SU1650701A1 - Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter - Google Patents
Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter Download PDFInfo
- Publication number
- SU1650701A1 SU1650701A1 SU884427027A SU4427027A SU1650701A1 SU 1650701 A1 SU1650701 A1 SU 1650701A1 SU 884427027 A SU884427027 A SU 884427027A SU 4427027 A SU4427027 A SU 4427027A SU 1650701 A1 SU1650701 A1 SU 1650701A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- medium
- sodium
- isolation
- metronidazole
- amphotericin
- Prior art date
Links
Abstract
Изобретение относитс к медицинской микробиологии и может быть использовано в бактериологической диагностике дл выделени и идентификации кампи- лобактерий. Цель изобретени - повышение селективности среды в отношении Campylobacter pylori. Среду готов т следующим образом. В 1 л дистиллированной воды внос т компоненты, г/л- ферментативный гидролизат казеина 13-16, глюкоза 4-6, экстракт кормовых дрожжей 4-6, хлорид натри 6,3-6,5, карбонат натри 0,5-0,95, цистеин дигидрохлорид 0,7-0,8. мочевину 2-10, тиогликол т натри 0,4-0.6, бромти- моловый синий 0,02-0,03 и агар 0,5-0.7. Смесь довод т до кипени и стерилизуют. Отдельно готов т раствор, содержащий, г/л амфотерицин В 0,002-0,004, метронидазол 0,0005-0,001 и нзлидиксовую кислоту 0,025-0,05, стерилизуют его и внос т в основной состав. Среду разливают по пробиркам и используют дл посева. При росте С. pylori цвет среды измен етс с трав нисто-, зеленого или оливкового в синий. 1 табл.The invention relates to medical microbiology and can be used in bacteriological diagnostics for the isolation and identification of campilobacteria. The purpose of the invention is to increase the selectivity of the medium with respect to Campylobacter pylori. The medium is prepared as follows. Components are added to 1 liter of distilled water, g / l - enzymatic casein hydrolyzate 13-16, glucose 4-6, fodder yeast extract 4-6, sodium chloride 6.3-6.5, sodium carbonate 0.5-0, 95, cysteine dihydrochloride 0.7-0.8. urea 2-10, sodium thioglycol 0.4-0.6, bromine-molar blue 0.02-0.03 and agar 0.5-0.7. The mixture is boiled and sterilized. Separately, a solution is prepared containing, g / l amphotericin B 0.002-0.004, metronidazole 0.0005-0.001, and nzlidixic acid 0.025-0.05, sterilized and added to the basic composition. The medium is dispensed into test tubes and used for seeding. With the growth of C. pylori, the color of the medium changes from grass, green or olive to blue. 1 tab.
Description
Изобретение относитс к медицинской микробиологии и может быть использовано в бактериологической диагностике дл выделени и идентификации кампилобакте- рий.The invention relates to medical microbiology and can be used in bacteriological diagnostics for the isolation and identification of campylobacterium.
Цель изобретени - повышение селективности среды в отношении Campylobacter pylori.The purpose of the invention is to increase the selectivity of the medium with respect to Campylobacter pylori.
Пример 1. Дл получени 1 л среды смешивают компоненты в следующих соотношени х , г/л: ферментативный гидролизат казеина 13; глюкоза 4; экстракт кормовых дрожжей 4; хлорид натри 6,3; карбонат натри 0,5; цистеин дигидрохлорид 0,7; мочевина 2; тиогликол т натри 0,6; бромти- моловый синий 0,02; агар 0,5.Example 1. To obtain 1 l of medium, the components are mixed in the following ratios, g / l: enzymatic casein hydrolyzate 13; glucose 4; fodder yeast extract 4; sodium chloride 6.3; sodium carbonate 0.5; cysteine dihydrochloride 0.7; urea 2; sodium thioglycolt 0.6; bromine molar blue 0.02; agar 0.5.
