SU1255640A1 - Method of separating ferredoxine - Google Patents

Method of separating ferredoxine Download PDF

Info

Publication number
SU1255640A1
SU1255640A1 SU853883738A SU3883738A SU1255640A1 SU 1255640 A1 SU1255640 A1 SU 1255640A1 SU 853883738 A SU853883738 A SU 853883738A SU 3883738 A SU3883738 A SU 3883738A SU 1255640 A1 SU1255640 A1 SU 1255640A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
leaves
ferredoxin
buffer
yield
plants
Prior art date
Application number
SU853883738A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Валентина Карловна Гинс
Евгений Николаевич Мухин
Original Assignee
Институт почвоведения и фотосинтеза АН СССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт почвоведения и фотосинтеза АН СССР filed Critical Институт почвоведения и фотосинтеза АН СССР
Priority to SU853883738A priority Critical patent/SU1255640A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1255640A1 publication Critical patent/SU1255640A1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

1one

Изобретение относитс  к биохимии , а именно к способу получени  высокоочищенных ферментных препара тов, и может быть использовано в производстве ферментных препаратов, а также в научных исследовани х по биохимии и физиологии растений, молекул рной биологии,The invention relates to biochemistry, in particular to a method for producing highly purified enzyme preparations, and can be used in the production of enzyme preparations, as well as in scientific research on the biochemistry and physiology of plants, molecular biology,

Целью изобретени   вл етс  повышение фотовосстановительной активности , увеличение выхода целевого продукта и сокращение времени его выделени  ,The aim of the invention is to increase the photoreductive activity, increase the yield of the target product and reduce the time of its release,

1212

сульфата аммони  и через 0 мин цен трифугируют при указанном режиме в течение 10 мин. Осадок, содержащий ферредоксин, раствор ют в 40 мл 5 0,05 М трис-НС буфере, 0,01 М МЭ рН 9 и центрифугируют при 6 тыс, об/мин в течение 5 мин дл  удалени балластных белков, Супернатант под вергают обессоливанию и очистке от 10 высоко- и низкомолекул рных вещест путем фильтровани  через колонку (40 X 4,0 см) с сефадексом G-50, уравновешеньую 0,05 М трис-НСI рН 8,2, 0,01 М МЭ, Белок элюируютammonium sulfate and after 0 min prices trifugiruyut under the specified mode for 10 min. The precipitate containing ferredoxin is dissolved in 40 ml of 5 0.05 M Tris-HC buffer, 0.01 M ME pH 9 and centrifuged at 6 thousand rpm for 5 minutes to remove ballast proteins. The supernatant is desalted and purification of 10 high and low molecular weight substances by filtration through a column (40 X 4.0 cm) with Sephadex G-50, equilibrated with 0.05 M tris-HCl pH 8.2, 0.01 M ME, Protein is eluted

Цель заключаетс  в томс что согласно способу вьщелени  ферредоксина fs тем же буфером,The goal is that according to the method of ferringing fredoxin fs with the same buffer,

из высших растений, включающему гомо- Обессоленный белковый раствор с генизацию сырь  и стадии очистки: фракционирование сульфатом аммони , гельфильтрацию на сефадексе и ионцоферредоксиновой активностью с т на колонку размером (3 х 1,5 с с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешеннойfrom higher plants, including Homo-Desalted protein solution with raw material genification and purification stages: fractionation with ammonium sulfate, gel filtration on Sephadex, and ion-ferredoxin activity with tons per column (3 x 1.5 s with DEAE-cellulose, balanced

обменную хроматографию на ДЭАЭ-целлю- 20 0,05 М трис-НС1 буфером рН 8,2,exchange chromatography on DEAE-Cellulo-20 0.05 M Tris-HC1 buffer pH 8.2,

