SK84493A3 - Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod. - Google Patents

Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod. Download PDF

Info

Publication number
SK84493A3
SK84493A3 SK84493A SK84493A SK84493A3 SK 84493 A3 SK84493 A3 SK 84493A3 SK 84493 A SK84493 A SK 84493A SK 84493 A SK84493 A SK 84493A SK 84493 A3 SK84493 A3 SK 84493A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
shoots
culture
magnolia
rooting
concentration
Prior art date
Application number
SK84493A
Other languages
Slovak (sk)
Other versions
SK278139B6 (en
Inventor
Aurelia Kamenicka
Original Assignee
Ustav Ekologie Lesa Sav
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ustav Ekologie Lesa Sav filed Critical Ustav Ekologie Lesa Sav
Priority to SK84493A priority Critical patent/SK278139B6/en
Publication of SK84493A3 publication Critical patent/SK84493A3/en
Publication of SK278139B6 publication Critical patent/SK278139B6/en

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

Solution is concerning the method of multiplying of Magnolia soulangiana Soul.bod. by method in vitro in aseptic conditions from explanates removable from grown-up wood species. Primary explanates (buds, apexys, nodal segments a.s.o.) are after sterilization cultivated on modificated cultivating mediums consolidated by agar and is with additing of growth regulators and active coal.

Description

Riešenie sa týka spôsobu rozmnožovania magnólie soulangeovej (Magnólia soulangiana Soul. Bod.), metódou in vitro, v aseptických podmienkach, z explantátov odobratých z dospelých drevín. Primáme explantáty (púčiky, apexy, nodálne segmenty ap.) sa po sterilizácii kultivujú na modifikovaných kultivačných médiách spevnených agarom a s pridaním regulátorov rastu a aktívneho uhlia.The present invention relates to a method for the propagation of a magnolia soulangiana Soul (Point.) By an in vitro method, under aseptic conditions, from explants taken from adult woody plants. The primary explants (buds, apexes, nodal segments, etc.) are cultured on modified agar-reinforced culture media with the addition of growth regulators and activated carbon after sterilization.

««

SDôsob rozmnožovania Magnólie sou1angeovejSMonium Magnolia Magnification Method

Obiβsí techniky vynález sa týka spôsobu rozmnožovania Magnólie soulangeovej (Magnólia x soulangeane Sou].) metódou in vitro, τ dospelých drevín.BACKGROUND OF THE INVENTION The present invention relates to a method for propagation of Magnolia soulangeane (Magnolia x soulangeane Sou) by the in vitro method, τ of mature woody plants.

D o t e r a j š i s t. a v. t e c h n i k yD o t e r i j i s t. and in. technique

Magnólie patria medzi dekoratívne dreviny, o pestovanie ktorých je velký záujem. Množenie M. soulangeovej sa doteraz zabezpečuje prevažne vegetatívnym spôsobom (odrezkami). [Hieke, K.: Ŕízkování magnólií, Zahradnickie Listy 5, 125-154 (1967); Seneta, W.: Rozmnazanie magnólii. Ogrodnictwo 6, 180-181 (1973); Bojarczuk, K.; Rozmnazanie magnólii z sadzonek zielnycíi z zastosowaníem rôznych czynników stymulu jacych ukorzenianie, Arborétum Kornickie XXVII, 170-185 (1982); Bärtels, A.: Rozmnožovaní dŕevin, SZN Praha 1988, 451).Tento spôsob množenia magnólií je spojený so značnými ťažkosťami, ako sú dlhá doba zakoreňovania (1 až ? roky), nízke percento zakorenených rezkov, obmedzené možnosti produkcie rezkov a pod. Odrezky vegetatívne veľmi ťažko zakoreňujú a bez aplikácie rastových stimulátorov je % tvorby koreňov veími nízke. Odber odrezkov .i c najvýhodnejší leri v období intenzívneho rastu, čo obmedzuje nielen obdobie odberu ale aj množstvo odobratých rezkov. Na zakoreňovanie odrezkov negatívne vplýva aj vek materskej dreviny a miesto odberu explan tatov.Magnolias are among the decorative woods of great interest. To date, M. soulange's reproduction has been largely ensured by vegetative methods (cuttings). [Hieke, K .: Magnolia Cutting, Zahradnickie Listy 5, 125-154 (1967); Seneta, W .: Magnolia Magnification. Ogrodnictwo 6, 180-181 (1973); Bojarczuk, K .; Spreading of magnolia from seedlings zielnycíi z zastosowaníem various czynników stymulu yacych ukorzenianie, Arboretum Kornickie XXVII, 170-185 (1982); Bärtels, A .: Reproduction of woody plants, SZN Praha 1988, 451). This method of magnolias propagation is associated with considerable difficulties such as long rooting time (1 -? Years), low percentage of rooted cuttings, limited production of cuttings and the like. The cuttings are very difficult to root vegetatively, and without the application of growth stimulators, the root formation% is very low. Collection of cuttings. I c the most advantageous leri in a period of intensive growth, which limits not only the harvest period but also the amount of cuts taken. The roots of the cuttings are also negatively affected by the age of the mother tree and the place of collection of explanatory tatas.

