SU1636445A1 - Способ выращивани мицелиальных организмов - Google Patents

Способ выращивани мицелиальных организмов Download PDF

Info

Publication number
SU1636445A1
SU1636445A1 SU894673545A SU4673545A SU1636445A1 SU 1636445 A1 SU1636445 A1 SU 1636445A1 SU 894673545 A SU894673545 A SU 894673545A SU 4673545 A SU4673545 A SU 4673545A SU 1636445 A1 SU1636445 A1 SU 1636445A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
biomass
layer
culture
fermenter
nutrient medium
Prior art date
Application number
SU894673545A
Other languages
English (en)
Inventor
Юрий Васильевич Редикульцев
Николай Васильевич Ширшиков
Светлана Борисовна Петрикевич
Ирина Бяшеровна Пасяева
Original Assignee
Институт Биохимии И Физиологии Микроорганизмов Ан Ссср
Научно-Исследовательский Вычислительный Центр Ан Ссср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Биохимии И Физиологии Микроорганизмов Ан Ссср, Научно-Исследовательский Вычислительный Центр Ан Ссср filed Critical Институт Биохимии И Физиологии Микроорганизмов Ан Ссср
Priority to SU894673545A priority Critical patent/SU1636445A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1636445A1 publication Critical patent/SU1636445A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Mushroom Cultivation (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биотехнологии и может быть использовано в пищевой, медицинской и микробиологи- ческой промышленности. Цель изобретени  - повышение выхода биомассы мицелиальных организмов. Процесс выращивани  Panus tigrinus 8/18, Panus tig- rinus 144, Streptomyces tumemacerans BK№-502 осуществл ют в услови х гидродинамического расслоени  культуральной жидкости и локализации мицели  внутри объема кулвтуральной среды в придонном слое. Перемешивание культуральной жидкости провод т посредством колебаний гидростатического столба всего ее рабочего объема с амплитудой колебани  1-3 мм. Аэрацию осуществл ют через насыщение кислородом воздуха придонного сло . В процессе культивировани  отработанную культу- ральную среду, образующуюс  над слоем мицели , замещают свежей питательной средой. 1 ил (Л

