RU2789460C1 - Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта хозяюшка - Google Patents

Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта хозяюшка Download PDF

Info

Publication number
RU2789460C1
RU2789460C1 RU2022109154A RU2022109154A RU2789460C1 RU 2789460 C1 RU2789460 C1 RU 2789460C1 RU 2022109154 A RU2022109154 A RU 2022109154A RU 2022109154 A RU2022109154 A RU 2022109154A RU 2789460 C1 RU2789460 C1 RU 2789460C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
potato plants
plants
nutrient medium
potatoes
Prior art date
Application number
RU2022109154A
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Васильевна Киргизова
Юлия Вячеславовна Иордан
Рауза Масгутовна Турпанова
Айсарат Махмудовна Гаджимурадова
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Элита"
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Элита" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Элита"
Application granted granted Critical
Publication of RU2789460C1 publication Critical patent/RU2789460C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к технологии ускоренного размножения пробирочных растений картофеля в условиях in vitro. Изобретение представляет собой способ микроклонального размножения картофеля, включающий размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании питательной среды Мурасиге и Скуга, содержащей макросоли, микросоли, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, глюкозу, агар. При этом осуществляют предварительное оздоровление исходных растений картофеля от вирусной инфекции стерилизацией апикальных меристем (0,2-0,5 мм) в 0,3%-ном растворе диацида в течение 3-5 минут с последующей трехкратной промывкой стерильной дистиллированной H2O. Для культивирования оздоровленных растений (эксплантов) картофеля в питательную среду вносят феруловую кислоту 0,5 мг/л, кинетин 1мг/л, РРТ 0,01 мг/л при следующем соотношении компонентов: макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO4·7H2O - 5,0 мг/л, CaCl2·2H2O - 440 мг/л, мезо-инозит - 100 мг/л, тиамин - 1,0 мг/л, пиридоксин - 1,0 мг/л, сахароза - 20 000 мг/л, агар - 7000 мг/л, рН 5,7-5,8. Культивирование растений (эксплантов) осуществляют в культуральной комнате при освещенности 5000 люкс, фотопериоде - 16 часов, температуре 25°С и влажности воздуха 70-80%. Способ позволяет повысить эффективность размножения пробирочных растений картофеля свободных от вирусных и бактериальных инфекций в условиях in vitro, прост в использовании и может быть использован на предприятиях для получения стерильного семенного картофеля. 1 табл.

