SU1382848A1 - Method of measuring concentration of microorganisms in suspension - Google Patents
Method of measuring concentration of microorganisms in suspension Download PDFInfo
- Publication number
- SU1382848A1 SU1382848A1 SU864114593A SU4114593A SU1382848A1 SU 1382848 A1 SU1382848 A1 SU 1382848A1 SU 864114593 A SU864114593 A SU 864114593A SU 4114593 A SU4114593 A SU 4114593A SU 1382848 A1 SU1382848 A1 SU 1382848A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- suspension
- microorganisms
- added
- concentration
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Description
СОWITH
0000
1ЧЭ1CE
00 00
0000
Изобретение относитс к микробиологии и может быть использовано при иммунофлуоресцентном анализе микроорганизмов .This invention relates to microbiology and can be used in immunofluorescent analysis of microorganisms.
Целью изобретени вл етс повышение достоверности способа и сокращение времени определени .The aim of the invention is to increase the reliability of the method and reduce the time of determination.
Способ заключаетс в том, что в суспензию клеток добавл ют специфи- ческий люминесцирующий иммуноглобулин , полученную смесь ввод т в гель, микрообъем смеси нанос т на предметное стекло, выдерживают до начала по лимеризации, накрывают покровным стеклом и выдерживают до затвердевани без образовани пустот и подсчитывают число микроорганизмов (кл/мл) по формулеThe method consists in adding a specific luminescent immunoglobulin to the cell suspension, introducing the resulting mixture into the gel, applying the microvolume of the mixture to a glass slide, allowing it to stand before the polymerisation, cover it with a cover glass, and allow it to solidify without forming voids and count the number of microorganisms (cells / ml) according to the formula
S-, М а S-, M and
N N
So. 25-VSo. 25-v
-1 e-1 e
flpflp
где Swhere s
OKOk
площадь покровного стекла,cover glass area
мм ,mm,
площадь окул рной сетки, приведенна к увеличениюarea of the ocular grid, reduced to
объектива, ммlens mm
г.year
прetc
аbut
I 25 - число полей зрени ; М - число клеток в 25 пол х зрени каждого образца; У„„ - микрообъем смеси дл одного образца, мм; число разведенной суспензии;I 25 is the number of fields of view; M is the number of cells in 25 fields of view of each sample; At „„ - microvolume of mixture for one sample, mm; the number of diluted suspension;
погреиность результата из 10 образцов.Result of 10 samples.
Пример 1. Определение концентрации клеток BiSubfills в суточной бульонной культуре.Example 1. Determination of the concentration of BiSubfills cells in the daily broth culture.
Суточную культуру В.SU bf i1 is, выращенную в м сопептонном бульоне, объемом 3. МП помещают в кювету (толщиной 1 см) спектрофотометра и измер ют плотность на длине волны 600 нм, величина которой составл ет больще 3 ед.оптической плотности. Культуру развод т физиологическим раствором {0,85%-ным NaCl) в 20 раз и измер ют оптическую плотность, котора составл ет 0,36 ед. оптической плотности. К 3 мл полученной суспензии добавл ют 0,375 мл люминесцирующего иммуноглобулина , специфического к В, sub- fllis разведена 1:8. После проведени (15 мин) иммунофлуоресцентной реакции в полученную смесь добавл ют 0,3 мл дезоксихолата (0,3 мг/мл), переворачивают закрытую пробирку несколько раз без образовани пены.A daily batch of B.SU bf i1 is grown in 3 m septon broth with a volume of 3 MP is placed in a cuvette (1 cm thick) of the spectrophotometer and the density is measured at a wavelength of 600 nm, the value of which is more than 3 optical density. The culture was diluted with physiological saline (0.85% NaCl) 20 times and the optical density was measured, which is 0.36 units. optical density. To 3 ml of the resulting suspension, 0.375 ml of a luminescent immunoglobulin specific to B is added, sub-fllis is diluted 1: 8. After conducting an immunofluorescent reaction (15 minutes), 0.3 ml of deoxycholate (0.3 mg / ml) is added to the resulting mixture, and the closed tube is inverted several times without foaming.
0,3 мл полученной смеси добавл ют к 2,7 мл гел -. Затем на обезжиренное предметное стекло нанос т по две капли смеси по 3 мкл, после 3 мин выдерживани кйждую каплю накрывают покровным стеклом 0,15 мл размером 16x16 мм. Подсчет клеток провод т на микроскопе в 25 пол х зрени на п ти мазках: 90,0, 89, 87, 100, 82. Ср еднее число клеток составл ет (в 25 пол х зрени ) М 91+3. Концентраци В,subfi1fs0.3 ml of the resulting mixture was added to 2.7 ml of gel. Then, two drops of a mixture of 3 µl are applied to a defatted glass slide, after 3 minutes of incubation, each drop is covered with a cover glass of 0.15 ml measuring 16x16 mm. The cells were counted on a microscope in 25 fields of view on five smears: 90.0, 89, 87, 100, 82. The average number of cells is (in 25 fields of view) M 91 + 3. Concentration B, subfi1fs
So« 25-V,So "25-V,
±е (7,5+0,2)± e (7.5 + 0.2)
прetc
х10 кл/мл.x10 cells / ml.