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии и может быть использовано в микробиологической , медицинской и пищевой промышленности.
Цель изобретени  - повышение выхода биомассы.
На чертеже представлена установка дл  осуществлени  способа.
Способ заключаетс  в том, что процесс выращивани  мицелиальных организмов осуществл ют в услови х гидродинамического расслоени  культураль- ной жидкости и локализации сло  мицели  внутри объема культуральной среды .
Установка содержит йерментер 1, крышку 2, перемешивающий узел 3 с пробкой 4 и штуцером 5, подключенным к генератору 6 пневмоимпульсов, штуцер 7 дл  ввода инокул та, штуцер 8 дл  отвода воздуха из Аерментера, штуцер 9 дл  отвода культуральной среды, штуцер 10 дл  ввода в Ьермен тер свежей питательной среды, насос 11, теплообменную рубашку 12, бу-4 тыли 13 и 14 дл  питательной среды и дл  сбора культуральной среды, бактериальные фильтры 15 и 16 и технологическую сеть трубопроводов 17. Перемешивающий узел 3 (устройство
со о
4
4
сл
дл  перемешивани  и насыщени  пита-.- тельной среды кислородом воздуха) содержит кусок силиконовой трубки диаметром 10„мм, которую размещают в , металлической трубе с боковым отводом Силиконовую трубку с одной стороны снабжают лепестковым клапаном, а затем герметично скрепл ют с торцами металлического корпуса накидными гай-JQ ками со штуцерами. На металлический корпус одевают эластичную пробку, с помощью которой устройство вертикально закрепл ют в крышке емкости , Ферментера АНКУМ-2 таким образом, $ чтобы штуцер находилс  на рассто нии 5-10 мм от дна этой емкости.
Установку стерилизуют в автоклаве в режиме 1 атм в течение 1 ч. Из бутыли 13 в ферментер 1 с помощью насо- 20 са 1 1 закачивают заданное количество питательной среды. Через штуцер 7 ввод т посевной мицелий и включают генератор 6, пневмоимпульсы которого воздействуют на силиконовую трубку 25 перемешивающего узла 3, заставл   ее вибрировать с заданной частотой генератора 6. При поступлении пневмо- импульсов в перемешивающий узел 3 силиконова  трубка деформируетс  0 с заданной частотой, вследствие чего образуетс  пульсирующий турбулентный газожидкостной поток, который активно насыщает слой питательной среды. оздух в Ферментер поступает через - бактериальный фильтр 15, установленный на бутыли 13 с питательной средой отводитс  из --ферментера в атмосферу через бактериальный фильтр 16, установленный на бутыли 14 дл  слива отаботанной жидкости. Заполнение полости перемешивающего узла питательной средой и воздухом и возврат образованг ной газожидкостной смеси в ферментер араллельно с насыщением питательной .с среды кислородом воздуха и перемешианием придонного объема питательной среды вызывают колебани  всего объема ультуральной жидкости с амплитудой 1-3 мм и частотой, заданной генератоом , и обеспечивают пассивное (ламиарное ) -перемешивание культуральной идкости в приповерхностном объеме Ьерментера.
При амплитуде колебаний гидроста1 тического столба культуральной жид ости 41 мм происходит обрастание мицелием стенки ферментера, а при амплитуде 3 мм увеличиваютс  энерге35
40
„ 55
0 5 0 с
5
0
5
тические затраты на проведение процесса . Частота колебаний гидростати- ческого столба культуральной:жидкости выбираетс , исход  из возможностей технологического оборудовани ,
В процессе перемешивани  в момент внесени  в питательную среду посевного материала осуществл етс  его равномерное распределение по всему объему культуральной жидкости. В/.процессе культивировани  происходит рис- слоение культхральной жидкости на слой, содержащий биомассу, и жидкую фазу (кулвтуральную среду), Плотна  биомасса растущего мицели  при пассивном (ламинарном) перемешивании, вызываемом колебани ми гидростатического столба культуральной жидкости, преп тствует образованию пены и зарастанию стенок ферментера.
Периодически в процессе роста по мере исчерпани , субстрата культураль- ную жидкость, образующуюс  вне сло  мицели , сливают в бутыль 14, а в йерментер заливают новую порцию исходной питательной среды из бутыли 13. В результате весь объем ферментера может быть заполнен биомассой.
Дл  реализации способа может быть использовано любое ферментационное оборудование, обеспечивающее насыщение жидкости газом и позвол ющее осуществить колебание объема культуральной жидкости с амплитудой Т-3 мм, например аппараты, перемешивающие устройства , в которых устанавливают вблизи дна БИОР-01 и БИОР-025. При этом Ферментационна  емкость должна быть снабжена устройством дл  колебани  гидростатического столба жидкости от воздействи  пневматического ; или гидравлического приводов.
Дл  иллюстрации работы способа используют либо ферментационную емкость от аппарата АНКУМ-2, в котором вместо традиционного перемешивающего узла используют устройство дл  перемешивани  и газонасыщени  питательной среды, либо колбы Бунэена, снабженные аналогичным устройством.
Пример 1. Гриб Panus tigri- nus 8/18 смывают с кос ка 10- мл сте- рильной водопроводной воды, внос т в ферментер, сконструированный из колбы Вунзена, куда предварительно загружают 400 мл питательной среды следующего состава, г/л глицерин 25,0; пеп
тон 5,0;.соева  мука 2,5; КШз 2,0; СаС1«, б/в 0,5; MgSO 7HU0 OJ1.
