RU2821889C2 - Method of populating cranberry roots with oidiodendron maius barron micromycete - Google Patents

Method of populating cranberry roots with oidiodendron maius barron micromycete Download PDF

Info

Publication number
RU2821889C2
RU2821889C2 RU2022110579A RU2022110579A RU2821889C2 RU 2821889 C2 RU2821889 C2 RU 2821889C2 RU 2022110579 A RU2022110579 A RU 2022110579A RU 2022110579 A RU2022110579 A RU 2022110579A RU 2821889 C2 RU2821889 C2 RU 2821889C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cranberry
micromycete
maius
plants
roots
Prior art date
Application number
RU2022110579A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2022110579A (en
Inventor
Мария Николаевна Агеева
Ирина Валерьевна Стручкова
Вячеслав Сергеевич Михеев
Анна Александровна Брилкина
Екатерина Васильевна Березина
Дмитрий Алексеевич Рыбин
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "МИКОФИТ"
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "МИКОФИТ" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "МИКОФИТ"
Publication of RU2022110579A publication Critical patent/RU2022110579A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2821889C2 publication Critical patent/RU2821889C2/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention represents a method of populating cranberry plant roots in vitro with micromycete Oidiodendron maius, involving preparation of Anderson nutrient medium, or its modification, without or with plant growth regulators when heated, further, this medium is poured into culture vessels, closed and autoclaved, cranberry microplants are cultivated on the obtained medium until a root system is formed, pieces of a solid nutrient medium with mycelium of micromycete Oidiodendron maius are sterilized, after that, cranberry microplants are co-cultivated with micromycete Oidiodendron maius in vitro for 5 weeks. Cranberries and Oidiodendron maius are co-cultivated at 16-hour photoperiod and temperature of 15–30 °C. Produced cranberry plants after co-cultivation with Oidiodendron maius are planted in sterile or non-sterile soil for adaptation to ex vitro conditions.
EFFECT: invention makes it possible to populate cranberry roots with micromycete Oidiodendron maius at early stages of plant roots development propagated by clonal micropropagation method and to increase morphometric parameters of plants, that are indicators of their development acceleration.
1 cl, 5 dwg, 2 tbl, 2 ex

Description

Предлагаемое изобретение относится к биотехнологии, разведению растений из тканевых культур, в частности, получению растений клюквы, корневая система которых заселена симбиотическим микромицетом Oidiodendron maius Barron, и может быть использовано в сельском хозяйстве для получения растений клюквы для промышленного и частного ягодоводства, а также фундаментальных исследований.The present invention relates to biotechnology, breeding plants from tissue cultures, in particular, the production of cranberry plants, the root system of which is populated by the symbiotic micromycete Oidiodendron maius Barron, and can be used in agriculture to produce cranberry plants for industrial and private berry growing, as well as fundamental research .

Клюква относится к растениям рода Vaccinium (Oxycoccus) семейства Ericaceae (Вересковые), насчитывающему около 450 видов растений. Растения этого рода произрастают в дикой природе по всему миру. Существует множество названий растений рода Vaccinium, обладающих съедобными ягодами: голубика, клюква, черника, брусника, водяника, красника и др. (Matua M.A. Vaccinium Post-Entry Quarantine Testing Manual. - New Zeland: Ministry for Primary Industries, 2016. - 38 p.). Клюква крупноплодная и клюква болотная наряду с голубикой являются единственными массово выращиваемыми коммерческими культурами этого рода.Cranberry belongs to the genus Vaccinium (Oxycoccus) family Ericaceae (Heather), numbering about 450 plant species. Plants of this genus grow wild throughout the world. There are many names for plants of the genus Vaccinium, having edible berries: blueberries, cranberries, bilberries, lingonberries, crowberries, redberries, etc. (Matua M.A. Vaccinium Post-Entry Quarantine Testing Manual. - New Zealand: Ministry for Primary Industries, 2016. - 38 p.). Large-fruited cranberries and swamp cranberries, along with blueberries, are the only mass-grown commercial crops of this genus.

Клюква болотная (четырехлепестная) - V. oxycoccos L. (O. palustris Pers., O. quadripetalus Gilib.) - вечнозеленый полукустарник с тонкими стеблями, мелкими кожистыми листьями и темно-красными ягодами (Жизнь растений. В 6-ти т. / Гл. ред. Ал.А. Федоров. Т. 5. Ч. 2. Цветковые растения / Под ред. Тахтаджяна А.Л. М.: “Просвещение”, 1980. 576 с.). Широко распространена по болотам, во влажных лесах, на вырубках в Евразии и Северной Америке (Помология. В 5 т. Т. V. Земляника. Малина. Орехоплодные и редкие культуры / Под ред. Седова Е.Н., Грюнер Л.А. Орел: Изд-во ВНИИСПК, 2014. 592 с.).Swamp cranberry (four-petalled) - V. oxycoccos L. ( O. palustris Pers ., O. quadripetalus Gilib.) - evergreen subshrub with thin stems, small leathery leaves and dark red berries (Plant Life. In 6 volumes / Chief ed. Al.A. Fedorov. T. 5. Part 2. Flowering plants / Edited by A.L. Takhtadzhyan: “Education”, 1980. 576 pp. Widely distributed in swamps, in humid forests, in clearings in Eurasia and North America (Pomology. In 5 vols. T. V. Strawberries. Raspberries. Nut and rare crops / Edited by Sedov E.N., Gruner L.A. Orel: Publishing house VNIISPK, 2014. 592 p.).

Клюква крупноплодная - V. macrocarpon Ait. (O. macrocarpus (Ait.) Pers.) -вечнозеленый ветвистый кустарничек с горизонтальными побегами длиной до 120 см, вертикальными - до 15 см. Растет на бедных торфяных почвах Северной Америки (Eck P. The american cranberry. New Brunswick: Rutgers Univ. Press, 1990. 420p.). От клюквы болотной отличается более крупными размерами листьев, цветков и ягод, а также плоидностью: клюква крупноплодная - диплоид, клюква болотная - тетраплоид, в связи с чем гибридизация затруднена. Клюква крупноплодная в США и Канаде была введена в культуру в первой половине XIX в. (Polashock J.J., Vorsa N. Cranberry transformation and regeneration. In: Khachatourians G.G., McHughen A., Scorza R., Nip W.K., Hui Y.H. Transgenic plants and crops. NY: Marcel Dekker, 2002. P. 383-396).Large-fruited cranberry - V. macrocarpon Ait. ( O. macrocarpus (Ait.) Pers.) - evergreen branched shrub with horizontal shoots up to 120 cm long, vertical shoots up to 15 cm. Grows on poor peat soils of North America (Eck P. The american cranberry. New Brunswick: Rutgers Univ. Press, 1990. 420p.). It differs from swamp cranberry in the larger size of leaves, flowers and berries, as well as ploidy: large-fruited cranberry is diploid, swamp cranberry is tetraploid, and therefore hybridization is difficult. Large-fruited cranberry was introduced into cultivation in the USA and Canada in the first half of the 19th century. (Polashock JJ, Vorsa N. Cranberry transformation and regeneration. In: Khachatourians GG, McHughen A., Scorza R., Nip WK, Hui YH Transgenic plants and crops. NY: Marcel Dekker, 2002. P. 383-396).

