SU1255640A1 - Method of separating ferredoxine - Google Patents
Method of separating ferredoxine Download PDFInfo
- Publication number
- SU1255640A1 SU1255640A1 SU853883738A SU3883738A SU1255640A1 SU 1255640 A1 SU1255640 A1 SU 1255640A1 SU 853883738 A SU853883738 A SU 853883738A SU 3883738 A SU3883738 A SU 3883738A SU 1255640 A1 SU1255640 A1 SU 1255640A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- leaves
- ferredoxin
- buffer
- yield
- plants
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
1one
Изобретение относитс к биохимии , а именно к способу получени высокоочищенных ферментных препара тов, и может быть использовано в производстве ферментных препаратов, а также в научных исследовани х по биохимии и физиологии растений, молекул рной биологии,The invention relates to biochemistry, in particular to a method for producing highly purified enzyme preparations, and can be used in the production of enzyme preparations, as well as in scientific research on the biochemistry and physiology of plants, molecular biology,
Целью изобретени вл етс повышение фотовосстановительной активности , увеличение выхода целевого продукта и сокращение времени его выделени ,The aim of the invention is to increase the photoreductive activity, increase the yield of the target product and reduce the time of its release,
1212
сульфата аммони и через 0 мин цен трифугируют при указанном режиме в течение 10 мин. Осадок, содержащий ферредоксин, раствор ют в 40 мл 5 0,05 М трис-НС буфере, 0,01 М МЭ рН 9 и центрифугируют при 6 тыс, об/мин в течение 5 мин дл удалени балластных белков, Супернатант под вергают обессоливанию и очистке от 10 высоко- и низкомолекул рных вещест путем фильтровани через колонку (40 X 4,0 см) с сефадексом G-50, уравновешеньую 0,05 М трис-НСI рН 8,2, 0,01 М МЭ, Белок элюируютammonium sulfate and after 0 min prices trifugiruyut under the specified mode for 10 min. The precipitate containing ferredoxin is dissolved in 40 ml of 5 0.05 M Tris-HC buffer, 0.01 M ME pH 9 and centrifuged at 6 thousand rpm for 5 minutes to remove ballast proteins. The supernatant is desalted and purification of 10 high and low molecular weight substances by filtration through a column (40 X 4.0 cm) with Sephadex G-50, equilibrated with 0.05 M tris-HCl pH 8.2, 0.01 M ME, Protein is eluted
Цель заключаетс в томс что согласно способу вьщелени ферредоксина fs тем же буфером,The goal is that according to the method of ferringing fredoxin fs with the same buffer,
из высших растений, включающему гомо- Обессоленный белковый раствор с генизацию сырь и стадии очистки: фракционирование сульфатом аммони , гельфильтрацию на сефадексе и ионцоферредоксиновой активностью с т на колонку размером (3 х 1,5 с с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешеннойfrom higher plants, including Homo-Desalted protein solution with raw material genification and purification stages: fractionation with ammonium sulfate, gel filtration on Sephadex, and ion-ferredoxin activity with tons per column (3 x 1.5 s with DEAE-cellulose, balanced
обменную хроматографию на ДЭАЭ-целлю- 20 0,05 М трис-НС1 буфером рН 8,2,exchange chromatography on DEAE-Cellulo-20 0.05 M Tris-HC1 buffer pH 8.2,
лозе, используют листь 4-5-недель- ных растений, гомогенизацию сырь провод т в буфере в соотношении 1:5 с добавлением 0,35 - 0,50 М NaC и 0,01 - 0,02 М меркаптоэтанола,4-5-week-old leaves are used in the vine, the homogenization of the raw material is carried out in a buffer in a ratio of 1: 5 with the addition of 0.35 - 0.50 M NaC and 0.01 - 0.02 M mercaptoethanol,