лозе, используют листь  4-5-недель- ных растений, гомогенизацию сырь  провод т в буфере в соотношении 1:5 с добавлением 0,35 - 0,50 М NaC и 0,01 - 0,02 М меркаптоэтанола,4-5-week-old leaves are used in the vine, the homogenization of the raw material is carried out in a buffer in a ratio of 1: 5 with the addition of 0.35 - 0.50 M NaC and 0.01 - 0.02 M mercaptoethanol,

Пример 1, Свежие листь  4- 5-недельных растений гомогенизируют в буфере в соотношении 1:5 с добавлением 0,35-0,50 М NaC и 0,01 - 0,02 М меркаптоэтанола, Гомогенат отжимают и провод т фракционное высаливание с последующим центрифугированием . Первый осадок отбрасывают. Второй осадок используют дл  получени  ферредоксина, которьш раствор ют в трис-НС1 буфере и обессоли- вают на сефадексе G-50, Дальнейшую очистку ферредоксина провод т с использованием двухкратной хроматографии на ДЭАЭ-цел юлозе,Example 1, Fresh leaves of 4- 5-week-old plants are homogenized in a buffer in a ratio of 1: 5 with the addition of 0.35-0.50 M NaC and 0.01-0.02 M mercaptoethanol. The homogenate is squeezed and fractional salting out is carried out followed by by centrifugation. The first precipitate is discarded. The second precipitate is used to obtain ferredoxin, which is dissolved in Tris-HCl buffer and desalted on Sephadex G-50. Further purification of ferredoxin is carried out using two-fold chromatography on DEAE-whole ylose,

Пример 2, Растени  пшеницы сорта Московска  35 выраш;ивают в открытом грунте. Навеску свежих листьев (четырехнедельные растени )Example 2, Moskovsk 35 variety wheat plants are grown in open ground. A portion of fresh leaves (four-week plants)

0,3 М NaC, 0,01 М МЭ, Колонку по ледовательно промывают 0,05 М три НС буфером рН 8,2 с добавкой 0, 0,15 М NaC. Ферредоксин злюируют0.3 M NaC, 0.01 M ME, The column is washed successively with 0.05 M three HC with pH 8.2 buffer with the addition of 0, 0.15 M NaC. Ferredoxin zlyuyut

25 0,1 М трис-НС1 буфером с добавкой 0,17 М NaCl, Ноннообменную / хрома графию провод т повторно на колон ( 1x1 см) с ДЭАЭ-целлкшозой, Ферре доксин хран т при 0°С под азотом25 0.1 M Tris-HC1 buffer supplemented with 0.17 M NaCl, Non-exchange / chromium graphs are re-applied to a column (1x1 cm) with DEAE-cellulose, Ferre doxin stored at 0 ° C under nitrogen

30 или в замороженном состо нии при 20°С в течение длительного времен без потери активности.30 or in a frozen state at 20 ° C for a long time without loss of activity.

В табл. 1 пр иведены результаты получени  $елка из 100 г листьевIn tab. 1 The results of obtaining a Christmas tree from 100 g of leaves are given.

35 пшеницы сорта Московска  35,35 wheat varieties Moskovska 35,

Гомогенность вьщел емых белков доказана седиментационным равнове сием на аналитической ультрацентр фуге, модель Е, при электрофорезеThe homogeneity of the proteins in question is proved by sedimentation equilibrium in the Fugue analytical ultracentre, model E, during electrophoresis

40 в 10%-ном полиакрштамидном геле.40 in a 10% polyacrylamide gel.

Активность ферредоксина опреде л ют по скорости фотовосстановлен НАДФ хлоропластами пшеницы в реак ционной смеси следующего составаFerredoxin activity is determined by the rate of photoreduced NADPH wheat chloroplasts in a reaction mixture of the following composition

100 г гомогенизируют в 500 г буфер- 45 мкмоль MgCf Ю; НАДФ 0,6;100 g are homogenized in 500 g of buffer - 45 μmol MgCf; NADP 0.6;

МM

ной смеси следующего состава, М: трис-НС 0,05 (рН;8,2); 0,35 NaCl ; 0,01 Ю (т,е, в соотношении 1:5), в гомогенизаторе в течение 2 мин. Полученную темно-зеленую массу фильтруют через полотно.Noah mixture of the following composition, M: Tris-HC 0.05 (pH; 8.2); 0.35 NaCl; 0.01 Yu (t, e, in the ratio 1: 5), in a homogenizer for 2 minutes. The resulting dark green mass is filtered through a cloth.

