SU1551742A1 - Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine - Google Patents
Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine Download PDFInfo
- Publication number
- SU1551742A1 SU1551742A1 SU874344108A SU4344108A SU1551742A1 SU 1551742 A1 SU1551742 A1 SU 1551742A1 SU 874344108 A SU874344108 A SU 874344108A SU 4344108 A SU4344108 A SU 4344108A SU 1551742 A1 SU1551742 A1 SU 1551742A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- tris
- hcl buffer
- carboxypeptidase
- buffer
- ammonium sulfate
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к способу комплексного получени ферментов из животного сырь , а именно карбоксипептидазы А и карбоксипептидазы В, примен емых в биохимии дл структурных исследований. Целью изобретени вл етс повышение выхода целевого продукта и упрощение способа. Способ включает экстракцию сырь , обработку экстракта сульфатом аммони , выделение и очистку целевого продукта ионообменной хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе. Экстракцию провод т 0,005 М трис-HCL буфером, из полученного экстракта сульфатом аммони при степени насыщени 0,64-0,66 осаждают комплекс карбоксипептидазы А и карбоксипептидазы В, причем сначала элюируют карбоксипептидазу В в линейном градиенте концентрации хлорида натри от 0 до 0,25-0,26 М в 0,005 М трис-HCL буфере, после чего 0,26 М раствором хлорида натри в 0,005 М трис-HCL буфере элюируют карбоксипептидазу А. Буферный раствор на всех стади х имеет PH 7,5-7,6.The invention relates to a method for the complex production of enzymes from animal raw materials, namely carboxypeptidase A and carboxypeptidase B, used in biochemistry for structural studies. The aim of the invention is to increase the yield of the target product and simplify the method. The method includes extraction of raw materials, treatment of the extract with ammonium sulfate, isolation and purification of the target product by ion-exchange chromatography on DEAE-cellulose. Extraction is carried out with 0.005 M Tris-HCL buffer, the carboxypeptidase A and carboxypeptidase B complex is precipitated from ammonium sulfate at a degree of saturation of 0.64-0.66 from the obtained extract, and carboxypeptidase B is eluted first in a linear gradient of sodium chloride concentration from 0 to 0.25 -0.26 M in 0.005 M Tris-HCL buffer, then 0.26 M sodium chloride solution in 0.005 M Tris-HCL buffer is eluted with carboxypeptidase A. The buffer solution at all stages has a pH of 7.5-7.6.
Description
1one
(21)4344108/30-13(21) 4344108 / 30-13
(22)15.12.87(22) 12/15/87
(46) 23.03.90. Бюл. N 1 1(46) 03/23/90. Bul N 1 1
(71)Научно-производственное объединение Биолар и Латвийский государственный университет им. П.Стучки(71) Scientific and Production Association Biolar and Lomonosov State University of Latvia P.Stuchki
(72)Д.Ж.Менее, А.А.Марнауза, А.Х.Швагере, Д.А.Кл вин , Т.Ф.Фридман и М.П.Путере(72) D.Zh.Meney, A.A.Marnauz, A.H.Schwagere, D.A.Kl vin, T.F. Fridman and MPPutere
(53)663.15(088.8)(53) 663.15 (088.8)
(56) Folk J.R., Schirmer E.W. The Porcine Pancreatic Carboxypeptidase a System. - Journal of Biological Chemistry, 1963, v. 238, p. 3884-3894. Dia R.D., Srivastava S.K. A Method for Simultaneous Purification of Carboxypeptidase a and В from Goat Pancreas and the Product Stabilization of Goat Carboxypeptidase B. - Journal of Molecular Catalysis, 1981, v. 10, N 3, p. 253-268.(56) Folk J.R., Schirmer E.W. The Porcine Pancreatic Carboxypeptidase a System. - Journal of Biological Chemistry, 1963, v. 238, p. 3884-3894. Dia R..D., Srivastava S.K. A Method for Simultaneous Purification of Carboxypeptidase A and B from Goat Pancreas and the Product Stabilization of Goat Carboxypeptidase B. - Journal of Molecular Catalysis, 1981, v. 10, N 3, p. 253-268.
(54)СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КАРБОКСИПЕПТИ- ДАЗЫ А И КАРБОКСИПЕПТИДАЗЫ В ИЗ ПОДЖЕЛУДОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ СВИНЬИ(54) METHOD FOR OBTAINING CARBOXYPEPTIDASY A AND CARBOXYPEEPTIDASE FROM THE PIGS CENTRAL IRON
(57) Изобретение относитс к способу комплексного получени ферментов из животного сырь , а именно карбокси- пептидазы А и карбоксипептидазы В, примен емых в биохимии дл структурных исследований. Целью изобретени вл етс повышение выхода целевого продукта и упрощение способа. Способ включает экстракцию сырь , обработку экстракта сульфатом аммони , выделение и очистку целевого продукта ионообменной хроматографией на ДЭАЭ-цел- люлозе. Экстракцию провод т 0,005 У трис-HCl буфером, из полученного экстракта сульфатом аммони при степени насыщени 0,64-0,66 осаждают комплекс карбоксипептидазы А и карбоксипептидазы В, причем сначала элюи- рутот карбоксипептидазу В в линейном градиенте концентрации хлорида натри от 0 до 0,25-0,26 М в 0,005 М трис-HCl буфере элюируют карбоксипептидазу А. Буферный раствор на всех стади х имеет рН 7,5-7,6.(57) The invention relates to a method for the complex production of enzymes from animal raw materials, namely carboxypeptidase A and carboxypeptidase B, used in biochemistry for structural studies. The aim of the invention is to increase the yield of the target product and simplify the method. The method includes extraction of the raw material, treatment of the extract with ammonium sulfate, isolation and purification of the target product by ion-exchange chromatography on DEAE cellulose. Extraction is carried out with 0.005 Tris-HCl buffer; from the resulting extract with ammonium sulfate at a degree of saturation of 0.64-0.66, the complex of carboxypeptidase A and carboxypeptidase B is precipitated, first of all by eluting with carboxypeptidase B in a linear gradient of sodium chloride concentration from 0 to 0 , 25-0.26 M in 0.005 M Tris-HCl buffer eluted with carboxypeptidase A. The buffer solution at all stages has a pH of 7.5-7.6.
