RU2812184C1 - Матрица на основе акрилового адгезива с комплексом активаторов чрескожного переноса для трансдермальных терапевтических систем - Google Patents

Матрица на основе акрилового адгезива с комплексом активаторов чрескожного переноса для трансдермальных терапевтических систем Download PDF

Info

Publication number
RU2812184C1
RU2812184C1 RU2023102376A RU2023102376A RU2812184C1 RU 2812184 C1 RU2812184 C1 RU 2812184C1 RU 2023102376 A RU2023102376 A RU 2023102376A RU 2023102376 A RU2023102376 A RU 2023102376A RU 2812184 C1 RU2812184 C1 RU 2812184C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tts
matrix
transdermal
polymer matrix
cap
Prior art date
Application number
RU2023102376A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2812184C9 (ru
Inventor
Виктор Иванович Севастьянов
Евгения Геннадьевна Кузнецова
Лидия Анатольевна Саломатина
Ольга Анатольевна Курылева
Юлия Борисовна Басок
Сергей Владимирович Готье
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ТИО им. ак. В.И. Шумакова" Минздрава России)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ТИО им. ак. В.И. Шумакова" Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр трансплантологии и искусственных органов имени академика В.И. Шумакова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ ТИО им. ак. В.И. Шумакова" Минздрава России)
Application granted granted Critical
Publication of RU2812184C1 publication Critical patent/RU2812184C1/ru
Publication of RU2812184C9 publication Critical patent/RU2812184C9/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к области медицины, а именно к матрице для трансдермальной терапевтической системы. Матрица для трансдермальной терапевтической системы включает акриловый адгезив, масло ядер косточек абрикоса, диоктилсульфосукцинат натрия, дигидрокверцетин, альфа токоферола ацетат при следующем соотношении компонентов, мас.%: масло ядер косточек абрикоса 4,0-9,6; диоктилсульфосукцинат натрия 0,06-0,14; дигидрокверцетин 0,04-0,14; альфа токоферола ацетат 0,02-0,1; акриловый адгезив - остальное. Вышеописанное изобретение позволяет усилить чрескожную диффузию спирторастворимых ЛВ; установить постоянную концентрацию ЛВ в крови через 2-4 часа от начала аппликации; уменьшить контактную площадь ТТС за счет увеличения скорости чрескожной диффузии ЛВ; снизить риск раздражения кожи в месте аппликации ТТС; увеличить срока годности ТТС за счет использования матрицы. 1 ил., 8 табл., 9 пр.

Description

Изобретение относится к области медицины, в частности, к фармакологическим средствам, а именно к трансдермальным терапевтическим системам (ТТС) (трансдермальным пластырям).
Изобретение предназначено для использования в фармакологии как необходимый компонент неинвазивного пролонгированного лекарственного средства для чрескожного введения спирторастворимых лекарственных веществ (ЛВ).
ТТС - это лекарственная форма для наружного применения, предназначенная для контролируемой доставки лекарственного вещества (ЛВ) в системный кровоток путем пассивной диффузии через неповрежденную кожу [Васильев А.Е., Краснюк И.И., Равикумар С, Тохмачи В.Н. Трансдермальные терапевтические системы доставки лекарственных веществ (обзор). Химико-фармацевтический журнал, 2001, т. 35, №11, с. 29-41].
ТТС обеспечивают подачу ЛВ в системный кровоток с постоянной скоростью без колебаний концентраций на протяжении длительного времени [Зырянов, С.К. Новые возможности фармакотерапии болезни Альцгеймера. Журнал неврологии и психиатрии. 2009. №4: 95-98]. Несомненным преимуществом ТТС является то, что запас активного вещества находится вне организма, что позволяет применять лабильные и быстро метаболизируемые ЛВ (например, гормоны).
При использовании ТТС значительно уменьшается вводимая доза активного вещества за счет лучшей биодоступности из-за отсутствия эффекта первого прохождения через печень и желудочного метаболизма по сравнению с пероральными формами [V.B. Kumbhar, P.S. Malpure, Y.M. More A Review on transdermal drug delivery system. World journal of pharmacy and pharmaceutical sciences. 2018. Vol. 7. №9: 1258-1269].