Корни растений клюквы нуждаются в симбиозе с микоризообразующими микромицетами, необходимыми для полноценного развития этих растений (Смит С.Э., Рид Д.Дж. Микоризный симбиоз. Пе. с 3-го англ. издания Е.Ю. Ворониной. Москва: Товарищество научных изданий КМК. 2012. 776 с.). Симбиотические микромицеты участвуют в регуляции экспрессии генома растения-хозяина, влияя на рост и развитие (Vujanovic V., Vujanovic J. Mycovitality and mycoheterotrophy: where lies dormancy in terrestrial orchid and plants with minute seeds? // Symbiosis. 2007. V. 44, №1-3. P. 93-99.), поглощение питательных веществ (Smith S.E., Read D.J. Mycorrhizal symbiosis. Amsterdam, Boston, Heidelberg, L., NY, Oxford, Paris, San Diego, San Francisco, Singapore, Sydney, Tokio: Acad. Press, 2008. 804 p.), устойчивость к негативным воздействиям окружающей среды, в частности, к болезням (Singh L.P., Gill S.S., Tuteja N. Unraveling the role of fungal symbionts in plant abiotic stress tolerance // Plant Signal. Behav. 2011. V. 6, №2. P. 175-191), а также участвуют в структурировании почвы и взаимодействуют с бактериями-симбионтами (Nowak J., Pruski K. Priming tissue cultured propagules. In: Low cost options for tissue culture technology in developing countries. Vienna: IAEA, 2004. P. 69-81). Наличие симбиотических микроорганизмов в корнях растений клюквы является необходимым как для диких, так и для культурных форм.The roots of cranberry plants need symbiosis with mycorrhizal micromycetes necessary for the full development of these plants (Smith S.E., Reed D.J. Mycorrhizal symbiosis. Pe. from the 3rd English edition by E.Yu. Voronina. Moscow: Partnership of Scientific KMK publications. 2012. 776 pp.). Symbiotic micromycetes are involved in the regulation of the expression of the host plant genome, affecting growth and development (Vujanovic V., Vujanovic J. Mycovitality and mycoheterotrophy: where lies dormancy in terrestrial orchid and plants with minute seeds? // Symbiosis. 2007. V. 44, No. 1-3. P. 93-99.), nutrient absorption (Smith S.E., Read D.J. Mycorrhizal symbiosis. Amsterdam, Boston, Heidelberg, L., NY, Oxford, Paris, San Diego, San Francisco, Singapore, Sydney, Tokio: Acad. Press, 2008. 804 p.), resistance to negative environmental influences, in particular to diseases (Singh L.P., Gill S.S., Tuteja N. Unraveling the role of fungal symbionts in plant abiotic stress tolerance // Plant Signal . Behav. 2011. V. 6, No. 2. 175-191), and also participate in soil structuring and interact with symbiont bacteria (Nowak J., Pruski K. Priming tissue cultured propagules. In: Low cost options for tissue culture technology in developing countries. Vienna: IAEA, 2004. P. 69-81). The presence of symbiotic microorganisms in the roots of cranberry plants is necessary for both wild and cultivated forms.

Для получения оздоровленного посадочного материала культурных растений широко используется биотехнологический метод клонального микроразмножения в условиях in vitro (Размножение плодовых растений в культуре in vitro / Н.В. Кухарчик [и др.]; под общ. ред. Н.В. Кухарчик. - Минск: Беларуская наука, 2016. - 208 с.). Все существующие на настоящий момент протоколы ввода растений в культуру in vitro предполагают их обработку стерилизующими агентами для удаления микроорганизмов, в т.ч. симбиотических, и использование в качестве исходного материала преимущественно надземных частей растений, при этом необходимые симбиотические микроорганизмы обитают в корневой системе. Соответственно, полученные микрорастения, лишенные симбионтов, предположительно, будут труднее адаптироваться к условиям ex vitro и полевым условиям. Подселение симбиотических микромицетов на последних стадиях клонального микроразмножения позволяет растениям формировать микоризу на ранних стадиях своего развития.To obtain healthy planting material of cultivated plants, the biotechnological method of clonal micropropagation in vitro is widely used (Reproduction of fruit plants in culture in vitro / N.V. Kuharchik [et al.]; edited by N.V. Kuharchik. - Minsk : Belarusian Science, 2016. - 208 p.). All currently existing protocols for introducing plants into in vitro culture involve their treatment with sterilizing agents to remove microorganisms, incl. symbiotic, and the use of predominantly aerial parts of plants as starting material, while the necessary symbiotic microorganisms live in the root system. Accordingly, the resulting microplants lacking symbionts would presumably be more difficult to adapt to ex vitro and field conditions. The introduction of symbiotic micromycetes at the last stages of clonal micropropagation allows plants to form mycorrhizae in the early stages of their development.

O. maius - это широко распространенный гифомицет, который выделяется из различных субстратов, хотя большинство изолятов выделено из корней вересковых растений (Rice A.V., Currah R.S. New Perspectives on the Niche and Holomorph of the Myxotrichoid Hyphomycete, Oidiodendron Maius. Mycological Research. 2002. V. 106, P. 1463-1467). O. maius является обычным компонентом прикорневой зоны и корней вересковых растений (Sigler L., Gibas C., Fe C. Utility of a cultural method for identification of the ericoid mycobiont Oidiodendron maius confirmed by ITS sequence analysis // Studies in Mycology. 2005. V. 53. P. 63-74). O. maius is a widespread hyphomycete that is isolated from a variety of substrates, although most isolates are isolated from the roots of ericaceous plants (Rice AV, Currah RS New Perspectives on the Niche and Holomorph of the Myxotrichoid Hyphomycete, Oidiodendron Maius. Mycological Research. 2002. V . 106, pp. 1463-1467). O. maius is a common component of the basal zone and roots of heather plants (Sigler L., Gibas C., Fe C. Utility of a cultural method for identification of the ericoid mycobiont Oidiodendron maius confirmed by ITS sequence analysis // Studies in Mycology. 2005. V. 53. P. 63-74).