II
(Л(L
Изобретение относитс к способу комплексного получени ферментов из животного сырь , а именно карбокси- пептидазы (КП) А и КП В, примен емых в биохимии дл структурных исследований .The invention relates to a method for the complex production of enzymes from animal raw materials, namely carboxypeptidase (CP) A and CP, used in biochemistry for structural studies.
Целью изобретени вл етс повышение выхода целевого продукта и упрощение способа.The aim of the invention is to increase the yield of the target product and simplify the method.
Способ включает экстракцию сырь , обработку экстракта сульфатом аммони , выделение и очистку целевого продукта ионообменной хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе. Экстракцию провод т 0,005 М трис-HCl буфером, из полученного экстракта сульфатом аммони при насыщении 0,64-0,66 (рН 7,5-7,6) осаждают комплекс КП А и КП В, который раздел ют на хроматографической колонке последовательным элю- ированием КП В и КП А, причем сначала линейным градиентом при возрастающей концентрации натри хлористого до 0,25-0,26 М в 0,005 М трис-HCl буфере элюируют КП В, после чего 0,26 М раствором натри хлористогоThe method includes extraction of raw materials, treatment of the extract with ammonium sulfate, isolation and purification of the target product by ion-exchange chromatography on DEAE-cellulose. Extraction is carried out with 0.005 M Tris-HCl buffer; from the resulting extract with ammonium sulfate at a saturation of 0.64-0.66 (pH 7.5-7.6), KP A and KP B complex is precipitated, which is separated on a chromatographic column with sequential ale - KP B and KP A, with first a linear gradient with increasing sodium chloride concentration to 0.25-0.26 M in 0.005 M Tris-HCl buffer, KP B is eluted, followed by 0.26 M sodium chloride solution
в 0,005 М трис-HCl бубере выдел ют КП А, а рН буферного раствора на всех стади х 7,5-7,6. Пример 1 .KP A is isolated in 0.005 M Tris-HCl Buber, and the pH of the buffer solution at all stages is 7.5-7.6. Example 1
I.Приготовление ацетонового порошка .I. Preparation of acetone powder.
0,7 кг свежезамороженных поджелудочных желез разрезают на кусочки толщиной 4-6 toM и пров.од т автолиз при комнатной температуре 20-24 ч. Полученную массу обрабатывают при комнатной температуре четырьм объемами ацетона, интенсивно перемешива в течение 1 мин. Аналогично провод т обработку желез еще 3 раза ацетоном, смесью ацетона и эфира (1:1) и эфиром . Обработанные железы сушат при комнатной температуре.0.7 kg of freshly frozen pancreas glands are cut into 4-6 toM thick pieces and wire autolysis at room temperature for 20-24 hours. The resulting mass is treated at room temperature with four volumes of acetone, vigorously stirred for 1 minute. Similarly, the glands are treated 3 more times with acetone, a mixture of acetone and ether (1: 1) and ether. The treated glands are dried at room temperature.
II.Экстракци .II.Extraction.
Ацетоновый порошок из автолизиро- ванной поджелудочной железы свиньи перед экстракцией размельчают в электрической лабораторной мельнице. К 140 г ацетонового порошка добавл ют 1400 мл 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5) и перемешивают 45 мин на магнитной мешалке при комнатной температуре . Осадок отдел ют центрифугированием . Получают 1300 мл цент- рифугата желтоватого цвета. рН экстракта довод т до 7,5 с помощью 1 У раствора NaOH.Acetone powder from autolyzed pig pancreas is ground in an electric laboratory mill before extraction. 1400 ml of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5) are added to 140 g of acetone powder and stirred for 45 minutes on a magnetic stirrer at room temperature. The precipitate is separated by centrifugation. 1300 ml yellowish centrifugate are obtained. The pH of the extract was adjusted to 7.5 with 1 NaOH solution.
III.Осаждение ферментного комплекса КП А и КП В сульфатом аммони .III. Deposition of the enzyme complex KP A and KP B with ammonium sulfate.
