SU1701197A1 - Способ получени каллуса кукурузы - Google Patents
Способ получени каллуса кукурузы Download PDFInfo
- Publication number
- SU1701197A1 SU1701197A1 SU894771942A SU4771942A SU1701197A1 SU 1701197 A1 SU1701197 A1 SU 1701197A1 SU 894771942 A SU894771942 A SU 894771942A SU 4771942 A SU4771942 A SU 4771942A SU 1701197 A1 SU1701197 A1 SU 1701197A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- callus
- yield
- embryogenic callus
- maize
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к биотехнологии , а именно к биологическим исследовани м сельскохоз йственных растений методом культуры тканей и клеток, и может быть использовано в работе по созданию новых форм растений, в частности гибридов и исходных форм кукурузы, обладающих хоз йственно ценными признаками. Целью изобретени вл етс повышение выхода змбриогенного каллуса. Способ состоит в том, что незрелые зародыши кукурузы культивируют на питательной среде Мурасиге- Скуга при температуре 29-32°С, при этом в среду дополнительно внос т Дикамбу, Пик- лррам и 2,4-Д, 6 табл.
Description
СП
с
Изобретение относитс к биотехнологии , а именно к биологическим исследовани м сельскохоз йственных растений методом культуры клеток и тканей, и может быть использовано в работе по созданию новых форм растений, в частности сортов и исходных форм кукурузы, обладающих хоз йственно ценными признаками.
Целью изобретени вл етс повышение выхода эмбриогенного каллуса.
Способ состоит в том, что эксплантаты культивируют при повышенной температуре (29-32°С) на питательной среде Мурасиге и Скуга, в которую совместно добавл ют три ауксина а определенных концентраци х: Дикамбу, Пиклорам и 2,4-Д (по 0,1-0.5 мг/л). При совместном их внесении змбриогенные каллусы образуютс со значительно большей частотой, чем когда ауксины добавл ютс по отдельности.
Способ осуществл етс следующим образом .
В качестве эксплантатов используют незрелые зародыши кукурузы сорта Шиндель- майзер, пиний ИК 226-ТВ, А 554, размером 1,5-2,5 мм (15-20 дней после опылени ). Незрелые семена поверхностно стерилизуют в 0,1 %-ном растворе сулемы, после промывки из них вычлен ют незрелые зародыши и высаживают щитком вверх на среду с минеральными сол ми по Мурасиге и Скугу (в основном варианте) с 30 г/л сахарозы, 1 мг/л тиамина, 1 мг/л пиродоксина, 1 мг/л никотиновой кислоты, 100 мг/л мезоинози- та, 500 мг/л пролина, 100 мг/л гидролизата казеина 0,8% агара, 0,1-0,5 мг/л 2,4-Д, 0,1- 0,5 мг/л Пиклорама, 0,1-0,5 мг/л Дикамбы, рН среды довод т до 5,8. Культивируют в темноте при 29-32°С в течрние трех недель. Затем сформировавшиес каллусы пассиру ч о
чэ -ч
ют на свежую питательную среду каждые 2-3 недели. Дл регенерации растений сформировавшиес змбриогенные каллусы перенос т на среду с 0,1 мг/л2,4-Д, 0,1 мг/л Дикамбы, 0,1 мг/л Пиклорама, 50 мг/л триптофана , 5 мг/л аденина и культивируют на свету при 26 ±1°С при 16-часовом фотопериоде .
П р и м е р 1. Вли ние температуры культивировани на выход эмбриогенного каллуса.
Изучают вли ние температуры культивировани незрелых зародышей на выход змбриогенного каллуса кукурузы (лини В- 73). Дл этого незрелые зародыши высаживают на среду МС с 1 мг/л 2,4-Д и культивируют: а) при температуре 26 ±1°С; б) при температуре 29 ±1°С; в) при 32 ± 1°С; г) при 35 ± 1°С.
Через 3 недели определ ют выход змбриогенного каллуса. Культивирование при температуре 32 ±1°С увеличивает выход змбриогенного каллуса в несколько раз (табл.
1).
Все далее описываемые опыты провод т при температуре 32 ±1°С.
П р и м е р 2. Вли ние минеральных солей на выход эмбриогенного каллуса кукурузы .
Дл культивировани тканей кукурузы используют самые разнообразные среды. В св зи с этим требуетс вы снить, кака из наиболее часто употребл емых сред вл етс наилучшей дл образовани змбриоген- ных каллусов кукурузы из незрелых зародышей. Изучают вли ние солей по Му- расиге и Скугу (МС), Гамборга (В5), Чу-Вонга (№6) и Нича на частоту образовани эмбри- огенных каллусов из различных генотипов. Результаты отражены в табл. 2.