Пример 1, Свежие листь 4- 5-недельных растений гомогенизируют в буфере в соотношении 1:5 с добавлением 0,35-0,50 М NaC и 0,01 - 0,02 М меркаптоэтанола, Гомогенат отжимают и провод т фракционное высаливание с последующим центрифугированием . Первый осадок отбрасывают. Второй осадок используют дл получени ферредоксина, которьш раствор ют в трис-НС1 буфере и обессоли- вают на сефадексе G-50, Дальнейшую очистку ферредоксина провод т с использованием двухкратной хроматографии на ДЭАЭ-цел юлозе,Example 1, Fresh leaves of 4- 5-week-old plants are homogenized in a buffer in a ratio of 1: 5 with the addition of 0.35-0.50 M NaC and 0.01-0.02 M mercaptoethanol. The homogenate is squeezed and fractional salting out is carried out followed by by centrifugation. The first precipitate is discarded. The second precipitate is used to obtain ferredoxin, which is dissolved in Tris-HCl buffer and desalted on Sephadex G-50. Further purification of ferredoxin is carried out using two-fold chromatography on DEAE-whole ylose,
Пример 2, Растени пшеницы сорта Московска 35 выраш;ивают в открытом грунте. Навеску свежих листьев (четырехнедельные растени )Example 2, Moskovsk 35 variety wheat plants are grown in open ground. A portion of fresh leaves (four-week plants)
0,3 М NaC, 0,01 М МЭ, Колонку по ледовательно промывают 0,05 М три НС буфером рН 8,2 с добавкой 0, 0,15 М NaC. Ферредоксин злюируют0.3 M NaC, 0.01 M ME, The column is washed successively with 0.05 M three HC with pH 8.2 buffer with the addition of 0, 0.15 M NaC. Ferredoxin zlyuyut
25 0,1 М трис-НС1 буфером с добавкой 0,17 М NaCl, Ноннообменную / хрома графию провод т повторно на колон ( 1x1 см) с ДЭАЭ-целлкшозой, Ферре доксин хран т при 0°С под азотом25 0.1 M Tris-HC1 buffer supplemented with 0.17 M NaCl, Non-exchange / chromium graphs are re-applied to a column (1x1 cm) with DEAE-cellulose, Ferre doxin stored at 0 ° C under nitrogen
30 или в замороженном состо нии при 20°С в течение длительного времен без потери активности.30 or in a frozen state at 20 ° C for a long time without loss of activity.
В табл. 1 пр иведены результаты получени $елка из 100 г листьевIn tab. 1 The results of obtaining a Christmas tree from 100 g of leaves are given.
35 пшеницы сорта Московска 35,35 wheat varieties Moskovska 35,
Гомогенность вьщел емых белков доказана седиментационным равнове сием на аналитической ультрацентр фуге, модель Е, при электрофорезеThe homogeneity of the proteins in question is proved by sedimentation equilibrium in the Fugue analytical ultracentre, model E, during electrophoresis
40 в 10%-ном полиакрштамидном геле.40 in a 10% polyacrylamide gel.
Активность ферредоксина опреде л ют по скорости фотовосстановлен НАДФ хлоропластами пшеницы в реак ционной смеси следующего составаFerredoxin activity is determined by the rate of photoreduced NADPH wheat chloroplasts in a reaction mixture of the following composition
100 г гомогенизируют в 500 г буфер- 45 мкмоль MgCf Ю; НАДФ 0,6;100 g are homogenized in 500 g of buffer - 45 μmol MgCf; NADP 0.6;
МM
ной смеси следующего состава, М: трис-НС 0,05 (рН;8,2); 0,35 NaCl ; 0,01 Ю (т,е, в соотношении 1:5), в гомогенизаторе в течение 2 мин. Полученную темно-зеленую массу фильтруют через полотно.Noah mixture of the following composition, M: Tris-HC 0.05 (pH; 8.2); 0.35 NaCl; 0.01 Yu (t, e, in the ratio 1: 5), in a homogenizer for 2 minutes. The resulting dark green mass is filtered through a cloth.
Фракционное осаждение балластных : белков провод т из гомогената листьев , добавл соль из расчета 25 г сульфата аммони на 100 мл раствора. После центрифугировани при 6000 об/мин в течение 10 мин осадок отбрасывают а к супернатанту добавл ют 36 гFractional deposition of ballast: proteins is carried out from the leaf homogenate, adding salt at the rate of 25 g of ammonium sulfate per 100 ml of solution. After centrifugation at 6000 rpm for 10 minutes, the pellet is discarded and 36 g of sugar are added to the supernatant.
