SU1339130A1 - Method of determining respiratory activity of microorganisms - Google Patents
Method of determining respiratory activity of microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- SU1339130A1 SU1339130A1 SU853967077A SU3967077A SU1339130A1 SU 1339130 A1 SU1339130 A1 SU 1339130A1 SU 853967077 A SU853967077 A SU 853967077A SU 3967077 A SU3967077 A SU 3967077A SU 1339130 A1 SU1339130 A1 SU 1339130A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- culture
- respiratory activity
- luminescence
- cells
- indicator
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к микробиологии , а именно к биотехнологическим процессам производства различных бактерийньк препаратов и продуктов микробиологического синтеза. Целью изобретени вл етс увеличение чувствительности определени . Способ определени дыхательной активности культур микроорганизмов заключаетс в том, что к исследуемым микробным клеткам добавл ют индикатор, в качестве которого используют суспензию пекарских дрожжей Saccharomyces сеге- visial, полученную путем культивировани на среде до накоплени в клетках цинкопорфиринов, обеспечивающих люминесценцию 10 -10 с и инактиви- рованную при в течение 20-25 мин с последующей отмывкой до концентрации 4-5 г/л. Измер ют врем от момента внесени в исследуемый образец культуры микроорганизма до момента полного восстановлени интенсивности свечени индикаторной культуры до стационарного значени , по величине которого оценивают дыхательную активность культуры. 5 ил., 1 табл. § (Л со 00 со соThis invention relates to microbiology, in particular to biotechnological processes for the production of various bacterium preparations and products of microbiological synthesis. The aim of the invention is to increase the detection sensitivity. The method for determining the respiratory activity of microorganism cultures is that an indicator is added to the microbial cells to be examined, which use a suspension of Saccharomyces sequial baker's yeast, obtained by cultivating on the medium before accumulation of zincoporphyrins in cells, providing luminescence for 10 -10 s and inactivation. - at 20-25 minutes, followed by washing to a concentration of 4-5 g / l. The time is measured from the moment the microorganism culture is introduced into the test sample until the luminescence intensity of the indicator culture is fully restored to a stationary value, the magnitude of which measures the respiratory activity of the culture. 5 ill., 1 tab. § (L co 00 co co
Description
Изобретение относитс к микробиологии , а именно к биотехнологическим процессам производства различных бактерийных препаратов и продуктов микробиологического синтеза.This invention relates to microbiology, namely to biotechnological processes for the production of various bacterial preparations and products of microbiological synthesis.
Цель изобретени - увеличение чувствительности определени .The purpose of the invention is to increase the detection sensitivity.
Способ определени дыхательной активности культур микроорганизмов за- ключаетс в следующем.The method for determining the respiratory activity of microorganism cultures is as follows.
В кварцевую кювету помещают иссле- дуемьпЧ образец культуральной суспензии . В образец внос т порцию кислорода в виде определенного объема физио- логического раствора, в который предварительно добавл ют определенньЕЙ объем индикаторного раствора, приготовленного путем специальной обработки из суспензии клеток микроорганиз- мов, выраженных при определенных услови х , обеспечивающих накопление значительных количеств внутриклеточных веществ цинкопорфириновой природы .A sample of the culture suspension is placed in a quartz cuvette. A sample of oxygen is introduced into the sample in the form of a certain volume of physiological solution, to which a definite volume of indicator solution is prepared, prepared by special treatment from a suspension of microorganism cells expressed under certain conditions that ensure the accumulation of significant amounts of intracellular substances of zinc porphyrin nature. .
Измер ют врем от момента внесени в исследуемый образец культуры микроорганизма указанного раствора до момента полного восстановлени ин тенсивности свечени индикаторной культуры до с гацио 1арного значени . Концентраци остаточного кислорода в суспензии в этом случае меньще 10 МThe time from the moment the microorganism culture of the indicated solution was introduced into the sample under study was measured until the luminescence intensity of the indicator culture was completely restored to its essential value. The concentration of residual oxygen in the suspension in this case is less than 10 M
В качестве индикаторного раствора содержащего вещества, обладающие способностью к замедленной флуоресценции , котора тушитс растворенным в среде кислородом, используют пекарские дрожжи Saccharomyces cerevisial, выращенные предварительно в услови х обеспечивающих накопление в клетках высоких пулов соединена цинкопорфириновой природы.Saccharomyces cerevisial baker's yeast, previously grown under conditions ensuring accumulation in cells of high pools of zinc-porphyrin nature, is used as an indicator solution of a substance that has the ability to delayed fluorescence, which is quenched with dissolved oxygen.
