SU1284981A1 - Способ выделени анионных фосфолипидов - Google Patents

Способ выделени анионных фосфолипидов Download PDF

Info

Publication number
SU1284981A1
SU1284981A1 SU853890211A SU3890211A SU1284981A1 SU 1284981 A1 SU1284981 A1 SU 1284981A1 SU 853890211 A SU853890211 A SU 853890211A SU 3890211 A SU3890211 A SU 3890211A SU 1284981 A1 SU1284981 A1 SU 1284981A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
chloroform
methanol
column
purity
phospholipids
Prior art date
Application number
SU853890211A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Владимировна Межова
Виталий Иванович Швец
Борис Абрамович Клящицкий
Елена Адамовна Шамякова
Анатолий Иванович Мирошников
Георгий Антонович Сенников
Юрий Михайлович Краснопольский
Original Assignee
Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова
Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср
Харьковский Завод Бактериальных Препаратов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова, Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср, Харьковский Завод Бактериальных Препаратов filed Critical Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова
Priority to SU853890211A priority Critical patent/SU1284981A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1284981A1 publication Critical patent/SU1284981A1/ru

Links

Abstract

Изобретение относитс  к химии природных соединений, а именно к способам получени  индивидуальных фосфолипидов , может быть применено в изучении структуры и функций клеточных мембран и дл  приготовлени  липосо- мальных препаратов, биологически активных эмульсий, антигенных препаратов дл  диагностики сифилиса. Цель изобретени  - повышение чистоты и выхода продукта достигаетс  тем,что используют адсорбент, позвол ющий сочетать ионообменную и афинную хроматографию и подбирают растворители дл  элюировани . Дл  этого раздел ли смеси фосфолипидов из мора крупного рога . Свежий мозг гомогенизируют в-системе хлороформ - этанол (IH), остаток экстрагируют в той же системе

