RU2795907C1 - Selective nutrient medium for isolating aeromonads from water bodies - Google Patents
Selective nutrient medium for isolating aeromonads from water bodies Download PDFInfo
- Publication number
- RU2795907C1 RU2795907C1 RU2022129987A RU2022129987A RU2795907C1 RU 2795907 C1 RU2795907 C1 RU 2795907C1 RU 2022129987 A RU2022129987 A RU 2022129987A RU 2022129987 A RU2022129987 A RU 2022129987A RU 2795907 C1 RU2795907 C1 RU 2795907C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- aeromonads
- blue
- medium
- water
- water bodies
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к области микробиологии, более конкретно к сфере санитарной микробиологии и может быть использовано учреждениями, осуществляющими надзор и контроль качества воды сточных, питьевых вод и поверхностных водоемов, в том числе имеющих рыбохозяйственное значение.The invention relates to the field of microbiology, more specifically to the field of sanitary microbiology and can be used by institutions that supervise and control the quality of waste water, drinking water and surface water, including those of fishery importance.
Известен способ выделения и идентификации аэромонад с использованием питательных сред А1 и А2, в соответствии с рекомендациями «Методы исследований объектов окружающей среды и патологического материала на аэромонады» (Методы исследования объектов окружающей среды и патологического материала на аэромонады: Метод. рекомендации / М-во здравоохранения РСФСР, Гл. упр. н.-и. ин-тов и координации науч. исслед.; [Составители Г. П. Калина, Т. И. Графова]. - М. : Б. и., 1980. - 11 с), разработанные в Московском научно-исследовательском институте гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана, и методическими указаниями по санитарно-бактериологической оценке рыбохозяйственных водоемов (Методические указания по санитарно-бактериологической оценке рыбохозяйственных водоемов Методические указания Минсельхоза России от 27.09.1999 № 13-4-2/1742).A known method for the isolation and identification of aeromonads using nutrient media A1 and A2, in accordance with the recommendations "Methods for the study of environmental objects and pathological material for aeromonads" (Methods for the study of environmental objects and pathological material for aeromonads: Method. Recommendations / Ministry of Health RSFSR, Chief Directorate of Scientific Research Institute and Coordination of Scientific Research, [compiled by G. P. Kalina, T. I. Grafova], Moscow: B. I., 1980. - 11 p. ), developed at the Moscow Research Institute of Hygiene. F.F. Erisman;
Жидкая среда накопления А-1 имеет следующий состав (г/л):Liquid accumulation medium A-1 has the following composition (g/l):
Селективность среды А-1 обусловлена действием кристаллического фиолетового в отношении большинства грамположительных бактерий.The selectivity of medium A-1 is due to the action of crystal violet in relation to most gram-positive bacteria.
Известна питательная среда для обнаружения аэромонад по авторскому свидетельству SU № 544674 от 24.07.1975 на изобретение. Питательная среда для обнаружения аэромонад в объектах окружающей среды, содержащая крахмал и дистиллированную воду, причем с целью ускорения процесса выращивания аэромонад, она дополнительно содержит натрий-аммоний фосфорнокислый, калий фосфорнокислый однозамещенный, магний сернокислый, кристаллический фиолетовый и все ингредиенты взяты в следующих соотношениях, вес. %:Known nutrient medium for the detection of aeromonads by copyright certificate SU No. 544674 dated 24.07.1975 for the invention. Nutrient medium for the detection of aeromonads in environmental objects, containing starch and distilled water, and in order to accelerate the process of growing aeromonads, it additionally contains sodium ammonium phosphate, potassium phosphate monosubstituted, magnesium sulfate, crystal violet and all ingredients are taken in the following ratios, weight . %:
При выращивании аэромонад в этой среде почти полностью отсутствует рост посторонней микрофлоры. Недостатком среды для выделения аэромонад является наличие в составе только одного источника питательных веществ (крахмала), кроме того отмечается слабое подавление роста энтеробактеров и энтерококков, а при высоком фекальном загрязнении воды может наблюдаться рост кишечной палочки.When growing aeromonads in this medium, the growth of extraneous microflora is almost completely absent. The disadvantage of the medium for the isolation of aeromonads is the presence in the composition of only one source of nutrients (starch), in addition, there is a weak suppression of the growth of enterobacters and enterococci, and with high fecal water pollution, the growth of Escherichia coli can be observed.
