RU2805357C1

RU2805357C1 - Способ коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей

Info

Publication number: RU2805357C1
Application number: RU2022134016A
Authority: RU
Inventors: Михаил Викторович Корокин; Михаил Владимирович Покровский; Алексей Васильевич Дейкин; Владислав Олегович Солдатов; Лилия Викторовна Корокина; Анна Александровна Пересыпкина; Олег Сергеевич Гудырев; Роман Вадимович Деев; Елена Валерьевна Кузубова; Иван Антонович Яковлев; Артур Александрович Исаев; Владимир Михайлович Покровский; Никита Сергеевич Жунусов; Анастасия Михайловна Краюшкина; Александра Игоревна Радченко; Наталья Викторовна Екимова
Filing date: 2022-12-23
Publication date: 2023-10-16

Abstract

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной фармакологии и генетическим технологиям. Предложен способ коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей. Самцам дисферлин-дефицитных мышей B6.A/J-Dysf^prmd однократно вводят препарат ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 на основе плазмидной ДНК дисферлина с промотором pMHCK7 в концентрации 0,5 г/л в объеме 100 мкл, по 50 мкл в правую и левую m. tibialis anterior. Коррекцию миодистрофии подтверждают результатами теста «Вертикальный шест» через 30 дней после введения ПЛ-ДИСФ-pMHCK7. Изобретение позволяет расширить арсенал лекарственных средств для эффективного лечения дисферлинопатий. 3 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной фармакологии и генетическим технологиям.

По известным литературным источникам - дисферлинопатии включают группу миопатий, которые имеют один и тот же генетический дефект DYSF в хромосоме 2p13 человека. В 1998 году было обнаружено, что миопатия (миодистрофия) Миоши имеет мутацию в гене дисферлина [Urtizberea, J. A., Bassez, G., Leturcq, F., Nguyen, K., Krahn, M., & Levy, N. (2008). Dysferlinopathies. Neurology India, 56(3), 289-297]. Сообщалось, что средний возраст начала дисферлинопатии составил 20,3 ± 5,5 лет в когорте из 29 пациентов из 12 семей, имеющих одну и ту же гомозиготную мутацию [Patel, N. J., Van Dyke, K. W., & Espinoza, L. R. (2017). Limb-Girdle Muscular Dystrophy 2B and Miyoshi Presentations of Dysferlinopathy. The American journal of the medical sciences, 353(5), 484-491]. Дефицит дисферлина также был связан с такими фенотипами, как дистальная миопатия с поражением передней большеберцовой мышцы [Paradas, C., González-Quereda, L., De Luna, N., Gallardo, E., García-Consuegra, I., Gómez, H., Cabello, A., Illa, I., & Gallano, P. (2009). A new phenotype of dysferlinopathy with congenital onset. Neuromuscular disorders : NMD, 19(1), 21-25]. Возможность восстановления дефектного белка мышц путем введения в клетку функционального гена дикого типа является перспективным методом генной терапии миодистрофий [Старостина И.Г. Создание рекомбинантного аденовируса, кодирующего кодон-оптимизированный ген дисферлина, и анализ экспрессии рекомбинантного белка в культуре клеток in vitro / И.Г. Старостина, В.В. Соловьева, К.Г. Шевченко, Р.В. Деев, А.А. Исаев, А.А. Ризванов // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2012. - Т. 7, №3. - С. 25-28]. Плазмидные векторы показали себя как наиболее безопасные и эффективные средства доставки генетического материала внутрь клетки как ex vivo так и in vivo [Kessler, J. A., Shaibani, A., Sang, C. N., Christiansen, M., Kudrow, D., Vinik, A., Shin, N., & VM202 study group (2021). Gene therapy for diabetic peripheral neuropathy: A randomized, placebo-controlled phase III study of VM202, a plasmid DNA encoding human hepatocyte growth factor. Clinical and translational science, 14(3), 1176-1184; Vonderheide, R. H., Kraynyak, K. A., Shields, A. F., McRee, A. J., Johnson, J. M., Sun, W., Chintakuntlawar, A. V., Pawlicki, J., Sylvester, A. J., McMullan, T., Samuels, R., Kim, J. J., Weiner, D., Boyer, J. D., Morrow, M. P., Humeau, L., & Skolnik, J. M. (2021). Phase 1 study of safety, tolerability and immunogenicity of the human telomerase (hTERT)-encoded DNA plasmids INO-1400 and INO-1401 with or without IL-12 DNA plasmid INO-9012 in adult patients with solid tumors. Journal for immunotherapy of cancer, 9(7), e003019].