Description

Изобретение относится к области сельского хозяйства, а именно, к технологии ускоренного размножения пробирочных растений картофеля в условиях in vitro. Изобретение может быть использовано для оздоровления пробирочных растений при производстве семенного посадочного материала свободного от вирусных и бактериальных инфекций из меристемных линий.
Картофель (Solanum tuberosum L.) является наиболее важным продуктом питания населения, выращивается в России повсеместно, практически во всех климатических зонах. Россия занимает одно из последних мест по урожайности культуры картофеля. Зараженность вирусными и бактериальными инфекциями семенного материала является одной из основных причин низкой урожайности картофеля. Картофель поражается бактериальными и вирусными инфекциями на всех этапах жизненного цикла: до появления всходов, во время вегетации, в период хранения. Возбудители инфекций способны накапливаться и длительно сохраняться в почве.
По данным ЗАО «Тепличный» г. Омска (2019 г), отечественный семенной картофель в промышленном картофелеводстве региона, практически на 100% поражен мозаичными вирусами (X, Y, S, L, М) и бактериальными инфекциями, приводящими к большим потерям урожая (до 50 %) и снижению качества. Сибирский сорт картофеля «Хозяюшка» высокоурожайный, крупноплодный, среднеспелый сорт картофеля столового назначения, отличается высокой товарностью и устойчивостью к температурным стрессам, однако сорт «Хозяюшка» находится на грани полного исчезновения за счет вырождения вирусами и вследствие этого в настоящее время в промышленном картофелеводстве Западной Сибири не используется. Сорт «Хозяюшка» рекомендован к выращиванию в двух регионах: Западно-Сибирском (Республика Алтай и Алтайский край, Кемеровская, Новосибирская, Омская, Томская, Тюменская области) и Восточно-Сибирском (Республики Бурятия, Якутия, Тыва, Хакасия, Иркутская область, Красноярский и Забайкальский края).
Перспективным направлением для производства картофеля, свободного от вирусных и бактериальных инфекции, является микроклональное размножение картофеля из меристемных линий. Картофельные вирусные заболевания чаще всего передаются через семенной материал. В процессе длительного культивирования оздоровленных от вирусных и бактериальных инфекций растений из меристемных линий в условиях in vitro, часто происходит контаминация материала бактериальной и грибной микрофлорой за счет инфицирования эксплантов, компонентов питательной среды, за счет внутрилабораторной передачи инфекции из воздуха, от персонала и от одной культуры к другим.
Известен способ микроклонального размножения картофеля, включающий стерилизацию питательной среды, культивирование растений картофеля in vitro путем микрочеренкования исходных растений. Используют питательную среду, содержащую макро- и микроэлементы по прописи Мурасиге-Скуга, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, аскорбиновую кислоту. Метод, отличается тем, что предварительное оздоровление исходных растений картофеля от вирусной инфекции проводят стерилизацией в 0,3%-ном растворе диацида в течение 3-5 минут, с последующей трехкратной промывкой стерильной дистиллированной H2O. Причем для культивирования оздоровленных растений и получения микроклубней картофеля используют питательную среду, содержащую дополнительно аденин 1-1,5 мг/л, кинетин 1-2 мг/л, индолилуксусную кислоту (ИУК) 0,5-1,5 мг/л, а тиамин, аскорбиновая кислота, Fe-хелат и сахароза берутся в следующей концентрации: 1-1,2 мг/л; 2,1-4 мг/л; 374-390 мг/л и 81000-85000 мг/л, получение микроклубней картофеля осуществляют при температуре 19-20°C при условии светового дня 8 часов (5000 лк) и полной темноты 16 часов и относительной влажности воздуха 70-80% [Патент РФ на изобретение №2637361, МПК А 01 Н 4/00, опубликован 04.12.2017 г.].
Недостатком этого способа микроклонального размножения картофеля применительно к генотипу сорта «Хозяюшка» является отсутствие компонента питательной среды для снижения контаминации вирусной и бактериальной микрофлоры в процессе длительного культивирования стерильных растений картофеля из меристемных линий в условиях in vitro.
Наиболее близким по технической сущности к заявленному изобретению является способ микроклонального размножения картофеля, включающий размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании безгормональной питательной среды с рН 5,7-5,8, содержащей микросоли и макросоли по Мурасиге и Скуга, Fe2SO4, CaCl2, мезо-инозит, тиамин, пиридоксин, никотиновую кислоту, сахарозу, глюкозу, агар, отличающийся тем, что дополнительно в питательную среду вводят биологически активные вещества мицелиального гриба Trichoderma lixii при следующем соотношении компонентов: макросоли - 50 мг/л, микросоли - 1 мг/л, Fe2SO4 7H2O - 5,0 мг/л, CaCl2 H2O - 440 мг/л, мезо-инозит - 100 мг/л, тиамин 1,0 мг/л, пиридоксин - 1,0 мг/л, никотиновая кислота - 0,5 мг/л, сахароза - 25 г/л, глюкоза - 25 г/л, агар - 6 г/л, биологически активные вещества - мицелиального гриба Trichoderma lixii - 0,5 мг/л [Патент РФ на изобретение №2702765, МПК А 01 Н 4/00, опубликован 11.10.2019 г.].