Методика приготовлени индикатор- ной культуры заключаетс в следующемThe method of preparation of the indicator culture is as follows.
Культуру промышленного щтамма Sac charomyces cerevisial выращивают на стандартной синтетической питательно среде следующего состава, г: 12} 200,5The culture of industrial schtamma Sac charomyces cerevisial is grown on a standard synthetic nutrient medium of the following composition, g: 12} 200.5
,0,50.5
NaCl5,0NaCl5,0
MgS04, , 138 MgS04, 138
12Н..,01 ,35 12H .., 01, 35
, 1,81.8
Лимоннокислый аммоний4 , 5Ammonium citrate4, 5
Сахароза50,0Sucrose 50,0
ZnS()4- ,0029ZnS () 4-, 0029
(концентраци подобрана зкспери- ментально и вл етс оптимальной дл накоплени длительн люминес- цирующих соединений ) .(the concentration is matched by experiment and is optimal for the accumulation of long-lasting luminescent compounds).
Выращивание провод т при без принудительной аэрации в колбах в течение 72 ч.The cultivation is carried out with no forced aeration in flasks for 72 hours.
По окончании процесса культивировани провод т контрольное измерение уровн интенсивности замедленной флуоресценции с целью оценки концентрации синтезированных цинкопорфирино вьгх соединений. Вычисл ют удельную концентрацию флуорофора на единицу биомассы.At the end of the cultivation process, a control measurement of the level of the intensity of the delayed fluorescence is carried out in order to estimate the concentration of the synthesized zinc-porphyrin compounds. The specific concentration of fluorophore per unit biomass is calculated.
Культуральную суспензию дрожжевых клеток инактивируют посредством термической обработки при 80°С в течение 20-25 мин. Провод т повторный контроль характеристик замедленной флуоресценции дрожжевой культуры. Свечение должно полностью отсутствовать . Это объ сн етс тем, что при указанных услови х термической обработки инактивируетс эндогенное клеточное дыхание и растворенньш в среде кислород тущит замедленную флуоресценцию клеточных цинкопорфиринов. Полученную инактивированную культуру центрифугируют при 1500 об/мин в течение 15 мин и ресуспендируют в физиологическом растворе до конечной концентрации 100 г/л.The culture suspension of yeast cells is inactivated by heat treatment at 80 ° C for 20-25 minutes. The repeated control of the characteristics of the delayed fluorescence of the yeast culture is carried out. The glow should be completely absent. This is due to the fact that, under these heat treatment conditions, endogenous cellular respiration is inactivated and oxygen in the medium dissolves retards the fluorescence of cellular zinc porphyrins. The obtained inactivated culture is centrifuged at 1500 rpm for 15 min and resuspended in physiological solution to a final concentration of 100 g / l.
Индикаторную культуру хран т в плотно закрытом сосуде при пониженно температуре (+4°С) в течение шести мес цев в услови х, не требующих стерильности .The indicator culture is stored in a tightly closed container at a low temperature (+ 4 ° C) for six months under conditions that do not require sterility.
Перед измерением дыхательной ак- TtffiHocTH исследуемой культуры микроорганизма индикаторную суспензию развод т физиологическим раствором до концентрации 5 г/л. Температуру индикаторного раствора довод т до темпе iBefore measuring the respiratory acti-TtffiHocTH of the microorganism culture under investigation, the indicator suspension was diluted with physiological saline to a concentration of 5 g / l. The temperature of the indicator solution is adjusted to i
ратуры исследуемого образца культуры При проведении измерений необходимо, чтобы концентраци индикаторного флуорофора в смеси оставалась посто нной . Как показали предварительные исследовани , обычно при одном измерении требуетс 1 мл анализируемой культуры и 1 мл индикаторного раствора .The cultures of the culture sample under study. When measuring, it is necessary that the concentration of the indicator fluorophore in the mixture remains constant. As shown by preliminary studies, usually, in one dimension, 1 ml of the analyzed culture and 1 ml of indicator solution are required.