V súčasnosti preto vystupuje do popredia záujem o možnosti ich r ozmnožovania v kontrolovaných podmienkach (i n vitro), ktoré zabezpečia kvalitatívne aj kvantitatívne vyššiu efektívnosť produkcie sadeníc. V experimentoch s rozmnožovaním magnólií metódou in vitro sa pracuje spravidla s juvenilným materiálom.At present, therefore, there is an interest in the possibility of their reproduction under controlled conditions (even in vitro), which will ensure qualitatively and quantitatively higher efficiency of seedling production. In vitro magnolia propagation experiments generally employ juvenile material.

Podstata vyná]>;zuThe essence of the]] ; zu

Nedostatky uvedených spôsobov rozmnožovania odstraňuje rozmnožovanie Magnólie soulangeovej (Magnólia x soulangeana Onul.) metódou in vitro spôsobom pódia vynálezu. Podstata vynálezu spočíva v t.om. že z dospelých drevín (materská rastlina) sa odoberú primárne explantáty (púčiky, apexy, nodálne segmnety ) , tieto sa sterilizujú a po sterilizácii kultivujú v aseptických podmienkach na umelých modifikovaných kultivačných médiách spevnených agarom a obsahujúcich rastové regulátory až do vytvorenia axilárnych výhonkov (spravidla 10 až 12 týždňov). Vytvorené axilárne výhonky sa oddelia od primárnej kultúry a ďalej sa kultivujú (pestujú) na modifikovanom zakoreňovacom médiu až do vytvorenia koreňa (spravidla 4 až 8 týždňov).The inadequacy of the above methods of reproduction is overcome by the in vitro multiplication of the magnolia soulangea (Magnolia x soulangeana Onul.) Method according to the invention. The essence of the invention lies in t.om. that primary explants (buds, apexes, nodal segmnets) are taken from adult species (parent plant), sterilized and cultured after sterilization under aseptic conditions on agar-reinforced, modified culture media containing growth regulators (axillary growth) up to 12 weeks). The formed axillary shoots are separated from the primary culture and further cultured on a modified rooting medium until the root is formed (typically 4 to 8 weeks).

Zistilo sa. že je výhodné počas celého procesu regenerácie pridávať do kultivačných médií rastové regulátory, obzvlášť rastové regulátory zo skupiny cytokinínov, napr. benzylaminopurín (BAP) a to v množstve 0,2 až 0,3 mg.l1 a zo skupiny auxínov, napr. kyselina α-naftyloctová (NAA) a to v koncentrácii 0,01 až 0,1 mg.l“1. Ako zdroj uhlíka sa pridáva sacharóza v množstve do 20 000 mg.l1) a kultivácia prebieha v aseptických podmienkach, pri teplote 20 až 24 °C, pri intenzite osvetlenia 2,0 až 2,5 klx počas 14 až 16 hodín denne.It was found. that it is advantageous to add growth regulators, in particular growth regulators of the cytokinin family, e.g. benzylaminopurine (BAP) in an amount of 0.2 to 0.3 mg.l 1 and from the group of auxins, e.g. α-naphthylacetic acid (NAA) at a concentration of 0.01 to 0.1 mg.l -1 . Sucrose is added as a carbon source in an amount of up to 20,000 mg.l 1 ) and cultivation is performed under aseptic conditions, at a temperature of 20 to 24 ° C, with an illumination intensity of 2.0 to 2.5 klx for 14 to 16 hours per day.