Важным положительным фактором является отсутствие контакта полимерных составляющих ТТС с внутренней средой организма.
Еще одним преимуществом ТТС является простота и безопасность использования. Трансдермальное введение дает возможность применения препарата у различных групп пациентов, которые в силу ряда причин и/или противопоказаний не могут использовать существующие лекарственные формы [J. Torin Huzill, S. Sivaloganathan, M. Kohande et al. Drug delivery through the skin: molecular simulations of barrier lipids to design more effective noninvasive dermal and transdermal delivery systems for small molecules, biologies, and cosmetics. WIREs Nanomedicine and Nanobiotechnology. 2011. Vol. 3. №5: 449-462].
Все существующие ТТС можно отнести к одному из трех видов конструкций: резервуарная, матричная и комбинированная. Следует отметить, что удобство в применении и простая технология изготовления матричных систем, особенно подтипа «лекарство в адгезиве», делает их в настоящее время более предпочтительными для большинства производителей и потребителей [С.О. Лосенкова, Е.Д. Тюнина, Н.А. Павлюченкова, П.В. Лосенков, А.А. Емельянов, М.В. Махотина Современный ассортимент транедермальных лекарственных форм на фармацевтическом рынке России, Вестник Смоленской государственной медицинской академии 2022, Т. 21, №1: 152-159]. Высокомолекулярные полимеры, используемые в роли адгезивов, должны обеспечивать эффективное высвобождение ЛВ, но при этом не участвовать в чрескожном переносе и не проникать в глубокие слои кожи.
При выборе полимера, помимо его безопасности, важно учитывать такие свойства, как класс полимера (акриловый, полиизобутиленовый, силиконовый и т.д.), содержание функциональных групп (-ОН, -СООН), вязкость, силу адгезии к коже, сдвиговое сопротивление, растворимость в органических растворителях и т.д.
Большинство выпускаемых в настоящее время ТТС изготовлены на основе матрицы из акриловых адгезивов, таких как, например, Duro-Tak и Gelva фирмы Хенкель. Они обладают способностью образовывать прочное адгезионное соединение с кожей, при этом легко удаляются после использования, не оставляя следов на коже. Они имеют различную вязкость (1800-15000 мПа⋅с) и низкое сдвиговое сопротивление, что позволяет их использовать в ТТС без добавления пластификаторов [Product selection guid. Henkel. DURO-TAK and GELVA Transdermal Pressure Sensitive Adhesives [Электронный ресурс]. - ULR: https://www.henkel-adhesives.com/content/dam/uai/AIH/master/images/drug-delivery-polymers/durotak-gelva-production-guide-US-4pager-160920.pdf (дата обращения 21.03.2022)].
Основными элементами матричных ТТС являются: непроницаемая подложка (внешний покровный слой), препятствующий диффузии лекарственного вещества в сторону противоположную коже, а также попаданию влаги извне; полимерная матрица со вспомогательными веществами; лекарственное вещество; адгезивный слой для фиксации на коже и защитная антиадгезионная пленка, которая снимается перед аппликацией.
В состав матрицы вводят формообразующие вспомогательные вещества, а также активаторы чрескожного переноса.
Альфа-токоферола ацетат известен своими антиоксидантными свойствами [А.С. Гаврилов. Фармацевтическая технология. Изготовление лекарственных препаратов (учебное пособие). Глава 5. Вспомогательные вещества. Под ред. А.С. Гаврилова. Москва, ГЭОТАР-Медиа, 2010. 624 с].
Дигидрокверцетин известен как антиоксидант натурального происхождения. Фармакологическое действие дигидрокверцетина - ангиопротекторное, регенерирующее, дезинтоксикационное, противоотечное, антибиотическое, радиопротекторное и иммуномодулирующее. [В.А. Тутельян, Л.В. Кравченко, Л.И. Авреньева, С.В. Морозов. Оценка антиоксидантной и антитоксической эффективности природного флавоноида дигидрокверцетина. Токсикологический вестник. 2005, №1, 14-20].