Компоненты в указанных количествах внос т в 1 л дистиллированной воды, смесьThe components in the specified amounts are added to 1 liter of distilled water, the mixture
довод т до кипени , разливают во флаконы и автоклавируют при 1 эти в течение 20 мин. После автоклавировани 1 н. раствором сол ной кислоты довод т рН среды до 7,0. После охлаждени среды до 50°С добавл ют амфотерицин В 0,002 г, метронидазол 0,0005 г, налидиксовую кислоту 0,025 г, предварительно растворенные в 5 мл дистиллированной воды и простерилизованные фильтрацией через мембранный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм.bring to a boil, pour into vials and autoclave at 1 these for 20 minutes. After autoclaving 1 n. The pH was adjusted to 7.0 with hydrochloric acid. After cooling the medium to 50 ° C, amphotericin B is added to 0.002 g, metronidazole 0.0005 g, nalidixic acid 0.025 g, previously dissolved in 5 ml of distilled water and sterilized by filtration through a membrane filter with a pore diameter of 0.2 µm.
Готовую среду разливают стерильно по 5 мл в пробирки.The prepared medium is poured sterilely in 5 ml tubes.
П р и м е р 2. Готов т среду в соответствии с примером 1, но компоненты берут в следующем количестве, г/1л воды: Ферментативный гидролизат казеина14 Глюкоза5PRI mme R 2. Prepare the medium in accordance with Example 1, but the components are taken in the following amount, g / 1 l of water: Enzymatic casein hydrolyzate 14 Glucose5
ОчOch
сл оsl o
33
та ий- that yi
5five
6,4 0,76.4 0.7
5five
0,75 6,0 0,5 0,0030.75 6.0 0.5 0.003
0,0008 10 0,04 0,025 0,60.0008 10 0.04 0.025 0.6
П р и м е р 3. Готов т среду в соответствии с примером 1, но компоненты берут в следующем количестве, г/1л воды: Ферментативный гидро- лизат казеина16PRI me R 3. Prepare the medium in accordance with Example 1, but the components are taken in the following quantity, g / l of water: Casein hydrolyzate 16
Глюкоза6Glucose6
Экстракт кормовыхFeed extract
дрожжей. 6yeast. 6
Хлорид натри 6,5Sodium chloride 6.5
Карбонат натри 0,95Sodium carbonate 0.95
Цистеин дигидрохлорид0,8Cysteine Dihydrochloride 0.8
Мочевина10 Urea10
Тиогликол т натри 0,6Sodium thioglycol 0.6
Амфотерицин В0,004Amphotericin B0,004
Метронидазол0,001Metronidazole 0.001
Налидиксова кислота0,05Nalidixic acid0.05
Бромтимоловый синий0,03 Bromthymol blue0,03
Агар0,7Agar0,7
П р и м е р 4. Три варианта сред засевают исследуемой культурой, Посевы инкубируют при 37°С в течение 4-5 сут в обычных аэробных услови х (до 20% кислорода). При изменении окраски среды с трав нисто-зеленой (оливковой) на синюю определ ют наличие С. pylori. Отдельные штаммы стрептококков, растущие на данной среде, окрашивают среду в желтый цвет. Чувстви- тельность среды 106микр. кл/мл.EXAMPLE 4: Three variants of media are inoculated with the culture to be studied. Crops are incubated at 37 ° C for 4-5 days under normal aerobic conditions (up to 20% oxygen). When the medium changes from grass-green (olive) to blue, the presence of C. pylori is determined. Separate strains of streptococci growing on this medium paint the medium yellow. The sensitivity of the environment is 106 microns. cells / ml
Среда подавл ет рост Proteus spp., Escherichia coli, Pseudpmonas aeruginosa. Bacillus spp., Candida albicans и большинство штаммов Streptococeus spp.The medium inhibits the growth of Proteus spp., Escherichia coli, Pseudpmonas aeruginosa. Bacillus spp., Candida albicans and most strains of Streptococeus spp.