Taktiež sa zistilo, že je výhodné, ak zakoreňovacie médium obsahuje kyselinu (1-indol ylmaslovú (IBA) v množstve 1,0 až 6.0 mg.]'1 a aktívne uhlie v koncentrácii cca 0,3 %.It was also found that it is preferred that the rooting medium contains an acid (1-ylbutyric indole (IBA) in 1.0 to 6.0 mg.] '1 and activated carbon in a concentration of about 0.3%.

Späsob rozmnožovania magnólie podlá vynálezu metódou in vitro prináša celý rad výhod, a to možnosť produkcie materiálu počas celého roka bez ohľadu na ročné obdobie, rýchlejšie množenie pri šetrení priestorov, pretože je možné na menšom priestore dopestovať väčší počet regenerantov v porovnaní s klasickým množením, zvýšenie koeficientu rozmnožovania v porovnaní s tradičnými metódami (1. primárny explanl.át s dĺžkou 5 až 10 mm vytvorí 4 až 9 výhonkov) a možnosť opakovania rozmnožovacieho ''yklu 2-3x v priebehu roka, skrátenie času na zakoreňovanie výhonkov (4 až S týždňov oproti .1. až 2 rokom v prípade odrezkov), produkčná schopnosť regenerácie spôsobom rozmnožovania pod f a vynálezu je minimálne 1000 sadenie z jedného explantátu ročne.The in vitro method of magnolization according to the invention brings a number of advantages, namely the possibility of producing the material throughout the year regardless of the season, faster propagation in saving space, since it is possible to grow more regenerants in a smaller space compared to conventional propagation, multiplication coefficient compared to traditional methods (1 st primary explanatory 5 to 10 mm long produces 4 to 9 shoots) and the possibility of repeating the propagation yoke 2-3 times during the year, shortening the time to root the shoots (4 to S weeks) as opposed to 1 to 2 years in the case of trimmings), the production capacity of the regeneration method according to the invention is at least 1000 per plantation per explant per year.

Pr iklady....uskutočnen í a vynálezuEXAMPLES OF EMBODIMENTS AND INVENTION

A. Produkcia výhonkovA. Production of shoots

Príklad 1Example 1

Ako primárne explantáty sa použili. púčiky magnólie, odobraté na jar (marec) zo 40-ročného stromu (M. soulanaeova Soul. rastúca v objekte Arboréta Mlyňany). Púčiky sa po odbere sterilizovali 0,1% chloridom ortuťnatým s detergentom Tween (0,05 %). Po sterilizácii sa púčiky opakovane premyli v destilovanej a následne v redestilovanej vode a uložili sa na kultivačné médium s upraveným zastúpením rastových regulátorov (vicf tab.l). Vzniknuté výhonky sa v laminárnom boxe rozdelili na segmenty s dĺžkou 3-5 mm, pričom sa rozlišoval apex a nodálne segmenty.They were used as primary explants. magnolia buds, taken in spring (March) from a 40-year-old tree (M. soulanaeova Soul. growing in Arboretum Mlyňany). After collection, the buds were sterilized with 0.1% mercuric chloride with Tween (0.05%). After sterilization, the buds were repeatedly washed in distilled and subsequently in redistilled water and stored on a culture medium with a modified proportion of growth regulators (vicf tab.1). The resulting shoots in the laminar box were divided into segments with a length of 3-5 mm, distinguishing between apex and nodal segments.