II
К экстракту по порци м, перемешива на магнитной мешалке, добавл ют сульфат аммони до 0,64 насыщени (422,3 г/л), поддержива рН 7,5 1 М раствором NaOH.Продолжают перемешивать еще 30 мин. Центрифугируют 40 мин при 6000 об./мин при 3 С. Белковый осадок, содержащий КП А и КП В, суспендирую, в 350 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,5), помещают в целлофановые мешочки и диализируют при посто нном перемешивании на магнитной мешалке в течение 24 ч против охлажденного 0,005 М трис-НС1 буфера (рН 7,5). Осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают. Центрифугат в количестве 400 мл используют дл дальнейшей очистки.To the extract in portions, stirring on a magnetic stirrer, add ammonium sulphate to 0.64 saturation (422.3 g / l), maintaining the pH at 7.5 with 1 M NaOH solution. Continue to mix for another 30 minutes. Centrifuged for 40 min at 6000 rpm at 3 C. Protein precipitate containing KP A and KP B is suspended in 350 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.5), placed in cellophane bags and dialyzed at Constant stirring on a magnetic stirrer for 24 hours against a cooled 0.005 M Tris-HC1 buffer (pH 7.5). The precipitate is separated by centrifugation and discarded. 400 ml centrifugate is used for further purification.
IV. I хроматографи на колонке 6 . 25 см с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,5).Iv. I chromatography on column 6. 25 cm with DEAE-cellulose, balanced with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5).
На колонку наноситс 400 мл раствора белка, полученного на стадии III. Колонку промывают 5 л 0,ООЬ М400 ml of the protein solution obtained in Stage III is applied to the column. The column is washed with 5 l of 0, OO M
трис-HCl буферного раствора (рН 7,5) дл освобождени от неадсорбированного белка. Белковую Фракцию КП В элюируют линейным градиентом концентрации NaCl: в первом сосуде - 1 лtris-HCl buffer solution (pH 7.5) for release from non-adsorbed protein. Protein Fraction KP B is eluted with a linear gradient of NaCl concentration: in the first vessel, 1 l
0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,25 М NaCl.Объедин ют фракции с удельной активностью КП В не менее 50 ед/мг белка (600 мл).0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5), and in the second, 1 l of the same buffer with 0.25 M NaCl. The fractions with a specific KP B activity of at least 50 units / mg protein (600 ml) are combined.
5 Белковую фракцию КП А элюируют5 Protein fraction KP And elute
1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5) с 0,25 М NaCl. Объедин ют фракции с удельной активностью КП А не менее 12 ед/мг белка (520 мл).1 liter of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5) with 0.25 M NaCl. The fractions with a specific KP A activity of not less than 12 units / mg of protein (520 ml) are combined.
Q К полученным с колонки хромато- графическим фракци м КП А и КП В добавл ют сульфат аммони до 0,65 насыщени . Осадок отдел ют центрифугированием в течение 1 ч приQ To the chromatographic KP A and KP B fractions obtained from the column, ammonium sulfate is added to 0.65 of saturation. The precipitate is separated by centrifugation for 1 h at
5 6000 об/мин- и 3°С и раствор ют в 50 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,5). Растворы помещают в целлофановые мешочки и диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5).5 6000 rpm and 3 ° C and dissolved in 50 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.5). The solutions are placed in plastic bags and dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5).
0 Осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают.0 The precipitate is separated by centrifugation and discarded.
Центрифугаты КП А (45 мл) и КП В (50 мл) используют дл дальнейшейKP A centrifugates (45 ml) and KP B (50 ml) are used to further
очистки.cleaning up.
V. Очистка КП В хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.V. Cleaning KP In chromatography on DEAE-cellulose.
Лиализат от стадии IV, содержащий КП В активность, нанос т на колонкуLializate from stage IV, containing KP B activity, is applied to the column
с ДЭАЭ-целлюлозой (2,9 25 см),урав- новешанной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,5) со скоростью течени 30- 40 мл/ч, отмывают от неадсорбированных белков 800 мл этого же буфера.with DEAE-cellulose (2.9–25 cm), equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5) with a flow rate of 30-40 ml / h, 800 ml of the same buffer are washed off from non-adsorbed proteins.
Элюирование КП В провод т линейным градиентом NaCl: в первом сосуде - 500 мл-0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5), а во втором - 500 мл этого же буфера с 0,25 М NaCl. Объедин ютс фракции с удельной активностью КП В не менее 100 ед/мг белка. К элюату добавл ют сульфат аммони до 0,65 насыщени , осадок отдел ют центрифугированием и раствор ют в 20 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,5).Диа лизуют в течение 24 ч против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5). Осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают.KP B elution was carried out with a linear gradient of NaCl: in the first vessel, 500 ml-0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5), and in the second, 500 ml of the same buffer with 0.25 M NaCl. Fractions with a specific KP B activity of at least 100 units / mg of protein are combined. Ammonium sulphate is added to the eluate to 0.65 of saturation, the precipitate is separated by centrifugation and dissolved in 20 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.5). Diluted for 24 hours against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5). The precipitate is separated by centrifugation and discarded.
Выход 20 мл раствора фермента с удельной активностью КП В 149 ед/мг белка, выход по активности 35,7%,The output of 20 ml of an enzyme solution with a specific activity of KP In 149 units / mg protein, the output activity of 35.7%,
VI.Очистка КП А хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.VI. Cleaning of KP And with chromatography on DEAE-cellulose.