Предлагаемый способ измерени дыхательной активности микроорганизмов основан на том, что активна анализируема культура утилизирует внесенную порцию кислорода. При снижении концентрации растворенного кислорода в смеси до уровн 10 М и ниже устран етс эффект(Тушени кислородом замедленной флуоресценции цинкопорфири нов индикаторной культуры. Способ позвол ет контролировать скорость потреблени кислорода анализируемой культурой на основании измерени динамики восстановлени интенсивности замедленной флуоресценции индикатор- ной культуры, активности культур микроорганизмов , не обладающих собственной замедленной флуоресценцией, например , дл измерени скорости потреблени кислорода культурой Esche- richia coli М-17 при производстве лечебно-профилактического препарата ко- либактерина, культурой Baccillus sub- tilis (продуцента рибофлавина), культурой Brevibacterium flavum (продуцента гомосерина).The proposed method for measuring the respiratory activity of microorganisms is based on the fact that the analyzed culture is active and utilizes the introduced portion of oxygen. By reducing the dissolved oxygen concentration in the mixture to a level of 10 M and below, the effect is eliminated (Oxygen quenching of delayed fluorescence of zinc porphyrins of the indicator culture. The method allows monitoring the rate of oxygen consumption of the analyzed culture based on measuring the dynamics of recovery of the intensity of delayed fluorescence of the indicator culture, activity of the cultures microorganisms that do not have their own delayed fluorescence, for example, to measure the rate of oxygen consumption to lturoy Esche- richia coli M-17 in the manufacture of a therapeutic and prophylactic drug Ko libakterina, culture Baccillus sub- tilis (producing riboflavin), culture Brevibacterium flavum (producing homoserine).
Пример 1. Культура Escheri- chia coli М-17. Среда дл культивировани - М9. Источник углерода и энергии - глюкоза 0,3% . Периодичес- кое выращивание в ферментере рабочим объемом 2 л. Скорость аэрации 1 л/1 среды в минуту. Скорость вращени мешалки 900 об/мин.Example 1. Culture of Escheri- chia coli M-17. The culture medium is M9. The source of carbon and energy is 0.3% glucose. Periodic cultivation in a fermenter with a working volume of 2 l. The aeration rate of 1 l / 1 medium per minute. The rotation speed of the stirrer is 900 rpm.
В процессе выращивани отбирают пробы культуральной ; идкости (0,1- 1,0 мл в зависимости от дыхательной активности попул ции ) и помещают в кварцевую кювету. Туда же внос т О,1 мл индикаторной суспензии и на- слаивают тонкий слой технического жидкого масла. Суспензию облучают видимым светом с помощью галогенной лампы. Приемником излучени служит ФЭУ. Флуоресцентный сигнал усиливает- с микровольтметром и регистрируетс на ленте самописца. Регистрируетс длительна люминесценци с временем жизни 2-10 . По наличию флуоресценIn the process of growing culture samples are taken; liquids (0.1–1.0 ml depending on the respiratory activity of the population) and placed in a quartz cuvette. About 1 ml of the indicator suspension was added thereto and a thin layer of technical liquid oil was applied. The suspension is irradiated with visible light with a halogen lamp. The radiation receiver is a photomultiplier. The fluorescent signal is amplified with a microvoltmeter and is recorded on a recorder tape. Long luminescence is recorded with a lifetime of 2-10. By the presence of fluorescence
00
5 0 5 0 5 0 5 0
0 0
5 five
5five
40 40
гного сигнала суд т об отсутствии растворенного кислорода в образце и к анализу приступают после по влени сигнала. Ввод т в образец порц1по физиологического раствора (0,1-1,0 мл а зависимости от активности дыхани микробных клеток). Регистрируют врем от момента введени в образец порции растворенного в физиологическом растворе кислорода до момента выхода на стационарньй уровень сигнала длительной люминесценции веществ индикаторных клеток.the suppressive signal is judged on the absence of dissolved oxygen in the sample, and the analysis is started after the appearance of the signal. Portions of saline were introduced into the sample (0.1-1.0 ml depending on the respiratory activity of microbial cells). The time from the moment of introduction into the sample of the portion of oxygen dissolved in the physiological solution to the time the steady-state luminescence signal of the indicator cells reaches the stationary level is recorded.