Известно, что при производстве ТТС могут использоваться различные жидкие растительные масла для введения в матрицу липофильных вспомогательных веществ [С.Ф. Быкова, Е.К. Давиденко, С.Г. Ефименко Перспективы развития сырьевой базы производства новых типов пищевых растительных масел / Масла и жиры. - 2014. - №1. - С. 20-24.], например, масло ядер косточек абрикоса, которое хорошо впитывается в кожу и усиливает проникновение в глубокие слои кожи других активных компонентов [Т.-K. Lin, L. Zhong, J.L. Santiago. Anti-Inflammatory and Skin Barrier Repair Effects of Topical Application of Some Plant Oils. Int. J. Mol. Sci. 2018. Vol. 19. №1: 70].
Известна ТТС с фентанилом (производитель ФГУП «Московский эндокринный завод») с полимерной матрицей из полиакрилата «Duro-Tak 87-4287». [Инструкция по медицинскому применению лекарственного препарата Фентанил. [Электронный ресурс]. - ULR: https://www.takeda.com/siteassets/ru-ru/home/what-we-do/1/26/fendivia-26112014.pdf (дата обращения 1.12.2022)]. ТТС обеспечивает постоянное системное высвобождение фентанила в течение 72 часов. После аппликации ТТС концентрация фентанила в плазме крови постепенно увеличивается в течение первых 12-24 часов и остается постоянной в течение оставшегося периода времени. Уровень концентрации фентанила в плазме крови пропорционален размеру ТТС. К концу 72-часовой аппликации достигается равновесная концентрация фентанила в плазме крови, которая поддерживается с помощью последующих аппликаций ТТС того же размера.
К недостаткам аналога относятся:
- отсутствие активаторов чрескожного переноса действующего ЛВ влечет за собой увеличение периода времени (12-24 часа), необходимого для достижения постоянной концентрации ЛВ в крови;
- низкая чрескожная диффузия ЛВ, приводящая к необходимости увеличения контактной площади ТТС (42 см2 при содержании ЛВ 16,8 мг).
Известен пластырь трансдермальный с сахароснижающим веществом гликлазид 0,6 г на основе полиэтиленгликоля-400 (ПЭГ-400) (2,0 г) и пласдона К25 (4,0 г) для терапии сахарного диабета 2 типа площадью 250 см2 [RU 2736081, С1].
Отличительной особенностью данного пластыря является наличие следующих активаторов переноса: ДМСО 2,0 г и спирт этиловый 95% 10,0 г, что позволяет увеличить примерно в 2 раза выход ЛВ в объем в модельных экспериментах по сравнению с пластырями, имеющими в своем составе другие активаторы переноса (пропиленгликоль-1,2 или изопропилмеристат). Данный пластырь обладает способностью к длительному хранению с сохранением фармакологической активности в течении 2 лет при хранении с соблюдением температурных режимов (не ниже +5 и не выше +25). При изготовлении данного пластыря после смешивания всех компонентов пластырную массу наносят на внешний покровный слой и сушат при температуре 40°С в течении 12 часов.
К недостаткам указанного пластыря относятся:
- низкая чрескожная диффузия ЛВ, приводящая к необходимости увеличения контактной площади ТТС (250 см2);
- проникновение в слои кожи основного компонента полимерной матрицы ПЭГ-400;
- снижение адгезивных свойств пластыря за счет добавления пластификатора пласдона К25 в количестве в 2 раза превышающем количество полимера ПЭГ-400;
- аллергические реакции со стороны кожных покровов в местах аппликации пластыря за счет использования активатора переноса ДМСО.