II
45 мл раствора КП А от стадии IV45 ml of KP A solution from stage IV
нанос т на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,5) со скоростью течени 30-40 мл/ч, отмывают от неадсорбированных белков 1 л этого же буфера. Потом ставитс градиент: в первом сосуде 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,3 М NaCl. Объедин ютс фракции с удельной активностью КП А не менее 16 ед/мг белка (200-300 мл) К элюату медленно по порци м, перемешива на магнитной мешалке, добавл ют сульфат аммони до 0,65 насыщени . Осадок отдел ют центрифугированием в течение 50 мин при 6000 об/мин при 3еС и раствор ют в 20 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,5 Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,5) в течение 24 ч. Осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают.applied to a column with DEAE-cellulose equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5) at a flow rate of 30-40 ml / h, washed with 1 l of non-adsorbed proteins of the same buffer. Then a gradient is set: in the first vessel 1 l of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5), and in the second one 1 l of the same buffer with 0.3 M NaCl. Combinations with specific activity of KPA not less than 16 units / mg of protein (200-300 ml) are combined. To the eluate, ammonium sulfate is slowly added in portions, stirring on a magnetic stirrer, to 0.65 of saturation. The precipitate is separated by centrifugation for 50 min at 6000 rpm at 3 ° C and dissolved in 20 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.5 Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.5) for 24 h. The precipitate is separated by centrifugation and discarded.
VII.Кристаллизаци КП А. Центри- фугат помещают в целлофановые мешочки и диализутот против дистиллированной воды в течение 36 ч. Осадок КП А отдел ют центрифугированием в течение 1 ч при 15000 об/мин при 3 С и суспендируют в 40 мл дистиллированной воды, медленно перемешива на магнитной мешалке 30 мин дл отмывки от растворимых в воде примесей. Осадок отдел ют центрифугированием и вновь суспендируют в 20 мл воды. К суспензии медленно по капл м, прове- н рН, прибавл ют 0,1 М NaOH доVII.Crystallization of CPA. Centrifugate is placed in plastic bags and dialized against distilled water for 36 hours. The precipitate of CPA is separated by centrifugation for 1 hour at 15,000 rpm at 3 ° C and suspended in 40 ml of distilled water, slowly stirring on a magnetic stirrer for 30 minutes to wash off water-soluble impurities. The precipitate is separated by centrifugation and resuspended in 20 ml of water. Slowly drop by drop to the suspension, check the pH, add 0.1 M NaOH to
рН 6,8. Нерастворившийс осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают . Пентрифугат помещают в целлофановые мешочки и диализуют в течение 36 ч против дистиллированной воды. К образовавшейс суспензии кристаллов КП А добавл ют I мл толуола (5% от объема суспензии).pH 6.8. The undissolved precipitate is separated by centrifugation and discarded. Pentrifugate is placed in plastic bags and dialyzed against distilled water for 36 hours. I ml of toluene (5% by volume of the suspension) is added to the resulting suspension of KPA crystals.
Выход 20 мл суспензии фермента, содержащей 4000 Е КП А с удельной активностью КП А 29,7 ед/мг белка, выход по активности 32% (по международным единицам определени активности ферментов).Output 20 ml of an enzyme suspension containing 4000 E KP A with specific KP A activity of 29.7 U / mg protein, yield per activity 32% (in international units for determining enzyme activity).
, . ) , )
551742551742
П р и м е р 2.PRI me R 2.
I. Приготовление ацетонового порошка провод т аналогично примеру 1. II Экстракци .I. Preparation of acetone powder is carried out analogously to Example 1. II Extraction.
Ацетоновый порошок перед экстракцией размельчают. К 140 г ацетонового порошка добавл ют 1400 мл 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55) и перемеши- Ю вают 45 мин при комнатной температуре . Центрифугируют, рН полученного экстракта довод т до 7,55 1 М раствором NaOH.Acetone powder before extraction is crushed. 1400 ml of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55) are added to 140 g of acetone powder and stirred for 45 minutes at room temperature. It is centrifuged, the pH of the obtained extract is adjusted to 7.55 with 1 M NaOH solution.
III. Осаждение ферментного комплек- 15 са КП А и КП В сульфатом аммони .Iii. Deposition of the enzyme complex KP A and KP B with ammonium sulfate.
К экстракту добавл ют сульфат аммони до 0,65 насыщени (430,4 г/л), поддержива рН 7,55 1 М раствором NaOH.Осадок отдел ют центрифугиро- 2о ванием и суспендируют в 350 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,55), диализутот в течение 24 ч против 0,005 М трис- HCl буфера (рН 7,55). Осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают. 25 IV. I хроматографи на колонке с ДЭАЭ-целлюлозой.Ammonium sulfate is added to the extract to 0.65 of saturation (430.4 g / l), maintaining the pH at 7.55 with 1 M NaOH solution. The precipitate is separated by centrifugation 2o and suspended in 350 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.55), dialysutots for 24 hours against a 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55). The precipitate is separated by centrifugation and discarded. 25 IV. I chromatography on a column with DEAE-cellulose.
На колонку 6 25 см с ДЭАЭ-целлюлозой , уравновешенной 0,005 М трис- HCl буфером (рН 7,55), наноситс 30 400 мл раствора белка от стадии III. Дл освобождени от неадсорбированного белка колонку промывают 5 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55). КП В элюируют линейным градиентом Зб концентрации NaCl: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,255 М NaCl. Объедин ют фракции с удельной активностью КП В не менее 40 50 ед/мг белка (600 мл).A column of 6–25 cm with DEAE-cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55), is applied with 30 400 ml of protein solution from stage III. To remove unabsorbed protein, the column is washed with 5 L of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55). KP B is eluted with a linear gradient of Pb of NaCl concentration: in the first vessel - 1 liter of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55), and in the second one - 1 liter of the same buffer with 0.255 M NaCl. The fractions with a specific KP B activity of at least 40 50 U / mg protein (600 ml) are combined.