На-фиг.1 представлены результаты измерени величин концентрации биомассы (1), скорости потреблени растворенного кислорода культурой E.coli М-17 в процессе культивировани предлагаемым способом (2). Дл сравнени приведены результаты измерени дыхательной активности попул ции с использованием газового анализатора (3). Минимальна чувствительность газового анализатора (0,5%) не позвол ет измер ть величину скорости потреблени кислорода менее, чем 0,2 г л ч (фиг.2) при используемом режиме аэрации и перемещивани . Б то же врем предлагаемый способ позвол ет при этих услови х регистрировать указанную величину до значений 0,001 г л .Fig. 1 shows the results of measuring the concentration values of biomass (1), the rate of consumption of dissolved oxygen by the E. coli M-17 culture during cultivation using the proposed method (2). For comparison, the results of measuring the respiratory activity of a population using a gas analyzer (3) are given. The minimum sensitivity of the gas analyzer (0.5%) does not allow measuring the rate of oxygen consumption less than 0.2 g l h (Fig. 2) with the aeration and displacement mode used. At the same time, the proposed method allows, under these conditions, to register the indicated value up to values of 0.001 gl.
В течение всего 10-часового процесса культивировани не было отмечено наличи длительной люминесценции у самих живых клеток E.coli М-17, что не позвол ет использовать дл тестировани дыхательной активности данной попул ции известньй способ.During the entire 10-hour culture process, no prolonged luminescence was observed in the living E. coli M-17 cells themselves, which does not allow the limestone method to be used for testing the respiratory activity of this population.
Пример 2. Культура E.coli М-17. Среда дл культивировани - м - сопептонный бульон. Источник углерода и энергии - глюкоза (1%). Культивирование в ферментере с рабочим объемом 30 л с целью производства лечебно- профилактического препарата колибак- терина. Услови аэрации и перемешивани , а также процедура измерени дыхательной активности бактериальной суспензии аналогичны изложенным в-, примере 1.Example 2. Culture E. coli M-17. The culture medium is m - peptone broth. The source of carbon and energy is glucose (1%). Cultivation in a fermenter with a working volume of 30 l in order to produce the therapeutic and prophylactic preparation colibacterin. The conditions of aeration and mixing, as well as the measurement procedure for the respiratory activity of the bacterial suspension, are similar to those described in Example 1.
В табл.1 представлены результаты измерени скорости потреблени кислорода попул цией E.coli М-17 в процессе культивировани предлагаемым и известным способами.Table 1 presents the results of measuring the rate of oxygen consumption by the population of E. coli M-17 in the cultivation process by the proposed and known methods.
Накопление длительно люминесцирую- щих соединений в самих живых клетках кишечной палочки при исследованномThe accumulation of long-lasting luminescent compounds in the living cells of Escherichia coli during the study
регламенте выращивани отмечаетс лишь к концу процесса (6-7 ч). Следовательно , использование известного метода измерени дыхательной активности микроорганизмов на прот жении большей части процесса культивировани E.coli М-17 невозможно. Применение предлагаемого способа позвол ет контролировать скорость потреблени кислорода данной микробной попул цией на прот жении всего процесса выращивани .cultivation regulations are noted only at the end of the process (6-7 hours). Therefore, using the known method of measuring the respiratory activity of microorganisms during the majority of the cultivation process of E. coli M-17 is impossible. The application of the proposed method allows controlling the rate of oxygen consumption by a given microbial population throughout the entire growing process.
Пример 3. Культура BacillusExample 3. Bacillus culture
subtilis 304-23, .генетически изменен- 15 л ции в процессе периодического кульный штамм - продуцент рибофлавина. Среда дл культивировани - селективна среда СпицаГ зена. Ферментер объемом 2 л. Услови аэрации и перемешивани , а также процедура измерени дыхательной активности микроорганизма аналогичны примеру 1.subtilis 304-23, genetically modified by 15 lcii in the process of periodic kulne strain - riboflavin producing. The culture medium is a selective medium. Fermenter volume of 2 liters. The conditions of aeration and mixing, as well as the measurement procedure for the respiratory activity of the microorganism, are similar to Example 1.
