SU1114699A1 - Способ выделени лейцинаминопептидазы - Google Patents
Способ выделени лейцинаминопептидазы Download PDFInfo
- Publication number
- SU1114699A1 SU1114699A1 SU833581801A SU3581801A SU1114699A1 SU 1114699 A1 SU1114699 A1 SU 1114699A1 SU 833581801 A SU833581801 A SU 833581801A SU 3581801 A SU3581801 A SU 3581801A SU 1114699 A1 SU1114699 A1 SU 1114699A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- sephadex
- enzyme
- target product
- biological fluids
- isolating
- Prior art date
Links
Abstract
СПОСОБ ВВДЕЛЕНИЯ ЛЕЙЦИНАМИНОПЕПТИДАЗЫ из биологических жидкостей , предусматривающий нанесение пробы жидкости на хроматографическую колонку, заполненную сорбентом, с последующим элюированием целевого продукта , отличающийс тем, что, с целью упрощени способа, в качестве исходного сырь используют биологические жидкости больных с демиелинизирующими заболевани ми, в качестве сорбента используют сефадекс G-75, промывают колонку физиологическим раствором и вьщерживают сорбированный на сефадексе фермент 3-4 сут, а целевой продукт элюируют физиологическим раствором.
Description
4 С9д QO СО Изобретение относитс к биохимии и предназначено дл получени широк используемого в биологии и медицине фермента лейцинаминопептидазы. Известен способ получени лейцин аминопептидазы путем микробиологического синтеза с последующей много стадийной очисткой Lll. Однако данньй способ достаточно сложен, требует длительного времени и дорогосто щих реактивов. Наиболее близким к изобретению по технической сущности и достигаемому результату вл етс способ выделени лейцинаминопептидазы из крови убойных животных, заключающийс в нанесении исходной биологической жидкос ти на хроматографическую колонку, 3 аполненную диэтиламиноэтилцеллюлозой , с последующим элюированием целевого продукта буферным раствором диализом элюата,, после чего диализат подвергают повторной хроматогра фии на колонках с гидроксилапатитом и ДЭА,Э.-сефадексом. Степень очистки целевого продукта 5042 раза от исходного С 21, Недостатками известного способа вл ютс его сложность и многостадийность . Цель изобретени - упрощение спо соба. Указанна цель достигаетс тем, что согласно способу выделени лейцинаминопептидазы ;из биологических жидкостей, предусматривающему нанес ние пробы жидкости на хроматографическую колонку, заполненную сорбентом , с последующим элюированием целевого продукта, в качестве исходно сырь используют биологические жидкости больных с демиелинизирующими заболевани ми, в качестве сорбента используют сефадекс , промываю колонку физиологическим раствором и выдерживают сорбированный на сефа дексе фермент 3-4 сут, а целевой пр дукт элюируют физиологическим раств ром. Способ заключаетс в проведении всего одной хроматографической стад и обусловливает достаточно высокую степень очистки, в среднем 5161 раз Упрощение способа при сохранении на большего эффекта очистки получают п использовании сефадекса Q-75. При применении частиц декстрана другимиразмерами пор (U-10, Gt-25, 6-50) степень очистки ниже. Жесткие услови опыта не позвол ют использовать крупнопористые сефадексы. Оптимальное врем инкубации сефадекса с адсорбированным ферментом установлено опытным путем и составл ет 3-4 сут. При инкубации сорбированного фермента менее трех суток активность его не определ етс или значительно снижена, а более четырех суток - активность фермента также низка по отношению к оптимальной, котора достигаетс при инкубации в течение 3-4 сут. Упрощенное получение фермента объ сн етс следующими причинами. В биологических жидкост х у больных с демиелинизирующими заболевани ми основна масса фермента лейцинаминопептидазы св зана с ингибитором. Ингибитор имеет повышенное сродство к соединени м типа дектрана и мол. вес в пределах 20000-50000, поэтому он адсорбируетс на колонке с размером частиц, соответствуюш;им сефадексу Q-75, тогда как св занный фермент имеет мол. вес 150000 и в поры сефадекса Q -75 не проникает. Инкубаци в течение указанного времени приводит к отделению фермента от ингибитора, после чего фермент элюируют физиологическим раствором. Ингибитор остаетс на колонке и может быть использован дл