Использование генетических моделей нейродегенеративных заболеваний человека, получаемых путем модификации и/или редактирования генома лабораторных животных, и воспроизводящих ключевые звенья патогенеза заболевания является незаменимым звеном исследований, направленных на выявление молекулярных мишеней для разработки комплексной терапии и идентификацию геномных локусов, редактирование которых приводит к реверсии патологического фенотипа [Gitler, A. D., Dhillon, P., & Shorter, J. (2017). Neurodegenerative disease: models, mechanisms, and a new hope. Dis Model Mech, 10(5), 499-502].

Известен способ терапии дисферлинопатий с применением кодон-оптимизированной кДНК, кодирующей дисферлин человека (патент на изобретение RU 2527073, публ. 27.08.2014), включающий введение фармацевтической композиции для восстановления нарушенной экспрессии и/или функции белка дисферлина в скелетной мышце, содержащая аденовирус, человеку (или животным) таким способом и в таком количестве, которые обеспечат лечебный эффект в зависимости от нозологической формы и медицинских показаний. Фармацевтическая композиция может вводиться внутримышечно - местно, системно - внутривенно, аэрозольно, в виде генно-клеточной трансплантации или трансфузии после in vitro обработки различных аутологичных клеток, например гемопоэтических и их более дифференцированных производных, мезенхимальных, сосудисто-стромальной фракции, мезангиобластов, миобластов, миосателлитоцитов и др.

Основным недостатком способа является то, что аденовирус обладает более высокой иммуногенностью по сравнению с плазмидным вектором. Преимущество использования плазмидной ДНК в генной терапии можно объяснить лучшим профилем безопасности невирусных векторов по сравнению с вирусными [Stadler, J., Lemmens, R., & Nyhammar, T. (2004). Plasmid DNA purification. The journal of gene medicine, 6 Suppl 1, S54-S66]. Помимо этого, в данном способе не приведены режимы введения и дозы препарата при конкретных показаниях.

Наиболее близким по существу предлагаемого изобретения (прототипом) является способ терапии дисферлинопатий [Lostal, W., et al., Efficient recovery of dysferlin deficiency by dual adeno-associated vector-mediated gene transfer. Hum Mol Genet, 2010. 19(10): p.1897-907]. Авторы клонировали кДНК дисферлина в вектор на основе аденоассоциированного вируса (AAV). Так как кДНК дисферлина превышает размер трансгенной вставки, которую способен нести геном AAV, кДНК гена DYSF клонировали в виде 2 частей в два независимых AAV вектора: один рекомбинантный AAV несет 5' конец кДНК вместе с донорным сайтом сплайсинга интрона, другой рекомбинантный AAV несет акцепторный сайт сплайсинга и следующий за ним 3' концевую последовательность кДНК. В результате естественной способности AAV к конкатемеризации происходило объединение двух частей кДНК. Внутримышечная инъекция двух рекомбинантных AAV в мышиную модель дисферлинопатии приводила к экспрессии полноразмерного дисферлина. Инъекции приводили к улучшению гистологической картины мышечной ткани, сокращению числа некротических волокон, восстановлению репарации мембраны и глобальному улучшению двигательных функций.

Недостатком данного способа является то, что вирусные векторы, в частности AAV менее безопасны по сравнению с невирусными, к которым относят плазмидные векторы [Stadler, J., Lemmens, R., & Nyhammar, T. (2004). Plasmid DNA purification. The journal of gene medicine, 6 Suppl 1, S54-S66]. Помимо этого, недостатком способа является необходимость одновременного введения двух генетических конструкций, обусловленная ограниченной способностью векторов на основе AAV нести большие вставки трансгенной ДНК.