На фиг.З представлены результаты измерени дыхательной активности попул ции Вас. subtil is в процессе периодического культивировани предлагаемым способом. Обнаружено, что на прот жении всего исследуемого процесса клетки Вас. subtilis не содержат длительно люминесцирующих соединений цинкопорфириновой природы, что делает невозможным использование известного способа. Применение предлагаемого способа позвол ет производить ; оценку скорости потреблени растворенного кислорода попул цией Вас. subtilis на прот жении всего процесса :выращивани .Fig. 3 shows the results of measuring the respiratory activity of the population of Vas. subtil is in the process of periodic cultivation of the proposed method. It has been found that throughout the whole investigated process of the cell You. subtilis do not contain long-luminescent compounds of zinc-porphyrin nature, which makes it impossible to use a known method. The application of the proposed method allows to produce; assessment of the rate of consumption of dissolved oxygen by the population of you. subtilis throughout the whole process: growing.
Пример 4. Культура Micrococ CUS glutamicus 95, генетически измененный штамм - продуцент лизина. Состав среды дл культивировани (содержание компонентов среды в 1 л) 2,: фосфорнокисльп аммоний 2; сернокислый аммоний 2; сернокисльп магний 0,5; сернокислый марганец 0,04; меласса 30; кукурузньо экстракт 5.Example 4. Culture Micrococ CUS glutamicus 95, a genetically modified strain producing lysine. The composition of the culture medium (the content of the components of the medium in 1 l) 2,: ammonium phosphorus acid 2; ammonium sulphate 2; magnesium sulfate 0.5; manganese sulfate 0.04; molasses 30; corn extract 5.
Процедура выращивани штамма и измерени дыхательной активности клеток аналогичны примеру 1.The procedure for growing the strain and measuring the respiratory activity of the cells is similar to Example 1.
На фиг.4 представлены результаты измерени в процессе выращивани М. glutamicus 95 скорости потреблени растворенного кислорода микробными клетками предлагаемым способом. Результаты проведенных исследований показали необходимость использовани известного способа дл контролировани дыхательной активности попул цииFigure 4 shows the results of measuring the rate of consumption of dissolved oxygen by microbial cells by the proposed method in the process of growing M. glutamicus 95. The results of the studies showed the need to use a known method to control the respiratory activity of the population.
391306391306
ввиду отсутстви в клетках исследуемого микроорганизма на прот жении всего процесса выращивани замедленно флуоресцирующих соединений цин- копорфириновой природы.due to the absence in the cells of the microorganism under study during the whole process of growing slow-fluorescent compounds of cincorphyrin nature.
Пример 5. Культура Brevibac- terium flavum 2Т, генетически измененный штамм - продуцент гомосерина. 1Q Услови культивировани и измерени дыхательной активности клеток аналогичны примеру 4.Example 5. Brevibacterium flavum 2T culture, a genetically modified strain producing homoserine. 1Q The culture conditions and measurements of the respiratory activity of the cells are similar to Example 4.
На фиг.5 изображена динамика дыхательной активности исследуемой попу0Figure 5 shows the dynamics of the respiratory activity of the ass examined.
5five
00
5five
00
5five
00
5five
тивировани . Измерени проводились предлагаемым методом. Не отмечено накопление в клетках исследуемого микроорганизма собственных замедленно флуоресцирующих веществ цинкопорфириновой природы. Следовательно, использование известного способа дл измерени скорости потреблени кислорода микробными клетками в исследуемом технологическом процессе невозможно.tivirovaniya. The measurements were carried out by the proposed method. The accumulation of intrinsic slow-fluorescent substances of zincoporphyrin nature in the cells of the studied microorganism was not observed. Therefore, using a known method to measure the rate of oxygen consumption by microbial cells in the process under study is impossible.
Таким образом, способ контрол дыхательной активности микроорганизмов обеспечивает проведение измерений скорости потреблени растворенного кислорода микробными модул ци ми, в клетках которых не содержитс собственных замедленно флуоресцирующих соединенш, измен ющих параметры своего свечени в зависимости от содержани растворенного кислорода в культуральной жидкости.Thus, the method of controlling the respiratory activity of microorganisms provides measurements of the rate of consumption of dissolved oxygen by microbial moduli whose cells do not contain their own slow-moving fluorescent compounds that change their luminescence parameters depending on the content of dissolved oxygen in the culture fluid.
