SU1082815A1 - Process for preparing l-lysine - Google Patents
Process for preparing l-lysine Download PDFInfo
- Publication number
- SU1082815A1 SU1082815A1 SU823442201A SU3442201A SU1082815A1 SU 1082815 A1 SU1082815 A1 SU 1082815A1 SU 823442201 A SU823442201 A SU 823442201A SU 3442201 A SU3442201 A SU 3442201A SU 1082815 A1 SU1082815 A1 SU 1082815A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- lysine
- stimulator
- medium
- extract
- amount
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ oL-ЛИЗИНА путем глубинного культивировани продуцирующих его микрооргани/Лов на питательной среде, содержащей мелассу в качестве источника углерода , источник азота, необходимые минеральные соли и стимул тор биосинтеза лизина, в услови х аэрации среды с последующим выделением целевого продукта, отличающийс тем, что, с целью повышени выхода , в качестве стимул тора биосинтеза сС-лизина используют 1 5%-ный водный экстракт морских водорослей рода FUCUS .vesiculosus в количестве 0,02-0,8 г/л (Ьреды. A method for producing oL-lysine by deep cultivating its microorganisms / catches on a nutrient medium containing molasses as a carbon source, a nitrogen source, essential mineral salts and a lysine biosynthesis stimulator, under conditions of aeration of the medium, followed by release of the target product, characterized by that, in order to increase the yield, 1 5% aqueous extract of seaweed of the genus FUCUS .vesiculosus in an amount of 0.02-0.8 g / l is used as a stimulator of the biosynthesis of cC-lysine in the amount of 0.02-0.8 g / l (Lredy.
Description
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, а именно к способам получени L-лиёина ферментацией . The invention relates to the microbiological industry, and specifically to methods for producing L-lion by fermentation.
IfSfeecTeH способ получени ,1,-лизина путем глубинного культивировани продуцирующих его микроорганизмов в питательной среде, содержащей минеральные соли, с введением в нее порционно или непрерывно источников углерода, необходимых дл роста аминокислот , и стимул торов роста с последующим, выделением L, -лизина из культуральной жидкости одним из известных способов. В качестве стимул торов роста используют кукурузный экстракт, клаточный сок картофел , дрожжевой гидролизат или дрожжевой экстракт. Ферментацию ведут при 3032°С , рН 7,0-7,2, непрерывной аэрации и перемешивании l . IfSfeecTeH is a method for producing 1-lysine by submerged cultivation of microorganisms producing it in a nutrient medium containing mineral salts, with the introduction of carbon sources necessary for the growth of amino acids into the medium or continuously, followed by release of L, -lysine from culture fluid one of the known methods. Corn extract, potato clutch juice, yeast hydrolyzate, or yeast extract are used as growth stimulants. Fermentation is carried out at 3032 ° C, pH 7.0-7.2, continuous aeration and stirring l.
Известно использование экстрактов различных водорослей в качестве стимул торов роста микроорганизмов, таких как хлорелла 2 , зеленых водорослей S.acuminatus СЗ , а также экстрактов морских водорослей рода FUC.US veciculosus .It is known to use extracts of various algae as stimulants for the growth of microorganisms, such as Chlorella 2, green algae S.acuminatus NW, as well as extracts of seaweed of the genus FUC.US veciculosus.
Однако указанные выше экстракты водорослей, в частности водные или спиртовые экстракты морских водорослей рода F . vesiculosiis используютс в качестве стимул торов роста биомассы , т.е. их использование при выращивании дрожжей, грибов Aapergillus niger И р ски.Lemna minor напралено на повышение урожайности биомассы .However, the above algae extracts, in particular, aqueous or alcoholic extracts of seaweed of the genus F. Vesiculosiis are used as stimulators of biomass growth, i.e. their use in the cultivation of yeasts, mushrooms Aapergillus niger and p ski.Lemna minor aimed at increasing the yield of biomass.
Наиболее близок к предлагаемому способ получени L-лизина путем глубинного культивировани его продуцентов на питательной среде, содержащей мелассу, в качестве источника углерода, кукрузный экстракт или ферментативный гидролизат дрожжевых клеток в качестве стимул тора биосинтеза и источника азота и минеральные соли, при аэрации среды с последующим выделением L-лизина известным методом 51 .Closest to the proposed method for producing L-lysine by submerged cultivation of its producers on a nutrient medium containing molasses, as a carbon source, corncurrant extract or enzymatic hydrolyzate of yeast cells as a biosynthesis stimulator and nitrogen source and mineral salts, with aeration of the medium followed isolation of L-lysine by a known method 51.