Фракционное осаждение балластных : белков провод т из гомогената листьев , добавл   соль из расчета 25 г сульфата аммони  на 100 мл раствора. После центрифугировани  при 6000 об/мин в течение 10 мин осадок отбрасывают а к супернатанту добавл ют 36 гFractional deposition of ballast: proteins is carried out from the leaf homogenate, adding salt at the rate of 25 g of ammonium sulfate per 100 ml of solution. After centrifugation at 6000 rpm for 10 minutes, the pellet is discarded and 36 g of sugar are added to the supernatant.

фер,уе,,оксина; 0,05 М трис-НС С бу ( рН 8,2), 10 у -хлорофилла.fer, ye ,, oxina; 0.05 M Tris-HC C bu (pH 8.2), 10 y-chlorophyll.

Пример 3, Вьщеление ферр доксина из листьев пшеницы ведутExample 3, the allocation of ferr doxin from wheat leaves lead

50 аналогично примеру , но с исполь зованием механического измельчени замороженных листьев в соотношени листь :буфер :2 и без добавок, с жают выход белка в 1,5 - 2 раза и50 similarly to the example, but with the use of mechanical grinding of frozen leaves in the ratio of leaves: buffer: 2 and without additives, the yield of protein is reduced by 1.5 - 2 times and

55 активность в 1,5 раза.55 activity 1.5 times.

П р и М е р 4, Выделение ферр доксина из листьев люцерны, выращ ной в открытом грунте, ведут анапPR and ME 4, Isolation of ferr doxin from alfalfa leaves grown in open ground is carried out by anap

5640256402

сульфата аммони  и через 0 мин центрифугируют при указанном режиме в течение 10 мин. Осадок, содержащий ферредоксин, раствор ют в 40 мл 5 0,05 М трис-НС буфере, 0,01 М МЭ, рН 9 и центрифугируют при 6 тыс, об/мин в течение 5 мин дл  удалени  балластных белков, Супернатант подвергают обессоливанию и очистке от 10 высоко- и низкомолекул рных веществ путем фильтровани  через колонку (40 X 4,0 см) с сефадексом G-50, уравновешеньую 0,05 М трис-НСI рН 8,2, 0,01 М МЭ, Белок элюируютammonium sulfate and after 0 min, centrifuged at the specified mode for 10 min. The precipitate containing ferredoxin is dissolved in 40 ml of 5 0.05 M Tris-HC buffer, 0.01 M ME, pH 9 and centrifuged at 6 thousand rpm for 5 minutes to remove ballast proteins. The supernatant is desalted and purification of 10 high and low molecular weight substances by filtration through a column (40 X 4.0 cm) with Sephadex G-50, equilibrated with 0.05 M Tris-HCl pH 8.2, 0.01 M ME, Protein is eluted

fs тем же буфером,fs with the same buffer

Обессоленный белковый раствор с  Desalted protein solution with

ферредоксиновой активностью с т на колонку размером (3 х 1,5 см) с ДЭАЭ-целлюлозой, уравновешеннойferredoxin activity with t per column size (3 x 1.5 cm) with DEAE-cellulose balanced

0,3 М NaC, 0,01 М МЭ, Колонку последовательно промывают 0,05 М трис- НС буфером рН 8,2 с добавкой 0,1 М, 0,15 М NaC. Ферредоксин злюируют0.3 M NaC, 0.01 M ME, The column is successively washed with 0.05 M Tris-HC buffer pH 8.2 with the addition of 0.1 M, 0.15 M NaC. Ferredoxin zlyuyut