фер,уе,,оксина; 0,05 М трис-НС С бу ( рН 8,2), 10 у -хлорофилла.fer, ye ,, oxina; 0.05 M Tris-HC C bu (pH 8.2), 10 y-chlorophyll.
Пример 3, Вьщеление ферр доксина из листьев пшеницы ведутExample 3, the allocation of ferr doxin from wheat leaves lead
50 аналогично примеру , но с исполь зованием механического измельчени замороженных листьев в соотношени листь :буфер :2 и без добавок, с жают выход белка в 1,5 - 2 раза и50 similarly to the example, but with the use of mechanical grinding of frozen leaves in the ratio of leaves: buffer: 2 and without additives, the yield of protein is reduced by 1.5 - 2 times and
55 активность в 1,5 раза.55 activity 1.5 times.
П р и М е р 4, Выделение ферр доксина из листьев люцерны, выращ ной в открытом грунте, ведут анапPR and ME 4, Isolation of ferr doxin from alfalfa leaves grown in open ground is carried out by anap
5640256402
сульфата аммони и через 0 мин центрифугируют при указанном режиме в течение 10 мин. Осадок, содержащий ферредоксин, раствор ют в 40 мл 5 0,05 М трис-НС буфере, 0,01 М МЭ, рН 9 и центрифугируют при 6 тыс, об/мин в течение 5 мин дл удалени балластных белков, Супернатант подвергают обессоливанию и очистке от 10 высоко- и низкомолекул рных веществ путем фильтровани через колонку (40 X 4,0 см) с сефадексом G-50, уравновешеньую 0,05 М трис-НСI рН 8,2, 0,01 М МЭ, Белок элюируютammonium sulfate and after 0 min, centrifuged at the specified mode for 10 min. The precipitate containing ferredoxin is dissolved in 40 ml of 5 0.05 M Tris-HC buffer, 0.01 M ME, pH 9 and centrifuged at 6 thousand rpm for 5 minutes to remove ballast proteins. The supernatant is desalted and purification of 10 high and low molecular weight substances by filtration through a column (40 X 4.0 cm) with Sephadex G-50, equilibrated with 0.05 M Tris-HCl pH 8.2, 0.01 M ME, Protein is eluted
fs тем же буфером,fs with the same buffer
Обессоленный белковый раствор с Desalted protein solution with
ферредоксиновой активностью с т на колонку размером (3 х 1,5 см) с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешеннойferredoxin activity with t per column size (3 x 1.5 cm) with DEAE-cellulose balanced
0,3 М NaC, 0,01 М МЭ, Колонку последовательно промывают 0,05 М трис- НС буфером рН 8,2 с добавкой 0,1 М, 0,15 М NaC. Ферредоксин злюируют0.3 M NaC, 0.01 M ME, The column is successively washed with 0.05 M Tris-HC buffer pH 8.2 with the addition of 0.1 M, 0.15 M NaC. Ferredoxin zlyuyut
0,1 М трис-НС1 буфером с добавкой 0,17 М NaCl, Ноннообменную / хрома то- графию провод т повторно на колонке (1x1 см) с ДЭАЭ-целлкшозой, Ферредоксин хран т при 0°С под азотом0.1 M Tris-HC1 buffer supplemented with 0.17 M NaCl, Non-exchange / chromium trographing is repeated on a column (1x1 cm) with DEAE cellulose, Ferredoxin is stored at 0 ° C under nitrogen
или в замороженном состо нии при 20°С в течение длительного времени без потери активности.or frozen at 20 ° C for a long time without loss of activity.
В табл. 1 пр иведены результаты получени $елка из 100 г листьевIn tab. 1 The results of obtaining a Christmas tree from 100 g of leaves are given.
пшеницы сорта Московска 35,Wheat variety Moscow 35,
Гомогенность вьщел емых белков доказана седиментационным равновесием на аналитической ультрацентрифуге , модель Е, при электрофорезеThe homogeneity of the proteins in question has been proved by sedimentation equilibrium on an analytical ultracentrifuge, model E, during electrophoresis
в 10%-ном полиакрштамидном геле.in a 10% polyacrylamide gel.