Задача заявленного изобретения состояла в разработке жидкой питательной среды для выделения аэромонад из воды, которая смогла бы обеспечить достаточный рост бактерий рода Aeromonas при полном подавлении эшерихий, сальмонелл, стафилококков и энтерококков. Технический результат заключается в повышении накопительных и селективных свойств среды для выделения аэромонад из водных объектов. Данный технический результат достигается за счет всей совокупности предложенных компонентов среды.The objective of the claimed invention was to develop a liquid nutrient medium for the isolation of aeromonads from water, which could ensure sufficient growth of bacteria of the genus Aeromonas while completely suppressing Escherichia, Salmonella, Staphylococcus and Enterococcus. The technical result is to increase the storage and selective properties of the environment for the selection of aeromonads from water bodies. This technical result is achieved through the totality of the proposed components of the environment.
Сущность изобретения заключается в том, что питательная селективная среда для выделения аэромонад из водных объектов содержит пептон, экстракт кормовых дрожжей, аргинин, калий фосфорнокислый однозамещенный, сульфат магния, хлорид натрия, дезоксихолат, гидроксид натрия, бромтимоловый синий, тимоловый синий, ампициллин и воду дистиллированную при следующем соотношении компонентов, г/л:The essence of the invention lies in the fact that Nutrient selective medium for isolating aeromonads from water bodies contains peptone, fodder yeast extract, arginine, monosubstituted potassium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, deoxycholate, sodium hydroxide, bromthymol blue, thymol blue, ampicillin and distilled water in the following ratio of components, g/ l:
Бактерии рода Aeromonas относятся к семейству Aeromonadaceae. Это факультативно-анаэробные грамотрицательные палочки, чаще подвижные, оксидазоположительные и каталазоположительные. По сбраживанию углеводов, образованию сероводорода и гидролиза мочевины отмечается вариация признаков. В естественных условиях они способны размножаться при температуре от 4°С до 45°С, а также при pH среды от 4,5 до 9,8. Аэромонады широко распространены в пресных и соленых водоемах, могут обнаруживаться в сточных водах, донных отложениях и в микрофлоре гидробионтов. Cреди них имеются виды патогенные для морских, пресноводных рыб, земноводных и пресмыкающихся. Поскольку рыбохозяйственные водоемы часто располагаются вблизи населенных пунктов и сельскохозяйственных предприятий, в них поступают различные стоки (коммунальные, животноводческие и др.), что приводит к бактериальному загрязнению вод, результатом которого является эпизоотическое неблагополучие водных объектов. Некоторые из видов аэромонад могут инициировать заболевания человека, связанные как с водным, так и с алиментарным фактором. Аэромонады известны как микроорганизмы образующие обширные колонии в системах водоснабжения. Имеются сведения об обнаружении этих бактерий в системах распределения водопроводной воды, прошедшей систему водоподготовки и в биопленках распределительных систем, где могут быть устойчивыми к хлорированию. В связи с вышеизложенным проводится анализ воды, включающий индикацию и количественный учет бактерий рода Aeromonas. В качестве основного источника азота в предлагаемой среде используется пептон, в качестве факторов роста - экстракт кормовых дрожжей и L-аргинин солянокислый, для придания изотонических свойств среды - хлорид натрия, в качестве фосфатного буфера - калий фосфорнокислый однозамещенный и кофактора для различных метаболических реакций - сульфат магния, селективными факторами являются дезоксихолат натрия и ампициллин, индикаторами - бромтимоловый