0,1 М трис-НС1 буфером с добавкой 0,17 М NaCl, Ноннообменную / хрома то- графию провод т повторно на колонке (1x1 см) с ДЭАЭ-целлкшозой, Ферредоксин хран т при 0°С под азотом0.1 M Tris-HC1 buffer supplemented with 0.17 M NaCl, Non-exchange / chromium trographing is repeated on a column (1x1 cm) with DEAE cellulose, Ferredoxin is stored at 0 ° C under nitrogen

или в замороженном состо нии при 20°С в течение длительного времени без потери активности.or frozen at 20 ° C for a long time without loss of activity.

В табл. 1 пр иведены результаты получени  $елка из 100 г листьевIn tab. 1 The results of obtaining a Christmas tree from 100 g of leaves are given.

пшеницы сорта Московска  35,Wheat variety Moscow 35,

Гомогенность вьщел емых белков доказана седиментационным равновесием на аналитической ультрацентрифуге , модель Е, при электрофорезеThe homogeneity of the proteins in question has been proved by sedimentation equilibrium on an analytical ultracentrifuge, model E, during electrophoresis

в 10%-ном полиакрштамидном геле.in a 10% polyacrylamide gel.

Активность ферредоксина определ ют по скорости фотовосстановлени  НАДФ хлоропластами пшеницы в реакционной смеси следующего состава:Ferredoxin activity is determined by the photoreduction rate of NADP in wheat chloroplasts in the reaction mixture of the following composition:

МM

фер,уе,,оксина; 0,05 М трис-НС С буфера (рН 8,2), 10 у -хлорофилла.fer, ye ,, oxina; 0.05 M Tris-HC C buffer (pH 8.2), 10 y-chlorophyll.

Пример 3, Вьщеление ферредоксина из листьев пшеницы ведутExample 3, the allocation of ferredoxin from wheat leaves lead

аналогично примеру , но с использованием механического измельчени  замороженных листьев в соотношении листь :буфер :2 и без добавок, снижают выход белка в 1,5 - 2 раза иsimilarly to the example, but using mechanical grinding of frozen leaves in the ratio of leaves: buffer: 2 and without additives, they reduce the yield of protein by 1.5 - 2 times and

активность в 1,5 раза.activity 1.5 times.

П р и М е р 4, Выделение ферредоксина из листьев люцерны, выращенной в открытом грунте, ведут анапо220PR and M 4, the Selection of ferredoxin from the leaves of alfalfa grown in open ground, lead anapo220

33

гично примеру 1, Выход ферредоксина 3,5 - 4 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью мкмоль НАДФНGuided by example 1, Ferredoxin yield 3.5-4 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity μmol NADPH

мг.хф чmg.hfh

Пример 5, Вьщеление ферредоксина из листьев гороха, выращенного в открытом грунте, ведут аналогично примеру 1. Выход ферредоксина 3-3,5 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью 120Example 5, The allocation of ferredoxin from the leaves of peas grown in open ground, is carried out analogously to example 1. The yield of ferredoxin is 3-3.5 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity 120

мкмоль НАДФН мгхф чµmol NADPH mgph h

Пример 6. Выделение ферредоксина из листьев огурцов, выращенных в открытом грунте, ведут аналогично примеру 1. Выход ферредоксина 3,0-3,5 мг на 100 г листьев с фотовосстановительной активностью мкмоль НАДФНExample 6. The selection of ferredoxin from the leaves of cucumbers grown in open ground, are carried out analogously to example 1. The yield of ferredoxin is 3.0-3.5 mg per 100 g of leaves with photoreductive activity μmol NADPH

180180

мг-хф -чmg-hf-h

в табл. 2 дана активность предлагаемого ферредоксина и выход белка из 100 г листьев пшеницы сорта Московска  35, люцерны, огурцов, гороха в сравнении с известным.in tab. 2 given the activity of the proposed ferredoxin and the yield of protein from 100 g of wheat leaves varieties Moskovsk 35, alfalfa, cucumbers, peas in comparison with the known.