Дл  осуществлени  аэрации культу- ральной жидкости с придонного объем ферментера с частотой 3 Гц отбирают 50 мл питательной среды, которую перемешивают с воздухом в турбулентном потоке и возвращают в придонный объем ферментера. Соотношение объема перемешивающего узла к диаметру ферментера выбирают из расчета колебани  гидростатического столба рабочей жидкости с амплитудой 3 мм. Объе культуральной жидоксти перемешивающего узла составл ет 50 мл, а диаметр колбы Бунзена 80 мм, что приводит к изменению гидростатического столба рабочей жидкости в ферментере с амплитудой 3 мм. Выращивание мицели  провод т при te24°C. Через 3 ч после инокулировани  гриб равномерно распредел етс  по всему объему среды. Через 6 ч начинает формироватс  рыхлый верхний слой, но часть миц ли  еще распредел етс  по всему объему среды. Через 12 ч после посева весь мицелий гриба занимает верхний елой культуральной жидкости, а в придонном слое активного перемешивани  питательной среды имеютс  отдельные вкгйочени  биомассы. Через 14 ч после посева весь растущий мицелий флотирует в приповерхностный объем колбы, а под ним находитс  прозрачна  с  рко- желтой окраской культуральна  среда, не содержаща  основного субстрата. Культуральную среду через каждые последующие 10 ч сливают в бутыль, а в ферментер загружают исходную питательную среду до уровн  рабочего объ
ема
Через 71 ч выращивани  нижн   поверхность мицелиальной массы находитс  на высоте 15-20 мм от дна ферментера , что вызывает турбулизацию мице- лиального сло  и затрудн ет перезагрузку питательной средой, в св зи с чем процесс останавливают.
Концентраци  биомассы к концу процесса составл ет лМЗ, г/л, что в л/2,6 раза больше, чем в известном способе , где концентраци  биомассы составл ет 5 г/л. Плотность локализованного сло  биомассы составл ет 18,4 г/л
II
( , где В - количество биомассы
В
Ґ
в граммах по сухому весу; - объем сло  мицели  в культуральной жидкос
ти, л; Р - плотность биомассы, г/л),
0
5 вают через
0
5
Микроскопическ.ий контроль показыва- ., ет в пробах отсутствие мицели  с по- врежденными гифами, что свидетельствует об активном физиологическом состо нии биомассы.
Пример2. Емкость от ферментера АНКУМ2, оборудованную перемешивающим узлом, подключают к бутыли с питательной средой и бутыли дл  сбора культуральной среды. В «Ьерментер заливают 700 мл питательной среды состава , указанного в примере 1, ги вно5 с т 5 мл грибной суспензии P.tigri-1 v tius 8/18, выращенной по примеру 1. Культивируют при амплитуде гидростатического столба культуральной жидкости 1 мм. Через 10 ч культивировани  мицелий собираетс  в приповерхностном объеме ферментера. Через 20, 44 и 58 ч роста в Лерментере производ т замену культуральной среды на свежую питательную среду. Процесс останавли . . 92 ч. В объеме 700 сма
грибной мицелий занимает объем 400 см 157 об.%), что составл ет 10,8592 г (с.в.) биомасы гриба. Концентраци  биомассы составл ет 15,6 г/л, что в 3,1 раза больше, чем в известном способе. Плотность локализованного сло  биомассы составл ет 27,2 г/л. Микроскопический контроль подтверждает отсутствие мицели  с повреждении-4 ми гифами в препаратах биомассы.
ПримерЗ. В ферментер емкостью 600 мл внос т 200 мл питательной среды и 10 мл суспензии гриба Panus tigrinus 144, выращенного в колбе. Состав среды и услови  культивировани  как в примере 1. Культи- вирумт при амплитуде колебаний гидростатического столба культуральной жидкости 1 мм,
После Нормировани  плотного верхнего сло  мицели  на прот жении ферментации по мере исчерпани  основного субстрата три раза в сутки сливают культуральную среду, замен   ее порQ цией питательной среды, поддержива  посто нным рабочий объем ферментера. Через 6 сут процесс останавливают, так как визуально грибной мицелий занимает почти весь объем ферментера. Из 200 см рабочего объема мицелий занимает см (70 об.%). Этот объем сырого мицели  содержит 9,6251 г абсолютно сухой биомассы. Концентраци  биомассы составл ет
5
0
71636445
48,1 г/л, что в 9,6 раза больше, чем в известном способе. Плотность локализованного сло  биомассы составл ет г/л. Микроскопический контроль показывает в пробах, отбираемых во врем  замени среды, отсутствие мицели  с поврежденными гифами,
П р и м е р 4. Актиномицет Strep - tomyces tumemacerans ВКМ-502, синте- JQ зирующий метаболиты с инсектицидными свойствами, выращивают1 в колбах на среде состава г/л: лактоэа 2,0; соева  мука,-15,0; дрожжевой эктракт5,0; ( рН 7,0-7,2, в течение 4 js на .качалке {200 об./мин), По- 1 лученный посевной материал внос т в Ферментационную среду состава, г/л: крахмал 15,0; глюкоза 1,5; соева  мука 20,0; сухие дрожжи 5,0; NaCl 20 2,5; СаСОэ 3,0; СоСЦ , 0,05; рН 7,2, в ферментер с рабочим объе- мом 1 л и провод т выращивание клеток в течение 5 сут как описано в примере 1. Амплитуда колебаний гидро- 25 статического столба культуральной жидкости составл ет 1 мм. В конце первых суток на поверхности фазового раздела и по периметру царги (прор с
с ч 9 б
в к п б э
зрачна  стенка Ферментера) образуют- зр и аэрацию, осуществл емую в ее лос  заметные невооруженным глазом скоплени  мицелиальной биомассы,котог рые к концу 2 сут образуют рыхлый слой биомассы толщиной 8-10 мм, перекальной зоне, отличающий- с   тем, что, с целью повышени  вы хода биомассы, перемешивание осуществл ют воздействием колебаний с
8
мвшивани  в ферментере наблюдаетс  расслоение мицелиального сло  биомассы , который увеличиваетс  в 2 раза и имеет толщину 30 мм.
Через 96 ч процесс останавливают. К этому моменту плотный слой биомассы в ферментере имеет толщину 67 мм, что составл ет 50% его рабочего объема Концентраци  биомассы составл ет 9,5 г/л сухого вещества, что в Р Л1,4 раза больше, чем при выращивании известным методом. Плотность сло  биомассы составл ет 19 г/ «