синий, тимоловый синий и дистиллированная вода при следующем соотношении компонентов, г/л:Bacteria of the genusAeromonas belong to the Aeromonadaceae family. These are facultative anaerobic gram-negative rods, more often mobile, oxidase-positive and catalase-positive. According to the fermentation of carbohydrates, the formation of hydrogen sulfide and the hydrolysis of urea, a variation of signs is noted. Under natural conditions, they are able to multiply at temperatures from 4°C to 45°C, as well as at a pH of 4.5 to 9.8. Aeromonads are widely distributed in fresh and salt water bodies, can be found in sewage, bottom sediments and in the microflora of aquatic organisms. Among them there are species pathogenic for marine, freshwater fish, amphibians and reptiles. Since fishery reservoirs are often located near settlements and agricultural enterprises, they receive various effluents (municipal, livestock, etc.), which leads to bacterial pollution of water, which results in epizootic trouble of water bodies. Some of the aeromonad species can initiate human diseases associated with both water and nutritional factors. Aeromonads are known as microorganisms that form extensive colonies in water systems. These bacteria have been reported to be found in treated tap water distribution systems and biofilms in distribution systems where they may be resistant to chlorination. In connection with the foregoing, water analysis is carried out, including the indication and quantitative accounting of bacteria of the genusAeromonas. Peptone is used as the main source of nitrogen in the proposed medium, fodder yeast extract and L-arginine hydrochloric acid are used as growth factors, sodium chloride is used as a phosphate buffer, potassium phosphate monosubstituted as a phosphate buffer, and sulfate is a cofactor for various metabolic reactions. magnesium, selective factors are sodium deoxycholate and ampicillin, indicators are bromthymol blue, thymol blue and distilled water in the following ratio of components, g/l:
Внесение в питательную среду дезоксихолата натрия способствует ингибиции грамположительных бактерий. Добавление ампициллина полностью подавляет рост сальмонелл, кишечной палочки и чувствительные к нему энтерококки, тем самым создаются благоприятные условия для роста аэромонад. Высокая щелочность среды (рН 8,3±0,2) способствует подавлению роста энтеробактерий и синегнойных палочек. При действии аргининдегидролазы аэромонад на L-аргинин среды образуются щелочные продукты реакции, которые изменяют окраску среды с исходного зеленого на голубой. The introduction of sodium deoxycholate into the nutrient medium promotes the inhibition of gram-positive bacteria. The addition of ampicillin completely inhibits the growth of Salmonella, Escherichia coli and enterococci sensitive to it, thereby creating favorable conditions for the growth of aeromonads. The high alkalinity of the medium (pH 8.3 ± 0.2) helps to suppress the growth of enterobacteria and Pseudomonas aeruginosa. Under the action of aeromonad arginine dehydrolase on L-arginine of the medium, alkaline reaction products are formed, which change the color of the medium from the initial green to blue.
Подбор концентраций ингредиентов в составе предлагаемой питательной среды для аэромонад, при использовании разных концентраций пептона, экстракта кормовых дрожжей, L-аргинина солянокислого, дезоксихолата натрия, ампициллина и индикаторов (таблица 2).Selection of the concentrations of ingredients in the composition of the proposed nutrient medium for aeromonads, using different concentrations of peptone, fodder yeast extract, L-arginine hydrochloric acid, sodium deoxycholate, ampicillin and indicators (table 2).