Kultivácia týchto segmentov sa robila v uzavretých sklenených nádobách s objemom 370 ml, ktoré obsahovali 50 ml kultivačného média, spevneného agarom v množstve 6,5 g.I“1 a s obsahom sacharózy v množstve 20 g.I'1. Kultivačné agarové médiá sa upravili pridaním IM NaOH na pH od 5,6 do 5,8, pridali sa k nim rastové regulátory zo skupiny cytokinínov (benzylaminopurin 0,3 mg.l·1) a auxínov (kyselina α-naftyl octov áCultivation of these segments was done in 370 ml sealed glass containers containing 50 ml of 6.5 gI- 1 agar-reinforced culture medium and 20 g.I- 1 sucrose. Culture agar media was adjusted to pH 5.6-5.8 by addition of IM NaOH, to which were added growth regulators from the group of cytokinins (benzylaminopurine 0.3 mg.l · 1 ) and auxins (α-naphthyl acetic acid).

0,1 mg.l-1) a autokl ávovali sa pri t e f? 1 o t e j 20 °C počas 20 minút. Explantáty (apexy aj nodálne segmenty) sa kultivovali pri teplote <.'d 20 do 24 °C. v klimatizovanej miestnosti na regáloch pod osvetľovacími panelmi s intenzitou osvetlenia od 2,0 do 2,5 klx, pri 14 až 16h žiarivkovom osvetlení (8 až 10 h bez svetla), počas 10 týždňov. Produkčný efekt bol 7 až 9 výhonkov na 1 segment, s priemernou dĺžkou výhonkov 16 mm.0.1 mg.l -1 ) and autoclaved at tef? 1 ° C for 20 minutes. The explants (apexes and nodal segments) were cultured at temperatures ranging from 20 to 24 ° C. in an air-conditioned room on shelves under lighting panels with an illumination intensity of 2.0 to 2.5 klx, at 14-16h fluorescent lighting (8-10h without light), for 10 weeks. The production effect was 7 to 9 shoots per segment, with an average shoot length of 16 mm.

T í b u í k a č . 1T i b u i k no. 1

Zloženie kultivačných médiíComposition of culture media

ľ 1 o/en i e ¾ 1 o / en i e Médium Staridai di a Catalano (1965) [mg.111Staridai di a Catalano (1965) [mg.1 1 1 Médium Cown a lloyd (1981) [mg.11]Medium of Cown and Lloyd (1981) [mg.1 1 ] KNOg Knog 1800 1800 - - Ca( H¢13)2 - 4H?0 Ca (H ¢ 13) 2 - 4H? 0 1200 1200 5 56 5 56 NH4NO3 NH4NO3 400 400 400 400 rtgSOzí . 7H?0 rtgSOzí. 7H? 0 360 360 370 370 K2SO4 K2SO4 - - 990 990 KH2PO4 KH2PO4 270 270 170 170 CaC12-2H20 CaC12-2H20 - - 96 96 FeS04 FeS04 27,85 27.85 27,85 27.85 NaEOTA NaEOTA 37,25 37.25 37,25 37.25 ZnS04 ZnS04 10 10 B,6 B 6 H3BO3 H3BO3 10 10 6,2 6.2 ΜΠ3Ο4.H20 ΜΠ3Ο4.H20 18 18 22,3 22.3 CuS04.5H2OCuS0 4 .5H2O 0,025 0,025 0,25 0.25 N32MO04.2Η2Ο N32MO04.2Η2Ο 0,25 0.25 0,25 0.25 ΚΙ ΚΙ - - - - K'/s. nikotínová K '/ s. nicotinic 5 5 0,5 0.5 G1ycín G1ycín 2 2 2 2 Pyridoxín pyridoxine 0,5 0.5 0,5 0.5 Tiamíη Tiamíη 0,5 0.5 1,0 1.0 K y s. listová K y s. Folic 0,5 0.5 - - Biotin biotin 0.65 0.65 - - 61utam i n 61utam i n - - 2 2 Myoinozi tol Myoinozi tol L00 L00 100 100 Agar agar 7 000 7 000 7 000 7 000 Sacharóza sucrose 20 000 20 000 20 000 20 000 PH PH 5.4-5,6 5.4-5,6 5,4-5,6 5.4-5.6 Standardi, A. Standardi, A. Catalano, F.: Tissue Catalano, F .: Tissue culture propagation 0 culture propagation 0