Эмбриогенные каллусы образуютс с самой высокой частотой на среде Мурасиге и Скуга дл всех генотипов. В св зи с этим все дальнейшие опыты провод т на среде Мурасиге и Скуга.
П р и м е р 3. Вли ние фитогормонов на выход эмбриогенного каллуса.
Далее исследуют вли ние различных ауксинов (2,4-Д, Пиклорама, Дикамбы) и их комбинаций на образование эмбриогенного каллуса. Дл этого готов т среду Мурасиге и Скуга в четырех вариантах: с 1 мл/л Пиклорама (среда П), с 1 мг/л 2,4-Д (среда Д), с 1 мг/л Дикамбы (среда Ди), и в четвертую среду внос т по 0,33 мг/л каждого фи- тогормона (среда ПДДи). Частота образовани эмбриогенного каллуса вл етс наиболее высокой на среде ПДДи дл всех генотипов (табл. 3).
На других средах частота образовани змбриогенного каллуса различна дл разных генотипов, причем характер действи фитогормонов различаетс дл каждого генотипа . Так, дл сорта Шиндельмайзер среды по способности образовывать эмбриогенный каллус можно расположить в
р д: ПДДи Д П Ди, дл линии А 554: ПДДи Ди П Д, а дл линии В 73: ПДДи П Ди Д. Таким образом, обнаружен факт стимул ции образовани эмбриогенного каллуса при совместном внесении в
среду культивировани трех фитогормонов: Пиклорама, 2,4-Д и Дикамбы.
П р и м е р 4. Подбор оптимальной концентрации фитогормонов дл образовани эмбриогенного каллуса кукурузы.
Далее требуетс вы снить, кака концентраци фитогормонов вл етс оптимальной дл каллусообразовани . Дл этого в среду МС внос т Пиклорам, 2,4-Д, Дикам- бу в следующих концентраци х: по 0,1 мг/л каждого фитогормона (среда 0,1 ПДДи), по
0,3 мг/л каждого фитогормона (среда 0,3 ПДДи), по 0,5 мг/л каждого ауксина (среда 0,5 ПДДи), по 1 мг/л (1 ПДДи) и по 2 мг/л каждого фитогормона (среда 2 ПДДи). В качестве контрол используют среду МС с 1
мг/л 2,4-Д (среда Д). Частота образовани эмбриогенных каллусов вл етс максимальной (генотип - лини А 554) на среде 0,3 ПДДи, на средах 0,1-ПДДи и 0,5 ПДДи превышает контроль, а на средах 1 ПДДи и 2
ПДДи ниже, чем в контроле (табл. 4).
Таким образом, оптимум наблюдаетс при добавлении 0,3 мг/л каждого фитогормона . Граничными концентраци ми предлагаемого способа будут концентрации
каждого фитогормона в 0,1-0,5 мг/л, поскольку при этих концентраци х выход эмбриогенного каллуса выше, чем в контроле.
П р и м е р 5. Регенераци растений из эмбриогенных каллусов кукурузы.
Дл регенерации растений эмбриоген- ные каллусу кукурузы перенос т на среду МС с 0,1 мг/л Пиклорама, 0,1 мг/л 2,4-Д, 0,1 мг/л Дикамбы, 50 мг/л триптофана, 5 мл/л аденина и далее их культивируют на свету
при 26 ±1°С при 16-часовом фотопериоде. Через две недели наблюдают регенерацию побегов. Определ ют процент каллусов с регенерацией и количество побегов на каллус (табл. 5).
Таким образом, из эмбриогенных каллусов , полученных предлагаемым способом, возможна регенераци растений с высокой частотой.
Приведенные данные показывают, что использование способа позвол ет увеличить выход эмбриогенного каллуса до 90% (34% в прототипе), причем эффект увеличени выхода наблюдаетс у различных генотипов .
Перечень компонентов среды, использовавшихс в осуществлении предлагаемого способа.
