SU1521774A1 - Method of obtaining lactatoxidase - Google Patents

Method of obtaining lactatoxidase Download PDF

Info

Publication number
SU1521774A1
SU1521774A1 SU874291441A SU4291441A SU1521774A1 SU 1521774 A1 SU1521774 A1 SU 1521774A1 SU 874291441 A SU874291441 A SU 874291441A SU 4291441 A SU4291441 A SU 4291441A SU 1521774 A1 SU1521774 A1 SU 1521774A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
lactic acid
enzyme
seed
nutrient medium
units
Prior art date
Application number
SU874291441A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Нийоле Юозовна Лукошявичене
Грациюшас-Гедиминас Раполович Браженас
Богумила Станиславовна Куртинайтене
Галина Васильевна Павленко
Original Assignee
Институт биохимии АН ЛитССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биохимии АН ЛитССР filed Critical Институт биохимии АН ЛитССР
Priority to SU874291441A priority Critical patent/SU1521774A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1521774A1 publication Critical patent/SU1521774A1/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности и касаетс  способов получени  лактатоксидазы. Цель изобретени  - упрощение способа, и расширение его функциональных возможностей и повышение выхода фермента. В качестве продуцирующего микроорганизма примен ют штамм ACETOBACTER SUBOXYDANS VAR. MUCIPARUM FRATEUR N C1B 5595 (1950-1280), способный синтезировать лакта-оксидазу, окисл ющую лактат до пирувата и Н2О3, посевной материал которого выращивают на творожной сыворотке,  вл ющейс  дешевым натуральным источником молочной кислоты. Способ позвол ет получить лактатоксидазу с активностью 7,75 ед/мл, удельной активностью 1,2 ед/мг белка при выходе 790,5 ед/л.This invention relates to the microbiological industry and relates to methods for producing lactate oxidase. The purpose of the invention is to simplify the method and expand its functionality and increase the yield of the enzyme. The strain ACETOBACTER SUBOXYDANS VAR is used as the producing microorganism. MUCIPARUM FRATEUR N C1B 5595 (1950-1280), capable of synthesizing lactate oxidase, which oxidizes lactate to pyruvate and H 2 O 3 , the seed of which is grown on curd whey, which is a cheap natural source of lactic acid. The method allows to obtain lactate oxidase with an activity of 7.75 units / ml, a specific activity of 1.2 units / mg of protein at a yield of 790.5 units / l.

Description

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности и касаетс  способа получени  фермента лактатоксидазы , превращающей молочную кислоту (лактат) в пировиноградную кислоту (пируват) и который может быть использован в аналитических системах, примен емых в медицине, пищевой и мик- робиолоической промышленности.The invention relates to the microbiological industry and relates to a method for producing the enzyme lactate oxidase, which converts lactic acid (lactate) to pyruvic acid (pyruvate) and which can be used in analytical systems used in medicine, food and microbiological industries.

Цель изобретени  - упрощение способа ,расширение его функциональных возможностей и повьш1ение выхода фермента ,The purpose of the invention is to simplify the method, expand its functionality and increase the yield of the enzyme,

Способ осуществл ют следуЮ1цим образом . The method is carried out in the following manner.

В качестве продуцента используют штамм Acetobacter suboxygans var. muciparim Frateur № CIB 5595 (1950 1280 ). Посевной материал продуцента выращивают на питательной среде, содержащей молочную кислоту, источником которой служит творожна  сьгоорот- ка. В ходе сбраживани  молока содержаща с  в нем лактоза превращаетс  в молочную кислоту, котора  после отделени  сгустков молочных белков, т.е. творога, остаетс  в сыворотке и составл ет 0,92-1,24%. Концентрации MO-t лочной кислоты в творожной сыворотке менее 0,96% и более 1,24% маловеро тны , исход  из режима технологического процесса приготовлени  1 ворога. Творожна  сыворотка  вл етс  дешевым отходом технологического процесса приготовлени  творога.Acetobacter suboxygans var. Strain is used as a producer. muciparim Frateur No. CIB 5595 (1950 1280). The seed of the producer is grown on a nutrient medium containing lactic acid, the source of which is curd cheese. During the fermentation of milk, the lactose contained in it is converted into lactic acid, which, after the separation of milk protein clumps, i.e. cottage cheese, remains in the serum and is 0.92-1.24%. Concentrations of MO-t of lactic acid in curd whey less than 0.96% and more than 1.24% are unlikely, based on the technological process of preparation of 1 bar. Curd whey is a cheap waste from the curd making process.

