SU1761800A1 - Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей - Google Patents
Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей Download PDFInfo
- Publication number
- SU1761800A1 SU1761800A1 SU904791825A SU4791825A SU1761800A1 SU 1761800 A1 SU1761800 A1 SU 1761800A1 SU 904791825 A SU904791825 A SU 904791825A SU 4791825 A SU4791825 A SU 4791825A SU 1761800 A1 SU1761800 A1 SU 1761800A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- virus
- preparation
- sodium thiosulfate
- lyophilized preparations
- stabilizing composition
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Использование: вирусологи . Сущность изобретени : дл получени сухих вирусных препаратов используют стабилизирующий состав, который содержит, (г/л культураль- ной вирусной суспензии): мальтоза 28-60; пептон 44-100; желатин 10-20; бычий сывороточный альбумин 11-25, тиосульфат натри 1,25-3,0.
Description
Изобретение относитс к вирусологии и биотехнологии и может быть использовано дл получени сухих вирусных препаратов методом лиофилизации.
Известны стабилизирующие добавки, используемые дл лиофилизации культу- ральных суспензий вирусов и живых культу- ральных вакцин в виде композиций, состо щих из пептона, белков и углеводов. Например, дл стабилизации вирусной вакцины против чумы плото дных использовали пептон и лактозу, в качестве наполнител при высушивании вакцины против болезни Тешена свиней использовали пептон, сахарозу и желатозу, дл стабилизации живой коревой вакцины - сорбит и желатозу.
Недостатком вышеперечисленных составов вл етс то, что они обеспечивают сохранение биологической активности препаратов в течение 1 года при температуре хранени , не превышающей +4°.
Наиболее близким техническим решением по стабилизации культуральных суспензий тогавирусов, выбранным в качестве прототипа, вл етс состав, включающий в себ пептон, или бычий альбумин, или сахарозу с желатином. Недостатком предложенного состава вл етс то, что он рекомендован дл получени препаратов, хранение которых осуществл етс при температуре не более +4° С и при этом на стадии высушивани наблюдаетс значительное снижение инфекционной активности пор дка 0,8-1,3lg LDso.
Целью предлагаемого технического решени вл етс снижение потерь инфекционной активности вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей (ВЭЛ), наработанного на культуре клеток, на стадии лио- фильного обезвоживани и последующего длительного хранени при положительных температурах. Поставленна цель достигаетс тем, что в качестве стабилизатора используетс состав, состо щий из пептона желатина и углевода, дополнительно содержащий бычий сывороточный альбумин (БСА) и тиосульфат натри . В качестве углевода используетс мальтоза при следующих соотношени х компонентов (г/л культураль- ной вирусной суспензии):
Мальтоза28-60
Пептон44-100
сл
С
о
ЮЯ&
со
о
,
Желатин10-20
БСА11-25
Тиосульфат натри 1,25-3,0
На фиг. 1 и 2 приведены динамики инактивации вируса ВЭЛ в составе препаратов с различными стабилизирующими составами дл температур хранени 37 и 20°С, соответственно .
Подготовка вирусного материала к высушиванию проводилась следующим образом , Выращивание вируса (штаммы ТС-83 и № 230) на культуре клеток проводилось в соответствии с известной методикой. Полученный материал представл л собой поддерживающую питательную среду (на основе среды Игла MEM с добавлением 1- 2% сыворотки КРС), содержащую вирус. Компоненты стабилизирующего состава: пептон, БСА, мальтоза и тиосульфат натри добавл лись в сухом виде к соответствующему количеству культуральной вирусной суспензии и раствор лись в ней при комнатной температуре, после чего к полученной смеси добавл лс желатин в виде 10%-ного водного раствора, подогретого до 30-35° С. Замораживание материала осуществл лось при (-30)-(-40)° С, после чего он выдерживалс при этой температуре не менее 2 часов. Высушивание проводилось в течение 18-24 часов в вакууме (,1 мм рт.ст.) при температуре подогрева полок лиофилизатора 40° С. Остаточна влажность полученного препарата при этом не должна превышать 3%. Хранение высушенного материала осуществл етс в течение 14 дней при 37° С либо не менее 6 мес при 20° С.
Тестирование инфекционной активности исходного и лиофилизованного вирусного материала, а также его инфекционной активности во врем хранени при положительных температурах, проводилось путем титровани на первичной культуре фиброб- ластовэмбриона курицы (ФЭК) под твердым агаровым покрытием.
Примеры стабилизирующих составов, использованных дл лиофилизации вируса ВЭЛ, наработанного на культуре клеток.
П р и м е р 1. Компоненты защитной среды, г/л культуральной вирусной суспензии:
Мальтоза60
Пептон100
БСА25
Тиосульфат натри 3,0
Желатин20
П р и м е р 2. Компоненты защитной среды, г/л культуральной вирусной суспензии:
Мальтоза44
Пептон72
БСА18
Тиосульфат натри 2,12
Желатин15
П р и м е р 3. Компоненты защитной среды, г/л культуральной вирусной суспензии:
Мальтоза28
Пептон44
БСА11
Тиосульфат натри 1,25
Желатин10
Дл указанных примеров инактиваци вирусного материала на стадии лиофильно- го обезвоживани оценивалась путем опре- делени инфекционной активности материала до и после высушивани . Дл за вл емого стабилизирующего состава (примеры 1-3) и дл приведенных выше условий лиофилизации разница между титрами ис- ходной суспензии и высушенного материала составл ла 0,1+ 0,2 Ig БОЕ.
В т;абл. 1 приведены средние значени констант скоростей инактивации вируса ВЭЛ в составе полученного препарата дл температур хранени -12, 20 и 37°С.