kiwifruit, Combined Proceedings I n t. Plánt Propag. Soc.. 34, 234-243 (1985): Mg Cowri.. 8.H.. Lloyd. G.: Woody plánt médium (WPM) a minerál núti icrit ľormulation For mi cror.ulture of woody plánt species, Horí Sci ·?π<:·=· lf·. 453 (1931).kiwifruit, Combined Proceedings I n t. Plánt Propag. Soc., 34, 234-243 (1985): Mg Cowri, 8H, Lloyd. G .: Woody plant medium (WPM) and mineral forces icrit lormulation For mi cror.ulture of woody plant species, Sci Sci ·? Π <: · = · lf ·. 453 (1931).

Postupoval o He advanced on sa the ako v príklade 1 s tým rozdielom, že v as in Example 1 with the difference that in kul t.i vačnom kul t.i vačnom médiu medium sa upravili nasledovné komponenty: the following components have been modified: ZnS04.7H2O ZnS04.7H2O ( 8,6 (8.6 mg.1“1)mg.1 “ 1 ) H3BO3 H3BO3 (6,2 (6.2 mg.I-1)mg.I -1 ) MnS04.H2O MnS04.H2O (1,0 (1.0 mg.1“11mg.1 ' 1 1 KI KI (0,08 (0.08 m g. 1 “ 1)m g. 1 “ 1 ) C0CI2 C0CI2 (0,025 mg.I-1)(0.025 mg.I- 1 ) tiamin HC1 thiamine HCl (4,0 (4.0 mg.I'1),mg.I ' 1 ), vylúčili sa excluded nasledovné komponenty: the following components: kyselina nikotínová, glycín, pyridoxín HC1, kyselina listová, nicotinic acid, glycine, pyridoxine HCl, folic acid, biotin. Rastové biotin. growth regulátory - BAP a NAA v nezmenenej regulators - BAP and NAA unchanged

koncentrácii.concentration.

Produkčný efekt explantátovej kultúry bol 5 až 7 výhonkov na 1 segment, s dĺžkou výhonkov 12-16 mm.The production effect of the explant culture was 5 to 7 shoots per segment, with a shoot length of 12-16 mm.

Príklad 3Example 3

Postupovalo sa ako v príklade 1 s tým rozdielom, že sa použilo modifikované McCown a Lloyd médium (tab. 1). Koncentrácia BAP: 0,2 mg.I”1, koncentrácia NAA: 0.1 mg.I-1. Produkčný efekt bol 4-5 výhonkov na 1 segment, s dĺžkou výhonkov 14-16 mm.The procedure was as in Example 1 except that modified McCown and Lloyd medium were used (Table 1). BAP concentration: 0.2 mg.I -1 , NAA concentration: 0.1 mg.I -1 . The production effect was 4-5 shoots per segment, with a shoot length of 14-16 mm.

Príklad 4Example 4

Postupovalo sa ako v príklade 1 s tým rozdielom, že ako primárne explantáty sa použili jarné apikálne časti z aktívne rastúcich výhonkov z dospelých stromov. Z výhonkov, ktoré obsahovali 2-3 internódiá, sa odstránili listy a bezlisté výhonky sa dokonale sterilizovali (príklad 1). Takto pripravené explantáty sa v sterilných podmienkach rozdelili na apex a 2-3 nodálne segmenty. Produkčný efekt explantátovej kultúry bol 4 až 8 výhonkov na 1 segment, priemerná dĺžka 17 až 14 mm.The procedure was as in Example 1 except that the spring apical portions of actively growing shoots from adult trees were used as the primary explants. Leaves were removed from shoots containing 2-3 internodes and leafless shoots were perfectly sterilized (Example 1). The explants thus prepared were divided into sterile conditions into apex and 2-3 nodal segments. The production effect of the explant culture was 4 to 8 shoots per segment, average length 17 to 14 mm.