О1O1

юYu

4four

Активность полученной лактатокси- даэы определ ют спектрофотометричес- ким методо,м, исход  из схемы заданного способа превращени  молочной кислоты: молочна  кислота + Оо--The activity of the resulting lactate corticone is determined by spectrophotometric method, m, based on the scheme of a given method for the conversion of lactic acid: lactic acid + Oo--

лактатокси--- пировиноградна  кислота + . даза lactatoxy --- pyruvic acid +. Daz

. Метод включает взаимодействие лак- татоксидазы с субстратом - Ь-молочной кислотой в гщтрал-фосфатном буфере рИ 6,5, и детектирование образовавшейс  пероксидазой, что визуализируетс  присутствием в реаки ионной смеси о фенилендиамина. Единицу ак-. тивиости лактатоксидазы выражают количеством фермента,, превращающего 1 мкмоль молочной кислоты в пировино градную кислоту и Н/jC при рН 6,5, 25 С в- течение 1 мин.. The method involves the interaction of lactate oxidase with a substrate — L-lactic acid in pI 6.5 gstral phosphate buffer, and detection of peroxidase formed, which is visualized by the presence of an ionic mixture of phenylenediamine in the packer. Unit ac- The lactic acid oxidase tivi is expressed by the amount of the enzyme that converts 1 μmol of lactic acid into pyruvic acid and H / jC at pH 6.5, 25 ° C in 1 minute.

Способ по сн етс  следую1цими примерами .The method is explained in the following examples.

Пример 1 (контроль). Способ включает следующие этапы: поддерживание культуры в пробирках, выращивание посевного материала в колбах и культивирование микроорганизма в колбах в присутствии молочной кислоты, отделение биомассы, разрушение клеток, центрифугирование их гомогената с целью получени  растворимого фермента- сьфца.Example 1 (control). The method includes the following steps: maintaining the culture in test tubes, growing seed in flasks and cultivating the microorganism in flasks in the presence of lactic acid, separating the biomass, destroying the cells, centrifuging their homogenate to obtain a soluble enzyme.

Поддерживание культуры Acetobacc«r suboxydane var. muciparum Frateur 1950-1289.Maintaining Acetobacc culture “r suboxydane var. muciparum frateur 1950-1289.

Культура поддерживаетс  в пробирках на скошенном агаре и в колбах с жидкой-питательной средой переменно. Состав агаризованной среды следующий,The culture is maintained in test tubes on beveled agar and in flasks with liquid nutrient medium variable. The composition of the agar medium next,

г/л: дрожжевой экстракт 10, глюкоза 10; пептон 5; мел 10, агар 15. Источники углерода - глюкоза, сорбит, глицерин , периодически Мен ют. Жидкие среды дл  поддерживани  культуры предg / l: yeast extract 10, glucose 10; peptone 5; chalk 10, agar 15. Carbon sources — glucose, sorbitol, glycerin, periodically Change. Liquid media to maintain the culture of the pre

toto

2020

2525

1774417744

сусла, 500 мл фталатного буфера, рН 5,5. Посевной материал выращивают в течение 1 сут при 25 С на качалке при 150 колебаний/мин. Wort, 500 ml phthalate buffer, pH 5.5. The seed is grown for 1 day at 25 ° C on a rocking chair at 150 vibrations / min.

Посевной материал в количестве 5% перенос т в колбы с ферментационной средой, состав которой соответствует указанному в прототипе, г/л: 1,5; .дрожжевой экстракт 1,0; 5,0; 4,0; MgSO 7Н20 0,2; MnSO Н,0 ,0,08; 37,5 мл/л 40%-ной D, L-молочной кислоты, рН среды уравновешивают с до 5,2. Культивирование продуцента провод т в течение 24 ч при 25°С на качалке при 150 колебаний/мин.The seed in the amount of 5% is transferred into flasks with a fermentation medium, the composition of which corresponds to that indicated in the prototype, g / l: 1.5; yeast extract 1.0; 5.0; 4.0; MgSO 7H20 0.2; MnSO H, 0, 0.08; 37.5 ml / l of 40% D, L-lactic acid, pH equilibrated to 5.2. Cultivation of the producer was carried out for 24 hours at 25 ° C on a rocking chair at 150 vibrations / min.

Отделение биомассы, ее гомогенизаци  и центрифугирование клеточного гомогената.Separation of biomass, its homogenization and centrifugation of the cell homogenate.