Недостатком способа вл етс то, что он не обеспечивает достаточно высокого выхода L-лизина (33,4 39 ,0 г./л), а также предусматривает использование дорогих и дефицитных компонентов - источника азота, каковым вл етс кукурузный экстракт.The disadvantage of this method is that it does not provide a sufficiently high yield of L-lysine (33.4 39, 0 g / l), and also involves the use of expensive and scarce components - a source of nitrogen, which is corn extract.
Цель изобретени - повышение выхода L-лизина.The purpose of the invention is to increase the yield of L-lysine.
Поставленна цель достигаетс тем, что согласно способу получени Ц -лизина, предусматривающему глубинное культивирование продуцирующих его микроорганизмов на питательной среде, содержащей мелассу в качестве источника углерода, источник азота,необходимые минеральные соли и стимул тор биосинтеза лизина,в услори х аэрации среды с последуюошм выделением целевого продукта,в качестве стимул тора биосинтеза L, -лизина используют 1-5%-ный водный экстракт морских водорослей рода Fucus vesicu losus в количестве 0,2-0,8 г/л среды.The goal is achieved by the fact that according to the method of obtaining C-lysin, which involves the submerged cultivation of microorganisms producing it on a nutrient medium containing molasses as a carbon source, a nitrogen source, essential mineral salts and a lysine biosynthesis stimulator, under conditions of aeration of the medium with subsequent release the target product, as a stimulator of biosynthesis of L, α-lysine, use 1–5% aqueous extract of algae of the genus Fucus vesicu losus in an amount of 0.2–0.8 g / l of medium.
Экстракт готов т путем настаивани сухих водорослей в течение 2-4 ч при 25-30.°С, после чего центрифугируют , стерилизуют и ввод т через 100 16 ч после внесени в питательную среду посевного материала. , The extract is prepared by infusing dry algae for 2-4 hours at 25-30 ° C, after which it is centrifuged, sterilized and injected 100 16 hours after the seed is introduced into the nutrient medium. ,
Культивирование продуцентов I, -лизина Corynebacterium glutamicum Т-3 или штамм ВНИИгенетика 4995, или 5 Brevibacterium Sp 221 ,или 22 L, Д провод т на питательной среде следующего состава, вес.%;The cultivation of the producers of I, α-lysine Corynebacterium glutamicum T-3 or the VNIIgenetika strain 4995, or 5 Brevibacterium Sp 221, or 22 L, D is carried out on a nutrient medium of the following composition, wt.%;
Меласса16-21 (сахарMolasses16-21 (sugar
48%) ,48%)
- Кислотный гидроли зат БВК3,5-4,1- Acid hydroli BVK3,5-4,1
КукурузныйCorn
экстракт1,0-2,0extract1.0-2.0
1-5%-ный водный 5 экстракт морских1-5% aqueous 5 sea extract
водорослей0,002-0,008algae0.002-0.008
NH.C11,5 - 2,5NH.C11.5 - 2.5
Мел1,5 - 2,5Mel1.5 - 2.5
Вода водопроводна рН среды составл ет 7,4.ОстальноеThe tap water has a pH of 7.4. The rest
П р и м е р 1. Дл получени Ц лизина используют культуру рода Cor.glutamicum Т-3, которую выращиBcuoT на питательной среде следующе5 го состава, вес.%:EXAMPLE 1. To obtain C lysine, a culture of the genus Cor.glutamicum T-3 is used, which is grown by Growing on a nutrient medium of the following composition, wt.%:
Меласса16 (сахарMolasses16 (sugar
48%)48%)
Кислотный гидролизат БВК 3,5 Кукурузный экстракт 1,0 0 NH.Cl1,5Acidic hydrolyzate BVK 3,5 Corn extract 1,0 0 NH.Cl1,5
Мел1,5Mel1,5
Вода водопроводна Остальное рН среды составл ет 7,4. Через 10 ч после внесени посев5 ного материала, выращенного в пробирках на скошенной агаризованной среде МПА, добавл ют стерильный 1%-ный фугат водного экстракта морских водорослей рода Fucus.vesicuQ losus из расчета 0,2 г/л (0,002 вес.%)The water is tap The remaining pH of the medium is 7.4. 10 h after the application of the inoculum grown in test tubes on MPA agarized media, sterile 1% centrate of an aqueous extract of seaweed of the genus Fucus.vesicuQ losus is added at the rate of 0.2 g / l (0.002 wt.%)
Водный экстракт готов т из сухих морских водорослей рода Fucus vesiculosusпутем настаивани в .течение 2 ч при 25 С. По окончании экстракции суспензию центрифугируютThe aqueous extract is prepared from dry seaweed of the genus Fucus vesiculosus by insisting for 2 hours at 25 ° C. At the end of the extraction, the suspension is centrifuged
при 6000 об/мин, стерилизуют в течение 0,5 ч при 1,0 ати и полученный фугат используют в качестве стимул тора при биосинтезе L-лизина.at 6000 rpm, sterilized for 0.5 h at 1.0 ati and the resulting crescent is used as a stimulator in the biosynthesis of L-lysine.