Известна эмульсионная матрица, содержащая диоктилсульфосукцинат натрия в качестве активатора переноса бромокаина, а также альфа-токоферола ацетат и масло ядер косточек абрикоса [В.А. Рыжикова, А.А. Тихобаева, Л.А. Саломатина, С.В. Курсаков, Е.Г. Кузнецова, О.М. Курылева, В.И. Севастьянов. Влияние активатора переноса на функциональные свойства матричных трансдермальных терапевтических систем бромокаина. Перспективные материалы, 2014, №2, с. 26-32] (прототип). Эмульсионная матрица позволяет вводить в нее только водорастворимые или жирорастворимые ЛВ. К недостаткам эмульсионной матрицы относится отсутствие адгезивных свойств, что требует дополнительного адгезивного слоя для обеспечения контакта с кожей, тем самым усложняя конструкцию ТТС. Известная матрица не обеспечивает активацию трансдермального переноса для спирторастворимых ЛВ.
Техническая проблема, решаемая с помощью заявляемого изобретения, заключается в создании полимерной матрицы для ТТС, содержащей комплекс активаторов переноса (КАП), усиливающий диффузию ЛВ через неповрежденную кожу.
Техническим результатом, достигаемым при использовании предлагаемого изобретения, является:
- усиление чрескожной диффузии спирторастворимых ЛВ за счет добавления КАП, включающего в себя масло ядер косточек абрикоса, диоктилсульфосукцинат натрия, дигидрокверцетин и альфа-токоферола ацетат;
- достижение постоянной концентрации ЛВ в крови через 2-4 часа от начала аппликации ТТС за счет использования КАП;
- уменьшение контактной площади ТТС за счет увеличения скорости чрескожной диффузии ЛВ;
- снижение риска раздражения кожи в месте аппликации ТТС;
- увеличение срока годности ТТС за счет использования патентуемой матрицы.
Сущность изобретения заключается в следующем.
Предложена матрица для ТТС системы, включающая акриловый адгезив, масло ядер косточек абрикоса, диоктилсульфосукцинат натрия, дигидрокверцетин, альфа токоферола ацетат при следующем соотношении компонентов, масс. %:
масло ядер косточек абрикоса 4,0-9,6
диоктилсульфосукцинат натрия 0,06-0,14
дигидрокверцетин 0,04-0,14
альфа токоферола ацетат 0,02-0,1
акриловый адгезив остальное.
Полимерная матрица для ТТС может быть использована для чрескожного введения спирторастворимых ЛВ, преимущественно молекулярной массы от 180 Да до 339 Да. В ТТС с помощью предлагаемой матрицы могут быть введены, например, сахароснижающие ЛВ, местные анестетики, психостимулирующие ЛВ, противовоспалительные и антитромботические ЛВ и другие.
Количество ЛВ, вводимого в виде спиртового раствора в матрицу ТТС, определяется в соответствии с желаемым терапевтическим эффектом. Эффективные количества ЛВ при этом могут быть определены с учетом известных рекомендуемых доз для конкретных ЛВ.
При изготовлении предлагаемой полимерной матрицы для ТТС отвешивают активаторы чрескожного переноса, а именно: альфа-токоферола ацетат, диоктилсульфосукцинат натрия, дигидрокверцетин, и растворяют в масле косточек ядер абрикоса, перемешивая с помощью мешалки при скорости 50 об/мин при температуре 60°С до полного растворения (визуальный контроль). Далее для получения матрицы в акриловый адгезив добавляют полученный масляной раствор активаторов чрескожного переноса.
Для доказательства возможности реализации заявленного назначения и достижения указанного технического результата - усиления чрескожной диффузии ЛВ из ТТС с патентуемой полимерной матрицей с КАП, приводим следующие данные. Пример 1.
При изготовлении полимерной матрицы для ТТС с хлорпропамидом отвешивают активаторы чрескожного переноса, а именно: диоктилсульфосукцинат натрия (0,06 масс. %), дигидрокверцетин (0,04 масс. %), альфа-токоферола ацетат (0,02 масс. %), и растворяют в масле косточек ядер абрикоса (4,0 масс. %), перемешивая с помощью мешалки при скорости 50 об/мин при температуре 60°С до полного растворения (визуальный контроль). Далее для получения матрицы в акриловый адгезив (95,88 масс. %) добавляют масляной раствор активаторов чрескожного переноса. Массовые проценты компонентов приведены от массы полимерной матрицы.