КП А элюируют 1 л 0,005 М трис-НС1 буфера (рН 7,55) с 0,255 М NaCl. Объедин ют фракции с удельной активностью КП А не менее 12 ед/мг белка. 45 Фракции КП А и КП В осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени . Осадок отдел ют центрифугированием и раствор ют в 50 мл 0,05 М трис-НС1 буфера (рН 7,55) и диализуют против 5о 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55).KP A is eluted with 1 L of 0.005 M Tris-HC1 buffer (pH 7.55) with 0.255 M NaCl. The fractions are combined with a specific KP A activity of at least 12 units / mg of protein. 45 KP A and KP B fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation. The precipitate is separated by centrifugation and dissolved in 50 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.55) and dialyzed against 5 ° C 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55).
V. Очистка КП В хроматографией на ДЭАЭ-целлюлоэ е.V. KP purification by chromatography on DEAE-celluloe e.
Диализат от стадии IV с КП В ак- .тивностью нанос т на колонку с ДЭАЭ- 55 целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,55). Отмывают от неадсорбированных белков 800 мл этого же буфера. Потом ставитс градиент: в первом сосуде - 500 мл.The dialysate from stage IV with KP B was applied onto a column with DEAE-55 with cellulose equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55) on stage. 800 ml of the same buffer is washed from non-adsorbed proteins. Then a gradient is set: 500 ml in the first vessel.
0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55), а во втором - 500 мл этого же буфера с 0,25 F NaCl. Объедин ютс фракции с удельной активностью КП В не менее 100 ед/мг белка, осаждаютс сульфатом аммони до 0,65 насыщени . Осадок после центрифугировани суспендируют в 20 мл 0,05 М трис-НС1 буфера (рН 7,;55). Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,55). Центрифугируют.0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55), and the second - 500 ml of the same buffer with 0.25 F NaCl. The fractions with a specific KP B activity of at least 100 units / mg of protein are combined, and ammonium sulfate is precipitated to 0.65 of saturation. The pellet is suspended in 20 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7,; 55). Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55). Centrifuged.
Выход 20,5 мл раствора фермента с удельной активностью КП В 151,5 ед/ белка, выход по активности 33,7%.The output of 20.5 ml of a solution of the enzyme with a specific activity of KP In 151.5 u / protein, the output activity 33.7%.
VI.Очистка КП А хроматографией на ДЭАЭ-целлюлоэе.VI. Cleaning of KP A by chromatography on DEAE-celluloye.
Диализат от стадии IV с КП А активностью нанос т на колонку с ДЭАЭ- целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl бусЬером (рН 7,55), отмывают от неадсорбированных белков 1 л этого же буфера. Потом ставитс градиент: в первом сосуде - 1 л 0,005 N трис-HCl буфера (рН 7,55), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,3 М NaCl. Объедин ют фракции с КП А активностью и осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени . Осадок отдел ют центрифугированием и раствор ют в 20 мл 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,55). Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфела (рН 7,55).The dialysate from stage IV with KPA activity was applied to a column with DEAE cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl beads (pH 7.55), washed of 1 l of the same buffer from non-adsorbed proteins. Then a gradient is set: in the first vessel - 1 liter of 0.005 N Tris-HCl buffer (pH 7.55), and in the second one - 1 liter of the same buffer with 0.3 M NaCl. The fractions are combined with KPA activity and precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation. The precipitate is separated by centrifugation and dissolved in 20 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.55). Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.55).
VII.Кристаллизацию КП А провод т аналогично примеру 1.VII. The crystallization of KP A is carried out analogously to Example 1.
Выход 19,5 мл суспензии фермента с удельной активностью КП А 32,5 ед/мг белка, выход по активности 31,5%. IThe output of 19.5 ml of an enzyme suspension with a specific activity of KP A is 32.5 units / mg of protein, the yield of activity is 31.5%. I
П р и м е р 3.PRI me R 3.
I.Приготовление ацетонового-порошка провод т аналогично примеру 1I. Preparation of acetone powder is carried out analogously to example 1
II.Экстракци .II.Extraction.
К 140 г ацетонового порошка добал ют 1400 мл 0,005 М трис-HCl буфера рН 7,6. Перемешивают 5 мин, ценрифугируют , рН экстракта довод т до величины 7,6 1 М раствором NaOH.1400 ml of 0.005 M Tris-HCl buffer pH 7.6 was added to 140 g of acetone powder. The mixture is stirred for 5 minutes, centrifuged, the pH of the extract is adjusted to a value of 7.6 with 1 M NaOH solution.
III.Осаждение ферментного комплекса КП А и КП В сульфатом аммони .III. Deposition of the enzyme complex KP A and KP B with ammonium sulfate.
К экстракту добавл ют сульфат аммони до 0,66 насыщени (438,8 г/л) поддержива рН 7,6 1 М раствором NaOH. Центрифугируют, осадок суспендируют в 350 мл 0,05 М трис-HCl буфера рН 7,6, диализуют против 0,005 трис-HCl буфера рН 7,6.Ammonium sulfate was added to the extract to 0.66 of saturation (438.8 g / l) while maintaining the pH at 7.6 with 1 M NaOH solution. Centrifuged, the precipitate suspended in 350 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer pH 7.6, dialyzed against 0.005 Tris-HCl buffer pH 7.6.