реохроматографии. Предлагаемый способ осуществл ют следующим образом. Биологическую жидкость (сыворотка, кровь, ликвор, моча) нанос т на хроматографическую колонку с приспособлени ми дл центрифугировани , заполненную предварительно отцентрифугированным сефадексом , центрифугируют в течение 2 мин со скоростью 3000 об/мин, промывают физиологическим раствором дл удалени балластных белков и вновь центрифугируют 2 мин со скоростью 3000 об/мин. Колонку инкубируют в течение 3-4 сут при , а конечньш продукт элюируют физиологическим раствором. Пример 1. Сыворотку крови больного с рассе нным склерозом наслаивают на хроматографическую колонку (с приспособлени ми дл центрифугировани ), заполненную предварительно отцентрифугипои нным сефадексом Gf-75, центрифугируют 3 мин со скоростью 3000 об/мин, промывают 3 20 мл физиологического раствора дл удалени балластных белков и вновь центрифугируют 2 мин со скоростью 3000 об/мин. Колонку, содержащую сор бированный фермент, инкубируют в течение 72 ч при 4,0°С, конечный продукт элюируют 5 мл физиологического раствора. Удельна активность ЛАП до инкубации 0,048 ед/г белка, после инкуба ции - 250 ед/г белка. Степень очистки 5208 раз. Пример 2. Метод осуществл ют аналогично примеру 1, при этом ин кубацию провод т 96 ч. Удельна активность фермента до инкубации 0,011 едУг белка, после инкубации вЬ ед/г белка. Степень очистки 5454 раза. Пример 3. У больного с рассе нным склерозом берут ликвор, провод т исследовани аналогичные приме ру 1, инкубацию провод т 84 ч. При этом удельна активность ЛАП до инку бации 0,7 ед./г белка, после инкубации 3910 ед/г белка. Степень очистки 5585 раз. Пример 4. Исследовали мочу больного рассе нным склерозом. Приемы исследовани аналогичны примеру инкубировали 74 ч. Исходна активность ЛАП нулева , после инкубации 125 ед/г белка. Специфическа активность целевого продукта подвергаетс исследованию его активности с помощью ЛАП-тес та фирмы Fermognost. Метод определени ЛАП основан на том, что лейцингидразид под вли нием ЛАП расщепл етс , отщепленный гидразин образует с 4-диметиламинобензаль 9 дегидом в сол нокислой среде оранжево-красное крас щее вещество, которое определ ют колориметрически. Испытани провод т в четырех пробирках. Вначале в пробирки 1 и 2 наливают по 0,5 мл лейцингидразида, выдерживают на вод ной бане при 37С в течение 10 мин, в опытную пробирку добавл ют 0,2 МП испытуемой жидкости. Далее все пробирки инкубируют на вод ной бане при 37®С 30 мин, после инкубации, в контрольную пробу (пробирка 3) внос т 0,7 мл гидразина, а в пробирку (4 внос т 0,7 мл дистиллированной воды . Затем во все пробирки 1-4 добавл ют по 5 мл димётилбензальдегида и быстро перемешивают содержимое пробирок . Далее в пробирку 2 добавл ют 0,2 мл испытуемой жидкости и 30 мин инкубируют при 37°С. Не более, чем через 6 ч, измен ют экстинкцию опытной пробы (пробирка 1) против пустой пробы (пробирка 2) и экстинкцию контрольной пробы (пробирка 3) против второй пустой пробы (пробиркг 4), длина волны 455 мм (можно 13 области 450-460 им), Ш11рина сло 1 ,00 см. При расчете первое полученное значение экстинкции дел т не второе, активность фермента выражают в единицах (1 ед. - количество ЛАП, которое расщепл ет 1 мМоль |: -лейцинг}одразиде в течение 1 мин в услови х одной пробы). Одновременно в исследуемых образцах провод т количественное определение белка методом Лоури и удельную активность фермента выр жают на 1 г белка. Выделение лейцинаминопептидазы из различных биологическтс жидкостей приведено в таблице. ,
Доноры
0,05 1 2 0,08
О
О О
О
Продолжение табли1ды
7111469.98
Данные таблицы показывают, чтовз тый у больных с демиелинизирукицимй
предлагаемый способ эффективен призаболевани ми, который в насто щее
использовании биологических жидкостейврем вл етс отходом после к инико
только от больных демиелинизирующимидиагностических исследований, заболевани ми. 5 Преимуществом способа вл етс
предлагаемый способ значительнобиологических жидкостей после сорбции
упрощен при сохранении высокой сте-лейцинаминопептидазы как исходного
пени очистки, позвол ет практическисырь дл получени биологическихtipeиспользовать биологический материал. паратов.