Claims (1)

  1. Таким образом, предлагаемый способ выращивани  мицелиальных организмов позвол ет повысить выход биомассы в культуральной жидкостное 3-ГО раз по сравнению с известным способом, упростить процесс -выделени  экзомета- болитов, а также увеличивает произво- де тельность аппарата при снижении энергозатрат, Формула изобретени 
    Способ выращивани  мицелиальных организмов, предусматривающий перемешивание культуральной жидкости, помещенной в замкнутый объем ферментера,
    и аэрацию, осуществл емую в ее локальной зоне, отличающий- с   тем, что, с целью повышени  выхода биомассы, перемешивание осуществл ют воздействием колебаний с
    крывающий всю поверхность культураль- ,, амплитудой 1-3 мм имеющегос  объема
    ной жидкости в ферментере. Под слоем биомассы находитс  прозрачна  отработанна  среда, не содержаща  основно- го субстрата.
    После замены питательной среды, Q восстановлени  режима аэрации и пере-
    культуральной жидкости с получением сло  биомассы и жидкой фазы, в качестве локальной зоны дл  аэрации используют придонный слой, а жидкую фазу, | свободную от биомассы,периодически за , мешают свежей питательной средой.
    культуральной жидкости с получением сло  биомассы и жидкой фазы, в качестве локальной зоны дл  аэрации используют придонный слой, а жидкую фазу, | свободную от биомассы,периодически за- , мешают свежей питательной средой.
    Составитель В. Соина Редактор Н. Яцола Техред Л.Олийнык Корректор М.Самборска 
    Заказ 796
    Тираж 379
    ВНИИПИ Государственного комитета по изобретени м и открыти м при ГКНТ СССР 113035, Москва, Ж-35, Раушска  наб., д. 4/5
    Подписное
SU894673545A 1989-04-04 1989-04-04 Способ выращивани мицелиальных организмов SU1636445A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894673545A SU1636445A1 (ru) 1989-04-04 1989-04-04 Способ выращивани мицелиальных организмов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894673545A SU1636445A1 (ru) 1989-04-04 1989-04-04 Способ выращивани мицелиальных организмов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1636445A1 true SU1636445A1 (ru) 1991-03-23

Family

ID=21439325

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894673545A SU1636445A1 (ru) 1989-04-04 1989-04-04 Способ выращивани мицелиальных организмов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1636445A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1992015667A1 (en) * 1991-03-08 1992-09-17 Memtec Limited Biological reaction processes

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Высшие съедобные базидиомицеты в поверхностном и глубинном культивировании. - Наукова думка, 1983, с. 257. Авторское свидетельство СССР 1308624, кл. С 12 N 1/00, 1985. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1992015667A1 (en) * 1991-03-08 1992-09-17 Memtec Limited Biological reaction processes
US5620891A (en) * 1991-03-08 1997-04-15 Memtec Limited Biological reaction processes

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0197299B1 (en) Method and apparatus for carrying out cell culture
Tsygankov et al. Photobioreactor with photosynthetic bacteria immobilized on porous glass for hydrogen photoproduction
US4296205A (en) Cell culture and continuous dialysis flask and method
US5443985A (en) Cell culture bioreactor
GB2268187A (en) Cell culture vessels
GB2059436A (en) Propagation of cells
MXPA06005542A (es) Sistema de cultivo de celulas.
IL104385A (en) Method and device for growing biomass particles
Katō et al. A jar fermentor culture of Nicotiana tabacum L. cell suspensions
CN109609387A (zh) 一种松材线虫内寄生真菌Esteya vermicola的快速培养方法
US6593128B1 (en) Method for culturing ciliates
CN101671625A (zh) 一种液态深层发酵制备木霉分生孢子的方法和装置
SU1636445A1 (ru) Способ выращивани мицелиальных организмов
CN101402917B (zh) 一种生产组织工程产品的生物反应器
CN208857315U (zh) 一种植物细胞和器官液体培养袋
US20040029267A1 (en) Bioreactor forming a rigid vessel
CN102816689B (zh) 平板膜给氧自循环式微生物培养装置及方法
Herrick et al. Apparatus for the application of submerged mold fermentations under pressure
US4332906A (en) Vessel for growing cells
SU1090711A1 (ru) Ферментер
US3013950A (en) Culture apparatus
CN1063224C (zh) 气升式周期浸没光照植物细胞组织器官培养方法及培养反应器
CN108441425A (zh) 一种植物细胞、器官培养装置
CN2352538Y (zh) 气升式周期浸没光照植物细胞组织器官培养反应器
Woo et al. Multiple shoot culture of Dianthus caryophyllus using mist culture system