При подборе концентраций ингредиентов использовали тест-штаммы: Pseudomonas aeruginosa 10145; Salmonella paratyphi B 506; E. coli 3912/41; Staphylococcus aureus 6538; Enterococcus faecalis 29212, Aeromonas caviae ВКШМ-Б-297М; Aeromonas veronii ВКШМ-Б-307М; Aeromonas hydrophila ВКШМ-Б-301М, Aeromonas salmonicida ВКШМ-Б-307М. Для приготовления микробных взвесей суточные агаровые культуры тест-штаммов смывают 0,9 % стерильным изотоническим раствором хлорида натрия, доводят взвеси до 10 ед. по оптическому стандарту мутности, что соответствует 109 микробных клеток в 1 мл. Затем серийными десятикратными разведениями доводят до содержания 100 тыс. (10-4), 10 тыс. (10-5), 1 тыс. (10-6), 100 (10-7), 10 (10-8) и 1 (10-9) микробных клеток в 1 мл взвеси. Высев производят из каждого разведения по 1 мл в 9 мл опытной среды (варианты среды 1-3) в трех повторностях и инкубируют при температуре 28±2°С в течение 18-24 час. Высев производят из пробирок с вариантами опытных сред, в которых наблюдался рост бактерий, на чашки с питательными средами (рыбо-пептонный агар, Эндо агар, кровяной агар).When selecting the concentrations of ingredients used test strains: Pseudomonas aeruginosa 10145; Salmonella paratyphi B 506; E. coli 3912/41; Staphylococcus aureus 6538; Enterococcus faecalis 29212, Aeromonas caviae VKShM-B-297M; Aeromonas veronii VKSHM-B-307M; Aeromonas hydrophila VKShM-B-301M, Aeromonas salmonicida VKShM-B-307M. To prepare microbial suspensions, daily agar cultures of test strains are washed off with 0.9% sterile isotonic sodium chloride solution, suspensions are adjusted to 10 units. according to the optical standard of turbidity, which corresponds to 10 9 microbial cells in 1 ml. Then serial tenfold dilutions are brought to a content of 100 thousand (10 -4 ), 10 thousand (10 -5 ), 1 thousand (10 -6 ), 100 (10 -7 ), 10 (10 -8 ) and 1 ( 10 -9 ) microbial cells in 1 ml of suspension. Seeding is performed from each dilution of 1 ml in 9 ml of the experimental medium (media options 1-3) in triplicate and incubated at a temperature of 28±2°C for 18-24 hours. Inoculation is carried out from test tubes with variants of experimental media in which bacterial growth was observed, onto plates with nutrient media (fish-peptone agar, Endo agar, blood agar).
Данные по ростовым свойствам среды представлены в таблицах 3 и 4.Data on the growth properties of the medium are presented in tables 3 and 4.
Рост бактерий рода Aeromonas в количестве, соответствующем посевной дозе микроорганизма, отмечен на среде с минимальным и оптимальным содержанием питательной основы (пептон ферментативный, экстракт кормовых дрожжей, L-аргинин). Преимущественный рост аэромонад регистрировали при оптимальном содержании питательной основы. При этом видимый эффект изменения цвета среды c исходного зеленого на голубой проявлялся при повышении содержания L-аргинина с 2,0 г до 3,5 г. При использовании в среде одного индикатора бромтимоловый синий изменение цвета среды (вариант среды 2) на голубой при культивировании аэромонад не достигается. В процессе роста синегнойные палочки не изменяют исходный зеленый цвет среды. Рост других микроорганизмов (E. coli, S. paratyphi B, S. aureus, E. faecalis) зависит от посевной дозы микроорганизма и на среде с дезоксихолатом натрия и ампициллином наблюдали отсутствие или значительное угнетение роста. Увеличение количества до 3 г дезоксихолата натрия не влияет на рост энтерококков и золотистого стафилококка, по сравнению с указанными параметрами. При этом снижение количества ингибирующего вещества удешевляет стоимость среды. Питательная среда обладает хорошими ростовыми и накопительными свойствами, эффективность накопления на порядок выше чем в ГРМ-бульоне (таблица 5).The growth of bacteria of the genus Aeromonas in an amount corresponding to the inoculum dose of the microorganism was noted on a medium with a minimum and optimal content of the nutrient base (enzymatic peptone, fodder yeast extract, L-arginine). The predominant growth of aeromonads was recorded at the optimal content of the nutrient base. At the same time, the visible effect of changing the color of the medium from the initial green to blue was manifested with an increase in the content of L-arginine from 2.0 g to 3.5 g. aeromonad is not reached. In the process of growth, Pseudomonas aeruginosa does not change the initial green color of the medium. The growth of other microorganisms ( E. coli, S. paratyphi B, S. aureus, E. faecalis ) depends on the inoculum dose of the microorganism and no or significant growth inhibition was observed on the medium with sodium deoxycholate and ampicillin. Increasing the amount to 3 g of sodium deoxycholate does not affect the growth of enterococci and Staphylococcus aureus, compared with the indicated parameters. At the same time, reducing the amount of inhibitory substance reduces the cost of the medium. The nutrient medium has good growth and accumulation properties, the accumulation efficiency is an order of magnitude higher than in the GRM-broth (table 5).