Формирование симбиотических отношений с O. maius у растений сем. Вересковых, в том числе рода Vaccinium, облегчает адаптацию к окружающей среде, улучшает минеральное питание и повышает устойчивость к тяжелым металлам у растений-хозяев (Rice A.V., Currah R.S. Oidiodendron: A survey of the named species and related anamorphs of Myxotrichum // STUDIES IN MYCOLOGY 53. P. 83-120. 2005; Rice A.V., Currah R.S. Oidiodendron maius: saprobe in sphagnum peat, mutualist in ericaceous roots? //in Microbial Roots Endophytes, eds. B.J.E. Shulz, C.J.C. Boyle, T.N. Sieber (Berlin:Springer-Verlag), 2006. 227-246; Wei X, Chen J, Zhang C., Pan D. A New Oidiodendron maius Strain Isolated from Rhododendron fortunei and its Effects on Nitrogen Uptake and Plant Growth. Front. Microbiol. 2016. 7:1327. doi: 10.3389/fmicb.2016.01327; Daghino S., Martino E., Perotto S. Model system to unravel the molecular mechanisms of heavy metal tolerance in the ericoid mycorrhizal symbiosis // Mycorrhiza. 2016. 26. P. 263-274. doi:10.1007/s00572-015- 0675-y).Formation of symbiotic relationships with O. maius in plants of the family. Heathers, including the genus Vaccinium, facilitates adaptation to the environment, improves mineral nutrition and increases resistance to heavy metals in host plants (Rice AV, Currah RS Oidiodendron: A survey of the named species and related anamorphs of Myxotrichum // STUDIES IN MYCOLOGY 53. P. 2005; Rice AV, Currah RS Oidiodendron maius : saprobe in sphagnum peat, mutualist in ericaceous roots? // in Microbial Roots Endophytes, eds. -Verlag), 2006. 227-246; Wei X, Chen J, Zhang C., Pan D. A New Oidiodendron maius Strain Isolated from Rhododendron fortunei and its Effects on Nitrogen Uptake and Plant Growth Front. 2016. 7: 1327. doi: 10.3389/fmicb.2016.01327; Daghino S., Martino E., Perotto S. Model system to unravel the molecular mechanisms of heavy metal tolerance in the ericoid mycorrhizal symbiosis // Mycorrhiza 2016. 26. P. 263-274. doi:10.1007/s00572-015-0675-y).

Известны способы применения симбиотических микроорганизмов для повышения биомассы и устойчивости растений зерновых культур с применением штаммов Streptomyces sp. для обработки семян, способ промышленного производства микоризованных саженцев рододендрона гор Чанбайшань, инокулянт и способ подготовки инокулянта и дальнейшей биотизации голубики для производства экологически чистых ягод.There are known methods of using symbiotic microorganisms to increase the biomass and resistance of grain crop plants using strains of Streptomyces sp. for seed treatment, a method for the industrial production of mycorrhized rhododendron seedlings of the Changbai Mountains, an inoculant and a method for preparing the inoculant and further biotization of blueberries for the production of environmentally friendly berries.

Применение штамма Streptomyces sp., депонированного в IDАС под номером IDАСUse of the Streptomyces sp. strain deposited in IDAC under IDAC number

081111-06, или культуры Streptomyces sp., где вышеуказанный штамм и культура содержат 16S рДНК с последовательностью, представленной в SEQ ID NO:6, для повышения биомассы корневых волосков, увеличения длины листа, повышения урожайности, повышения устойчивости зерновой культуры, где зерновая культура представляет собой пшеницу (RU 2723946 C2, кл. C12N 1/20; A01H 17/00; A01H 3/00; A01N 25/00; A01N 63/00; A01N 63/30, опубл. 18.06.2020 г.), где применение включает обработку семени злака указанным штаммом или указанной культурой и культивирование из семени злака растения первого поколения. Недостатком такого способа является обработка растений на стадии семян. Ягодные и многие декоративные растения преимущественно размножают вегетативными способами для сохранения сортовых признаков, не используя стадию семян, соответственно, на этой стадии их невозможно подвергнуть обработке.081111-06, or cultures of Streptomyces sp., where the above strain and culture contain 16S rDNA with the sequence presented in SEQ ID NO: 6, for increasing root hair biomass, increasing leaf length, increasing yield, increasing the stability of the cereal crop, where the cereal crop is wheat (RU 2723946 C2, class C12N 1/20; A01H 17/00; A01H 3/00; A01N 25/00; A01N 63/00; A01N 63/30, published 06/18/2020), where the application includes treating a cereal seed with the specified strain or specified crop and cultivating a first generation plant from the cereal seed. The disadvantage of this method is the treatment of plants at the seed stage. Berry and many ornamental plants are predominantly propagated by vegetative methods to preserve varietal characteristics, without using the seed stage; accordingly, at this stage they cannot be processed.

Способ промышленного производства микоризованных саженцев рододендронов гор Чанбайшань (CN 103039366B, A10H 4/00, опубл. 26.02.2014 г.) включает использование ветвей родододендронов гор Чайбашань для получения новых почек для микроразмножения, питательную среду для культивирования микрорастений рододендрона, микоризацию микрорастений рододендрона путем их погружения в жидкость, содержащую симбиотические микромицеты, и дальнейшее культивирование растений на грунте, пролитом симбиотическими микромицетами. Недостатком этого способа является отсутствие информации об этапе формирования корневой системы, на котором происходит заселение симбиотическими микромицетами.A method for the industrial production of mycorrhized seedlings of rhododendrons from the Changbai Mountains (CN 103039366B, A10H 4/00, published on February 26, 2014) involves the use of branches of rhododendrons from the Chaibai Mountains to obtain new buds for micropropagation, a nutrient medium for the cultivation of rhododendron microplants, mycorrhization of rhododendron microplants by immersing them in a liquid containing symbiotic micromycetes, and further cultivation of plants on soil spilled with symbiotic micromycetes. The disadvantage of this method is the lack of information about the stage of formation of the root system, at which colonization by symbiotic micromycetes occurs.

Инокулянт и способ подготовки инокулянта и дальнейшей биотизации голубики (PL 238335B1, кл. A01N63/30 опубл. 09.08.2021 г.) включает способ приготовления инокулянта, содержащего только симбионт Xylaria sp. № ККП 2073р или симбионт Xylaria sp. № ККП 2073р совместно с другими микромицетами, формирующими эрикоидную микоризу, а также способ биотизации голубики in vitro или путем добавления инокулянта в субстрат. Недостатком такого способа является отсутствие более подробной информации о микоризации in vitro и использование некоторых вариантов инокуляции на более поздних этапах формирования корней, а также трудоемкость процесса, при использовании нескольких штаммов микромицета.The inoculant and the method for preparing the inoculant and further biotization of blueberries (PL 238335B1, class A01N63/30 publ. 08/09/2021) includes a method for preparing an inoculant containing only the symbiont Xylaria sp. No. KKP 2073r or symbiont Xylaria sp. No. KKP 2073r together with other micromycetes that form ericoid mycorrhiza, as well as a method for biotizing blueberries in vitro or by adding an inoculant to the substrate. The disadvantage of this method is the lack of more detailed information on mycorrhization in vitro and the use of some inoculation options at later stages of root formation, as well as the laboriousness of the process when using several micromycete strains.