IV.I хроматографи на ДЭАЭ-целлю- лозе.IV.I chromatography on DEAE-cellulose.
Диализат от стадии III нанос т на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,6), промывают 5 л этого же буфера. Дл элюировани КП В ставитс градиент: в первом сосуде - 1 лThe dialysate from stage III is applied to a column with DEAE-cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6), washed with 5 l of the same buffer. A gradient is set for the elution of KP B: 1 l in the first vessel
0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,6), а во втором - I л этого же буфера с 0,26 М NaCl. КП А элюируют 1 л 0,005 М трис-HCl буфера рН 7,6 с 0,26 М NaCl.0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6), and in the second - I l of the same buffer with 0.26 M NaCl. KP A is eluted with 1 l of 0.005 M Tris-HCl buffer pH 7.6 with 0.26 M NaCl.
Объединенные фракции КП В и КП А осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , отделенный центрифугированием осадок суспендируют в 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,6) и диализуQ ют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,6). Combined KP B and KP A fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, the precipitate separated by centrifugation is suspended in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.6) and dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6 ).
V.Очистка КП В хроматографией на ДЭАЭ-целлюлоэе.V.Cleaning KP by chromatography on DEAE-celluloe.
Диализат с КП В активностью на5 нос т на к.шонку с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,6), элюируют линейным градиентом концентрации NaCl: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCLDialysate with KP B activity was put on a 5-wheeled DEAE-cellulose pad equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6) and eluted with a linear gradient of NaCl concentration: in the first vessel, 1 l 0.005 M Tris-HCL
0 буфера (рН 7,6), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,25 М NaCl. Объединенные фракции КП В осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок после центрифугировани раствор 5 ют в 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,6). Диализ проводитс против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,6),0 buffer (pH 7.6), and in the second - 1 l of the same buffer with 0.25 M NaCl. Combined KP B fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation; the precipitate after centrifuging the solution is 5 in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.6). Dialysis is performed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6),
Выход 21 мл раствора фермента с удельной активностью КП В 155 ед/мгThe output of 21 ml of an enzyme solution with a specific activity KP 155 units / mg
0 белка, выход по активности 38,3%.0 protein, the yield on the activity of 38.3%.
oVI. Очистка КП А хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.oVI. KP A purification by DEAE-cellulose chromatography.
Диализат от стадии IV с КП А активностью нанос т на колонку с ДЭАЭ5 целлюлозой уравновешенной 0,005 У. трис-HCl буфером (рН 7,6), пропускают 1 л этого же . Ставитс градиент: в первом сосуде - л 0,005 М трис-HCl буфер (рН 7,6), аThe dialysate from stage IV with KPA activity was applied to a column with DEAE5 cellulose equilibrated with 0.005 U. Tris-HCl buffer (pH 7.6), and 1 liter of the same was passed. There is a gradient: in the first vessel - l 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6), and
Q во втором - 1 л этого же буфера с 0,3 М NaCl. Объедин ют фракции с КП А активностью, осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени и осадок после центрифугировани раствориQ in the second - 1 l of the same buffer with 0.3 M NaCl. The fractions are combined with KPA activity, precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, and the precipitate after centrifuging the solution
5 ют в 20 мл 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,6)..Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,6).5 are in 20 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.6) .. Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.6).
VTI. Кристаллизацию КП А провод т аналогично примеру 1,VTI. The crystallization of KP A is carried out analogously to example 1,
Выход 20 мл суспензии ферментл с удельной активностью КГ А 30,2 ед/мг белка, выход по активности 31,8%.The output of a 20 ml suspension of the enzyme with a specific activity of KG A is 30.2 units / mg of protein, the yield of activity is 31.8%.
II р и м е р 4.II p and me 4.
I.Приготовление ацетонового порошка провод т аналогично примеру 1.I. Preparation of acetone powder is carried out analogously to example 1.
II.Экстракци .II.Extraction.
Экстракцию провод т 0,005 М трис- НС1 буфером (рН 7,А), рН экстракта после центрифугировани довод т до величины 7,4 1 М раствором NaOH.Extraction was carried out with 0.005 M Tris-HC1 buffer (pH 7, A), the pH of the extract was adjusted to 7.4 with 1 M NaOH solution after centrifugation.
III.Осаждение ферментного комплекса КП А и КП В сульфатом аммони III. Deposition of the enzyme complex KP A and KP B with ammonium sulfate
К экстракту добавл ют сульфат аммони до 0,63 насыщени (414,2 г/л), поддержива рН 7,4 1 М раствором NaOH. Осадок после центрифугировани суспендируют в 350 мл 0,05 У трис-HCl буфера (рН 7,4), диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4).Ammonium sulfate was added to the extract to 0.63 of saturation (414.2 g / l), maintaining the pH at 7.4 with 1 M NaOH solution. The pellet was suspended in 350 ml of 0.05 Tris-HCl buffer (pH 7.4), dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4).
IV.I хроматографи на ДЭАЭ-цел- люлозе.IV.I chromatography on DEAE cellulose.
Диализат от стадии III нанос т на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,4), пропускают 5 л этого же буфера. Дл элюировани КП В ставитс градиент: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCl буфера рН 7,4, а во втором - 1 л этого же буфера с 0,24 М NaCl. КП А элюируют 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4) с 0,24 М NaCl.The dialysate from stage III was applied to a column with DEAE cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4), and 5 l of the same buffer was passed. A gradient is put in order to elute KP B: 1 l of 0.005 M Tris-HCl buffer pH 7.4 in the first vessel, and 1 l of the same buffer with 0.24 M NaCl in the second. KP A is eluted with 1 L of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4) with 0.24 M NaCl.