Способ приготовления питательной среды для выделения аэромонад заключается в следующем: в химически чистую стеклянную термостойкую колбу, например, двухлитровую круглую плоскодонную или коническую колбу по ГОСТ 25336-82 добавляют навески в г/л: ферментативного пептона - 10,0; хлористого натрия - 9,0; экстракт кормовых дрожжей - 3,0; калий фосфорнокислый однозамещенный 1,0 г (в соответствии с ГОСТ 4198-73 ЧДА); магния сульфат - 0,2 г и вносят дистиллированную воду до 1 литра с последующим перемешиванием до полного растворения. Затем полученную смесь нагревают с последующим перемешиванием до их полного растворения. После чего добавляют навески в г/л: L-аргинин солянокислый (в соответствии с ТУ 6-09-2100-78) - 3,5 г, спиртовой раствор бромтимолового синего водорастворимый (в соответствии с ТУ 6-09-07-1602-87) - 0,03 г (в виде 1,6 % спиртового раствора - 1,88 мл), тимоловый синий (в соответствии с ТУ 6-09-3501-78) - 0,03 г и гидроксид натрия (в соответствии с ГОСТ4328-77 ЧДА) - 0,35±0,05 г (в соответствии с ГОСТ 4328-77 ХЧ). Далее устанавливают рН 8,3±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия. После чего стерилизуют автоклавированием при 1,1 атм. (121°С) в течение 10 мин. Затем в охлажденную среду вносят дезоксихолата натрия 2,0 г и ампициллина 0,005 г. Разливают в стерильные флаконы и пробирки и культивируют при температуре 28 ± 2°С в течение 18-24 часов.The method of preparing a nutrient medium for isolating aeromonads is as follows: in a chemically clean glass heat-resistant flask, for example, a two-liter round flat-bottomed or conical flask according to GOST 25336-82, weighings are added in g/l: enzymatic peptone - 10.0; sodium chloride - 9.0; fodder yeast extract - 3.0; potassium phosphate monosubstituted 1.0 g (in accordance with GOST 4198-73 NDA); magnesium sulfate - 0.2 g and distilled water is added to 1 liter, followed by stirring until complete dissolution. Then the resulting mixture is heated, followed by stirring until they are completely dissolved. After that, weights are added in g/l: L-arginine hydrochloric acid (in accordance with TU 6-09-2100-78) - 3.5 g, an alcohol solution of bromthymol blue water-soluble (in accordance with TU 6-09-07-1602- 87) - 0.03 g (in the form of a 1.6% alcohol solution - 1.88 ml), thymol blue (in accordance with TU 6-09-3501-78) - 0.03 g and sodium hydroxide (in accordance with GOST 4328-77 NDA) - 0.35 ± 0.05 g (in accordance with GOST 4328-77 KhCh). Next, adjust the pH to 8.3±0.2 using 20% aqueous sodium hydroxide solution. Then sterilized by autoclaving at 1.1 atm. (121°C) for 10 min. Then 2.0 g of sodium deoxycholate and 0.005 g of ampicillin are added to the cooled medium. It is poured into sterile vials and test tubes and cultivated at a temperature of 28 ± 2°C for 18-24 hours.