Description

родных соединений, конкретно к способам получени  индивидуальных фосфо- липидов, и может быть использовано
дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты, затем 120 мл 0,02М раствора формиата аммони . Пблученпри изучении структуры и функций кле- на  фракци  содержит 0,0225 г монофосфоинозитида , выход 99% от исходного содержани , чистота 100%. После -ЭТОГО через колонку пропускают 120мл 0,1 М раствора формиата аммони . По- 10 лученна  фракци  содержит 0,0034 г кардиолипина, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%. Далее через колонку пропускают 120 мл 0,4 М раствора формиата аммони . Полученчетать элементы афинной и ионообмен- 15 па  фракци  содержит 0,0032 г дифос- ной хроматографии, и подбора систем фоинозитида, выход 99% от исходного
точных мембран, а также дл  приготовлени  липосомальных препаратов, биологически активных эмульсий, антигенных препаратов дл  диагностики сифилиса.
Целью изобретени   вл етс  повышение чистоты и выхода продукта.
Цель достигаетс  за счет используемого адсорбента позвол ющего со
содержани , чистота 100%. В заключение колонку промывают 120 мл 1 М раствора формиата аммони . Получен- 20 на  фракци  содержит 0,0034 г три- фосфоинозитида, выход 99% от исходного- содержани , чистота 100%.
растворителей дл  элюировани .
Пример. U Разделение сме си фосфолипидов из моэга крупного рогатого скота.
Свежий мозг (10 г) гомогенизирую в 200 мл системы хлороформ-метанол (1:1), а остаток повторно экстрагируют 200 мл системы хлороформ - метанол (2:1). Полученный суммарный экстракт, содержащий 0,45 г фосфолипидов , нанос т на колонку с. макропористым силикагелем tinC-1000-ВГХ, содержащим неомицин, присоединенный известным способом. Объем адсорбента 20 мл.
Дл  приготовлени  элюируюнщх систем используют растворы формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4).
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 60 мл системы хлороформ - метанол (:). Полученна  фракци  содер жит 0,181 г нейтральных липидов. Затем через колонку пропускают 60 мп системы хлороформ - метанол (1:2). Полученна  фракци  содержит следы нейтральных липидов, а также 0,146 г смеси фос- фатидилхолина и фосфатидилэтанолами- на. После этого колонку промывают 120 мл системы хлороформ - метанол - муравьина  кислота (1:2:0,1). Полученна  фракци  содержит 0,0045 г фос фатидной кислоты, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%. Затем колонку промывают 120 мл системы хлороформ - метанол - муравьина  кислота (1:2:0,2). Полученна  фракци  содержит О,081 г фосфатидил- серина, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%. Далее колонку промывают 40 мл системы хло
дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты, затем 120 мл 0,02М раствора формиата аммони . Пблучен5 па  фракци  содержит 0,0032 г дифос- фоинозитида, выход 99% от исходного
5
содержани , чистота 100%. В заключение колонку промывают 120 мл 1 М раствора формиата аммони . Получен- 0 на  фракци  содержит 0,0034 г три- фосфоинозитида, выход 99% от исходного- содержани , чистота 100%.
Пример 2. Разделение смеси МОНО-, ди- и трифосфоинозитидов, выделенных из мозга крыс.
Образцы МОНО-, ди- и трифосфоинозитидов раствор ют в 10 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и полученный раствор, содержащий 0,09 г суммарных фосфолипидов, нанос т на колонку с макропористым силикагелем МПС - 1000-ВГХ, содержащим неомицин , присоединенный известным способом . Объем адсорбента 5 мл.
0
5
0
5
0
5
Дл  приготовлени  элюирующих систем используют растворы формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4).
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 15 мл системы хлороформ - метанол (1:1) дл  удалени  следов нейтральных липидов , фосфатидилхолина и фосфатидил- этаноламина и 15 мл системы хлороформ - метанол муравьина  кислота (1:2:0,05) дл  удалени  следов фос- фатидной кислоты и фосфатидилсерина. Далее колонку промывали 10 мл системы хлороформ метанол - вода (1:2: :0,4) дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты, затем 30 мп 0,01 М раствора формиата аммони . Полученна  фракци  содержит 0,03 г мо- нофосфозитида, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%. Затем колонку промьшали 30 мп 0,4 М раствора формиата аммони . Полученна  фракци  содержит 0,029 г дифосфоиноfO
зитида, выход 99% от исходного, чистота 100%, В заключение колонку промывают 30 мл 1 М фосфора формиата аммони . Полученна  фракци  содержит 0,03 г трифосфоинозитида, выход 99% от исходного, чистота 100%.
Пример 3 . Вьщеление монофос- фоинозитида из пекарских дрожжей.
Суммарный липидный хлороформно-ме танольный (1:1) экстракт, содержащий около 0,5 г липидов, полученньш из пекарских дрожжей известным способом , нанос т на колойку с макропористым силикагелем МПС - 1000-ВГХ, со- держапщм неомицин, присоединенный из- -5 вестным способом. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипи- дов через колонку пропускают по 30 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл системь хлороформ - метанол (1:2). Полученные фракции содержат 0,44 г нейтральных и цвиттерионных липидов (фосфатидилхолин, фосфатидил- этаноламин и их лизопроизводные). После этого колонку промывают 30 мл системы хлороформ - метанол - муравьина  кислота (,li j2:0,2), получа  0,01 г фосфатидилсерина. Затем колон20
25