Общим недостатком известных способов является то, что они нацелены на заселение симбиотическими микромицетами не клюквы, а иных видов растений.A common disadvantage of the known methods is that they are aimed at colonizing other plant species rather than cranberries with symbiotic micromycetes.

Наиболее близким по технической сущности и достигаемому техническому результату является способ заселения корневой системы растений черники (Vaccinium myrtillus (Casarrubia S., Daghino S., Kohler A., Morin E., Khouja H.-R., Daguerre Y., Veneault-Fourrey C., Martin F.M., Perotto S., Elena M. The Hydrophobin-Like OmSSP1 May Be an Effector in the Ericoid Mycorrhizal Symbiosis // Frontiers in Plant Science. 2018. V. 9. Article 546. Р. 1-14). Способ включает внесение суспензии конидий O. maius на целлофановые мембраны, размещенные на поверхности модифицированной питательной среды Мелина-Норкранса, разлитой в чашки Петри, и помещение проростков черники, выращенных из семян, поверх суспензии конидий O. maius. Чашки Петри с проростками черники и суспензией O. maius заворачивают и помещают в климатическую камеру с фотопериодом 16/8 часов (день/ночь), интенсивностью освещения 170 μmol/m2s, температурой 23°C днем и 21°C ночью. Через 45 дней степень микоризации корней черники диким типом O. maius составляет 37% и происходит увеличение сырой массы побега на 25% и корней на 11%. Недостатком этого способа является небольшая высота чашек Петри для подселения симбионтов к корням клюквы, а также использование целлофановых мембран и суспензии конидий, что делает данный способ трудоемким и дорогостоящим. Кроме того, данный способ не адаптирован для микроклонально размноженных растений клюквы.The closest in technical essence and achieved technical result is the method of colonizing the root system of blueberry plants ( Vaccinium myrtillus (Casarrubia S., Daghino S., Kohler A., Morin E., Khouja H.-R., Daguerre Y., Veneault-Fourrey C., Martin F.M., Perotto S., Elena M. The Hydrophobin-Like OmSSP1 May Be an Effector in the Ericoid Mycorrhizal Symbiosis // Frontiers in Plant Science 2018. V. 9. Article 546. R. 1-14). The method involves adding a suspension of O. maius conidia to cellophane membranes placed on the surface of a modified Melin-Nocrans nutrient medium poured into Petri dishes, and placing blueberry seedlings grown from seeds on top of the suspension of O. maius conidia. Petri dishes with blueberry seedlings and the suspension. O. maius is wrapped and placed in a climate chamber with a photoperiod of 16/8 hours (day/night), a light intensity of 170 μmol/m 2 s, a temperature of 23°C during the day and 21°C at night. After 45 days, the degree of mycorrhization of blueberry roots by the wild type. O. maius is 37% and there is an increase in the fresh weight of shoots by 25% and roots by 11%. The disadvantage of this method is the small height of Petri dishes for introducing symbionts to cranberry roots, as well as the use of cellophane membranes and a suspension of conidia, which makes this method labor-intensive and expensive. In addition, this method is not adapted for microclonally propagated cranberry plants.

Следовательно, будет полезен способ, позволяющий снизить трудоемкость процесса подселения симбиотического микромицета O. maius к вересковым растениям и подходящий для заселения корневой системы растений клюквы, размноженных микроклонально.Therefore, a method would be useful to reduce the labor intensity of the process of introducing a symbiotic micromyceteO. maius to heather plants and suitable for colonizing the root system of cranberry plants propagated microclonally.

В задачу изобретения положен упрощенный способ заселения корней растений клюквы микромицетом O. maius.The purpose of the invention is a simplified method for colonizing the roots of cranberry plants with the micromycete O. maius .

Техническим результатом от использования предлагаемого изобретения является заселение корней клюквы микромицетом O. maius на ранних стадиях развития корней растений, размноженных методом клонального микроразмножения и увеличение ряда морфометрических показателей растений - индикаторов ускорения их развития.The technical result from the use of the proposed invention is the colonization of cranberry roots with the micromycete O. maius at the early stages of development of plant roots propagated by the method of clonal micropropagation and an increase in a number of morphometric parameters of plants - indicators of accelerating their development.

Поставленная задача достигается тем, что способ заселения корней растений клюквы микромицетом O. maius включает приготовление питательной среды Андерсона, или ее модификации, без или с регуляторами роста растений при нагревании, в дальнейшем приготовленную питательную среду разливают по культуральным сосудам, закрывают и автоклавируют, на полученной среде культивируют микрорастения клюквы до формирования корневой системы, стерильно вносят кусочки твердой питательной среды с мицелием микромицета O. maius, после этого микрорастения клюквы сокультивируют с микромицетом O. maius в течение 5 недель. Полученные растения клюквы после сокультивирования с O. maius высаживают в стерильный или нестерильный грунт для адаптации к условиям ex vitro. The goal is achieved by the fact that the method of colonizing the roots of cranberry plants micromycete O. maiusincludes the preparation of Anderson's nutrient medium, or its modification, without or with plant growth regulators when heated, then the prepared nutrient medium is poured into culture vessels, closed and autoclaved, cranberry microplants are cultivated on the resulting medium until the root system is formed, pieces of solid nutrient medium are added sterilely with micromycete mycelium O. maius, after this the cranberry microplants are co-cultivated with the micromycete O. maiuswithin 5 weeks. The resulting cranberry plants after co-cultivation with O. maius planted in sterile or non-sterile soil to adapt to conditions ex vitro.

Краткое описание чертежей:Brief description of drawings:

На фиг. 1 представлена диаграмма, отражающая увеличение длины побега растений клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, заселенной микромицетом O. maius, по сравнению с растениями клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, не заселенной симбиотическими микромицетами, на 22 неделе культивирования растений ex vitro. * - различия статистически значимы при р<0,05.In fig. Figure 1 shows a diagram showing the increase in shoot length of cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system populated by the micromycete O. maius , compared to cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system not populated by symbiotic micromycetes, at 22 weeks of plant cultivation ex vitro . * - differences are statistically significant at p<0.05.

На фиг. 2 представлена диаграмма, отражающая увеличение сырой массы побега растений клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, заселенной микромицетом O. maius, по сравнению с растениями клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, не заселенной симбиотическими микромицетами, на 22 неделе культивирования растений ex vitro. * - различия статистически значимы при р<0,05.In fig. Figure 2 shows a diagram showing the increase in the fresh weight of shoots of cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system populated by the micromycete O. maius , compared to cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system not populated by symbiotic micromycetes, at 22 weeks of plant cultivation ex vitro . * - differences are statistically significant at p<0.05.