Ферментацию провод т в колбах Эрпенмейера емкостью 250 мл в лабораторных услови х на качалке (240 об/миН). Процесс протекает при 30 + и рН 7,4. Объем ферментационной среды 10 мл. При этом на выходе I, -лизина (определ етс методом бумажного электрофореза в культуральной жид кости составл ет 30 г/л, П р и м е р 2. Режим культивиро вани продуцента t-лизина Cor. gl tamicum ВНИИгенетика 4995 аналог чен примеру 1. Используют питательную среду следующего состава, вес.%: Меласса19 (сахар 48 Кислотный гидроли3 ,8 зат БВК 1,5 Кукурузный экстракт 2,0 2,0 вода водопроводна Остальное рН среды составл ет 7,4, Через 13 ч после внесени посев ного материала добавл ют в пцтател ную среду стерильный фугат, 3%-ного водного экстракта морских вЙдорослей рода FUCUS vesiculosus в количе ве 0,5 Г/Л. Врем настаивани сухи водорослей 3 ч.при 30°С. Через 72 ферментации выход L-лизина в куль тивированной жидкости составл ет 45 г/л. Примерз. Режим культиви о вани продуцента L, -лизина Brevibacterium Sp.2L. аналогичен примерам 1 и 2 .. Используют питательную среду следующего состава, вес.-%: 21 (сахар Меласса 48%) Кислотный гидроли4 ,1 зат БВК 1,5 Кукурузный экстракт 2,5 2,5 Остальное Вода водопроводна рН среды составл ет 7,4. Через 16 частов после внесени посевного материала добавл ют в питательную среду стерильный фугат 5%-ного водного экстракта морских водорослей рода Fucus vesiculosus В количестве 0,8 г/л. Врем настаивани сухих водорослей 4 ч при 35°С. Выход U-лизина в культуральной жидкости через 72 ч ферментации составл ет 39,1 г/л. П р и м е р 4. Режим культивировани продуцента Ц-лизина B.Sp 22LD аналогичен примеру 3. Через 72 ч ферментации активность лизина составл ет 42, 8 г/л. Таким образом, предлагаемый спо- соб позвол ет увеличить выход лизина с 30 до 45 г/л по сравнению с известным (33,4 - 39,6 г/л).Fermentation is carried out in Erpenmeyer flasks with a capacity of 250 ml under laboratory conditions on a shaker (240 rpm). The process takes place at 30 + and pH 7.4. The volume of fermentation medium 10 ml. At the same time, at the output of I, lysine (determined by the method of paper electrophoresis in culture liquid is 30 g / l, EXAMPLE 2. The mode of cultivation of the producer of t-lysine Cor. Gl tamicum VNIIgenetika 4995 analogue to example 1 . A nutrient medium of the following composition is used, wt.%: Molasses19 (sugar 48 Acid hydroli3, 8 bw BVK 1.5 Maize extract 2.0 2.0 tap water The balance of the medium is 7.4, 13 h after the inoculation the material is added to the ptstelyuyu environment sterile fugat, 3% aqueous extract of sea water of the genus FU CUS vesiculosus in an amount of 0.5 G / L. The infusion time of dry algae is 3 parts at 30 ° C. After 72 fermentations, the yield of L-lysine in the cultured liquid is 45 g / l Froze. , -lysin Brevibacterium Sp.2L. is similar to examples 1 and 2. A nutrient medium of the following composition is used, wt .-%: 21 (sugar Molasses 48%) Acid hydrol4, 1 bVC 1.5 Corn extract 2.5 2.5 The water in the water pH of the medium is 7.4. After 16 parts after adding the inoculum, sterile centrate of 5% aqueous extract of algae of the genus Fucus vesiculosus is added to the nutrient medium. 0.8 g / l. Dry algae infusion time is 4 hours at 35 ° C. The yield of U-lysine in the culture liquid after 72 hours of fermentation is 39.1 g / l. EXAMPLE 4 The mode of cultivation of the producer of C-lysine B.Sp 22LD is similar to Example 3. After 72 hours of fermentation, the activity of lysine is 42, 8 g / l. Thus, the proposed method allows to increase the yield of lysine from 30 to 45 g / l as compared with the known (33.4 - 39.6 g / l).