Биомассу отдел ют центрифугированием 3000 об/мин в течение 30 мин.Выход биомассы составл ет 12 г/л питательной среды, т.е. 2,4 г сухой массы/л из расчета, что сухое вещество клетки составл ет около 20%,The biomass is separated by centrifugation at 3000 rpm for 30 minutes. The biomass yield is 12 g / l nutrient medium, i.e. 2.4 g dry weight / l on the basis that the dry matter of the cell is about 20%,

Клетки 3-кратно промывают цитрат- фосфатным буфером, рН 6,5, суспендируют в этом же буфере в соотношении 1:3 и обрабатывают ультразвуком частотой 22 кГц в течение 6 мин. Клеточный го- могенат центрифугируют при 100000 g в течение 3,5 ч при 4°С. Супернатант представл ет собой фермент-сырец, лактатоксидазна  активность которог о достигает 6100 ед/л (6,1 ед./мл). Концентраци  белка 6,0 мг/мл, т.е. активность 1 мл фермента в пересчете в соотношении с количеством белка в этом же объеме 1 ед/мл. Выход фермента-сырца в пересчете на 1 л питательной среды (масса биомассы умноженна  на объем буфера, в котором она сус- . пендируетс , и на активность 1 млThe cells are washed 3 times with citrate-phosphate buffer, pH 6.5, suspended in the same buffer in a 1: 3 ratio and sonicated at 22 kHz for 6 minutes. The cell homogenate is centrifuged at 100,000 g for 3.5 hours at 4 ° C. The supernatant is a raw enzyme, the lactate oxidase activity of which reaches 6100 units / l (6.1 units / ml). The protein concentration is 6.0 mg / ml, i.e. the activity of 1 ml of enzyme in terms of the amount of protein in the same volume of 1 u / ml. The yield of the raw enzyme in terms of 1 liter of the nutrient medium (the mass of biomass is multiplied by the volume of the buffer in which it is suspended, and the activity is 1 ml

30thirty

3535

4040

ставл ют собой питательные среды, при-. фермента-сырца) 219,6 ед.are nutrient media, with -. raw enzyme) 219.6 units

5050

мен емые дл  выращивани  посевного материала, состав которых приводитс  №1же. На скошенном агаре культура сохран етс  в течение 1 мес, а в жидких средах - 2-3 сут,exchangeable for growing inoculum, the composition of which is listed as No. 1. On canted agar, the culture is maintained for 1 month, and in liquid media for 2-3 days,

Выравщвание посевного материала и культивирование продуцента в колбах.Growing seed and cultivating the producer in flasks.

Бактерии со скошенного агара пере-. сеивают в колбы с питательной средой, состав которой соответствует указанному в Прототипе: 10 г/л 85%-ной D, L-молоЧной кислоты; 5,0 г/л дрожжевого экстракта; 2,0 г/л , j2,0 г/л MgS04 . 7HiO,. 500 мл пивногоBacteria with oblique agar re-. sow in flasks with a nutrient medium, the composition of which corresponds to that indicated in the Prototype: 10 g / l of 85% D, L-molar acid; 5.0 g / l yeast extract; 2.0 g / l, j2.0 g / l MgSO4. 7HiO ,. 500 ml beer

Пример 2. Культив продуцента с применением сыворотки в качестве исто ной кислоты дл  выращиван го материала.Example 2. A producer culture with the use of serum as a true acid for a grown material.

Поддерживание культуры suboxydans var. muciparu 1950-1280 провод т по при севной материал вьфащиваю на питательной среде, при на основе творожной сывор жащей 0,96% молочной кисл бавкой 5,0 г/л дрожжевого рН питательной среды 5,2. Maintaining culture suboxydans var. Muciparu 1950–1280 is carried out in case of seeding the material on a nutrient medium, while on the basis of a curd syrup, 5.0 g / l of yeast pH of the nutrient medium, which is 0.96% lactic acid, is nutrient-rich.

фермента-сырца) 219,6 ед.raw enzyme) 219.6 units

Пример 2. Культивирование .. продуцента с применением творожной сыворотки в качестве источника молочной кислоты дл  выращивани  посевного материала.Example 2. Cultivation of a producer using curd whey as a source of lactic acid for growing seed material.