Отвешивают хлорпропамид в количестве, достаточном для получения смеси, содержащей 11,5 мас. % хлорпропамида от состава ТТС, и растворяют его в 95% спирте этиловом. Далее спиртовой раствор хлорпропамида добавляют в полученную полимерную матрицу и перемешивают.
Состав полученной композиции с хлорпропамидом и акриловой матрицей с КАП представлен в таблице 1.
Для изготовления ТТС полученную композицию наносят на внешний покровный слой типа Cotran 9715 film (3М, США) и сушат при комнатной температуре в течение 2 часов. Затем наносят защитный слой типа Scotchpack 1022 pet film (3М, США). Готовую ТТС разрезают до требуемого размера и герметично упаковывают.
Пример 2.
При изготовлении полимерной матрицы для ТТС с кофеин бензоатом отвешивают активаторы чрескожного переноса, а именно: диоктилсульфосукцинат натрия (0,14 масс. %), дигидрокверцетин (0,14 масс. %), альфа-токоферола ацетат (0,10 масс. %), и растворяют в масле косточек ядер абрикоса (9,6 масс. %), перемешивая с помощью мешалки при скорости 50 об/мин при температуре 60°С до полного растворения (визуальный контроль). Далее для получения матрицы в акриловый адгезив (90,02 масс. %) добавляют масляной раствор активаторов чрескожного переноса. Массовые проценты компонентов приведены от массы полимерной матрицы.
Отвешивают кофеина бензоат в количестве, достаточном для получения смеси, содержащей 30,3 масс. % кофеина бензоата от состава ТТС, и растворяют его в 95% спирте этиловом. Далее спиртовой раствор кофеина бензоата добавляют в полученную полимерную матрицу и перемешивают.
Состав полученной композиции с кофеина бензоатом и акриловой матрицей с КАП представлен в таблице 2.
Для изготовления ТТС полученную композицию наносят на внешний покровный слой типа Cotran 9715 film (3М, США) и сушат при комнатной температуре в течение 2 часов. Затем наносят защитный слой типа Scotchpack 1022 pet film (3М, США). Готовую ТТС разрезают до требуемого размера и герметично упаковывают.
Пример 3.
Были проведены исследования диффузии хлорпропамида из ТТС с полимерной матрицей с КАП и без него через неконсервированную кожу кроликов in vitro. Изготовление полимерной матрицы описано в примере 1.
Изучение проводили в стеклянных диффузионных ячейках Франца на анализаторе диффузии лекарственных препаратов HDT 1000 (Copley Scientific Ltd., Великобритания). Приемную камеру диффузионных ячеек заполняли дегазированным 0,9% раствором хлорида натрия. Дегазацию раствора осуществляли в ультразвуковой ванне Elmasonic S 60 Н (Elma, Германия). Отбор проб из стеклянного патрубка приемной камеры диффузионных ячеек осуществляли через 24 часа инкубации. Пробы водных растворов ЛВ, отобранные в ходе эксперимента из приемных камер диффузионных ячеек, исследовали аналитическим методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) (Agilent 1200, насос G1311A, детектор G1314B).
В таблице 3 приведены результаты исследования чрескожной диффузии хлорпропамида из ТТС (15 мг ЛВ, 10 см2) в зависимости от состава полимерной матрицы.
Заявляемое техническое решение обеспечивает достижение усматриваемого заявителем технического результата, а именно - обеспечение возможности усиления чрескожного переноса ЛВ из ТТС с полимерной матрицей с КАП.
Пример 4.
Были проведены исследования диффузии кофеин бензоата из ТТС с полимерной матрицей с КАП и без него через неконсервированную кожу кроликов in vitro. Изготовление полимерной матрицы описано в примере 2. Методика исследования диффузии ЛВ изложена в примере 3.
В таблице 4 приведены результаты чрескожной диффузии кофеина из ТТС (50 мг ЛВ, 10 см) в зависимости от состава полимерной матрицы:
Заявляемое техническое решение обеспечивает достижение усматриваемого заявителем технического результата, а именно - обеспечение возможности усиления чрескожного переноса ЛВ из ТТС с полимерной матрицей с КАП.