Задачей настоящего изобретения является создание эффективного способа коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей. Предлагаемое изобретение позволит расширить арсенал лекарственных средств для эффективного лечения дисферлинопатий.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является эффективный способ коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей, лишенный недостатков прототипа, а именно высокой иммуногенности аденовируса, с приведением доз и режима введения препарата ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 в эксперименте на дисферлин-дефицитных мышах, и недостатков аналога, касающихся профиля безопасности и ограниченной способности векторов AAV нести большие вставки трансгенной ДНК.

Поставленная задача достигается тем, что предложен способ коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей, включающий использование самцов дисферлин-дефицитных мышей B6.A/J-Dysf ^prmd и однократное введение геннотерапевтического препарата в правую и левую musculus tibialis anterior с оценкой мышечной функции через 30 дней после введения препарата, причем коррекцию миодистрофии проводят препаратом ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 на основе плазмидной ДНК с промотором pMHCK7 в объеме 100 мкл, по 50 мкл в правую и левую m. tibialis anterior, подтверждаемый результатами теста «Вертикальный шест».

Основным преимуществом предлагаемого способа является то, что однократное введение ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 в объеме 100 мкл (концентрация 0,5 г/л), по 50 мкл в правую и левую m. tibialis anterior, приводит к выраженной коррекции миодистрофии у дисферлин-дефицитных мышей B6.A/J-Dysf ^prmd, что подтверждается достоверным уменьшением времени поворота и времени спуска у мышей B6.A/J-Dysf ^prmd, получавших ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 по сравнению с нелеченными животными (p<0,05) в тесте «Вертикальный шест», так как ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 приводит к выраженной экспрессии функционально активного дисферлина за счет доставки правильной копии кДНК дисферлина в миоциты.

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ПЛ-ДИСФ-pMHCK7

Пример 1

Дизайн и синтез олигонуклеотидов и генетических конструкций

Дизайн осуществлялся с помощью онлайн ПО Benchling, синтез олигонуклеотидов и праймеров осуществлялся Евроген (Москва, Россия), синтез плазмидных векторов де-ново осуществлялся GenScript Biotech BV (Нидерланды) с помощью технологии синтеза длинных последовательней ДНК GenBrick.

Клонирование кДНК дисферлина было выполнено c помощью нуклеаз EcoRV и HindIII/NotI по ранее отработанной технологии.

Наработка и проверка плазмидных конструкций

Для выполнения работ использовали заранее подготовленные бактериальные стоки по 500 мкл каждый. 4 мл клеточной культуры использовали для выделения плазмидной ДНК и постановки аналитического рестрикционного анализа.

С помощью набора Plasmid Miniprep ВС021 (Евроген) проводили выделение плазмиды по установленному производителем протоколу Набор Plasmid Miniprep ВС021 (Евроген, РФ). Полученную плазмиду использовали для постановки рестрикции (таблица 1).

Полученный рестрикционный микс инкубировали в термостате 30-60 мин при 37°С, далее наносили на 1% агарозный гель (250-500 нг плазмиды на лунку и маркер длин NL001 250 нг на лунку) и проводили электрофорез в 1x буфере TAE при 120B в течение 30-60 мин в присутствии красителя этидия бромида.

Полученные результаты детектировали визуально с помощью трансиллюминатора при длине волны 365 нм и сравнивали с теоретической картой плазмиды.

Плазмидный вектор несет регуляторную последовательность промотора МHCK7.

ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ПЛ-ДИСФ-pMHCK7

Эксперименты проведены на 30 мышах-самцах B6.A/J-Dysf ^prmd, Stock No: 012767, Jackson Laboratory, массы которых приведены в таблице 2. Каждая группа включала 10 крыс. Мыши были редеревированы в SPF зону экспериментально-биологической клиники НИУ «БелГУ», рандомизированы в соответствии с массой и использованы для исследования специфической фармакологической активности ПЛ-ДИСФ-pMHCK7.

1 группа - положительный контроль (шифр ДТ) - мыши дикого типа, получающие физиологический раствор внутримышечно в объеме 100 мкл (по 50 мкл в правую и левую M. tibialis anterior);

2 группа - отрицательный контроль (шифр ДИСФ) - дисферлин-дефицитные мыши с генотипом B6.A/J-Dysf ^prmd, получающие физиологический раствор внутримышечно в объеме 100 мкл (по 50 мкл в правую и левую M. tibialis anterior);

3 группа - дисферлин-дефицитные мыши, получающие препарат ПЛ-ДИСФ- pMHCK7 (шифр ПЛ1- препарат на основе плазмидной ДНК с промотором pMHCK7) в объеме 100 мкл (по 50 мкл в правую и левую M. tibialis anterior).