При посеве на среду обсемененного патологического материала(биоптаты, операционный материал и т д.) С. pylori вы вл ют через 30-120 мин инкубации по по влению синей окраски на инфицированных кампи- лобактери ми участках ткани.When seeding on the medium contaminated with pathological material (biopsy specimens, surgical material, etc.), C. pylori is detected after 30-120 minutes of incubation, the appearance of blue coloration on the infected areas of tissue-infected bacteria.
Результаты испытани среды по выделению и идентификации С. pylori представлены в таблице.The results of the test environment for the isolation and identification of C. pylori are presented in the table.
Использование, питательной среды позвол ет повысить точность вы влени С. pylori за счет повышени селективных свойств среды.The use of the nutrient medium makes it possible to increase the accuracy of the detection of C. pylori by increasing the selective properties of the medium.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884427027A SU1650701A1 (en) | 1988-06-01 | 1988-06-01 | Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU884427027A SU1650701A1 (en) | 1988-06-01 | 1988-06-01 | Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU1650701A1 true SU1650701A1 (en) | 1991-05-23 |
Family
ID=21375691
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU884427027A SU1650701A1 (en) | 1988-06-01 | 1988-06-01 | Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU1650701A1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5498528A (en) * | 1994-06-10 | 1996-03-12 | King; Wing | Detection of helicobacter pylori |
-
1988
- 1988-06-01 SU SU884427027A patent/SU1650701A1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Авторское свидетельство СССР № 1342017, кл. С 12 Q 1/04. 1986. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5498528A (en) * | 1994-06-10 | 1996-03-12 | King; Wing | Detection of helicobacter pylori |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US5434056A (en) | Method of bacteriological analysis, and medium for the detection of bacteria of the Salmonella genus | |
| US5210022A (en) | Method test media and chromogenic compounds for identifying and differentiating general coliforms and Escherichia coli bacteria | |
| US5643743A (en) | Method for detecting coliform and E. coli bacteria | |
| US6306621B1 (en) | Membrane filter agar medium for simultaneous detection of total coliforms and E. coli | |
| Finegold et al. | New selective and differential medium for coagulase-positive staphylococci allowing rapid growth and strain differentiation | |
| EP0954560B1 (en) | Method and medium for detecting vancomycin-resistant enterococcus | |
| US5411867A (en) | Method for determination of E. coli in water | |
| CN100392096C (en) | Two phase Roe's culture medium and preparation method thereof | |
| Curtis et al. | Frequentin: an antibiotic produced by some strains of Penicillium frequentans Westling | |
| SU1650701A1 (en) | Nutrient medium for isolation of bacteria genus campylobacter | |
| Lund et al. | Rapid speciation of Haemophilus with the porphyrin production test versus the satellite test for X | |
| US5650290A (en) | Method & Medium for use in detecting E. coli and total coliforms | |
| US6130057A (en) | Method for differentiating microorganisms in a sample | |
| Hayward et al. | Assessment of technique for rapid detection of Escherichia coli and Proteus species in urine by head-space gas-liquid chromatography | |
| WO2000077242A2 (en) | Detection of microorganisms | |
| US4017420A (en) | Stable oxidase reagent solutions | |
| ES2607629T3 (en) | Use of a beta-glucosidase activator for the detection and / or identification of C. Difficile | |
| US6699685B1 (en) | Method, test media and chromogenic compounds for identifying and differentiating general coliforms and escherichia coli bacteria | |
| JP3380956B2 (en) | Staphylococcus aureus detection medium | |
| Jennison et al. | Sensitivity of Candida strains to nystatin | |
| SU1010129A1 (en) | Culture medium for differentiating fluorescent pseudomonades from non-fermenting gramm-negative bacteria | |
| Hall | A direct plate count method for detecting E. coli in frozen food by detecting indole in colonies | |
| SU1752772A1 (en) | Method of pseudomonas aeruginosa isolation | |
| SU596619A1 (en) | Nutrient medium for diagnosis of diphtheria | |
| SU988865A1 (en) | Method for identifying y. pseudotuberculosis and y. enterocolitica |