Пример 5.
Для подтверждения уменьшения времени достижения постоянной концентрации ЛВ в крови за счет использования полимерной матрицы с КАП были проведены фармакокинетические исследования ТТС in vivo.
Способ изготовления ТТС изложен в примерах 1 и 2.
Исследование концентрации ЛВ в плазме крови кроликов при чрескожном введении проводили согласно разработанному дизайну. Животные были разделены на две группы по 3 особи. Первой группе животных проводили аппликацию ТТС с полимерной матрицей с КАП в течении 24 часов, второй группе проводили аппликацию ТТС с полимерной матрицей без КАП в тех же условиях.
Аппликацию ТТС производили на предварительно выбритый участок кожи спины лабораторных животных у основания шеи. Препарат наклеивали на здоровую кожу не ранее, чем через сутки после процедуры удаления шерсти.
Забор крови животных производился до аппликации ТТС, а также в дискретные интервалы времени из краевой ушной вены в пробирку с 3,8% раствором цитрата натрия. Время забора крови составило: 1, 2, 4, 6, 12, 15, 18, 20 и 24 часа аппликации ТТС. Пробирку центрифугировали 5 минут при 1500 об/мин, затем аккуратно отбирали плазму. Определение концентрации ЛВ в плазме крови кроликов производили методом ВЭЖХ (Agilent 1200, насос G1311A, детектор G1314B).
В таблице 5 приведены результаты фармакокинетических исследований ТТС с хлорпропамидом (15 мг ЛВ, 10 см2) с полимерной матрицей разного состава.
В таблице 6 приведены результаты фармакокинетических исследований ТТС с кофеином бензоатом (50 мг ЛВ, 10 см) с полимерной матрицей разного состава.
Заявляемое техническое решение обеспечивает уменьшение времени достижения постоянной концентрации ЛВ в крови за счет использования ТТС с полимерной матрицей с КАП.
Пример 6.
По результатам экспериментов, описанных в Примерах 3 и 4, был произведен расчет контактной площади необходимой для ТТС с полимерной матрицей без КАП для достижения такой же постоянной концентрации ЛВ в крови, как при аппликации ТТС с полимерной матрицей с КАП. Для ТТС хлорпропамида с полимерной матрицей без КАП необходимая контактная площадь должна составлять 23 см2, что в 2,3 раз больше, чем для ТТС хлорпропамида с полимерной матрицей с КАП.
Для ТТС с кофеин бензоатом с полимерной матрицей без КАП необходимая контактная площадь составила 27 см2, что в 2,7 раз больше, чем для ТТС с кофеин бензоатом с полимерной матрицей с КАП.
Уменьшение контактной площади ТТС происходит благодаря увеличению скорости чрескожной диффузии ЛВ за счет применения полимерной матрицы с КАП.
Пример 7.
Оценка местно-раздражающего действия была проведена при аппликации ТТС лидокаина (50 мг) с полимерной матрицей с КАП и без КАП в экспериментах in vivo на кроликах в соответствии с ГОСТ ISO 1099-10-2011 «Изделия медицинские. Оценка биологического действия медицинских изделий» Часть 10 - Исследования раздражающего и сенсибилизирующего действия.
Способ изготовления полимерной матрицы для ТТС с лидокаином аналогичен, изложенному в примере 2.
Для исследования раздражающего действия использовали половозрелых молодых кроликов породы Новозеландские белые весом от 2 до 3,7 кг только со здоровой кожей. Было две группы животных по 3 кролика в каждой для аппликации ТТС лидокаина с полимерной матрицей с КАП и без КАП. За сутки до проведения исследований выстригали шерсть на участках площадью примерно 10×10 см2 по обеим сторонам спины. Аппликацию двух образцов ТТС размером 2,5×4,0 см2 производили на кожу спины кролика с каждой стороны позвоночника и фиксировали повязкой. Через 24 часа снимали повязку и ТТС, отмечали положения участков аппликации и протирали их теплой водой. Регистрировали состояние каждого участка кожи, где производили аппликацию, через 1, 24, 48 и 72 ч после удаления ТТС. Оценка степени кожной реакции кроликов на аппликацию ТТС с лидокаином представлена в таблице 7.