Объединенные фракции КП В и КП А осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок после центрифугировани суспендируют в 0,05 М трис- HCl буфере (рН 7,4) и диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4)Combined KP B and KP A fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 saturation, the precipitate after centrifugation is suspended in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.4) and dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4)
V.Очистка КП В хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.V.Cleaning KP by chromatography on DEAE-cellulose.
Фракцию КП В от предыдущей стадии нанос т на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой , уравновешенной 0,005 М трис- HCl буфером (рН 7,4), элюируют линейным градиентом концентрации NaCl: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-НС1 буфера (рН 7,4), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,25 М NaCl. Объединенные фракции КП В осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок раствор ют в 0,05 М трис-HCl буфера (рН 7,4). Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4).The KP B fraction from the previous stage was applied to a column with DEAE cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4), eluted with a linear gradient of NaCl concentration: in the first vessel, 1 l 0.005 M Tris-HC1 buffer (pH 7 , 4), and in the second - 1 l of the same buffer with 0.25 M NaCl. Combined KP B fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, the precipitate is dissolved in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.4). Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4).
Выход 17,5 мл раствора Лермента с удельной активностью КП В 107,4 ед/м белка, выход по активности 24%.The output of 17.5 ml of a solution of Lerment with a specific activity of KP 107.4 units / m protein, the output of the activity 24%.
..
10ten
2020
2525
551742Ю551742Y
VI.Очистка КП А хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.VI. Cleaning of KP And with chromatography on DEAE-cellulose.
Фракци КП А от стадии IV наноситс на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,4), промывают колонку 1 л этого же буфера. Потом ставитс градиент: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4), а во втором - I л этого же буфера с 0,3 М NaCl. Объединенные фракции КП А осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени . Осадок раствор ют в 0,05 М J5 трис-HCl буфере (рН 7,4). Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,4).The KPA fraction from stage IV is applied to a column with DEAE-cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4), washed with a column of 1 l of the same buffer. Then a gradient is set: in the first vessel - 1 liter of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4), and in the second - I liter of the same buffer with 0.3 M NaCl. Combined KP A fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation. The precipitate is dissolved in 0.05 M J5 Tris-HCl buffer (pH 7.4). Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.4).
VII.Кристаллизацию КП А провод т аналогично примеру 1.VII. The crystallization of KP A is carried out analogously to Example 1.
Выход 18 мл суспензии фермента с удельной активностью КП А 22,6 ед/мг белка, выход по активности 28%.The output of 18 ml of an enzyme suspension with a specific activity of KP A is 22.6 units / mg of protein, the yield of activity is 28%.
П р и м е р 5.PRI me R 5.
I.Приготовление ацетонового порошка провод т аналогично примеру I.I. Preparation of acetone powder is carried out analogously to example I.
II.Экстракци .II.Extraction.
Экстракцию провод т 0,005 М трис- HCl буфером (рН 7,7), рН экстракта после центрифугировани довод т до величины 7,7 1 М раствором NaOH.Extraction was carried out with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7), the pH of the extract was adjusted to a value of 7.7 after centrifugation with a 1 M NaOH solution.
III.Осаждение ферментного комплекса КП А и КП В сульфатом аммони .III. Deposition of the enzyme complex KP A and KP B with ammonium sulfate.
К экстракту добавл ют сульфат аммони до 0,67 насыщени (447,2 г/л), поддержива рН 7,7 1 М раствором NaOH. Осадок после центрифугировани суспендируют в 350 мл 0,05 М трис-НС1 буфера (рН 7,7), диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7).Ammonium sulfate was added to the extract to 0.67 of saturation (447.2 g / l), maintaining the pH at 7.7 with 1 M NaOH solution. The pellet was suspended in 350 ml of 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.7), dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7).
4Q IV. I хроматографи на ДЭАЭ-цел- люло з е.4Q IV. I chromatography on DEAE-cellulose.
Диализат от стадии III наноситс на колонку с ДЭАЭ-целлкшозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буферомDialysate from stage III is applied to a column with DEAE-cellulose equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer
45 (рН 7,7), пропускают через колонку, 5 л этого же буфера. Дл элюировани КП В ставитс градиент: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,27 М NaCl. КП А элюируют 1 л 0,005 V трис-HCl буфера (рН 7,7) с 0,27 М NaCl. Объединенные фракции КП В и КП А осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок суспендируют в 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,7) и диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7).45 (pH 7.7), passed through a column, 5 l of the same buffer. A gradient is put in order to elute the CPB: in the first vessel - 1 liter of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7), and in the second one - 1 liter of the same buffer with 0.27 M NaCl. KP A is eluted with 1 L of 0.005 V Tris-HCl buffer (pH 7.7) with 0.27 M NaCl. Combined KP B and KP A fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, the precipitate is suspended in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.7) and dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7).
V. Очистка КП В хроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе.V. Cleaning KP In chromatography on DEAE-cellulose.