На фиг. 3 представлена диаграмма, отражающая увеличение сухой массы побега растений клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, заселенной микромицетом O. maius, по сравнению с растениями клюквы сорта «Бен Лир» с корневой системой, не заселенной симбиотическими микромицетами, на 22 неделе культивирования растений ex vitro. * - различия статистически значимы при р<0,05.In fig. Figure 3 shows a diagram showing the increase in the dry weight of shoots of cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system populated by the micromycete O. maius , compared to cranberry plants of the Ben Lear variety with a root system not populated by symbiotic micromycetes, at 22 weeks of plant cultivation ex vitro . * - differences are statistically significant at p<0.05.

На фиг. 4 представлена диаграмма, отражающая увеличение длины корней у растений клюквы сорта «Ховес» с корневой системой, заселенной микромицетом O. maius, по сравнению с растениями клюквы сорта «Ховес» с корневой системой, не заселенной симбиотическими микромицетами, на 22 неделе культивирования растений ex vitro. * - различия статистически значимы при р<0,05.In fig. Figure 4 shows a diagram showing the increase in root length in cranberry plants of the “Hoves” variety with a root system populated by the micromycete O. maius , compared to cranberry plants of the “Hoves” variety with a root system not populated by symbiotic micromycetes, at 22 weeks of ex vitro plant cultivation . * - differences are statistically significant at p<0.05.

На фиг. 5 представлена диаграмма, отражающая увеличение количества боковых корней у растений клюквы сорта «Ховес» с корневой системой, заселенной микромицетом O. maius, по сравнению с растениями клюквы сорта «Ховес» с корневой системой, не заселенной симбиотическими микромицетами, на 22 неделе культивирования растений ex vitro. * - различия статистически значимы при р<0,05.In fig. Figure 5 shows a diagram showing the increase in the number of lateral roots in cranberry plants of the “Hoves” variety with a root system populated by the micromycete O. maius , compared to cranberry plants of the “Hoves” variety with a root system not populated by symbiotic micromycetes, at 22 weeks of plant cultivation ex vitro . * - differences are statistically significant at p<0.05.

Предлагаемый способ осуществляют следующим образом.The proposed method is carried out as follows.

Сначала готовят питательную среду Андерсона (Anderson, W.S. Tissue culture propagation of red and black raspberry, Rubus idaeus and Rubus occidentalis/ W.S. Anderson / Acta Horticulturae. - 1980. - V. 112. - P. 13-20) или ее модификации (табл. 1), без или с регуляторами роста растений при нагревании.First, prepare Anderson's nutrient medium (Anderson, WS Tissue culture propagation of red and black raspberry, Rubus idaeus and Rubus occidentalis / WS Anderson / Acta Horticulturae. - 1980. - V. 112. - P. 13-20) or its modifications (Table . 1), without or with plant growth regulators when heated.

Таблица 1Table 1 Состав питательной среды Андерсона для культивирования клюквыComposition of Anderson's nutrient medium for cranberry cultivation КомпонентыComponents Содержание, мг/лContent, mg/l СахарозаSucrose 3000030000 АгарAgar 80008000 NH4NO3 NH4NO3 200200 KNO3 KNO 3 240240 KH2PO4 KH 2 PO 4 165165 CaCl2∙2 H2O CaCl 2 ∙2 H 2 O 166166 MgSO4∙7 H2O MgSO 4 ∙7 H 2 O 90,3590.35 MnSO4∙4 H2O MnSO 4 ∙4 H 2 O 8,458.45 H3BO3 H3BO3 3,13.1 CoCl2∙6 H2O CoCl 2 ∙6 H 2 O 0,0250.025 CuSO4∙5 H2O CuSO 4 ∙5 H 2 O 0,01250.0125 Na2ЭДТА Na 2 EDTA 37,2537.25 FeSO4∙7 H2O FeSO 4 ∙7 H 2 O 27,8527.85 Na2MoO4∙2 H2O Na 2 MoO 4 ∙2 H 2 O 0,1250.125 KJ KJ 0,150.15 ZnSO4∙7 H2O ZnSO 4 ∙7 H 2 O 4,34.3 АденинсульфатAdenine sulfate 8080 МезоинозитMesoinositol 100100 Тиамин∙HCl (B1)Thiamine∙HCl (B 1 ) 0,40.4

Доводят рН питательной среды до 4.9-5.1. Кислое значение рН предпочтительнее для растений семейства Вересковые (в т.ч. клюквы), однако при изменении рН ниже указанного диапазона питательная среда плохо застывает и становится непригодна для совместного культивирования клюквы и O. maius. Приготовленную питательную среду разливают по культуральным сосудам, закрывают фольгой и автоклавируют. В стерильных условиях микрочеренки или микрорастения клюквы помещают в культуральные сосуды с питательной средой Андерсона, культуральные сосуды стерильно закрывают и хранят на стеллажах с подсветкой до появления корней. При появлении корней в культуральные сосуды стерильно вносят кусочки твердой питательной среды с мицелием микромицета O. maius, после этого микрорастения клюквы сокультивируют с микромицетом O. maius в течение 5 недель. Сокультивирование клюквы и O. maius проводят при фотопериоде 16/8 часов (свет/темнота) и температуре 15-30°C.Adjust the pH of the nutrient medium to 4.9-5.1. An acidic pH value is preferable for plants of the Ericaceae family (including cranberries), however, when the pH changes below the specified range, the nutrient medium hardens poorly and becomes unsuitable for co-cultivation of cranberries and O. maius . The prepared nutrient medium is poured into culture vessels, covered with foil and autoclaved. Under sterile conditions, cranberry microcuttings or microplants are placed in culture vessels with Anderson's nutrient medium, the culture vessels are sterilely closed and stored on illuminated racks until roots appear. When roots appear, pieces of solid nutrient medium with the mycelium of the micromycete O. maius are sterilely added to the culture vessels, after which the cranberry microplants are co-cultivated with the micromycete O. maius for 5 weeks . Co-cultivation of cranberries and O. maius is carried out at a photoperiod of 16/8 hours (light/dark) and a temperature of 15-30°C.

Ниже представлены примеры конкретного осуществления изобретения.Below are examples of specific implementations of the invention.

Пример 1.Example 1.