B. Zakoreňovanie výhonkovB. Rooting of shoots

P r i k 1 3. d 5Example 1 3. d 5

Vi cli f er ericované -xxilďr ne výnonky. ktoi é dosiahli dĺžku od 2 do 4 cm, sa oddelili od primárnej kultúry a nechali sa zakoreniť na upravenom Standardi a Catalano médiu. Obsah rastových regulátorov zo skupiny auxinov - kyselina β-indolylmaslová (IBA) bol 6.0 mg.I-1, s pridaním 0,3 % aktívneho uhlia, podiel makr oel einen tov bol upravený nasledovne:Vi cli f er eric -xxildr not bulbs. who reached a length of 2 to 4 cm, were separated from the primary culture and rooted in conditioned Standard and Catalano medium. The content of growth regulators from the group of auxins - β-indolylbutyric acid (IBA) was 6.0 mg.I -1 , with the addition of 0.3% activated carbon, the proportion of macros oel einen products was adjusted as follows:

K NO? K NO? (900 mg.l1)(900 mg.l 1 ) Ca(NO3)2.4H2O Ca (NO3) 2.4H2O (600 mg.l'1)(600 mg.l -1 ) NH4NO3 NH4NO3 (200 mg.l-1)(200 mg.l- 1 ) MgSO4.7H2O MgSO4.7H2O (180 mg. ľ1)(180 mg. 1 L) KH2PO4 KH2PO4 (135 mg.l-1)(135 mg.l- 1 ) Kultivačné médium Culture medium sa spevnilo agarom (6,5 g.l1) a doplnilowas agar-reinforced (6.5 gl 1 ) and replenished sacharózou (20 sucrose (20 000 mg.I-1). Výhonky sa zakoreňovali v000 mg.I -1 ). Shoots rooted in

sklenených kultivačných nádobách s objemom 370 ml, obsahujúcich 50 ml média. Do takto pripravených kultivačných nádob sa uložili 1-2 výhonky, vypestované v kultivačných podmienkach podlá príkladu 1.370 ml glass culture flasks containing 50 ml medium. 1-2 shoots grown in the culture conditions of Example 1 were placed in the culture vessels thus prepared.

Najlepšie zakoreňovali výhonky dlhé 2 až 3 cm (2 až 3 internódiá). bez redukcie listov. Výhonky zakorenili v období od 4 do 6 týždňov. Produkčný efekt koreňov bol 4 až 8 koreňov na 1 výhonok, s priemernou dĺžkou 21 až 26 mm. Percento zakoreňovania sa pohybovalo od 97 do 99.The best rooted shoots were 2 to 3 cm long (2 to 3 internodes). without leaf reduction. Shoots rooted in a period of 4 to 6 weeks. The production effect of the roots was 4 to 8 roots per 1 shoot, with an average length of 21 to 26 mm. The rooting percentage ranged from 97 to 99.

P r i k 1 < > d 6Example 1 <> d 6

Postupovalo sa ako v príklade 5 s tým rozdielom, že kultivačné médium obsahovalo 1,0 mg.l-1 IBA a 0,3 % aktívneho uhlia. Per-The procedure was as in Example 5 except that the culture medium contained 1.0 mg.l -1 IBA and 0.3% activated carbon. per-

cento zakorenenia cento rooting sa pohybovalo od 80 ranged from 80 do 83, produkčný efekt priemerná dĺžka 28 až 30 to 83, production effect average length 28 to 30 bol 1 mm. was 1 mm. až 2 to 2 kor en e kor en e na 1 výhonok, per 1 sprout, i ch i ch Pri At kla KLA il 7 il 7 Postupovalo The procedure sa ako sa like v p ľ i k 1 -i d e 5 -i in case 1-i d 5 -i :· t ým : · Team rozdielom, že kultivačné difference that cultivation médium medium obs- obs- h oval 0 h oval 0 3,0 m g. .1 1 IBA a3,0 m g. .1 1 IBA a 0.3 aktívneho uhlia. 0.3 activated carbon.

Percento zakoreňovania sa pohybovalo od 60 do 65. počet koreňov na 1 výhonok bol 0.9 až 1,0, priemerná dĺžka 3ľ až 33 mm.The rooting percentage ranged from 60 to 65. the number of roots per shoot was 0.9 to 1.0, the average length was 31 to 33 mm.