Из таблицы 7 видно, что у всех трех кроликов из второй группы через час после открепления ТТС лидокаина с полимерной матрицей без КАП была обнаружена слегка заметная эритема на обеих областях аппликации, которая сохранялась у двух кроликов еще в течение суток. В последующие сутки эти признаки раздражения исчезли.
У всех животных после открепления ТТС лидокаина с полимерной матрицей с КАП кожа в месте аппликации оставалась неповрежденной на протяжении всего периода исследования.
Таким образом, продемонстрировано отсутствие раздражения кожи в месте аппликации ТТС лидокаина с полимерной матрицей с КАП.
Пример 8.
Срок годности ТТС хлорпропамида (15 мг) с полимерной матрицей с КАП и без КАП в условиях хранения определяли по результатам исследования количественного содержания ЛВ в ТТС с полимерной матрицей на протяжении 3-х лет (таблица 8).
Способ изготовления ТТС изложен в примере 1.
Определение содержания в ТТС проводили следующим образом. В коническую колбу с притертой пробкой вместимостью 200 мл помещали 200 мл 0,01H раствора кислоты хлористоводородной. ТТС освобождали от защитного и покровного слоя и помещали в ту же колбу. Колбу закрывали пробкой, помещали в кипящую водяную баню и выдерживали в течение 1 часа.
Через 1 час, полученный раствор переносили в мерную колбу вместимостью 2000 мл. Извлечение повторяли еще 4 раза в тех же условиях, перенося полученные растворы в ту же мерную колбу. Объем раствора в колбе доводили 0,01 Н раствором кислоты хлористоводородной до метки.
Измеряли оптическую плотность полученного раствора и раствора стандартного образца (РСО) хлорпропамида в максимуме поглощения при длине волны 230±2 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм. В качестве раствора сравнения использовали 0,01 Н раствор кислоты хлористоводородной.
Приготовление стандартного образца хлорпропамида. Около 0,0080 г (точная навеска) хлорпропамида помещали в мерную колбу вместимостью 100 мл, прибавляли 60 мл 0,01 Н раствора кислоты хлористоводородной, растворяли на кипящей водяной бане в течение 10 минут, доводили объем раствора тем же растворителем до метки, перемешивали. 5 мл полученного раствора переносили в мерную колбу вместимостью 50 мл, доводили 0,01 Н раствором кислоты хлористоводородной до метки и снова перемешивали. Срок годности раствора - 14 суток.
Содержание хлорпропамида в ТТС в граммах (X) вычисляли по формуле:
где Dx - оптическая плотность испытуемого раствора;
D0 - оптическая плотность раствора РСО хлорпропамида;
m - навеска хлорпропамида, взятая для приготовления РСО, г.
Опыт повторяли шесть раз с ТТС одной серии, рассчитывали средний результат. Содержание хлорпропамида в одной ТТС должно быть не менее 0,0150±0,0015 г.
Срок годности ТТС хлорпропамида с КАП увеличивается до 3-х лет.
Пример 9.
Пролонгированное действие ТТС ЛВ с КАП было продемонстрировано при изучении динамики концентрации ацетилсалициловой кислоты (АСК) при пероральном и трансдермальном введении в одинаковой дозе (50 мг) в экспериментах in vivo.
Способ изготовления полимерной матрицы для ТТС с АСК аналогичен, изложенному в примере 2.
Аппликацию ТТС с полимерной матрицей (10 civr) с КАП производили на предварительно выбритый участок кожи спины трех лабораторных животных у основания шеи. Препарат наклеивали на здоровую кожу не ранее, чем через сутки после процедуры удаления шерсти. Забор крови животных производился до аппликации ТТС, а также в дискретные интервалы времени из краевой ушной вены в пробирку с 3,8% раствором цитрата натрия. Время забора крови составило: 0,5 ч., 1 ч., 2 ч., 2,5 ч., 4 ч., 6 ч., 12 ч. и 24 ч. аппликации ТТС.