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823442201A SU1082815A1 (en) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | Process for preparing l-lysine |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU823442201A SU1082815A1 (en) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | Process for preparing l-lysine |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1082815A1 true SU1082815A1 (en) | 1984-03-30 |
Family
ID=21013111
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU823442201A SU1082815A1 (en) | 1982-05-19 | 1982-05-19 | Process for preparing l-lysine |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1082815A1 (en) |
-
1982
- 1982-05-19 SU SU823442201A patent/SU1082815A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1.Авторское свидетельство СССР № 494040, кл. С 12 Р 13/08, 1970. 2.Патент JP 45-32233, кл. 32/2/ВО2, опублик. 1970. 3.Вли ние экстрактов их зеленых водорослей S.acuminaus на развитие дрожжей C.lipolytica в газоконденсатосодержащих средах. - Узбекский биологический журнал, 1979, № 4, с. 12-14. 4.Дагис И.К.Карапюте И.К. Стимул торы роста в водоросл х Балтийс- . кого побережь . - Сб. Физиологически активные вещества и их применение в растениеводстве. Вильнюс, институт Ботаники АН Лит ССР, 1965, с. 83-89. 5.Авторское свидетельство СССР 661013, кл. С 12, Р 13/08, 1976. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US2978383A (en) | Method for the production of 1-glutamic acid | |
JPS6038118B2 (en) | Method for producing polysaccharides produced by fermentation | |
SU1082815A1 (en) | Process for preparing l-lysine | |
SU521849A3 (en) | The method of obtaining cephalosporin | |
US2978384A (en) | Method for the production of 1-glutamic acid | |
US6716617B1 (en) | Fermentation method with continuous mass cultivation of ciliates (protozoa) for producing biogenous valuable substances | |
SU908092A1 (en) | Method of obtaining riboflavin | |
SU975800A1 (en) | Process for producing amino acids | |
SU732377A1 (en) | Method of preparing culture medium for culturing l-lysine and l-glutamic acid producents | |
JP3006907B2 (en) | Method for producing L-alanine by fermentation method | |
SU1581742A1 (en) | Strain of rhizopus microsporus fungi as producer of lipase | |
SU1449581A1 (en) | Strain of alcaligenes paradoxus bacteria as producer of catechol-1,2-oxygenase | |
RU2676144C1 (en) | Method for producing invertase and citric acid | |
SU1551743A1 (en) | Method of obtaining levan | |
SU513075A1 (en) | The method of obtaining hyaluronidase | |
SU675980A1 (en) | Method of producing l-lysine | |
RU2157848C1 (en) | Method of intensification of geliomycin biosynthesis | |
SU306736A1 (en) | Method of producing l-lysine | |
RU1781297C (en) | Process for producing the preparation of cellulolytic association of bacteria contained in the rumen | |
SU767196A1 (en) | Method of culturing lithic enzyme producents | |
SU1311256A1 (en) | Consortium of candida tropicalis yeast and acinetobacter species bacteria as producer of exopolysaccharide | |
SU1143777A1 (en) | Method of obtaining yeast seed culture | |
RU1804479C (en) | Method of serratia marcescens cultural fluid preparation showing chitinase activity | |
SU565935A1 (en) | Method of obtaining uratoxylase | |
SU1479509A1 (en) | Method of producing protein biomass |