Пример 7. Граничные и оптимальные значени  NaCi 0,35-0,5 М и меркаптоэтанол 0,01-0,02 М.Example 7. Boundary and optimal values of NaCi 0.35-0.5 M and mercaptoethanol 0.01-0.02 M.

Результаты опытов даны в табл. 3.The results of the experiments are given in table. 3

Пример 8. Запредельные значени  параметров.Example 8. Paramount values of parameters.

Гомогенат из листьевLeaf homogenate

Второй осадок Сефадекс G-50 ДЭАЭ-целлюлоза ДЭАЭ-целлюлозаThe second sediment Sephadex G-50 DEAE-cellulose DEAE-cellulose

10ten

5five

556404556404

При изменении каждого из параметров все остальные оптимальны (как в примере 1).When changing each of the parameters, all the others are optimal (as in example 1).

Результаты даны в табл. 4. 5 Пример 9. Вли ние соотношени  зеленый материал:буфер на выход выделенного белка показано в т абл. 5.; The results are given in table. 4. 5 Example 9. The effect of the ratio of green material: buffer on the yield of the isolated protein is shown in t abl. five.;

Пример 10. Выход ферредоксина в зависимости от возраста растений дан в табл. 6.Example 10. The output of ferredoxin depending on the age of the plants is given in table. 6

Пример 11. Сокращение времени получени  предлагаемого ферредоксина за счет исключени  и сокращени  р да операций позвол ет провести весь процесс за 4,5-5 ч, тогда как известного за 30-48 ч.Example 11. Reducing the time required to obtain the proposed ferredoxin by eliminating and reducing a number of operations allows the entire process to be carried out in 4.5-5 hours, while it is known in 30-48 hours.

Результаты опытов даны в табл. 7.The results of the experiments are given in table. 7

Преимуществом предлагаемого способа по сравнению с известным  вл етс  использование комбинации стадий очистки - гомогенизации сырь  в буфере при массовом соотношении листь :буфер 1:5 с добавлением 0,35 М - 0,5 М и 0,01 - 0,02 М мер- каптоэтанола в сочетании с фракционным осаждением сульфатом аммони , что позвол ет увеличить выход целевого продукта в 1,5 - 2 раза с получением более высокоактивного ферредоксина с высокой степенью чистоты и сократить врем  его получени  до 4,5 - 5 ч.The advantage of the proposed method in comparison with the known method is the use of a combination of purification stages — homogenization of the raw material in a buffer at a weight ratio of leaves: buffer 1: 5 with the addition of 0.35 M - 0.5 M and 0.01 - 0.02 M mercaptoethanol in combination with fractional precipitation with ammonium sulfate, which makes it possible to increase the yield of the target product by a factor of 1.5 to 2 to obtain a more highly active ferredoxin with a high degree of purity and reduce its production time to 4.5-5 hours.

00

5five

00

Т аT a

лицаfaces

Люцерна Пшеница сортаAlfalfa Grade Wheat

ХарактеристикиSpecifications

Концентраци , М NaCl МеркаптоэтанолConcentration, M NaCl Mercaptoethanol

т,МГt, MG

Выход, 7плOutput, 7pl

100 г листьев пшеницы 100 g of wheat leaves

. мкмоль НАДФН Активность, т--. μmol NADPH Activity, t--

МГ ХфчMG HFCCH

NaClNaCl

МеркаптоэтанолMercaptoethanol

Таблица 2table 2

ПОBY

220220

3,5-4,0 2,0-2,53.5-4.0 2.0-2.5

ПоказателиIndicators

0,35 0,42 0,50 0,0 0,015 0,020.35 0.42 0.50 0.0 0.015 0.02

44,544.5

200 200200 200

180180

Таблица 4Table 4

3,1 3,03.1 3.0

3,5 3,93.5 3.9

200 190200 190

150 160150 160

Соотношение Выход белка листь :буферLeaf protein yield ratio: buffer

1:6 Очень сильное разбавление белков, экстрагируемых из листьев, что влечет за собой потерю до 10% белка.1: 6 Very strong dilution of proteins extracted from leaves, which entails a loss of up to 10% protein.