Активность ферредоксина определ ют по скорости фотовосстановлени НАДФ хлоропластами пшеницы в реакционной смеси следующего состава:Ferredoxin activity is determined by the photoreduction rate of NADP in wheat chloroplasts in the reaction mixture of the following composition:
МM
фер,уе,,оксина; 0,05 М трис-НС С буфера (рН 8,2), 10 у -хлорофилла.fer, ye ,, oxina; 0.05 M Tris-HC C buffer (pH 8.2), 10 y-chlorophyll.
Пример 3, Вьщеление ферредоксина из листьев пшеницы ведутExample 3, the allocation of ferredoxin from wheat leaves lead
аналогично примеру , но с использованием механического измельчени замороженных листьев в соотношении листь :буфер :2 и без добавок, снижают выход белка в 1,5 - 2 раза иsimilarly to the example, but using mechanical grinding of frozen leaves in the ratio of leaves: buffer: 2 and without additives, they reduce the yield of protein by 1.5 - 2 times and
активность в 1,5 раза.activity 1.5 times.
П р и М е р 4, Выделение ферредоксина из листьев люцерны, выращенной в открытом грунте, ведут анапо220PR and M 4, the Selection of ferredoxin from the leaves of alfalfa grown in open ground, lead anapo220
33
гично примеру 1, Выход ферредоксина 3,5 - 4 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью мкмоль НАДФНGuided by example 1, Ferredoxin yield 3.5-4 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity μmol NADPH
мг.хф чmg.hfh
Пример 5, Вьщеление ферредоксина из листьев гороха, выращенного в открытом грунте, ведут аналогично примеру 1. Выход ферредоксина 3-3,5 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью 120Example 5, The allocation of ferredoxin from the leaves of peas grown in open ground, is carried out analogously to example 1. The yield of ferredoxin is 3-3.5 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity 120
мкмоль НАДФН мгхф чµmol NADPH mgph h
Пример 6. Выделение ферредоксина из листьев огурцов, выращенных в открытом грунте, ведут аналогично примеру 1. Выход ферредоксина 3,0-3,5 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью мкмоль НАДФНExample 6. The selection of ferredoxin from the leaves of cucumbers grown in open ground, are carried out analogously to example 1. The yield of ferredoxin is 3.0-3.5 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity μmol NADPH
180180
мг-хф -чmg-hf-h
в табл. 2 дана активность предлагаемого ферредоксина и выход белка из 100 г листьев пшеницы сорта Московска 35, люцерны, огурцов, гороха в сравнении с известным.in tab. 2 given the activity of the proposed ferredoxin and the yield of protein from 100 g of wheat leaves varieties Moskovsk 35, alfalfa, cucumbers, peas in comparison with the known.
Пример 7. Граничные и оптимальные значени NaCi 0,35-0,5 М и меркаптоэтанол 0,01-0,02 М.Example 7. Boundary and optimal values of NaCi 0.35-0.5 M and mercaptoethanol 0.01-0.02 M.
Результаты опытов даны в табл. 3.The results of the experiments are given in table. 3
Пример 8. Запредельные значени параметров.Example 8. Paramount values of parameters.
Гомогенат из листьевLeaf homogenate
Второй осадок Сефадекс G-50 ДЭАЭ-целлюлоза ДЭАЭ-целлюлозаThe second sediment Sephadex G-50 DEAE-cellulose DEAE-cellulose
10ten
5five
556404556404
При изменении каждого из параметров все остальные оптимальны (как в примере 1).When changing each of the parameters, all the others are optimal (as in example 1).
Результаты даны в табл. 4. 5 Пример 9. Вли ние соотношени зеленый материал:буфер на выход выделенного белка показано в т абл. 5.; The results are given in table. 4. 5 Example 9. The effect of the ratio of green material: buffer on the yield of the isolated protein is shown in t abl. five.;
Пример 10. Выход ферредоксина в зависимости от возраста растений дан в табл. 6.Example 10. The output of ferredoxin depending on the age of the plants is given in table. 6
Пример 11. Сокращение времени получени предлагаемого ферредоксина за счет исключени и сокращени р да операций позвол ет провести весь процесс за 4,5-5 ч, тогда как известного за 30-48 ч.Example 11. Reducing the time required to obtain the proposed ferredoxin by eliminating and reducing a number of operations allows the entire process to be carried out in 4.5-5 hours, while it is known in 30-48 hours.
