качестве контрол  используют гидролизат Хоттингера и пептон MiapTcna, примен емый обычно в производстве. Материалом дл  засева реакторов служит 36-часова  бруцеллезна  культура производственного вакционного штамма № 19. Посевна  доза составл ет не менее 100-150 млн микробных тел на 1 мл питательной среды по бруцеллезному стандарту мутности ГКИ.
Перед засевом реактора в среду стерильно добавл ют глюкозу в виде 40%-ного раствора из расчета 0,5% к объему среды. Культуру выращивают при 36-37° С в реакторах ем.костью 480 л, содержащих 100-250 л среды . Аэрацию осуществл ют подачей стерильного воздуха из расчета 1,5-2 л воздуха на 1 л/лшн среды механическим перемешиванием со скоростью 260 об/мин. Выращивание продолжаетс  в течение 32-34 час.
В процессе выращивани  бруцеллезной культуры определ ют рН среды. Дл  поддержани  на определенном уровне рН через 16-18 час культивировани  в среду повторно добавл ют глюкозу в количестве 0,2-0,5 г. Через 24-32 или 34 час отбирают пробы, в которых определ ют оптическую концентрацию микробной взвеси цо бруцеллезному стандарту мутности количество живых бруцелл цветным методом с помощью краски метиленовой сини.
Каждую пробу взвеси бруцелл контролируют па чистоту роста и типичность морфологии путем просмотра под микроскопом окрашенных по Граму мазков, а также высевом на питательные среды и бульон).
Чистую культуру бруцелл осаждают в течение 18-24 час, цадосадочную жидкость удал ют. Концентрированную микробную массу сливают в стерильные баллоны, определ ют оптическую концентрацию микробных тел в 1 мл, затем добавл ют в зависимости от полученной концентрации среду высушивани . Из полученной стерильной микробной массы готов т сухую живую бруцеллезную вакцину (в соответствии с требо вани ми инструкции по изготовлению и контролю сухой живой бруцеллезной вакцины).
Как показывают исследовани , выращивание вакцинного бруцеллезного штамма 19 в жидкой обрато-казеиновой среде не оказывает вли ни  на его морфологию, антигенные и иммуПОгенные свойства. При длительном хранении (18-25 мес.) в сухой вакцине сохран етс  высокий процент живых бруцелл, типичных по своей морфологии.
6
В опытах па морских свинках устанавливают высок}Ю иммуногенность сухих вакцин серий (1, 4, 14, 15), полученных из культур, Быращен.ных на предлагаемой среде.
Результаты сравнительного испытани  интенсивности роста вакцинного бруцеллезного штамма 19 на обрато-казеиновом, мартеновском и хоттингеровско: 1 бульонах при глубинном методе выращивани  приведены в таблице.
20
25
30
Оптическа  концентраци  бруцелл определ етс  по бруцеллезному стандарту мутности; кол ичество бруцелл - цветны.м методом с помощью краски метиленовой сини. Накопление мимробной массы с 1 мл среды в среднем в два раза больше, чем на средах из м сных гидролизатов.
Высушивают 15 экспериментальных серий из вакционного штам,ма бруцелла абортус 19. В качестве контрол  высушивают 12 серий бруцеллезной вакцины, изготовленной из культур , выращенных на плотной агаровой среде, основу которых составл ют м сные гидролизаты .
На основании регул рных сравнительных исследований сухой бруцеллезной вакцины, хран щейс  при 4-6° С в течение 18-25 мес. со дн  изготовлени , зстанавливают, что вакцина сохран ет морфологические, антигенные и иммуногенные свойства. Вакцина, полученна  из культур, выращенных в жидкой среде, по своему качеству не уступает вакцине, выращенной на агаре. Эта вакцина вполне отвечает требовани м действующей инструкцил по изготовлению и контролю сухой живой бруцеллезной вакцины.
При добавлении 2,5-3,5% агар-агара к жидкой обрато-казеиновой среде, получаетс  плотна  агарова  среда, котора  может быть использована в производстве дл  выращивани  вакцинного штамма бруцелла абортус 19. Накопление микробной массы на плотной обрато-казеиновой среде на 15-20% больше, чем на агаровой печеночной и м сной средах. При проверке на стабильность в пробе с трИпа:фтави.но.м и в реакции термопреципитации бруцеллезной культуры вакцинного штамма 19, хранившейс  в пробирках на скошенном обрато-казепновом агаре при 4-6° С в течение 3 мес. (врем  проверки), культура этого штамма остаетс  стабильной и не имеет признаков диссоциации. При испытании той же культуры, сохранившейс  в тех же услови х на печеночно-глюкозо-глицериновом и мартеновском агарах, в пробе с трипафтавином отмечаетс  положительна  реакци  агглютинации , что доказывает (наличие диссоциации . Дл  плотной среды рН до стерилизации устанавливают 7,1-7,2, стерилизуют при 115° С в течение 30 мин. Эта же среда может быть использована дл  определени  количества живых бруцелл в бруцеллезной вакцине, если к жидкой обрато-казеиновой среде добавить 1,5-1,7% агар-агара. 8 Предмет изобретени  1.Питательна  среда дл  вь раш;ивани  кроорганиамов, например бруцелл, содераш ,а  .пептон, поваренную соль, глицерин, юкозу, отличающа с  тем, что, с целью еличени  концентрации микробных клеток, ладающих длительной жизнеспособностью иммуногенными свойствами, она содержит дролизаты из обрата молока и казеина. 2.Среда по п. 1, отличающа с  тем, что, целью ускорени  процесса делени  микробй клетки (бруцелл), в нее введен кукурузй экстракт. 3.Среда по пп. 1 и 2, отличающа с  тем, о ее компоненты вз ты в следующих колиствах (на 1 л среды): Гидролизата обрата молока и казеина (на аминный азот) 100-120 лгг/О/о в равных соотношели х Пептона сухого Поваренной соли Глицерина Глюкозы Кукурузного экстракта в зависимости от содержа5-7 мл ни  процента фосфора до 1 л.Водопроводной воды
SU1675773A 1971-06-18 1971-06-18 Питательная среда для выращивания микроорганизмов SU382682A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1675773A SU382682A1 (ru) 1971-06-18 1971-06-18 Питательная среда для выращивания микроорганизмов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU1675773A SU382682A1 (ru) 1971-06-18 1971-06-18 Питательная среда для выращивания микроорганизмов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU382682A1 true SU382682A1 (ru) 1973-05-25