Príklad 8Example 8

Postupovalo sa ako v príklade 5 s tým rozdielom, že kultivačné médium neobsahovalo žiadne- rastové regulátory a pridalo sa 0.3 í aktívneho uhlia. Percento zakoreňovania bolo od 40 do 45. počet koreňov na 1 explantát 0,7 až 1,0, priemerná dĺžka 30 až 32 mm.The procedure was as in Example 5 except that the culture medium did not contain any growth regulators and 0.3 µl of activated carbon was added. The rooting percentage was from 40 to 45. The number of roots per explant was 0.7 to 1.0, the average length being 30 to 32 mm.

P Γ. i e m y. s e 1 n á. y vuži teín osťP Γ. i e m y. s e 1 n. y tein tein se

VIN

Vynález je možné využiť v okrasnom záhradníctve v produkcii sadeníc Magnólie soulangeovej Soul., pri budovaní genobánk a obohacovaní genofondu botanických záhrad a arborét, pri tvorbe a ochrane životného prostredia, v záchrane a reprodukcii genofondu v oblastich postihnutých priemyselnými imisiami, v šíachtiteíských programoch.The invention can be used in ornamental horticulture to produce Magnolia soulange seoul seedlings, to build genobanks and enrich the gene pool of botanical gardens and arboretums, to create and protect the environment, to save and reproduce the gene pool in areas affected by industrial pollution, in breeding programs.

Claims (7)

Spôsob rozmnožovania magnólie soulangeovej (Magnólia x soulangiana Soul.) metódou in vitro, vyznačujúci sa tým, že z explantáty, tieto sa umelých kultivačných regulátorov kultivujú dospelých stromov sa odoberú primárne sterilizujú a po sterilizácii sa na médiách s obsahom agaru a rastových až do vytvorenia axilárnych výhonkov.An in vitro method of propagation of a magnolia of soulange (Magnolia x soulangiana Soul.), Characterized in that from explants, the artificial culture regulators are grown to adult trees, harvested primarily, and after sterilization on agar and growth media until axillary. shoots. vytvorené axilárne výhonky sa oddelia od primárnej kultúry a pestujú sa na modifikovaných zakoreňovacích médiách až do vytvorenia koreňového systému.the formed axillary shoots are separated from the primary culture and grown on modified rooting media until the root system is formed. 2. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že použitým regulátorom rastu pri tvorbe axilárnych výhonkov a v ich prolongácii je 6-benzyladenin (BA) v koncentrácii 0,2 f až 0,3 mg.I-1.2. The method of claim 1, wherein the plant growth regulators in the development of axillary shoots and the Rollover a 6-benzyladenine (BA) at 0.2 f to 0.3 mg.l -1. 3. Spôsob podľa nároku 1 a 2, vyznačujúci sa tým, že ako regulátor rastu viacvrcholovej explantátovej kultúry v prolongácii axilárnych výhonkov sa pridá alfa-naftyloctová kyselina (NAA) v koncentrácii 0,01 ažMethod according to claims 1 and 2, characterized in that alpha-naphthylacetic acid (NAA) is added at a concentration of 0.01 to 2 as the growth regulator of the multi-peak explant culture in the prolongation of axillary shoots 0,1 mg.I-1.0.1 mg.I -1 . 4. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že kultivačné médium pre multiplikáciu a zakoreňovania a výhonkov obsahuje 20 g. I-1 sacharózy.The method according to claim 1, characterized in that the culture medium for multiplication and rooting and shoots contains 20 g. I -1 sucrose. tT 5. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že pestovanie explantátov sa uskutočňuje v aseptických podmienkach pri teplote 20 až 24 °C, intenzite osvetlenie 35-40 jjimol.m.s a dĺžke fotoperiódy 14 hodín.Method according to claim 1, characterized in that the explants are grown under aseptic conditions at a temperature of 20 to 24 ° C, a light intensity of 35-40 µmol.s and a photoperiod length of 14 hours. 6. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že zakoreňovacie médium obsahuje kyselinu beta-indolylmaslovú v koncentrácii 1,0 až 6,0 mg.I-1.Method according to claim 1, characterized in that the rooting medium contains beta-indolylbutyric acid in a concentration of 1.0 to 6.0 mg.I -1 . 7. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že zakoreňovacie médium obsahuje aktívne uhlie v 0,3 X koncentrácii.Method according to claim 1, characterized in that the rooting medium contains activated carbon in a 0.3X concentration.
SK84493A 1993-08-06 1993-08-06 Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod. SK278139B6 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SK84493A SK278139B6 (en) 1993-08-06 1993-08-06 Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SK84493A SK278139B6 (en) 1993-08-06 1993-08-06 Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
SK84493A3 true SK84493A3 (en) 1996-02-07
SK278139B6 SK278139B6 (en) 1996-02-07