На тех же животных через 2 недели после исследования ТТС АСК проводили исследование перорального введения АСК. Забор крови животных производили до приема препарата и через 10 мин., 20 мин., 30 мин., 1 ч., 2,5 ч., 6 ч., 12 ч. и 24 ч.
Пробы крови во всех экспериментах центрифугировали 5 минут при 1500 об/мин, затем аккуратно отбирали плазму. Определение концентрации ЛВ в плазме крови кроликов производили методом ВЭЖХ (Agilent 1200, насос G1311A, детектор G1314B).
На фиг. 1 представлена динамика концентрации АСК в плазме крови кролика после перорального и трансдермального введения.
Проведенные эксперименты показали пролонгированное действие ТТС АСК с КАП в течение 24 часов.

Claims (2)

  1. Матрица для трансдермальной терапевтической системы, включающая акриловый адгезив, масло ядер косточек абрикоса, диоктилсульфосукцинат натрия, дигидрокверцетин, альфа токоферола ацетат при следующем соотношении компонентов, мас.%:
  2. масло ядер косточек абрикоса 4,0-9,6 диоктилсульфосукцинат натрия 0,06-0,14 дигидрокверцетин 0,04-0,14 альфа токоферола ацетат 0,02-0,1 акриловый адгезив остальное
RU2023102376A 2023-02-03 Матрица на основе акрилового адгезива с комплексом активаторов чрескожного переноса для трансдермальных терапевтических систем RU2812184C9 (ru)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2812184C1 true RU2812184C1 (ru) 2024-01-24
RU2812184C9 RU2812184C9 (ru) 2024-03-04

Family

ID=

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
РЫЖИКОВА В.А. и др. Влияние активатора переноса на функциональные свойства матричных трансдермальных терапевтических систем бромокаина // Перспективные материалы, 2014, No2, с. 26-32. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Saroha et al. Transdermal patch: A discrete dosage form
KR0136870B1 (ko) 전신적 경피 투여용 약학적 조성물
KR20080071581A (ko) 경피용 치료학적 시스템
Kute et al. Emulsified gel A Novel approach for delivery of hydrophobic drugs: An overview
EP1051971A1 (en) Patch and method for transdermal delivery of bupropion base
Munir et al. A comprehensive review on transethosomes as a novel vesicular approach for drug delivery through transdermal route
ES2373401T3 (es) Parche transdérmico.
Vasavi et al. Formulation Development and In vitro Evaluation of Transdermal Patches of Tramadol HCl
Gimeno et al. Transbuccal delivery of doxepin: studies on permeation and histological investigation
RU2812184C1 (ru) Матрица на основе акрилового адгезива с комплексом активаторов чрескожного переноса для трансдермальных терапевтических систем
RU2812184C9 (ru) Матрица на основе акрилового адгезива с комплексом активаторов чрескожного переноса для трансдермальных терапевтических систем
CN108324687B (zh) 一种特立氟胺微乳、制备方法及应用
Jose et al. Recent Progress of Transdermal Drug Delivery Systems for Biomedical Applications
JPH11189546A (ja) 経皮吸収促進剤
Chavan et al. A Simple Glance At The Transdermal Drug Delivery System
Malvey Development and In Vitro Characterisation of Transdermal Therapeutic System of Ketorolac Tromethamine.
Kumar et al. A Review on Transdermal Drug Delivery Patches
RU2736081C1 (ru) Пластырь трансдермальный с гликлазидом
Shankar et al. Patches: A Novel approach for development of topical drug delivery system
Sadozai et al. Topically Applied Products
Singh et al. Review On Sustained Release Dosage Form: A Novel Approach And Its Evaluation
Nilewar et al. Formulation and evaluation of repaglinide transdermal patches for treatment of diabetes
Sanghavi et al. Preparation, Evaluation and Characterization of Antihypertensive Drug for Matrix Transdermal Patches
Kumar et al. TDDS (Transdermal Drug Delivery System): A Updated Review
Perada et al. Design, Development and Evaluation of Eucalyptol Transdermal Patch for Anti-Diabetic Activity