Family

ID=20481075

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1675773A SU382682A1 (ru) 1971-06-18 1971-06-18 Питательная среда для выращивания микроорганизмов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU382682A1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105028388A (zh) 保存液及其制备方法
CN115261302B (zh) 一种基质胶及其制备方法和应用
RU2412240C1 (ru) Питательная среда для выращивания легионелл
RU2580028C1 (ru) Питательная среда плотная для культивирования бруцелл
SU382682A1 (ru) Питательная среда для выращивания микроорганизмов
CN110643522A (zh) 禽多杀性巴氏杆菌的培养基、培养方法及其应用
RU2415923C1 (ru) Способ получения ферментативного гидролизата из свежей белокочанной капусты и питательная среда для культивирования лактобактерий на его основе
Little et al. A practical liquid medium for cultivation of Trypanosoma cruzi in large volumes
RU2702174C1 (ru) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ПЛОТНАЯ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ И СБОРА БИОМАССЫ ВАКЦИННОГО ШТАММА ЧУМНОГО МИКРОБА Y.pestis EV
RU2396335C1 (ru) Способ приготовления плотной питательной среды
CN115011546B (zh) 一种鱼类细胞体外三维培养、诱导分化和冷冻保存方法
RU2745504C1 (ru) Питательная среда жидкая для выращивания и сброса биомассы вакционного штамма чумного микроба yersinia pestis ev
SU1397481A1 (ru) Питательна среда дл выделени микоплазм
RU2348686C2 (ru) Питательная среда для культивирования микроорганизмов
RU2644248C2 (ru) Питательная среда плотная для культивирования и выращивания туляремийного микроба
RU2425871C1 (ru) Питательная среда для выращивания легионелл
CN114381386B (zh) 一种发酵生产阿维菌素的培养基
RU2728217C1 (ru) Жидкая питательная среда для культивирования vibrio cholerae во флаконах и бутылях
Sterges Adaptability of silica gel as a culture medium
RU2087532C1 (ru) Питательная среда для накопления биомассы бифидобактерий
RU2642316C1 (ru) Способ изготовления вакцины против бруцеллеза мелкого рогатого скота
RU2333948C2 (ru) Питательная среда для выращивания возбудителя туляремии
RU2022008C1 (ru) Способ приготовления основы для питательных сред для выращивания микроорганизмов
RU2528069C1 (ru) Среда высушивания жидкая для стабилизации биомассы вторичного сбора чумного микроба вакцинного штамма ev
RU2093569C1 (ru) Питательная среда для культивирования плесневых грибов рода aspergillus и mucor