Врем анализа 30-40 мин.The analysis time is 30-40 minutes.
Пример 2. Подсчет клеток кишечной палочки Ml 7 в препарате Бификол.Example 2. Counting of E. coli cells Ml 7 in the preparation Bifikol.
4,5 мл неразведенной суспензии препарата Бификол, содержащего клетки кишечной палочки Ml 7 ибифидобакте- рии, соедин ют с 0,6 мл люминесциру- ющего иммуноглобулина, специфического к кищечной палочке разведени 1:8. После проведени иммунофлуоресцентной реакции 15 мин в полученную смесь добавл ют 0,45 мл дезоксихолата (0,3 мг/мл), несколько раз (герметично закрытую) пробирку переворачивают без образовани пены, 4,2 мл полученной суспензии добавл ют в используемый в данном случае полиакриламид- ный гель вместо дистиллированной воды . Затем на обезжиренное стекло нанос т 2 капли смеси по 3 мкл, после 3 мин выдерживани каждую каплю накрывают покровным стеклом толщиной 0,15 мм, под которым через 7 мин образовываетс застеклованна проба, занимающа камеру размером 16x16x0, ОПОЗ мм. Подсчет клеток провод т на микроскопе в 25 пол х зрени на шести мазках: 15, 20, 17, 16, 13, 16. Среднее число клеток в 25 пол х зрени мазков М 15±2. Концентраци кищечной палочки Ml 7 в препарате Бификол4.5 ml of undiluted suspension of Bifikol containing cells of E. coli Ml 7 ibifidobacteria is combined with 0.6 ml of luminescent immunoglobulin specific to the 1: 8 dilution stick. After carrying out the immunofluorescent reaction for 15 minutes, 0.45 ml of deoxycholate (0.3 mg / ml) is added to the mixture, the tube is inverted several times (hermetically sealed), without foaming, 4.2 ml of the suspension obtained is added to polyacrylamide gel instead of distilled water. Then 3 drops of the mixture were applied to the defatted glass, 3 µl each, and after 3 minutes of incubation, each drop was covered with a cover glass with a thickness of 0.15 mm, under which, after 7 minutes, a vitrified sample was taken that occupied the chamber 16x16x0, OPO mm. Cell counting was performed on a microscope in 25 fields of view on six smears: 15, 20, 17, 16, 13, 16. The average number of cells in 25 fields of view of smears M is 15 ± 2. Concentration of chopstick Ml 7 in Bifikol
N N
± (1,7-0,2) ± 1.7-0.2
So. 10 кл/МП.So. 10 cells / MP
Врем анализа 30-40 мин.The analysis time is 30-40 minutes.
Клетки бифидобактерий не мешают количественной оценке клеток кишечной палочки из-за специфического окрашивани только клеток кишечной палочки .The cells of bifidobacteria do not interfere with the quantitative evaluation of the cells of Escherichia coli due to the specific staining of only the cells of Escherichia coli.
Пример 3. Подсчет общего числа микроорганизмов в препарате Бифи- кол с помощью неспецифического окра- щивани клеток микроорганизмов.Example 3. Counting the total number of microorganisms in the preparation Bifikol using nonspecific staining of microorganism cells.
4,5 мл неразведенной суспензии препарата Бификол смешивают с 0,5 мп ФИТЦ (флуоресцеин изотиоцианат изомер ). Исходный раствор ФИТЦ 1 MI-мл рН 8,0 инкубируют 10 мин. К полученной смеси добавл ют 0,45 мл дезокси- холата (0,3 мг/мл). 4,2 полученной суспензии добавл ют в используемый в данном случае полиакриламидный гель вместо дистиллированной воды. Затем на обезжиренное стекло нанос т по 2 капли смеси по 3 мкл. После 3 мин выдерживани каждую каплю накрывают покровным стеклом толщиной 0,15 мм размером 16x16 мм. Подсчет клеток провод т на микроскопе в 25 пол х зрени на шести мазках: 86, 95, 87, 101, 91. Среднее число клеток в 25 пол х зрени мазков М 4.5 ml of undiluted suspension of the drug Bifikol is mixed with 0.5 ml of FITZ (fluorescein isothiocyanate isomer). FITC stock solution of 1 MI-ml pH 8.0 is incubated for 10 minutes. To the mixture obtained, 0.45 ml of deoxycholate (0.3 mg / ml) is added. 4.2 of the resulting suspension is added to the polyacrylamide gel used in this case instead of distilled water. Then, 2 drops of the mixture of 3 µl are applied to the defatted glass. After 3 minutes of incubation, each drop is covered with a cover glass with a thickness of 0.15 mm and a size of 16x16 mm. Cell counting was performed on a microscope in 25 fields of view on six smears: 86, 95, 87, 101, 91. The average number of cells in 25 fields of view of smears M
± f (1,02 ± Ъок /J у„, ± f (1.02 ± wok / J y „,
ПрEtc
91+4. N 91 + 4. N
+ 0,04) -10 кл/мл.+ 0.04) -10 cells / ml.