Трудно работать на центрифуге с большими объемами раствора белков.It is difficult to work on a centrifuge with large volumes of protein solution.

1:2 Ферредоксин извлекаетс  из листьев не полностью1: 2 ferredoxin is not completely removed from the leaves

Эти значени  оптимальны дл  100% выхода ферредоксинаThese values are optimal for a 100% yield of ferredoxin.

Таблица 6Table 6

астени Выход ферредоксинаasthenia Ferredoxin yield

мг mg

--5--- по способу--5 --- by the way

100 г листьев100 g leaves

. ,. ,

известному предлагаемомуknown proposed

ЛюцернаAlfalfa

двухнедельные проросткиtwo week seedlings

4-5-недельные растени 4-5 week plants

ГорохPeas

двухнедельные проросткиtwo week seedlings

4-5-недельные растени 4-5 week plants

ОгурцыCucumbers

двухнедельные проросткиtwo week seedlings

4-5-недельные растени 4-5 week plants

jf.jf.

Эти определени  авторы раньше не проводили I (с растени ми 4-5-недельного.возраста).These definitions have not been carried out by the authors of I (with plants of 4-5 weeks of age).

1255640812556408

Таблица 5Table 5

2,2-2,5 3,5-42.2-2.5 3.5-4

2,2-2,6 3,0-3,52.2-2.6 3.0-3.5

2,2-2,4 3,0-3,52.2-2.4 3.0-3.5

Измельчение материалаGrinding material

Экстракци  (размораживание )Extraction (defrosting)

Первое высаливание ЦентрифугированиеFirst salting out Centrifugation

Второе размораживаниеSecond defrost

ЦентрифугированиеCentrifuging

Обессоливание на сеф дексеDesalting at sep dex

G-50 мелкийG-50 fine

G-50 среднийG-50 average

Редактор Н. ГулькоEditor N. Gulko

Составитель В, СоинаCompiled by, Soina

Техред Л.Олейник Корректор И. ЭрдейиTehred L.Oleynik Proof-reader I. Erdeyi

Заказ 4787/29Тираж 490 ПодписноеOrder 4787/29 Circulation 490 Subscription

ВНИИПИ Государственного комитета СССРVNIIPI USSR State Committee

по делам изобретений и открытий 113035, Москва, Ж-35, Раушска  наб., д. 4/5for inventions and discoveries 113035, Moscow, Zh-35, Raushsk nab., 4/5

Производственно-полиграфическое предпри тие, г. Ужгород, ул. Проектна , 4Production and printing company, Uzhgorod, st. Project, 4

1255640 101255640 10

Таблица 7Table 7

0-100-10

1-001-00

Claims (1)

СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ФЕРРЕДОКСИНА из высших растений, включающий гомогенизацию сырья и стадии очистки: фракционирование сульфатом аммония, гельфильтрацию на сефадексе и ионнообменную хроматографию на ДЭАЭ-целлюлозе, отличающ и й с я тем, что, с целью повышения выхода целевого продукта и сокращения времени его выделения из высших растений, используют листья ':· 14-5 - недельных растений семейства злаковых, бобовых или тыквенных, а гомогенизацию сырья проводят в буфере при массовом соотношении с листья:буфер 1:5 с добавлением 0,35- Ф 0,50 М NaCl и 0,01 - 0,02 М меркаптоэтанола.METHOD FOR ISOLATING FERREDOXIN from higher plants, including homogenization of raw materials and purification stages: ammonium sulfate fractionation, gel filtration on Sephadex and ion-exchange chromatography on DEAE-cellulose, characterized in that in order to increase the yield of the target product and reduce the time of its isolation from higher plants, use the leaves': · 1 4-5-week-old plants of the family of cereals, legumes or pumpkin, and the homogenization of raw materials is carried out in the buffer at a mass ratio with leaves: buffer 1: 5 with the addition of 0.35-F 0.50 M NaCl and 0.01 - 0.02 mercaptoethanol.
SU853883738A 1985-04-10 1985-04-10 Method of separating ferredoxine SU1255640A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853883738A SU1255640A1 (en) 1985-04-10 1985-04-10 Method of separating ferredoxine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853883738A SU1255640A1 (en) 1985-04-10 1985-04-10 Method of separating ferredoxine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1255640A1 true SU1255640A1 (en) 1986-09-07

Family

ID=21172942

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853883738A SU1255640A1 (en) 1985-04-10 1985-04-10 Method of separating ferredoxine

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1255640A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Мухин Е. Н., Гинс В. К. Выделение ферредоксина из листьев теплолюбивого растени Cucumis sativus. Биохими , 1972, т. 37, вып. 5, с. 10I2-10I8. Crawford С., Zeusen R. G. Isola- tion and Partial Characterization of : Ferredoxin frota Zea mays. - Plaut Physiology. 1971, 47, p. 447-449. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yoshida et al. Effect of heat treatment on the development of polygalacturonase activity in tomato fruit during ripening
Hattori et al. Crystalline Phycobilin Ghromoproteids Obtained from a Blue-Green Alga, Tolypothrix Tenuis
Holton et al. Water-soluble cytochromes from a blue-green alga. I. Extraction, purification, and spectral properties of cytochromes C (549, 552, and 554, Anacystis nidulans)
Carra Purification and N-terminal analyses of algal biliproteins
US3389133A (en) Process for isolating and purifying soluble ribonucleic acid
Morita et al. Studies on γ Globulin of Rice Embryo: Part I. Isolation and Purification of γ Globulin from Rice Embryo
US5358858A (en) Process for preparing phycoerythrin from bangia atropurpurea and porphyra angusta
US4340675A (en) Process for recovering Cu,Zn-superoxide dismutase from yeast
Pollard [31] Purification of nonmuscle myosins
US4115375A (en) Method of isolation and recovery of protein hormones, deriving from pituitary tissues using polyethylene glycol
ASADA et al. Purification and properties of cytochrome c and two peroxidases from spinach leaves
SU1255640A1 (en) Method of separating ferredoxine
SHIN et al. Hemoproteins of Wheat Germ III. Further Studies on Purification of Peroxidase and Some of Their Properties
US4346174A (en) Process for isolating superoxide dismutase from red blood cells
Norris et al. Purification and preliminary crystallographic studies on azurin and cytochrome c′ from Alcaligenes denitrificans and Alcaligenes sp. NCIB 11015
Anderson [2] Purification of plant calmodulin
Ito et al. Purification, crystallization, and properties of bovine milk catalase
Morita et al. Studies on Phyto-peroxidase: Part XIII. Crystallization of Japanese-radish Peroxidase c
US3003918A (en) Production of ceruloplasmin in a purified state from blood plasma fractions
CA1173389A (en) Isolation of microbial protein with reduced nucleic acid content
EP1306383B1 (en) Method of purifying a calcium ion-binding protein
Itoh et al. Isolation of crystalline water-soluble chlorophyll proteins with different chlorophyll a and b contents from stems and leaves of Lepidium virginicum
SU1082811A1 (en) Method for isolating thermostable placental alkaline phosphatase
SU1108102A1 (en) Method of obtaining peroxidase
US4495096A (en) Process for producing and obtaining anaphylatoxin-and cocytotaxin-containing leucotaxine preparations and of anaphylatoxin and cocytotaxin proteins in molecularly homogeneous, biologically active form