О выраженности эффекта судили по мышечной функции через 30 дней после однократной инъекции препарата. Для этого проводили тест «Вертикальный шест» [Kovalzon, V. M., Ushakova, N. A., Bastrakov, A. I., Kozlova, A. A., Ambaryan, A. V., Shevchenko, V. P., Nagaev, I. Y., & Pavlov, D. S. (2016). Rossiiskii fiziologicheskii zhurnal imeni I.M. Sechenova, 102(4), 436-441] в нашей модификации.

Тест «Вертикальный шест». Установка представляет собой шест с шероховатой поверхностью длиной 50-55 см, диаметром 10 мм, на устойчивой подставке с ограничителем на верхушке (например, кусок картона 7-10х7-10 см или рука исследователя) для предотвращения возможности животного перелезть через конец шеста. Данный тест используется для оценки координации движений и равновесия. Мышей раз в две недели помещали мордой вверх на верхушку шеста с подставкой, установленной в домашней клетке для провоцирования желания животного добраться до основания. Фиксировались время поворота (Tturn) и время спуска (Tdown) в клетку. Каждому животному давалось три попытки, средние значения Tturn и Tdown использовали для анализа данных.

Статистическую обработку проводили с использованием программной среды вычислений R. Характер распределения признаков в статистической выборке определяли с помощью критерия Шапиро-Уилка и критерия Шпигельхальтера (библиотека normtest), оценку равенства дисперсий - с помощью критерия Левене (библиотека lawstat). В зависимости от типа распределения признаков и равенства дисперсий значимость полученных результатов оценивали с применением параметрического (ANOVA) или непараметрического (критерий Краскела-Уоллиса) однофакторного дисперсионного анализа, а в качестве post-hoc анализа для выявления различий при межгрупповых сравнениях использовали непарный t-критерий Стьюдента или критерий Манна-Уитни, соответственно, с поправкой Бенджамини-Хохберга на множественную проверку гипотез. Результаты считали достоверными при p≤0,05.

ПРИМЕР КОНКРЕТНОГО ВЫПОЛНЕНИЯ

В результате исследования установлено, что в тесте «Вертикальный шест» у животных в группе ДИСФ статистически значимо, в сравнении с животными дикого типа, увеличивалось время поворота (на 67,7%, p<0,05) и время спуска с шеста (на 21,7%, p<0,05), что свидетельствует о развитии симптоматической стадии миодистрофии, вызванной дисферлин-дефицитным состоянием. Статистически значимое, в сравнении с группой ДИСФ, уменьшение как времени поворота (на 23,9%, p<0,05), так и времени спуска (на 23,2%, p<0,05) установлено как в группе животных ПЛ1 (таблица 3).

Таким образом, в предлагаемом способе однократное введение плазмидной ДНК с промотором pMHCK7 в объеме 100 мкл в концентрации 0,5 г/л, по 50 мкл в правую и левую m. tibialis anterior, приводит к выраженной коррекции миодистрофии у дисферлин-дефицитных мышей B6.A/J-Dysf ^prmd, что подтверждается результатами теста «Вертикальный шест» через 30 дней после введения ПЛ-ДИСФ-pMHCK7.

Claims

Способ коррекции миодистрофии с использованием плазмидной ДНК у дисферлин-дефицитных мышей, включающий использование самцов дисферлин-дефицитных мышей B6.A/J-Dysf^prmd и однократное введение геннотерапевтического препарата в правую и левую musculus tibialis anterior с оценкой мышечной функции через 30 дней после введения препарата, отличающийся тем, что коррекцию миодистрофии проводят препаратом ПЛ-ДИСФ-pMHCK7 на основе плазмидной ДНК дисферлина с промотором pMHCK7 в концентрации 0,5 г/л в объеме 100 мкл, по 50 мкл в правую и левую m. tibialis anterior, подтверждаемый результатами теста «Вертикальный шест».