Дл расчета констант скоростей инактивации использовалась модель вида ехр(-КИн Г)(1)
где Кин - константа скорости гибели вируса; Со и С - исходна и текуща концентраци вируса, соответственно: т- врем экспозиции. В соответствии с (1) строились линейные регрессии дл функции
Т а+Ьт(2)
Тогда коэффициент инактивации: ,303 b(3)
Дл определени коэффициентов модели (2) был использован взвешенный метод наименьших квадратов. Модель считалась адекватной , если пр ма регрессии проходила через доверительные интервалы используемого набора экспериментальных точек. Рас- чет концентраций вирусов проводилс в соответствии с известной методикой, доверительные интервалы определ лись дл 5%-но- го уровн значимости.
В ходе экспериментальных исследова- ний проводилось сравнение эффективности предлагаемого стабилизирующего состава с известными аналогами и прототипом. Данные приведены в табл.2.
В табл. 3 приведены данные, позвол ю- щие сопоставить стабилизирующие свойства защитных сред, приведенных в табл. 2, на стади х лиофильного обезвоживани и последующего хранени при температуре 20 и 37°С.
Изданных, приведенных в табл. 2, видно, что предлагаемое техническое решение обеспечивает существенное повышение устойчивости вируса ВЭЛ на стадии лиофильного обезвоживани . Предлагаемый стабилизирующий состав позвол ет в несколько раз снизить потери биологической активности препаратов при хранении их в диапазоне положительных температур до 37° С.
Наиболее рационально применение данного стабилизатора при производстве живых вирусных вакцин, т.к. его использование обеспечивает выживаемость вирусов на этапе приготовлени вакцины и позвол ет производить хранение и доставку данной вакцины без применени специальной холодильной техники.
Claims (1)
- Формула изобретениСтабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов наоснове культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей, содержащий пептон, желатин и углевод, отличающийс тем, что, с целью сниженипотерь инфекционной активности в процессе лиофильного высушивани и последующего хранени при положительных температурах, состав дополнительно содержит бычий сывороточный альбумин и тиосульфат натри , а в качестве углевода в нем используют мальтозу при следующих соотношени х компонентов, г/л культу- ральной вирусной суспензии:Пептон44-100Желатин10-20Мальтоза .28-60Бычий сывороточный альбумин 11-25 Тиосульфат натри 1,25-3,0Т а б л и ц а 125Таблица2ТаблицаЗt/H0e#i( 0#л7(/6ностй fffffff/,0Фиг. 1t/#pe#qt/ff#/fffs af/nt/faoc/лй, fff Ј0Ј//4/t8.0 60SOПО150фиг. 2вto12 ft Т,сут#ит1r180су/пни
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904791825A SU1761800A1 (ru) | 1990-02-14 | 1990-02-14 | Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904791825A SU1761800A1 (ru) | 1990-02-14 | 1990-02-14 | Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1761800A1 true SU1761800A1 (ru) | 1992-09-15 |
Family
ID=21496419
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904791825A SU1761800A1 (ru) | 1990-02-14 | 1990-02-14 | Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1761800A1 (ru) |
-
1990
- 1990-02-14 SU SU904791825A patent/SU1761800A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Селезнева А.Ю., Николаева О.В. Фадеева Л.Л. и др. Методические рекомендации полиофилизации различных вирусов дл целей длительного хранени . М., 1982, с. 39. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR100702086B1 (ko) | 동결 건조된 감독 a형 간염의 생 백신 및 그의 안정화제 | |
US4500512A (en) | Stabilizing agents for live viruses for preparing vaccines, and stabilized vaccines containing said stabilizing agents | |
US10335479B2 (en) | Methods and compositions for stabilizing dried biological materials | |
US3755557A (en) | Spray vaccines | |
CN103041383B (zh) | 一种活疫苗的耐热冻干保护剂、活疫苗冻干粉及其制备方法 | |
AU776982B2 (en) | Method for the preservation of viruses and mycoplasma | |
CN103041399B (zh) | 一种耐热保护剂及其应用 | |
KR890000107A (ko) | 안정화된 생 비루스 백신 및 그의 제조법 | |
Eidson et al. | Immunization against Marek's disease | |
CA1109393A (en) | Vaccine and its preparation | |
SU1237081A3 (ru) | Способ производства лиофилизированной вакцины против гепатита уток | |
SU1761800A1 (ru) | Стабилизирующий состав дл получени лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей | |
Siegert et al. | The pyrogens of myxoviruses I. Induction of hyperthermia and its tolerance | |
US3186908A (en) | Calcium lactobionate stabilization of labile antigenic virus vaccine materials | |
US3961046A (en) | Mumps vaccine and preparation thereof | |
Takemoto et al. | Influence of acid polysaccharides on plaque formation by influenza A2 and B viruses | |
Berge et al. | Preservation of enteroviruses by freeze-drying | |
Scott et al. | Stability of pseudorabies virus during freeze-drying and storage: effect of suspending media | |
Fellowes | Freeze-drying of foot-and-mouth disease virus and storage stability of the infectivity of dried virus at 4 C | |
Goldner et al. | Infectivity stability of live measles-virus vaccine | |
Bolin et al. | Infectious canine hepatitis virus studies with special reference to passage of raccoon tissue cultures | |
Apostolov et al. | Selective inactivation of the infectivity of freeze-dried Sendai virus by heat | |
Bassiouny et al. | Efficacy of skimmed milk as stabilizer in comparison with lacto albumen sucrose in production of fowl and pigeon pox vaccines | |
King et al. | Adenovirus isolation and serology from wild bobwhite quail (Colinus virginianus) | |
KR102544928B1 (ko) | 아미노산을 유효성분으로 함유하는 동물용 백신 또는 진단용 항원의 안정성 증진용 조성물 및 이의 용도 |