Врем анализа 30-40 мин.The analysis time is 30-40 minutes.
Используемый гель должен удовлетвор ть следующим услови м: не обладать собственной люминесценцией при возбуждении в диапазоне длин волн 400-500 нм, не тушить люминесценцию красител , образовывать после полимеризации прозрачное стекловидное тело, не должен содержать посторонних включений, образование застекло ванного тела должно заканчиватьс в течение 7-10 мин.The gel used must satisfy the following conditions: do not have its own luminescence when excited in the wavelength range of 400-500 nm, do not extinguish the luminescence of the dye, form a transparent vitreous body after polymerization, must not contain extraneous inclusions, the formation of the glassy body should end up 7-10 min.
Таким требовани м отвечает, например , полиакриламидный гель, сост щий из акриловой кислоты амид (СН2 CHCONH ,), персульфата аммони (NN4) )1 додецилсерной кислоты натриева соль ДЦС (СН з(СН2)т050эМа N ,N -метилен-бис-акриламида (ОН 2(NHOCCH CH ) N,N,N N -тетраме тилэтилендиамина ((CHj) (СН ), трис-(оксиметил)-аминометана (NH СССН-гОН) з) , а также трис-(окси- метил)-аминометан гидрохлорида (NH2C(CH20H) jHCl.For example, polyacrylamide gel, acrylic acid amide (CH2 CHCONH), ammonium persulfate (NN4)) 1 dodecyl sulfuric acid, sodium salt DCC (CH3 (CH2) t050eMa N, N-methylene bis-acrylamide (OH 2 (NHOCCH CH) N, N, NN -tetramethylethylenediamine ((CHj) (CH), tris- (hydroxymethyl) aminomethane (NH CCCH-gOH))), as well as tris- (hydroxymethyl) aminomethane hydrochloride (NH2C (CH20H) jHCl.
Дл работы готов т раствор А: в 25 мл дистиллированной воды раствор ют 1,85 г трис-НС1, 7,7 г трис- ОН, 0,2 г ДДС, после растворени объем довод т до 50 мл; раствор В: в 50 мл дистиллированной воды раст0Solution A is prepared for operation: 1.85 g of Tris-HC1, 7.7 g of Tris-OH, 0.2 g of SDA are dissolved in 25 ml of distilled water, the volume is brought to 50 ml after dissolving; solution B: in 50 ml of distilled water dilated
5five
00
5five
00
5five
00
5five
00
5five
вор ют 14,6 г акриламида, 0,4 г бис-акриламида; раствор С: готовый раствор ТЭМЭД (N ,N ,М , N -тетраметил- этилендиамин); раствор D: в 2 мл дистиллированной воды раствор ют 200 мг персульфата аммони .14.6 g of acrylamide, 0.4 g of bis-acrylamide are stolen; Solution C: TEMED ready solution (N, N, M, N-tetramethyl-ethylenediamine); solution D: 200 mg of ammonium persulfate are dissolved in 2 ml of distilled water.
Дл приготовлени гел смешивают растворы А, В, Ci D в следующем пор дке: 2,5 мл раствора А, 3,3 мл раствора В, довод т дистлиллирован- ной водой до 10 МП, 5 мкл раствора С, 50 мкл раствора D. To prepare the gel, mix solutions A, B, Ci D in the following order: 2.5 ml of solution A, 3.3 ml of solution B, bring up to 10 MP with distilled water, 5 µl of solution C, 50 µl of solution D.
Концентраци клеток после суммарного разведени Неисходной суспентCell concentration after total dilution Incomplete suspension
зииZia
П П,,PP ,,
где П - разведение исходной суспензии фосфатным буфером до 0,„„ 0,2-0,5;where P is the dilution of the initial suspension with phosphate buffer to 0, „„ 0.2-0.5;
П - разведение люминесцирующим иммуноглобулином; разведение дезоксихолатом;P - dilution luminescent immunoglobulin; dilution with deoxycholate;
Пз П - разведение гелем,Pz P - breeding gel
должна составл ть 5 40 , ... 10 кл/мл.should be 5 40, ... 10 cells / ml.