Состав питательной среды, мг/л: NhUN031650
KN031900
CaCfc -2H20440
MgSO4 -7HaO370
КН2Р04170
N32EDTA -2Н2037.3
FeS04 -7Н2027,8
6,2
4Н2022.3
7Н208.6
0,83
0.26 0,025
НзВОз
MnSCU
ZnS04
KJ
Na2Mo04 2H20
CuS04 -5H20
Вли ние температуры культивировани на выход эмбриогенного каллуса
Вли ние минеральных солей на процент формировани эмбриогенного каллуса из незрелых зародышей дл разных генотипов
Вли ние фитогормонов на процент образовани эмбриогенного каллуса из незрелых зародышей дл разных генотипов
CoCl2 -6H200.025
Сахароза30000
Пролин500
Мезоинозит100,0
Никотинова кислота0,5
Пиридоксин HCI1,0
Тиамин НСГ1,0
Агар7000
рН5,8
Гормоны(табл. 6)
Claims (1)
- Формула изобретениСпособ получени каллуса кукурузы, включающий эксплантацию незрелых зароды ше на модифицированную питательную среду Мурасиге-Скуга и последующее куль- тивирование,отличающийс тем,что. с целью повышени выхода эмбриогенного каллуса, зародыши эксплантируют на питательную среду, дополнительно содержащую 0,1-0,5 мг/л натриевой соли дихлорфени- луксусной кислоты, 0.1-0,5 мг/л Пиклорама и 0,1-0,5 мг/л Дикамбы, и культивирование провод т при 29-32°С.Таблица 1Таблица 2Таблица 3Вли ние концентраций фитогормонов на выход эмбриогенного каллуса кукурузы линии А 554Таблица 5 Регенераци растений из полученного по данному способу эмбриогенного каллусаГормоны, необходимые дл осуществлени способаТаблица АТаблица 6
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894771942A SU1701197A1 (ru) | 1989-12-20 | 1989-12-20 | Способ получени каллуса кукурузы |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894771942A SU1701197A1 (ru) | 1989-12-20 | 1989-12-20 | Способ получени каллуса кукурузы |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1701197A1 true SU1701197A1 (ru) | 1991-12-30 |
Family
ID=21486078
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894771942A SU1701197A1 (ru) | 1989-12-20 | 1989-12-20 | Способ получени каллуса кукурузы |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1701197A1 (ru) |
-
1989
- 1989-12-20 SU SU894771942A patent/SU1701197A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Armstrong C.L. et. at: Achievement arid maintenance of friable embryogenlc callus of maize and moolvement of L- prollne, - Planta, 1985, 6, v. 64, № 2, p. 207-214. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kintzios et al. | Growth regulator pretreatment improves somatic embryogenesis from leaves of squash (C ucurbita pepo l.) and melon (Cucumis melo l.) | |
Gamborg et al. | Somatic embryogenesis in cell cultures of Glycine species | |
US4684612A (en) | Process for regenerating soybeans | |
US5731191A (en) | Method for regeneration of coniferous plants by somatic embryogenesis employing polyethylene glycol | |
Abou-Mandour et al. | The effect of abscisic acid on growth and development of intact seedlings, root and callus cultures and stem and root segments of Phaseolus coccineus | |
Babaoglu et al. | TDZ-specific plant regeneration in salad burnet | |
JP2007528197A (ja) | 綿植物を生産するための組織培養法 | |
Agnihotri et al. | In vitro cloning of female and male Carica papaya through tips of shoots and inflorescences | |
WO1995033822A1 (en) | Growth medium for conifer embryogenic tissue | |
SU1701197A1 (ru) | Способ получени каллуса кукурузы | |
Agrawal et al. | In vitro micropropagation of Delphinium malabaricum (Huth) Munz.—a rare species | |
Takahashi et al. | Plant regeneration through somatic embryogenesis in barnyardgrass, Echinochloa oryzicola Vasing | |
Xu et al. | Efficient in vitro plant regeneration of Pinellia ternata (Thunb) Breit | |
Engvild | Callus and cell suspension cultures of carnation | |
Yoshida et al. | Induction and selection of salt-tolerant mutant rices by tissue culture–recent progress at IRRI | |
Lillo | Effects of media components and environmental factors on shoot formation from protoplast-derived calli of Solanum tuberosum | |
Tripathy et al. | In vitro callus induction and plantlet regeneration from Indian cotton cultivars | |
Yadav et al. | Influence of explanting season on in vitro multiplication of Celastrus paniculatus Willd.–An endangered medicinal herb | |
SU1701744A1 (ru) | Способ регенерации растений пшеницы в культуре тканей | |
Zhang et al. | Factors influencing shoot regeneration from cotyledons of tetraploid Isatis indigotica Fort | |
Vidoz et al. | Plant regeneration of Lotononis bainesii Baker (Fabaceae) through cotyledon and leaf culture | |
Padhya | Mass propagation of ferns through tissue culture | |
Kintzios et al. | THE BIOTECHNOLOGY OF VISCUM ALBUM L.: TISSUE CULTURE, SOMATIC EMBRYOGENESIS AND PROTOPLAST ISOLATION | |
USH951H (en) | Process for corn regeneration from tissue culture | |
SU1446155A1 (ru) | Способ получени растений-регенерантов кукурузы из культуры тканей |