Поддерживание культуры Acetobaccer suboxydans var. muciparum Frateur . 1950-1280 провод т по примеру 1, Посевной материал вьфащивают в колбах на питательной среде, приготовленной на основе творожной сыворотки, содержащей 0,96% молочной кислоты, с  о- бавкой 5,0 г/л дрожжевого экстракта, рН питательной среды 5,2. ТворожнуюMaintaining Acetobaccer suboxydans var. muciparum frerateur. 1950-1280 is carried out as in example 1, the seed is extruded in flasks on a nutrient medium prepared on the basis of cheese whey containing 0.96% lactic acid, with an additive of 5.0 g / l of yeast extract, pH of the nutrient medium 5, 2 Cottage cheese

сыворотку подщелачивают до рН 5,2, автоклавируют при 0,5 атм в течение 30 мин и хран т при 4°С. Перед применением дважды фильтруют через бумаж- ньй фильтр.the serum is alkalinized to pH 5.2, autoclaved at 0.5 atm for 30 minutes and stored at 4 ° C. Filter before use twice through a paper filter.

Далее выращивание посевного материала и культивирование продуцента провод т по примеру 1. Выход биомассы составл ет 34 г/л питательной ере- ды (в пересчете на сухую массу 6,8 г/л).Further, the cultivation of the seed material and the cultivation of the producer are carried out as in Example 1. The biomass yield is 34 g / l of nutrient medium (dry weight is 6.8 g / l).

Получение фермента-сырца провод т по примеру 1. Активность полученного образца лактатоксидазы составл етThe preparation of the raw enzyme is carried out as in Example 1. The activity of the obtained sample of lactate oxidase is

7750 ед/л, т.е. 7,8 ед./мп. Концентраци  белка 7,6 MI /MSI, т.е. активност 1 МП фермента в пересчете в соотношении с количеством белка в этом же объеме 1,2 ед/мг. Выход фермента в пересчете на 1 л питательной среды 790,3 ед.7750 u / l, i.e. 7.8 units / mp The protein concentration is 7.6 MI / MSI, i.e. the activity of 1 MP enzyme in terms of the ratio with the amount of protein in the same volume of 1.2 units / mg. The output of the enzyme in terms of 1 l nutrient medium 790,3 units

Пример 3. Поддержание культуры Acecobacter oxydans var. mucipa- rum Trateur 1950-1280 провод т поприме py 1 .Посевной материал выращивают в колбах на питательной среде, приготовленной на основе творожной сыворотки, содержащей 0,96% молочной кислоты, с добавкой 7 МП/л 40%-нЬй молочной кис- (суммарна  концентраци  1,24%) и 5,0 г/л дрожжевого экстракта, рН питательной среды 5,2.Example 3. Maintaining Acecobacter oxydans var culture. mucipa-rum Trateur 1950–1280 is carried out in prima py 1. The seed material is grown in flasks on a nutrient medium prepared on the basis of curd whey containing 0.96% lactic acid, with the addition of 7 MP / l of 40% lactic acid ( total concentration 1.24%) and 5.0 g / l yeast extract, pH of the nutrient medium 5.2.

I, .I,.

5% (5 мл) инокул та -перенос т в ферментативную среду, и процесс далее провод т по примеру 1.5% (5 ml) of inoculum was transferred to the fermentation medium, and the process was then carried out as in Example 1.

Выход биомассы составл ет 32 г/п питательной среды (в пересчете на сухую массу 6,4 г/л). Активность полученного образца лактатоксидазы составл ет 7700 ед./л, т.е. 7,7 ед./мп. Выход фермента в пересчете на 1 л питательной среды 739,2 ед.The biomass yield is 32 g / p nutrient medium (based on a dry weight of 6.4 g / l). The activity of the obtained sample of lactate oxidase is 7700 units / l, i.e. 7.7 u / mp The output of the enzyme in terms of 1 l nutrient medium 739.2 units

Преимуществом способа  вл етс  упрощение получени  лактатоксидазы, превращакацей молочную кислоту в пи- ровиноградную кислоту и при применении доступного микроорганизма и простой питательной среды. ;The advantage of the method is to simplify the production of lactate oxidase, converting lactic acid to pyruvic acid and using an available microorganism and simple nutrient medium. ;

Claims (1)