Результаты опытов даны в табл. 7.The results of the experiments are given in table. 7
Преимуществом предлагаемого способа по сравнению с известным вл етс использование комбинации стадий очистки - гомогенизации сырь в буфере при массовом соотношении листь :буфер 1:5 с добавлением 0,35 М - 0,5 М и 0,01 - 0,02 М мер- каптоэтанола в сочетании с фракционным осаждением сульфатом аммони , что позвол ет увеличить выход целевого продукта в 1,5 - 2 раза с получением более высокоактивного ферредоксина с высокой степенью чистоты и сократить врем его получени до 4,5 - 5 ч.The advantage of the proposed method in comparison with the known method is the use of a combination of purification stages — homogenization of the raw material in a buffer at a weight ratio of leaves: buffer 1: 5 with the addition of 0.35 M - 0.5 M and 0.01 - 0.02 M mercaptoethanol in combination with fractional precipitation with ammonium sulfate, which makes it possible to increase the yield of the target product by a factor of 1.5 to 2 to obtain a more highly active ferredoxin with a high degree of purity and reduce its production time to 4.5-5 hours.
00
5five
00
Т аT a
лицаfaces
Люцерна Пшеница сортаAlfalfa Grade Wheat
ХарактеристикиSpecifications
Концентраци , М NaCl МеркаптоэтанолConcentration, M NaCl Mercaptoethanol
т,МГt, MG
Выход, 7плOutput, 7pl
100 г листьев пшеницы 100 g of wheat leaves
. мкмоль НАДФН Активность, т--. μmol NADPH Activity, t--
МГ ХфчMG HFCCH
NaClNaCl
МеркаптоэтанолMercaptoethanol
Таблица 2table 2
ПОBY
220220
3,5-4,0 2,0-2,53.5-4.0 2.0-2.5
ПоказателиIndicators
0,35 0,42 0,50 0,0 0,015 0,020.35 0.42 0.50 0.0 0.015 0.02
44,544.5
200 200200 200
180180
Таблица 4Table 4
3,1 3,03.1 3.0
3,5 3,93.5 3.9
200 190200 190
150 160150 160
Соотношение Выход белка листь :буферLeaf protein yield ratio: buffer
1:6 Очень сильное разбавление белков, экстрагируемых из листьев, что влечет за собой потерю до 10% белка.1: 6 Very strong dilution of proteins extracted from leaves, which entails a loss of up to 10% protein.
Трудно работать на центрифуге с большими объемами раствора белков.It is difficult to work on a centrifuge with large volumes of protein solution.
1:2 Ферредоксин извлекаетс из листьев не полностью1: 2 ferredoxin is not completely removed from the leaves
Эти значени оптимальны дл 100% выхода ферредоксинаThese values are optimal for a 100% yield of ferredoxin.
Таблица 6Table 6
астени Выход ферредоксинаasthenia Ferredoxin yield
мг mg
--5--- по способу--5 --- by the way
100 г листьев100 g leaves
. ,. ,
известному предлагаемомуknown proposed
ЛюцернаAlfalfa
двухнедельные проросткиtwo week seedlings
4-5-недельные растени 4-5 week plants
ГорохPeas
двухнедельные проросткиtwo week seedlings
4-5-недельные растени 4-5 week plants
ОгурцыCucumbers
двухнедельные проросткиtwo week seedlings
4-5-недельные растени 4-5 week plants
jf.jf.
Эти определени авторы раньше не проводили I (с растени ми 4-5-недельного.возраста).These definitions have not been carried out by the authors of I (with plants of 4-5 weeks of age).