Claims (2)
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2795907C1 true RU2795907C1 (en) | 2023-05-15 |
Family
ID=
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU544674A1 (en) * | 1975-07-24 | 1977-01-30 | Московский Ордена Трудового Красного Знамени Научно-Исследовательский Институт Гигиены Им. Эрисмана | Nutrient medium for detection of aeromonas |
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU544674A1 (en) * | 1975-07-24 | 1977-01-30 | Московский Ордена Трудового Красного Знамени Научно-Исследовательский Институт Гигиены Им. Эрисмана | Nutrient medium for detection of aeromonas |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
КАЛИНИНА Г.П. Методы исследования объектов окружающей среды и патологического материала на аэромонады: Метод. Рекомендации, Министерство здравоохранения РСФСР, Гл. упр. н.-и. ин-тов и координации науч. исслед, 1980. - 11 с. MARIA L. et al. Evaluation of Several Selective Media for Recovery of Aeromonas hydrophila from Polluted Waters, Applied and environmental microbiology, Vol. 54, No. 11, Nov. 1988, p. 2786-2792. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Udaka | Screening method for microorganisms accumulating metabolites and its use in the isolation of Micrococcus glutamicus | |
Yaashikaa et al. | Isolation and identification of Vibrio cholerae and Vibrio parahaemolyticus from prawn (Penaeus monodon) seafood: Preservation strategies | |
CN113186139B (en) | Lactobacillus plantarum LR002 and application thereof | |
CN101970682A (en) | Method for detecting and/or identifying clostridium difficile | |
RU2795907C1 (en) | Selective nutrient medium for isolating aeromonads from water bodies | |
CN108795817A (en) | The preparation of a kind of microbial bacterial agent and the microbial bacterial agent, application method | |
Islam et al. | Effect of different C/N ratios on volume and potential microbial composition of flocs in freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii culture system | |
CN109439725A (en) | Chromogenic culture medium and its application for Escherichia coli identification | |
US8414878B2 (en) | Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein | |
CN106086159B (en) | A kind of zymolyte culture medium that can detect two kinds of fecal pollution indicator bacterias simultaneously and its application | |
RU2416635C2 (en) | Chromogenic culture medium for detecting and identifying klebsiella | |
CN111607542A (en) | Microecological preparation and preparation method and application thereof | |
RU2435845C1 (en) | METHOD OF Shewanella BACTERIA RECOVERY AND IDENTIFICATION | |
RU2321636C1 (en) | Method for bacteriological detection of nocardiomorphous actinomyces | |
Bhattarai et al. | Prevalence of Thermophilic Campylobacter Isolated from Water Used in Slaughter House of Kathmandu and Ruphendehi District, Nepal | |
RU2792438C1 (en) | Selective nutrient medium with mannitol, bile and polymyxin to detect bacteria of the genera proteus, morganella, providencia, dry | |
CN107723336A (en) | Staphylococcus aureus fluorescence developing culture medium | |
RU2648160C2 (en) | Nutrient medium for the isolation of bacteria yersinia enterocolitica | |
RU2827840C1 (en) | Elective-differential nutrient medium for klebsiella species recovery | |
RU2787267C1 (en) | Method for identifying acinetobacter baumannii bv. tryptophandestruens | |
CN111109289A (en) | Stable solid hydrogen peroxide adduct and application thereof in livestock and poultry and aquaculture fields | |
RU2756201C1 (en) | Storage nutrient medium for transportation of biomaterial and environmental objects contaminated with foreign microflora to be examined for brucellosis | |
RU2184774C1 (en) | Strain of bacterium bacillus subtilis used for preparing probiotic preparation designated for prophylaxis and treatment of gastroenteric diseases in animals, poultry and piscine | |
Barker | Utilization of d-tartaric acid by Salmonella Paratyphi B and Salmonella Java: comparison of anaerobic plate test, lead acetate test and turbidity test | |
RU2812423C1 (en) | Dry differential selective nutrient medium for isolation of shigella and salmonella (hectoene entero-agar) |