Формула изоб-ретени Formula isobuty Способ получени  лактатоксидазы, предусматривающий выращивание посевного материала продуцента из рода Асе- tobacter на питательной среде, содержащей источник молочной кислоты и дрожжевой экстракт, внесение инокул та посевного материала в ферментаци-. онную среду и культивирование до мак- симальног о накоплени  фермента, отделение биомассы, ее гомогенизацию и центрифугирование, отличающийс  тем, что, с целью упрощени  способа, расширени  его функцио-: нальных возможностей и повьпдени  выхода фермента, в качестве продуцента используют штамм Acecobaccer suboxy- dans vSr muciparura Frateur NCI В 5595, a в качестве основы питательной среды и источника молочной кислоты дл  выращивани  посевного материала используют творожную сыворотку.A method of producing lactate oxidase, which involves growing the seed material of a producer from the genus Acetobacter on a nutrient medium containing a source of lactic acid and yeast extract, introducing the inoculum of the seed into fermentation. cultivation of the enzyme, separation of biomass, its homogenization and centrifugation, characterized in that, in order to simplify the method, expand its functional capabilities and control the yield of the enzyme, Acecobaccer suboxy strain is used as a producer dans vSr muciparura Frateur NCI B 5595, and cottage cheese whey is used as the basis of the nutrient medium and source of lactic acid for growing seed.
SU874291441A 1987-07-28 1987-07-28 Method of obtaining lactatoxidase SU1521774A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874291441A SU1521774A1 (en) 1987-07-28 1987-07-28 Method of obtaining lactatoxidase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU874291441A SU1521774A1 (en) 1987-07-28 1987-07-28 Method of obtaining lactatoxidase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1521774A1 true SU1521774A1 (en) 1989-11-15

Family

ID=21322172

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU874291441A SU1521774A1 (en) 1987-07-28 1987-07-28 Method of obtaining lactatoxidase

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1521774A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Патент US }i 4166763, кл. G 01 N 3t/14, опублик. 1979. Саппо I.I., Li Fu Chen, Tlicking- .er M.C., Tsao T.G. The development of Inmobilized Lactate Oxidase System for Lactic Acid Analysis.-Biotechnol. and Bioengin, 1984, v. 26, p. 167-173. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mahmoud et al. Alcohol and single cell protein production by Kluyveromyces in concentrated whey permeates with reduced ash
Mehaia et al. Hollow fibre bioreactor for ethanol production: application to the conversion of lactose by Kluyveromyces fragilis
JPS58165786A (en) Variant of clostridium acetobutylicum with high productivity of buthanol and acetone and preparation thereof
Leviton et al. Microbiological synthesis of vitamin B12 by propionic acid bacteria
CN110564580B (en) Method for producing vinegar containing pyrroloquinoline quinone through microbial co-culture fermentation
CN1054398C (en) Bacillus capable of producing super oxide dismutase and its production method
SU1521774A1 (en) Method of obtaining lactatoxidase
Wickerham Evidence of the production of extracellular invertase by certain strains of yeasts
EP0343330A2 (en) Biotransformation of L-tyrosine and L-phenylalanine to 2,5-dihydroxyphenylacetic acid
JP3004509B2 (en) Method and apparatus for producing ethanol from microalgae
US6716617B1 (en) Fermentation method with continuous mass cultivation of ciliates (protozoa) for producing biogenous valuable substances
JP3603980B2 (en) Method for producing fermented liquor containing gluconic acid and acetic acid
Schuster et al. A synthetic medium for continuous culture of the S‐layer carrying Bacillus stearothermophilus PV 72 and studies on the influence of growth conditions on cell wall properties
CN116286513B (en) Lactobacillus johnsonii FR-1012 and method for industrially producing gamma-aminobutyric acid by same
RU2113477C1 (en) Strain kluyveromyces marxianus varietas bulgaricus t3 - a producer of superoxide dismutase and accompanying enzymes
CN1212386C (en) Process for preparing pectinase by solid fermentation of coom aspergillus mutant K58
RU1471559C (en) Method of preparation of extracellular invertase from yeast
Tasman et al. The formation of hydrogen from glucose and formic acid by the so-called “resting” B. coli. I
RU2113478C1 (en) Method of superoxide dismutase preparing
RU2627182C1 (en) Aneurinibacillus migulanus strain and its application for gramicidin s production
RU2001949C1 (en) Strain of fungus trichoderma reesei - a producer of cellulolytic enzymes
SU1482941A1 (en) Method of producing fodder yeast biomass
SU1433981A1 (en) Method of producing enzymic preparation of l-lysine-decarboxylase
SU1125250A1 (en) Strain sterptomyces lavendulae inmi a-82 producer of cholesteroloxydase
RU1804479C (en) Method of serratia marcescens cultural fluid preparation showing chitinase activity