Динамический диапазон измер емых предлагаемым способом скоростей потреблени кислорода обеспечивает на- дежньй контроль за дыхательной активностью микробных попул ций на прот жении всего процесса выращивани перечисленных видов микроорганизмов.The dynamic range of the oxygen consumption rates measured by the proposed method ensures reliable monitoring of the respiratory activity of microbial populations throughout the entire process of growing the listed microbial species.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853967077A SU1339130A1 (en) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | Method of determining respiratory activity of microorganisms |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU853967077A SU1339130A1 (en) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | Method of determining respiratory activity of microorganisms |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1339130A1 true SU1339130A1 (en) | 1987-09-23 |
Family
ID=21201946
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU853967077A SU1339130A1 (en) | 1985-05-27 | 1985-05-27 | Method of determining respiratory activity of microorganisms |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1339130A1 (en) |
-
1985
- 1985-05-27 SU SU853967077A patent/SU1339130A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР № 958495, кл. С 12 N 1/00, 1982. Петухов В.Г., Осин И.С. Новьш флуориметрический метод контрол дыхательного метаболизма бактерий. Стандарты, штаммы и методы контрол бактерийных и вирусных препаратов. М., 1982, с. 179-184. Шувалов В.А., Красновский А.А. Люминесценци цинкопорфинов в микроорганизмах и растени х, фосфоресценци и замедленна флуоресценци . - Молекул рна биологи ,1971, т. 5, № 5, с. 638-710. Савкин М.А., Кор гина Т.А. Вли ние лимитирующих факторов среды на биосинтез РНК и белка кишечной палочкой М-17. Сравнительна физиологи и биохими микроорганизмов. Горьковский ун-т, 1973, FUjiri. , сер. биол, , с. 84-91. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5366873A (en) | Device and method for use in detecting microorganisms in a sample | |
Hardman et al. | METABOLISM OF ω-AMINO ACIDS: I. Fermentation of γ-Aminobutyric Acid by Clostridium aminobutyricum n. sp. | |
CN102796660A (en) | Detection device for monitoring water quality on line and water quality on-line monitoring method | |
US5494805A (en) | Unit for the detection of residues of antibacterial compounds in liquids | |
Scheper et al. | Measurement of biological parameters during fermentation processes | |
Carter | Egg yolk agar for isolation of coagulase-positive staphylococci | |
US4390620A (en) | Method and composition for the detection and study of cellular activity or the like and means for applying such method | |
Uffen et al. | Mutants of Rhodospirillum rubrum obtained after long-term anaerobic, dark growth | |
SU1339130A1 (en) | Method of determining respiratory activity of microorganisms | |
Learoyd et al. | An investigation of dye reduction by food‐borne bacteria | |
Scheper et al. | Measurement of culture fluorescence during the cultivation of Penicillium chrysogenum and Zymomonas mobilis | |
Grobler et al. | Bacterial electrode for L-arginine | |
Hannan et al. | Quick microtechniques for the identification of cultures: II. Fermentations | |
US4072572A (en) | E. coli detection broth for clinical use with automated microbial analyzer | |
Polster et al. | Production of reddish-brown pigment from dl-tryptophan by Enterobacteria of the Proteus-Providencia group | |
Hardman et al. | METABOLISM OF ω-AMINO ACIDS: I. Fermentation of γ-Aminobutyric Acid byClostridium aminobutyricumn. sp. 1 | |
Schär et al. | Hyphomicrobium bacterial electrode for determination of monomethyl sulfate | |
JP5823390B2 (en) | Novel nitroreductase enzyme substrate | |
RU2086652C1 (en) | Method of l-proline quantitative determination | |
CN111118102B (en) | Culture medium, preparation method of culture medium, kit and sample analyzer | |
JP2890128B2 (en) | Yeast viable cell count method | |
Zorn et al. | Regulation by repression of urease biosynthesis in Proteus rettgeri | |
Anema et al. | Volatile acid production by Clostridium sporogenes under controlled culture conditions | |
CN110672686B (en) | Method for preparing glutamic acid sensing electrode with wide detection linear range | |
RU2083669C1 (en) | Method of determination of aliphatic acids with c1-c4-hydrocarbon chain and their amides |