Питательную среду Андерсона готовят при нагревании. При этом витамины и аденин добавляют в последнюю очередь. Затем доводят рН питательной среды до 4.9-5.1. Питательную среду разливают по культуральным сосудам, закрывают фольгой и автоклавируют 30 минут при 118°C в стерилизаторе паровом ВК-75-01 (ТЗМОИ, Россия). В стерильных условиях микрорастения клюквы крупноплодной сорта «Бен Лир» длиной 2 см помещают в культуральные сосуды с питательной средой Андерсона, культуральные сосуды стерильно закрывают и хранят на стеллажах с подсветкой до появления корней в течение 2-3 недель. Готовят картофельно-декстрозный агар: 200 г очищенного и нарезанного картофеля кипятят в 1 л воды в течение 1 часа, остужают, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 л, добавляют 20 г агара и 20 г глюкозы, доводят pH до 6.5-7.0, автоклавируют при 121°C 15 мин, сразу после автоклавирования разливают в чашки Петри. Микромицет O. maius штамма ВКМ F-3860 высевают на приготовленный картофельно-декстрозный агар в чашках Петри и культивируют при естественном освещении и температуре 22°C. При появлении корней у микрорастений клюквы в культуральные сосуды к ним стерильно вносят кусочки твердой питательной среды картофельно-декстрозного агара размером 2×2×4 мм с мицелием микромицета O. maius штамма ВКМ F-3860, после этого микрорастения клюквы сокультивируют с микромицетом в течение 5 недель. Сокультивирование клюквы и O. maius проводят при фотопериоде 16/8 часов (свет/темнота), освещении 3000 люкс и температуре 23°C.Anderson's culture medium is prepared by heating. In this case, vitamins and adenine are added last. Then the pH of the nutrient medium is adjusted to 4.9-5.1. The nutrient medium is poured into culture vessels, covered with foil and autoclaved for 30 minutes at 118°C in a steam sterilizer VK-75-01 (TZMOI, Russia). Under sterile conditions, large-fruited cranberry microplants of the "Ben Lear" variety, 2 cm long, are placed in culture vessels with Anderson's nutrient medium, the culture vessels are sterilely closed and stored on illuminated shelves until roots appear within 2-3 weeks. Prepare potato dextrose agar: boil 200 g of peeled and chopped potatoes in 1 liter of water for 1 hour, cool, filter through a cotton-gauze filter, bring the volume to 1 liter, add 20 g of agar and 20 g of glucose, adjust the pH to 6.5 -7.0, autoclave at 121°C for 15 minutes, immediately after autoclaving, pour into Petri dishes. The micromycete O. maius strain VKM F-3860 is sown on prepared potato dextrose agar in Petri dishes and cultivated under natural light and a temperature of 22°C. When roots appear in cranberry microplants, pieces of a solid nutrient medium of potato dextrose agar measuring 2x2x4 mm with the mycelium of the micromycete O. maius strain VKM F-3860 are sterilely added to the culture vessels, after which the cranberry microplants are co-cultivated with the micromycete for 5 weeks Co-cultivation of cranberry and O. maius was carried out under a photoperiod of 16/8 hours (light/dark), illumination of 3000 lux and a temperature of 23°C.

Пример 2.Example 2.

Питательную среду Андерсона готовят при нагревании. При этом витамины, и аденин добавляют в последнюю очередь. Затем доводят рН питательной среды до 4.9-5.1. Питательную среду разливают по культуральным сосудам, закрывают фольгой и автоклавируют 30 минут при 120°C в стерилизаторе паровом ВК-75-01 (ТЗМОИ, Россия). В стерильных условиях микрочеренки клюквы крупноплодной сорта «Ховес» с 2 листочками помещают в культуральные сосуды с питательной средой Андерсона, культуральные сосуды стерильно закрывают и хранят на стеллажах с подсветкой до появления корней в течение 3-5 недель. Готовят картофельно-декстрозный агар: 200 г очищенного и нарезанного картофеля кипятят в 1 л воды в течение 1 часа, остужают, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 л, добавляют 20 г агара и 20 г глюкозы, доводят pH до 6.5-7.0, автоклавируют при 121°C 15 мин, сразу после автоклавирования разливают в пробирки. Микромицет O. maius штамма ВКМ F-3860 высевают на приготовленный скошенный картофельно-декстрозный агар в пробирках и культивируют при естественном освещении и температуре 22°C. На стадии спороношения O. maius штамма ВКМ F-3860 на скошенном агаре в пробирку добавляют 5 мл стерильной воды и взбалтывают. При появлении корней у растений клюквы крупноплодной сорта «Ховес» на поверхность среды в культуральные сосуды стерильно вносят полученную суспензию спор O. maius штамма ВКМ F-3860, после этого микрорастения клюквы сокультивируют с микромицетом в течение 5 недель. Сокультивирование клюквы и O. maius проводят при фотопериоде 16/8 часов (свет/темнота), освещении 3000 люкс и температуре 25°C.Anderson's culture medium is prepared by heating. In this case, vitamins and adenine are added last. Then the pH of the nutrient medium is adjusted to 4.9-5.1. The nutrient medium is poured into culture vessels, covered with foil and autoclaved for 30 minutes at 120°C in a steam sterilizer VK-75-01 (TZMOI, Russia). Under sterile conditions, microcuttings of the large-fruited cranberry variety “Hoves” with 2 leaves are placed in culture vessels with Anderson’s nutrient medium, the culture vessels are sterilely closed and stored on illuminated shelves until roots appear within 3-5 weeks. Prepare potato dextrose agar: boil 200 g of peeled and chopped potatoes in 1 liter of water for 1 hour, cool, filter through a cotton-gauze filter, bring the volume to 1 liter, add 20 g of agar and 20 g of glucose, adjust the pH to 6.5 -7.0, autoclave at 121°C for 15 minutes, immediately after autoclaving, pour into test tubes. Micromycete O. maius strain VKM F-3860 sown on prepared potato dextrose agar slants in test tubes and cultured under natural light and a temperature of 22°C. At the sporulation stage O. maius strain VKM F-3860 on slanted agar, add 5 ml of sterile water to the test tube and shake. When roots appear in large-fruited cranberry plants of the Hoves variety, the resulting suspension of spores is sterilely added to the surface of the medium into culture vessels O. maiusstrain VKM F-3860, after which cranberry microplants are co-cultivated with the micromycete for 5 weeks. Co-cultivation of cranberries and O. maius carried out under a photoperiod of 16/8 hours (light/dark), illumination of 3000 lux and a temperature of 25°C.