Family

ID=20434017

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK84493A SK278139B6 (en) 1993-08-06 1993-08-06 Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod.

Country Status (1)

Country Link
SK (1) SK278139B6 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103988777A (en) * 2014-04-11 2014-08-20 上海闵行区苗圃 Lobule dwarf type magnolia grandiflora tender stem segment isolated culture method

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103355166B (en) * 2012-04-11 2017-05-17 贵州师范大学 Induction culture medium of callus of stems with buds of magnolia biloba as well as inducing method of induction culture medium
CN103718969B (en) * 2014-01-28 2015-11-18 华南农业大学 A kind of logical cultured in vitro regeneration plant method with a smile of poem beautiful jade

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103988777A (en) * 2014-04-11 2014-08-20 上海闵行区苗圃 Lobule dwarf type magnolia grandiflora tender stem segment isolated culture method

Also Published As

Publication number Publication date
SK278139B6 (en) 1996-02-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Boxus The production of strawberry plants by in vitro micro-propagation
Shekhawat et al. Factors affecting in vitro clonal propagation of Prosopis cineraria
Chalupa Large scale micropropagation of Quercus robur L. using adenine-type cytokinins and thidiazuron to stimulate shoot proliferation
Chow et al. Stimulation by sucrose of Narcissus bulbil formation in vitro
US4569914A (en) Process for the sterile micropropagation of plant material
CN101103702A (en) Excised reproduction method for mountain ash
Snir A micropropagation system for sour cherry
CN103548679B (en) Method for quercus nuttallii somatic embryogenesis
CN108849510B (en) Method for rooting clematis variety Avant-Garde tissue culture seedling in bottle
SK84493A3 (en) Method of multiplying in vitro of magnolia soulangiana soul.bod.
CN1110250C (en) Fast seedling growing mehtod for Chinese flowering crabapple zhumei
KR102475410B1 (en) Method for mass propagation of tissue culture-derived plants of Tilia mandshurica Rupr. &amp; Maxim.
CN110833028B (en) Somatic embryogenesis and plant regeneration method for cinnamomum zhejiangense
HU183433B (en) Process for producing multiplying material of digitalis lanata ehrh in tissue culture
TETSUMURA et al. Effective micropropagation of rabbiteye blueberries for leaf tea production
CN1586167A (en) Quick breeding technolgy for Renanthera imschootiana Rolfe
HISAJIMA et al. Propagation and Breeding of Sago Palm (Metroxylon sp.) Plant in Vitro 1. Embryo culture and induction of multiple shoots from sago embryos in vitro
CN1018328B (en) Isolated rapid reproduction method of wintersweet
Padhya Mass propagation of ferns through tissue culture
RU2066953C1 (en) Method for vegetative micropropagation of selected planting material of karelian birch
CN102792890A (en) Rapid propagation method of tissue culture for zelkova schneideriana hand.-Mazz
Vyas et al. Synchronous Plantlet Formation by Using Banana Extract and In vitro Hardening in Orchid, Dendrobium lituiflorum Lindl.
CN106472310A (en) A kind of Canada Red maple fast breeding technique and its application
Ditmar In vitro regeneration of Curly birch, Betuta pendula var. careãca
Dorion et al. Physiological state and clonal variability effects on low temperature storage of in vitro shoot cultures of elms (Ulmus sp.)