Изобретение может быть использовано при нормировании приборов, предназначенных дл счета клеток в суспензи х , концентраторов, приборов, используемых дл контрол загр знений окружающей среды микробиологическими предпри ти ми. Кроме того, соб может быть использован дл определени количественного и качественного составов клеточных суспензий в готовых формах вакцин и препаратов.The invention can be used in standardizing devices intended for counting cells in suspensions, concentrators, devices used for monitoring environmental pollution by microbiological plants. In addition, the compound can be used to determine the quantitative and qualitative compositions of cell suspensions in ready-made forms of vaccines and drugs.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864114593A SU1382848A1 (en) | 1986-09-08 | 1986-09-08 | Method of measuring concentration of microorganisms in suspension |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864114593A SU1382848A1 (en) | 1986-09-08 | 1986-09-08 | Method of measuring concentration of microorganisms in suspension |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1382848A1 true SU1382848A1 (en) | 1988-03-23 |
Family
ID=21255474
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864114593A SU1382848A1 (en) | 1986-09-08 | 1986-09-08 | Method of measuring concentration of microorganisms in suspension |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1382848A1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0816512A1 (en) * | 1996-06-24 | 1998-01-07 | Basf Aktiengesellschaft | Use of a bioluminescence test for the determination of microorganisms in dispersions containing polymers and/or pigments |
-
1986
- 1986-09-08 SU SU864114593A patent/SU1382848A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Романенко В.И. и Кузнецов С.И. Экологи микроорганизмов пресных водоемов. - Л.: Наука, 1974, с. I 15- 116. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0816512A1 (en) * | 1996-06-24 | 1998-01-07 | Basf Aktiengesellschaft | Use of a bioluminescence test for the determination of microorganisms in dispersions containing polymers and/or pigments |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Heimer et al. | Improved mountant for immunofluorescence preparations. | |
DE69015487T2 (en) | Fiber optic, active, chemical sensor and manufacturing method of the same. | |
US5075556A (en) | Acridine orange derivatives and their use in the quantitation of reticulocytes in whole blood | |
CN107118865B (en) | Cleaning solution | |
Araki et al. | Accurate determination of DNA content in single cell nuclei stained with Hoechst 33258 fluorochrome at high salt concentration | |
CN110982870B (en) | Microbial multiple fluorescence staining solution and application thereof | |
US5445946A (en) | Intravacuolar stains for yeast and other fungi | |
Rymaszewski et al. | Estimation of cellular DNA content in cell lysates suitable for RNA isolation | |
SU1382848A1 (en) | Method of measuring concentration of microorganisms in suspension | |
US20120058919A1 (en) | Method For Rapid Detection And Evaluation Of Cultured Cell Growth | |
CN107941773B (en) | endotoxin detection method based on fluorescent molecules | |
CN113402470B (en) | Multichannel reversible colorimetric mercury ion fluorescent probe, preparation method and application | |
CN115078737A (en) | Kit for detecting rabies immune plasma titer, and preparation method and application thereof | |
Geary et al. | The use of FDA and flow cytometry to measure the metabolic activity of the cyanobacteria, Microcystis aeruginosa | |
CN113686830B (en) | Batch semi-channel function level detection method based on fluorescent dye uptake | |
CN87101986A (en) | Fungi detects | |
CA2404502A1 (en) | Diagnosis of autoimmune disease by detecting thyroid stimulating autoantibodies | |
Peterson et al. | Use of a fluorescent dye to measure drug-induced changes in the membrane potential of boar spermatozoa | |
Masters et al. | Microviscosity of mucosal cellular membranes in toad urinary bladder: Relation to antidiuretic hormone action on water permeability | |
SU1082817A1 (en) | Culture medium for determining biological activity of heliomycin | |
CN101029871A (en) | Reagent formula for fastly inspecting glutamic-pyruvic transaminase by optical method | |
RU2804417C1 (en) | Method for quantitative fluorometric determination of 2-ethyl-6-methyl-hydroxypyridine hydrochloride | |
SU1157458A1 (en) | Method of determining sensitivity of malarial parasites of rodents to chloroquine phosphate | |
SU1638620A1 (en) | Method of determination of silica module of water glass | |
SU1617341A1 (en) | Method of quantitative determination of 3.6-dimethyl-1,2,3,4,4a,9a - hexahydro-gamma - carboline of hydrochloride |