Полученные растения клюквы характеризуются наличием микоризы, образованной O. maius. В таблице 2 приведены показатели степени микоризной колонизации растений клюквы крупноплодной сорта «Бен Лир» (согласно Примеру 1) и «Ховес» (согласно Примеру 2). Подготовку препаратов для оценки степени микоризной колонизации осуществляют путем выбора случайных растений с подселенным микромицетом O. maius. Корни отмывают от питательной среды, после чего помещают в 10% раствор КОН на 30 минут при +90°С. Затем корни отмывают от КОН, погружая их в дистиллированную воду на 2 часа. Затем корни окрашивают в лактоглицериновом растворе (13 мл 85% молочной кислоты, 9,5 мл 99% глицерина, 9,3 мл деионизированной воды), содержащем 0,05% трипанового синего, оставляя их на ночь. Вынув из красителя, корни промывают лактоглицерином и оставляют в нем до определения колонизации (Scagel C.F., Wagner A., Winiarski P. Frequency and intensity of root colonization by ericoid mycorrhizal fungi in nursery production of blueberry plants //small fruits review. - 2005. - V. 4. - №. 4. - Р. 95-112). Оценку заселения корневой системы проводят, оценивая 3 параметра: частота микоризы в корневой системе (F%), интенсивность микоризной колонизации корневой системы (M%), интенсивность микоризной колонизации корневых фрагментов (m%). Для этого используют 15 фрагментов корней длиной 1 см, расположенных на одном стекле. С помощью микроскопа каждый фрагмент оценивают по специализированной шкале классов (Trouvelot A., Kough J.L., Gianinazzi-Pearson V. Estimation of vesicular arbuscular mycorrhizal infection levels. Research for methods having a functional significance // Physiological and genetical aspects of mycorrhizae= Aspects physiologiques et genetiques des mycorhizes: proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae, Dijon, 1-5 July 1985. - Paris: Institut national de le recherche agronomique, 1986). Эти классы дают возможность быстрой оценки уровня микоризной колонизации каждого фрагмента. Частота микоризы в корневой системе (F%), интенсивность микоризной колонизации корневой системы (M%), интенсивность микоризной колонизации корневых фрагментов (m%) рассчитывают по формулам:The resulting cranberry plants are characterized by the presence of mycorrhiza formed by O. maius. Table 2 shows the degree of mycorrhizal colonization of large-fruited cranberry plants "Ben Lear" (according to Example 1) and "Hoves" (according to Example 2). Preparation of preparations for assessing the degree of mycorrhizal colonization is carried out by selecting random plants with the micromycete O. maius. The roots are washed from the nutrient medium, after which they are placed in a 10% KOH solution for 30 minutes at +90°C. Then the roots are washed from KOH by immersing them in distilled water for 2 hours. The roots are then stained in a lactoglycerin solution (13 ml 85% lactic acid, 9.5 ml 99% glycerol, 9.3 ml deionized water) containing 0.05% trypan blue, leaving them overnight. Having been removed from the dye, the roots are washed with lactoglycerin and left in it until colonization is determined (Scagel CF, Wagner A., Winiarski P. Frequency and intensity of root colonization by ericoid mycorrhizal fungi in nursery production of blueberry plants //small fruits review. - 2005. - V. 4. - No. 4. - R. 95-112). The assessment of colonization of the root system is carried out by assessing 3 parameters: the frequency of mycorrhiza in the root system (F%), the intensity of mycorrhizal colonization of the root system (M%), the intensity of mycorrhizal colonization of root fragments (m%). To do this, use 15 fragments of roots 1 cm long, located on one glass. Using a microscope, each fragment is assessed according to a specialized class scale (Trouvelot A., Kough JL, Gianinazzi-Pearson V. Estimation of vesicular arbuscular mycorrhizal infection levels. Research for methods having a functional significance // Physiological and genetic aspects of mycorrhizae= Aspects physiologiques et genetiques des mycorhizes: proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae, Dijon, 1-5 July 1985. - Paris: Institut national de le recherche agronomique, 1986). These classes make it possible to quickly assess the level of mycorrhizal colonization of each fragment. The frequency of mycorrhiza in the root system (F%), the intensity of mycorrhizal colonization of the root system (M%), the intensity of mycorrhizal colonization of root fragments (m%) are calculated using the formulas:

F% = (число фрагментов с микоризой / общее число фрагментов) * 100,F% = (number of fragments with mycorrhiza / total number of fragments) * 100,

М% = (95n5 + 70n4 + 30n3 + 5n2 + n1) / общее число фрагментов, где n5 = количество фрагментов с баллом 5; n4 = количество фрагментов с баллом 4 и т.д.),M% = (95n5 + 70n4 + 30n3 + 5n2 + n1) / total number of fragments, where n5 = number of fragments with a score of 5; n4 = number of fragments with a score of 4, etc.),

m% = М * (общее число фрагментов) / число фрагментов с микоризой (Trouvelot A., Kough J. L., Gianinazzi-Pearson V. Estimation of vesicular arbuscular mycorrhizal infection levels. Research for methods having a functional significance // Physiological and genetical aspects of mycorrhizae= Aspects physiologiques et genetiques des mycorhizes: proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae, Dijon, 1-5 July 1985. - Paris: Institut national de le recherche agronomique, 1986).m% = M * (total number of fragments) / number of fragments with mycorrhiza (Trouvelot A., Kough J. L., Gianinazzi-Pearson V. Estimation of vesicular arbuscular mycorrhizal infection levels. Research for methods having a functional significance // Physiological and genetic aspects of mycorrhizae = Aspects physiologiques et genetiques des mycorhizes: proceedings of the 1st European Symposium on Mycorrhizae, Dijon, 1-5 July 1985. - Paris: Institut national de le recherche agronomique, 1986).

Таблица 2table 2 Показатели степени микоризной колонизации растений клюквы крупноплодной сортов «Бен Лир» и «Ховес»Indicators of the degree of mycorrhizal colonization of large-fruited cranberry plants varieties “Ben Lear” and “Hoves” Сорт клюквыCranberry variety Частота микоризы в корневой системе (F%)Frequency of mycorrhiza in the root system (F%) Интенсивность микоризной колонизации корневой системы (M%)Intensity of mycorrhizal colonization of the root system (M%) Интенсивность микоризной колонизации корневых фрагментов (m%)Intensity of mycorrhizal colonization of root fragments (m%) «Бен Лир»"Ben Lear" 2020 13,713.7 68,768.7 «Ховес»"Hoves" 2222 14,314.3 64,864.8

Для определения влияния данного способа заселения корней клюквы микромицетом O.maius на развитие растений растения клюквы с заселенной корневой системой высаживали в нестерильный грунт для адаптации к условиям ex vitro и через 22 недели культивирования ex vitro измеряли морфометрические показатели: длину корней, количество боковых корней, длину побегов, количество веток растений, сырую массу побега, сырую массу корня, сухую массу побега и сухую массу корня. У растений клюквы сорта «Бен Лир», с заселенной корневой системой O. maius (согласно Примеру 1), происходит увеличение длины побега на 82,4% (фиг. 1) и увеличение сырой массы побегов растений в 2,3 раза (фиг. 2) и увеличение сухой массы в 3,6 раза (фиг. 3) по сравнению с растениями клюквы сорта «Бен Лир», корневая система которых не была заселена симбиотическими микромицетами. У растений клюквы сорта «Ховес» с корневой системой, заселенной O. maius (согласно Примеру 2), происходит увеличение длины корневой системы на 58,5% и увеличение боковых корней в среднем на 3 боковых корня по сравнению с растениями сорта «Ховес», корневая система которых не была заселена симбиотическими микромицетами.To determine the effect of this method of colonizing cranberry roots with the micromycete O.maius on plant development, cranberry plants with a colonized root system were planted in non-sterile soil to adapt to ex vitro conditions, and after 22 weeks of ex vitro cultivation, morphometric parameters were measured: root length, number of lateral roots, length shoots, number of plant branches, shoot wet weight, root wet weight, shoot dry weight and root dry weight. In cranberry plants of the Ben Lear variety, with the root system populated by O. maius (according to Example 1), there is an increase in shoot length by 82.4% (Fig. 1) and an increase in the fresh weight of plant shoots by 2.3 times (Fig. 2) and an increase in dry weight by 3.6 times (Fig. 3) compared to cranberry plants of the Ben Lear variety, the root system of which was not populated by symbiotic micromycetes. In cranberry plants of the “Hoves” variety with a root system populated by O. maius (according to Example 2), there is an increase in the length of the root system by 58.5% and an increase in lateral roots by an average of 3 lateral roots compared to plants of the “Hoves” variety, the root system of which was not populated by symbiotic micromycetes.