30thirty
5050
5555
Хроматографию провод т на колонке с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 М трис-HCl буфером (рН 7,7), КП В элюиругст линейным градиентом концентрации NaCl: в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7) а во втором - 1 л этого же буфера с 0,25 М NaCl. Объединенные фракции КП В осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок раствор ют в 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,7). Диализуют против 0,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7).Chromatography was performed on a column with DEAE-cellulose, equilibrated with 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7), KP B elution with a linear gradient of NaCl concentration: in the first vessel - 1 l 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7) and in the second - 1 l of the same buffer with 0.25 M NaCl. Combined KP B fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, the precipitate is dissolved in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.7). Dialyzed against 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7).
Выход 18 мл раствора фермента с удельной активнос1-ью КП В 115 ед/мг белка, выход по активности 25,4%.The yield of 18 ml of an enzyme solution with a specific activity of the 1 st KP B is 115 units / mg of protein, the yield of activity is 25.4%.
VI.Очистка КП А хроматографией на ДЭАЭ целлюлозе.VI. KP A cleaning with DEAE cellulose chromatography.
Фракци КП А от стадии IV наноситс на колонку с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешенной 0,005 Мтрис-HCl буфером (рН 7,7), пропускают 1 л этого же буфера. Потом ставитс градиент, в первом сосуде - 1 л 0,005 М трис- HCl буфера (рН 7,7), а во втором - 1 л этого же буфера с 0,3 М NaCl. Объединенные Фракции КП А осаждают сульфатом аммони до 0,65 насыщени , осадок раствор ют в 0,05 М трис-HCl буфере (рН 7,7). Диализуют против О ,005 М трис-HCl буфера (рН 7,7).The KPA fraction from stage IV is applied to a column with DEAE-cellulose, equilibrated with 0.005 Mtris-HCl buffer (pH 7.7), and 1 liter of the same buffer is passed. Then a gradient is set, in the first vessel - 1 liter of 0.005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7), and in the second one - 1 liter of the same buffer with 0.3 M NaCl. The combined KP A fractions are precipitated with ammonium sulfate to 0.65 of saturation, the precipitate is dissolved in 0.05 M Tris-HCl buffer (pH 7.7). Dialyzed against O, 005 M Tris-HCl buffer (pH 7.7).
VII.Кристаллизацию КП А провод т аналогично примеру 1.VII. The crystallization of KP A is carried out analogously to Example 1.
Редактор Н.РогуличEditor N.Rogulich
Составитель А.Семенов Техред М.ДидыкCompiled by A.Semenov Tehred M.Didyk
Заказ 309Order 309
Тираж 482Circulation 482
ВНИИПИ Государственного комитета по изобретени м и открыти м при ГКНТ СССР 113035, Москва, Ж-35, Раушска наб., д. 4/5VNIIPI State Committee for Inventions and Discoveries at the State Committee on Science and Technology of the USSR 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab. 4/5
Выход 17 мл суспензии фермента с удельной активностью КП А 20 ед/мг белка, выход по активности 27%.The output of 17 ml of an enzyme suspension with a specific activity of KP A is 20 units / mg of protein, the yield of activity is 27%.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874344108A SU1551742A1 (en) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874344108A SU1551742A1 (en) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1551742A1 true SU1551742A1 (en) | 1990-03-23 |
Family
ID=21342524
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874344108A SU1551742A1 (en) | 1987-12-15 | 1987-12-15 | Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1551742A1 (en) |
-
1987
- 1987-12-15 SU SU874344108A patent/SU1551742A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP0099871B1 (en) | Separation of plasma proteins from cell culture systems | |
US5614500A (en) | Compositions containing highly purified factor IX proteins prepared by immunoaffinity chromatography | |
Probst et al. | Newly synthesized mammalian cell DNA: studies on the reasons for the increased affinity to nitrocellulose | |
US4977246A (en) | High recovery process for antihemophilic factor | |
SU1551742A1 (en) | Method of obtaining carboxypeptidase a and carboxypeptidase b from swine | |
Talal et al. | Functional and structural studies of membrane-bound and free ribosomes from rat spleen | |
US6869934B2 (en) | Method of purifying calcium ion-binding protein | |
US4100028A (en) | Method for purification of proteolytic enzymes | |
RU2122549C1 (en) | Chromatography method of isolation and purification of proteins, peptides and their complexes | |
JPS61233694A (en) | Growth factor contained in bovine spleen and method of isolating same | |
US4308204A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
CA2002446A1 (en) | Method for the isolation of purification of cu/zn superoxide dismutase | |
SU1544801A1 (en) | Method of extracting 5ъ-nucleotidase from cobra venom | |
US4030977A (en) | Method for purification of physiologically active substance using enzyme-enzyme inhibitor system | |
RU2225722C1 (en) | Method for preparing human interferon | |
RU2186848C1 (en) | Method of isolation of superoxide dismutase | |
SU1161550A1 (en) | Method of obtaining nuclease s1 | |
OKAMOTO | Some Aspects of Phenylalanine Specific Soluble Ribonucleic Acid | |
SU1723123A1 (en) | Method of pepsin preparation | |
SU1137098A1 (en) | Method for recovering properdin from blood serum | |
US3630841A (en) | Purification of enzyme inhibitors | |
SU890248A1 (en) | Method of autoprotrombine c extraction | |
SU1082811A1 (en) | Method for isolating thermostable placental alkaline phosphatase | |
SU1523570A1 (en) | Method of obtaining carboxypeptidase a from swine pancreatic gland | |
SU1255640A1 (en) | Method of separating ferredoxine |