ные и цвиттерионные липиды (фосфати дилхолин, фocфaтидилэтaнoлa fflн и их лизопроизводные). После этого 30 мл смеси хлороформ - метанол - муравьина  кислота (1:2:0,2) вымывают фос фатидилсерин. Затем колонку промыва ют 10 мл системы хлороформ - метано вода (1:2:0,4) дл  удалени  с колон остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мл 0,05 М раствора формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4). Полученна фракци  содержит 0,033 г кардиолипи на, выход 99%, чистота 100%.
Пример 5. Выделение кардио липина из сердечной мышцы крупного рогатого скота.
Раствор суммарных фосфолипидов сердечной мьшцы в системе хлороформ метанол (1:1), полученный как описа но в примере 4, нанос т на колонку с макропористым силикагелем МПС- 1000-ВГХ, содержащим L-лизин,, присо единенный известным способом. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 30 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл системы хлороформ - метанол
ку промывают 10 мл системы хлороформ - р:2). Полученные фракции .содержат
метанол - вода (1:2:0,4) дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мп 0,01 М раствора формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4).
Полученна  фракци  содержит 0,05 г монофосфоинозитида, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%.
Пример 4. Выделение кардио- липина из сердечной мьшщы крупного рогатого скота.
Сердечную мышцу (80 г) гомогенизируют с 600 мл ацетона, а остаток дважды экстрагируют 600 мл метанола. Метанольный экстракт, содержащий ,4 г суммарных фосфолипидов, упаривают остаток раствор ют в системе хлороформ - метанол (1:1), отфильт- ровьшают и нанос т на колонку со сфе- роном Р-300 (оксиэтилметакрилатный гель) содержащим неомицин, присоединенный известным способом. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 30 мл смеси хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл смеси хлороформ - метанол (1:2), вымыва  фракции, содержащие,нейтраль40
нейтральные и цвиттерионные фосфо- липиды (фосфатидилхолин, фосфатидил этаноламин и их лизопроизводные). После этого системой хлороформ - м 35 танол - муравьина  кислота (1:2:0,2 вымывают фракцию, содержащую фосфа- тидилсерин. Затем колонку промывают 10 мл системы хлороформ - метанол - вода-(1:2:0,4) дл  удалени  с колон ки остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мл 0,02 М раствора фо миата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4). Полученна фракци  содержит 0,033 г кардиолипи на, вькод 99%, чистота 100%.
Пример 6. Выделение кардио липина из сердечной мышцы крупного рогатого скота.
Раствор суммарных фосфолипидов сердечной мышцы в системе хлорофор метанол (1:1), полученньш как описа но в примере 4, нанос т на колонку с аминосилохромом 350/80. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 30 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл системы хлороформ - метанол
45
50
55
-5
0
5
ные и цвиттерионные липиды (фосфатидилхолин , фocфaтидилэтaнoлa fflн и их лизопроизводные). После этого 30 мл. смеси хлороформ - метанол - муравьина  кислота (1:2:0,2) вымывают фос- фатидилсерин. Затем колонку промывают 10 мл системы хлороформ - метанол- вода (1:2:0,4) дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мл 0,05 М раствора формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4). Полученна  фракци  содержит 0,033 г кардиолипи- на, выход 99%, чистота 100%.
Пример 5. Выделение кардио- липина из сердечной мышцы крупного рогатого скота.
Раствор суммарных фосфолипидов сердечной мьшцы в системе хлороформ - метанол (1:1), полученный как описано в примере 4, нанос т на колонку с макропористым силикагелем МПС- 1000-ВГХ, содержащим L-лизин,, присоединенный известным способом. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 30 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл системы хлороформ - метанол
0
нейтральные и цвиттерионные фосфо- липиды (фосфатидилхолин, фосфатидил- этаноламин и их лизопроизводные). После этого системой хлороформ - мё- 5 танол - муравьина  кислота (1:2:0,2) вымывают фракцию, содержащую фосфа- тидилсерин. Затем колонку промывают 10 мл системы хлороформ - метанол - вода-(1:2:0,4) дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мл 0,02 М раствора формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4). Полученна  фракци  содержит 0,033 г кардиолипи- на, вькод 99%, чистота 100%.
Пример 6. Выделение кардио- липина из сердечной мышцы крупного рогатого скота.
Раствор суммарных фосфолипидов . сердечной мышцы в системе хлороформ- метанол (1:1), полученньш как описано в примере 4, нанос т на колонку с аминосилохромом 350/80. Объем адсорбента 5 мл.
После нанесени  смеси фосфолипидов через колонку пропускают 30 мл системы хлороформ - метанол (1:1) и 30 мл системы хлороформ - метанол
5
0
5
(1:2), Полученные фракции содержат нейтральные и цвиттерионные лнпиды (фосфатидилхолин, фосфатидилэтанол- амин и их лизопроизводные). После этого 30 мл системы хлороформ - метанол - муравьина  кислота (1:2:0,2) вымывают фосфатидилсерин. Затем колонку промывают 10 мл системы хлороформ - метанолвода (1:2:0,4) дл  удалени  с колонки остатков муравьиной кислоты и в заключение 30 мл 0,1 М раствора формиата аммони  в системе хлороформ - метанол - вода (1:2:0,4). Полученна  фракци  содержит 0,033 г кардиолипина, выход 99% от исходного содержани , чистота 100%.
Предлагаемый способ позвол ет выделить из сложньрс сМесей фосфоли- пидов за одну стадию индивидуальные анионные фосфолипиды с выходом 99% и чистотой 100%, тогда как по известному способу выхОД анионных фосфолипидов составл ет 90% от исходного содержани  в ткани, чистота 90%.