Таким образом, предлагаемое изобретение обеспечивает заселение корневой системы микроклонально размноженной клюквы симбиотическим микромицетом O. maius на ранних стадиях развития корней растений клюквы, и в зависимости от генотипа клюквы оказывает положительное влияние на развитие побега или корневой системы клюквы.Thus, the proposed invention ensures the colonization of the root system of microclonally propagated cranberries with the symbiotic micromycete O. maius at the early stages of development of the roots of cranberry plants, and, depending on the genotype of the cranberry, has a positive effect on the development of the shoot or root system of the cranberry.

Claims (1)

Способ заселения корней растений клюквы in vitro микромицетом Oidiodendron maius Barron включает приготовление питательной среды Андерсона, или её модификации, без или с регуляторами роста растений при нагревании, в дальнейшем эту среду разливают по культуральным сосудам, закрывают сосуды и автоклавируют, на полученной среде культивируют микрорастения клюквы до формирования корневой системы, стерильно вносят кусочки твердой питательной среды с мицелием микромицета Oidiodendron maius или суспензию спор микромицета Oidiodendron maius, полученную путем добавления стерильной воды в сосуд к микромицету Oidiodendron maius на агаризованной среде на стадии спороношения, далее сокультивируют микрорастения клюквы с микромицетом Oidiodendron maius in vitroThe method of colonizing the roots of cranberry plants in vitro with the micromycete Oidiodendron maius Barron involves the preparation of Anderson's nutrient medium, or its modification, without or with plant growth regulators when heated, then this medium is poured into culture vessels, the vessels are closed and autoclaved, cranberry microplants are cultivated on the resulting medium Before the formation of the root system, pieces of a solid nutrient medium with the mycelium of the micromycete Oidiodendron maius or a suspension of spores of the micromycete Oidiodendron maius, obtained by adding sterile water to the micromycete Oidiodendron maius on an agar medium at the sporulation stage, are sterilely added, then cranberry microplants are co-cultivated with the micromycete Oidiodendron maius in vitro
RU2022110579A 2022-04-19 Method of populating cranberry roots with oidiodendron maius barron micromycete RU2821889C2 (en)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2022110579A RU2022110579A (en) 2023-10-19
RU2821889C2 true RU2821889C2 (en) 2024-06-27

Family

ID=

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CASARRUBIA S, Vaccinium myrtillus, The Hydrophobin-Like OmSSP1 May Be an Effector in the Ericoid Mycorrhizal Symbiosis, Frontiers in Plant Science. 2018., V. 9. Article 546., p. 1-14. СТРУЧКОВА И.В., Перспективность использования гриба trichoderma virens для стимуляции роста адаптируемых микрорастенийклюквы крупноплодной, Вестник защиты растений 3(89), 2016. Материалы международной конференции, с.160-161. МАКАРОВ С.С., и др., Особенности клонального микроразмножения клюквы болотной;(Oxycoccus palustris Pers.), Техника и технология пищевых производств / Food Processing: Techniques and Technology, 2021 Т. 51 N 1, найдено в Интернет 12.12.2023, адрес сайта: https://doi.org/10.21603/2074-9414-2021-1-67-76. ВИНОГРАДОВА Ю.А., Биомасса грибов и разнообразие культивируемых микромицетов в сезонноталом слое бугристых торфяников южной тундры, Микология и фитопатология, 2021, том 55, N 2, с. 105-118. ЧУРКИНА Л.М., и др., Влияние состава питательной среды на рост аскомицета-;Микоризообразователя, " *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yamada et al. Ectomycorrhiza formation of Tricholoma matsutake isolates on seedlings of Pinus densiflora in vitro
CN104745483B (en) A kind of Paecilonyces variotii strain SJ1 and its application
Batukaev et al. Use of growth regulators in grapes grinding by in vitro method
CN103037684A (en) Compositions and methods for increasing biomass, iron concentration, and tolerance to pathogens in plants
CN105474995A (en) Cultivation and domestication method of wild collybia albuminosa
CN111944716B (en) Special compound microbial agent for tobacco seedling culture and preparation method and application thereof
CN113388526B (en) Endophytic fungus FO-R20 and application thereof
CN104686196B (en) Method for preserving and separating toadstool strain through sporocarp dried in shade
Declerck et al. Entrapment of in vitro produced spores of Glomus versiforme in alginate beads: in vitro and in vivo inoculum potentials
CN103733829A (en) Salviae miltiorrhizae artificial cultivation method
JP2007053928A (en) New fungal strain and method for culturing new fruit body
CN115537346B (en) Mucillus mucilaginosus for promoting growth and differentiation of sansevieria trifasciata and application thereof
CN108260470B (en) Method for improving mycorrhizal seedling raising of tricholoma matsutake
CN107125028A (en) A kind of wild yellow ring squama agaric domestication and artificial culturing method
CN114806895B (en) Application of endophytic fungus M-B927 in improving rice grain yield
CN114175996B (en) Propagation method of arbuscular mycorrhizal fungi
CN113564054A (en) Method for improving disease resistance of plants by using beauveria bassiana blastospores
CN108476981A (en) A kind of screening technique of anti-blight banana germplasm
CN111269841B (en) New endophytic fungus TK815 and application thereof
KR20100066321A (en) Production method of the cauliflower mushroom hypha using grain medium and the hypha produced thereof
RU2821889C2 (en) Method of populating cranberry roots with oidiodendron maius barron micromycete
JP3746440B2 (en) Fungus bed for mushroom cultivation and cultivation method of mushroom
CN101353628B (en) Rapid identification method of Chinese caterpillar fungus fertile bacterial strain
CN110724640B (en) Tomato root knot nematode biocontrol bacteria, preparation and application thereof
KR20020003485A (en) A production method of cordyceps militaris including chitosan