1255640812556408
Таблица 5Table 5
2,2-2,5 3,5-42.2-2.5 3.5-4
2,2-2,6 3,0-3,52.2-2.6 3.0-3.5
2,2-2,4 3,0-3,52.2-2.4 3.0-3.5
Измельчение материалаGrinding material
Экстракци (размораживание )Extraction (defrosting)
Первое высаливание ЦентрифугированиеFirst salting out Centrifugation
Второе размораживаниеSecond defrost
ЦентрифугированиеCentrifuging
Обессоливание на сеф дексеDesalting at sep dex
G-50 мелкийG-50 fine
G-50 среднийG-50 average
Редактор Н. ГулькоEditor N. Gulko
Составитель В, СоинаCompiled by, Soina
Техред Л.Олейник Корректор И. ЭрдейиTehred L.Oleynik Proof-reader I. Erdeyi
Заказ 4787/29Тираж 490 ПодписноеOrder 4787/29 Circulation 490 Subscription
ВНИИПИ Государственного комитета СССРVNIIPI USSR State Committee
по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, Раушска наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab., 4/5
Производственно-полиграфическое предпри тие, г. Ужгород, ул. Проектна , 4Production and printing company, Uzhgorod, st. Project, 4
1255640 101255640 10
Таблица 7Table 7
0-100-10
1-001-00
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853883738A SU1255640A1 (en) | 1985-04-10 | 1985-04-10 | Method of separating ferredoxine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853883738A SU1255640A1 (en) | 1985-04-10 | 1985-04-10 | Method of separating ferredoxine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1255640A1 true SU1255640A1 (en) | 1986-09-07 |
Family
ID=21172942
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU853883738A SU1255640A1 (en) | 1985-04-10 | 1985-04-10 | Method of separating ferredoxine |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1255640A1 (en) |
-
1985
- 1985-04-10 SU SU853883738A patent/SU1255640A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Мухин Е. Н., Гинс В. К. Выделение ферредоксина из листьев теплолюбивого растени Cucumis sativus. Биохими , 1972, т. 37, вып. 5, с. 10I2-10I8. Crawford С., Zeusen R. G. Isola- tion and Partial Characterization of : Ferredoxin frota Zea mays. - Plaut Physiology. 1971, 47, p. 447-449. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yoshida et al. | Effect of heat treatment on the development of polygalacturonase activity in tomato fruit during ripening | |
Hattori et al. | Crystalline Phycobilin Ghromoproteids Obtained from a Blue-Green Alga, Tolypothrix Tenuis | |
Holton et al. | Water-soluble cytochromes from a blue-green alga. I. Extraction, purification, and spectral properties of cytochromes C (549, 552, and 554, Anacystis nidulans) | |
Carra | Purification and N-terminal analyses of algal biliproteins | |
US3389133A (en) | Process for isolating and purifying soluble ribonucleic acid | |
Morita et al. | Studies on γ Globulin of Rice Embryo: Part I. Isolation and Purification of γ Globulin from Rice Embryo | |
US5358858A (en) | Process for preparing phycoerythrin from bangia atropurpurea and porphyra angusta | |
US4340675A (en) | Process for recovering Cu,Zn-superoxide dismutase from yeast | |
Pollard | [31] Purification of nonmuscle myosins | |
US4115375A (en) | Method of isolation and recovery of protein hormones, deriving from pituitary tissues using polyethylene glycol | |
ASADA et al. | Purification and properties of cytochrome c and two peroxidases from spinach leaves | |
SU1255640A1 (en) | Method of separating ferredoxine | |
SHIN et al. | Hemoproteins of Wheat Germ III. Further Studies on Purification of Peroxidase and Some of Their Properties | |
US4346174A (en) | Process for isolating superoxide dismutase from red blood cells | |
Norris et al. | Purification and preliminary crystallographic studies on azurin and cytochrome c′ from Alcaligenes denitrificans and Alcaligenes sp. NCIB 11015 | |
Anderson | [2] Purification of plant calmodulin | |
Ito et al. | Purification, crystallization, and properties of bovine milk catalase | |
Morita et al. | Studies on Phyto-peroxidase: Part XIII. Crystallization of Japanese-radish Peroxidase c | |
US3003918A (en) | Production of ceruloplasmin in a purified state from blood plasma fractions | |
CA1173389A (en) | Isolation of microbial protein with reduced nucleic acid content | |
EP1306383B1 (en) | Method of purifying a calcium ion-binding protein | |
Itoh et al. | Isolation of crystalline water-soluble chlorophyll proteins with different chlorophyll a and b contents from stems and leaves of Lepidium virginicum | |
SU1082811A1 (en) | Method for isolating thermostable placental alkaline phosphatase | |
SU1108102A1 (en) | Method of obtaining peroxidase | |
US4495096A (en) | Process for producing and obtaining anaphylatoxin-and cocytotaxin-containing leucotaxine preparations and of anaphylatoxin and cocytotaxin proteins in molecularly homogeneous, biologically active form |