Claims (1)

  1. Формула изобрет-ени 
    Способ вьщелёни  анионных фосфолипидов путем хроматографировани  экстрактов природного сырь  на твердых носител х с использованием дл  элюировани  систем на основе хлороформа и метанола, отличающий- с   тем, что, ,с целью повышени  выхода и чистоты продукта, зкстракт, содержащий смесь фосфолипидов, нанос т на колонку с аминрсилохромом или макропористым силикагелем, модифицированным неомицином или L-лизином, а злюацию осуществл ют системой, содержащей хлороформ - метанол - муравьиную кислоту в объемном соотношении 1:2:(0,05-0,2), или системой, содержащей 0,01-1 М раствор формиата аммони  в смеси растворителей хлороформ - метанол - вода в объемном соотношении 1:2:0,4.
SU853890211A 1985-03-21 1985-03-21 Способ выделени анионных фосфолипидов SU1284981A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853890211A SU1284981A1 (ru) 1985-03-21 1985-03-21 Способ выделени анионных фосфолипидов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU853890211A SU1284981A1 (ru) 1985-03-21 1985-03-21 Способ выделени анионных фосфолипидов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1284981A1 true SU1284981A1 (ru) 1987-01-23

Family

ID=21175268

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU853890211A SU1284981A1 (ru) 1985-03-21 1985-03-21 Способ выделени анионных фосфолипидов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1284981A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109011698A (zh) * 2018-08-25 2018-12-18 江苏曼氏生物科技股份有限公司 一种硅胶填料分离柱在线清洗及储存方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Ronser G., Kritchevsky G. et aE. Lipid composition of beef broin, beef liver, and the sea anemone: two approaches to quantitative fractiona- tion of complex Eipid mixtures. - J. Amer. Oil Chemists Soc., 1963, v.40, p. 425-452. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109011698A (zh) * 2018-08-25 2018-12-18 江苏曼氏生物科技股份有限公司 一种硅胶填料分离柱在线清洗及储存方法
CN109011698B (zh) * 2018-08-25 2020-12-01 江苏曼氏生物科技股份有限公司 一种硅胶填料分离柱在线清洗及储存方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0922707B2 (en) A process for the purification of phosphatidylserine
CA2055503C (en) Process for the preparation of l-.alpha.-glycerylphosphorylcholine and of l-.alpha.-glycerylphosphorylethanolamine
CA1164476A (en) Process for the separation of oil and/or phosphatidylethanolamine from alcohol soluble phosphatidylcholine products containing the same
KR100262281B1 (ko) 글리세로포스포리피드의 제조방법
EP0749693B1 (en) Method of concentration of acidic phospholipid
EP0689579B1 (en) Method for extracting sphingomyelin
Schneider et al. Thyroidal iodide transport VI. On a possible role for iodide-binding phospholipids
SU1284981A1 (ru) Способ выделени анионных фосфолипидов
Nelson Studies on the lipids of sheep red blood cells. I. Lipid composition in low and high potassium red cells
Hara et al. Simple procedures for the rapid cleavage of ester lipids and for the large-scale isolation from brain of cerebroside sulfate
Rathbone et al. The preparation and properties of lysophosphatidylserine
Misra Isolation of lysophosphatidylethanolamine from human serum
US4983327A (en) Process for isolating a phosphatidylcholine free of other phospholipids in the starting material
Tokumura et al. Chemical and pharmacological properties of vasopressor phospholipid in crude soybean lecithin
SU831129A1 (ru) Способ получени фосфатидилглицерина
Bieber et al. Phospholipid patterns of the developing chick embryo
Baer et al. Synthesis of propylene glycol phospholipids: analogues of α-lecithins and α-cephalins
SU950730A1 (ru) Способ выделени фосфоинозитида из соевых фосфатидов
Renkonen Phosphatides of normal human serum
JPH0662648B2 (ja) 高純度レシチンの製造方法
Witter et al. Circular chromatography of phospholipides
JPH01160988A (ja) ドコサヘキサエノイルジアシルグリセロールの製造法
Hanahan et al. Novel route to preparation of high purity lysoplasmenylethanolamine.
Torley et al. Lipid patterns of edible fungi
Brown Phospholipids of yeast: I. Improvements in analysis by two-dimensional strip-transfer paper chromatography