возможность дальнейшего использовани
Claims (1)
- СПОСОБ ВЫДЕЛЕНИЯ ЛЕЙЦИНАМИН0ПЕПТЦЦАЗЫ из биологических жидкос- тей, предусматривающий нанесение пробы жидкости на хроматографическую колонку, заполненную сорбентом, с последующим элюированием целевого продукта, отличающийся тем, что, с целью упрощения способа, в качестве исходного сырья используют биологические жидкости больных с демиелинизирующими заболеваниями, в качестве сорбента используют сефадекс β-75, промывают колонку физиологическим раствором и ввдерживают сорбированный на сефадексе фермент 3-4 сут, а целевой продукт элюируют физиологическим раствором.Од ¢0 с© >1 111
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU833581801A SU1114699A1 (ru) | 1983-03-28 | 1983-03-28 | Способ выделени лейцинаминопептидазы |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU833581801A SU1114699A1 (ru) | 1983-03-28 | 1983-03-28 | Способ выделени лейцинаминопептидазы |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1114699A1 true SU1114699A1 (ru) | 1984-09-23 |
Family
ID=21059995
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU833581801A SU1114699A1 (ru) | 1983-03-28 | 1983-03-28 | Способ выделени лейцинаминопептидазы |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1114699A1 (ru) |
-
1983
- 1983-03-28 SU SU833581801A patent/SU1114699A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. Авторское свидетельство СССР № 975797, кл. С 12 N 9/48, 1980. 2. Патент JP № 56-6276, кл. С 12 N 9/48, 1981. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4269605A (en) | Method and kit for separation of glycoproteins | |
Seegers et al. | Further studies on the purification of thrombin | |
US5112949A (en) | Method of and apparatus for separating proteins | |
EP0270017A3 (en) | Method of isolating and purifying nucleic acids from biological samples | |
Danishefsky et al. | Synthesis of heparin-sepharoses and their binding with thrombin and antithrombin-heparin cofactor | |
CA1082625A (en) | Pressure-driven affinity sorption membranes | |
US5004806A (en) | Nitrocellulose filtration to remove proteins from polynucleotides | |
US2997425A (en) | Method of purification of streptokinase | |
Dombrose et al. | Ac-globulin (factor V): Preparation of a practical product | |
SU1114699A1 (ru) | Способ выделени лейцинаминопептидазы | |
JPH0489500A (ja) | アフィニティクロマトグラフィーによる物質の精製法および精製装置 | |
SU644796A1 (ru) | Способ очистки протеолитических ферментов | |
JPH01229972A (ja) | 体液材料中の低級カルボン酸の定量法 | |
Cox et al. | Chromatographic purification of human serum accelerator globulin | |
CA1151542A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
JPS6251589B2 (ru) | ||
Wikner et al. | [20] Chemotactic fragments of fibronectin | |
SU767121A1 (ru) | Способ выделени и очистки трипсина и химотрипсина | |
Yue et al. | Separation of Heparin into Subtractions by DEAE-Cellulose Chromatography | |
EP0320267A2 (en) | Glycoprotein growth modulation materials | |
JPS61245059A (ja) | 総ジゴキシン量の定量方法 | |
SU1681255A1 (ru) | Способ определени содержани плазминогена в биологической жидкости | |
SU857145A1 (ru) | Способ получени сорбента дл очистки дрожжевой гексокиназы | |
SU1479511A1 (ru) | Способ получени афинного сорбента | |
SU1293658A1 (ru) | Способ определени лейцинаминопептидазы в биологическом материале |