Недостатками этого способа микроклонального размножения картофеля применительно к генотипу сорта «Хозяюшка» является ограничение использования тетрациклина для производства оздоровленных пробирочных растений ввиду того, что антибиотик активен в отношении лишь некоторых грамотрицательных бактерий. К антибиотику тетрациклину не устойчивы микроорганизмы большинства грибов, которые чаще всего вызывают контаминацию питательной среды при длительном культивировании стерильных растений в условиях in vitro. Недостаточно высокая скорость роста эксплантов и растений-регенерантов in vitro на безгормональной питательной среде.
Задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является повышение эффективности размножения оздоровленных пробирочных растений картофеля сорта «Хозяюшка», полученных из меристемных линий, в условиях in vitro.
Техническим результатом заявленного изобретения является получение в короткие сроки оздоровленных растений сибирского сорта картофеля «Хозяюшка», повышение коэффициента микроклонального размножения растений-регенерантов, ускорение роста эксплантов, снижение вирусной и бактериальной нагрузки при длительном культивировании стерильных растений in vitro.
Указанный технический результат достигается тем, что в способе микроклонального размножения картофеля, включающем размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании питательной среды Мурасиге и Скуга, содержащей макросоли, микросоли, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, глюкозу, агар, рН 5,7-5,8. Согласно заявленному изобретению осуществляют предварительное оздоровление исходных растений картофеля от вирусной инфекции стерилизацией в 0,3%-ном растворе диацида в течение 3-5 минут с последующей трехкратной промывкой стерильной дистиллированной H2O, причем для культивирования оздоровленных растений и эксплантов картофеля используют питательную среду с дополнительным внесением феруловой кислоты 0,5 мг/л, кинетина 1мг/л, PPT - 0,01 мг/л, при следующем соотношении компонентов: макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO4·7H2O - 5,0 мг/л, CaCl2·2H2O - 440 мг/л, мезо-инозит - 100 мг/л, тиамин - 1,0 мг/л, пиридоксин - 1,0 мг/л, сахароза - 20 000 мг/л, агар - 7000 мг/л, рН 5,7-5,8.
Отличительным признаком заявляемого способа является введение в состав питательной среды для размножения пробирочных растений картофеля PPT (фосфинотрицин, Баста) в концентрации 0,1 мг/л, который обеспечивает деконтаминацию от нежелательной вирусной и бактериальной микрофлоры культивируемого растительного материала и обогащение, введение биологически активного вещества - феруловой кислоты в концентрации 0,5 мг/л и фитогормона - кинетина в концентрации 1мг/л ускоряют ростовые факторы.
Комплексное использование в питательной среде феруловой кислоты, кинетина и взаимовлияние их друг на друга способствует более интенсивному стимулированию ростовых процессов, ризогенезу, морфогенезу и приживаемости эксплантов. Учитывая, что соотношение биологически активных веществ - феруловой кислоты и кинетина, является ключевым фактором деления клеток и дифференцировки тканей растения картофеля, экспериментальным путем установлено оптимальное соотношение и концентрации внесения в питательную среду. Введенная в состав питательной среды феруловая кислота обладает активным действием на ростовые процессы, выступая в качестве активатора ИУК-оксидазы, участвуя в ее биосинтезе. Феруловая кислота экономичнее, чем гетерауксины, что снижает себестоимость получения оздоровленных растений.
Доказано, что использование PPT (фосфинотрицин) в концентрации 0,01 мг/л для неустойчивых растений и выше 0,5 мг/л для устойчивых растений, снижает уровень контаминации в процессе культивирования in vitro, данный гербицид в низких концентрациях в питательной среде обладает бактерицидным и фунгицидным действием.
Опыты проводились в условиях лаборатории «Клеточная биотехнология» ООО «Элита» с оздоровленным сортом картофеля «Хозяюшка».
Способ микроклонального размножения картофеля осуществляют следующим образом.
Отбирают экспланты растений картофеля, регенерированные из апикальных меристем размером 0,1-0,5 мм с одним примордиальным листом, стерильные от вирусной и бактериальной инфекций. Растения картофеля должны иметь 8-10 междоузлий.
Для пересадки эксплантов растений картофеля готовят твердую питательную среду по прописи Мурасиге и Скуга, содержащую макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, феруловой кислоты 0,5 мг/л, кинетина 1мг/л, РРТ 0,01 мг/л, Fe2SO4·7H2O - 5,0 мг/л, CaCl2·2H2O - 440 мг/л, мезо-инозит - 100 мг/л, тиамин - 1,0 мг/л, пиридоксин - 1,0 мг/л, сахароза - 20 000 мг/л, агар - 7000 мг/л. Уровень рН питательной среды перед автоклавированием - 5,8. Питательную среду автоклавируют в автоклаве под давлением 1,0 атм, температуре 110°С в течение 10 минут. РРТ в концентрации 0,01 мг/л вносят в стерильных условиях ламинар-бокса в питательную среду, остывшую до 55-60°С после автоклавирования, затем питательную среду разливают в пробирки и закрывают ватно-марлевыми пробками.
Затем в условиях ламинар-бокса растения картофеля, регенерированные из апикальных меристем, извлекают из пробирки пинцетом и кладут на стерильную крафт-бумагу (100*100 мм). Стерильными инструментами растения извлекают из пробирок и скальпелем разрезают на черенки, которые содержат кусочек стебля с листочком и пазушной почкой. Длина микрочеренка составляет 10-15 мм, 2 мм над глазком, остальные под глазком. Затем черенки с помощью пинцета переносят в пробирки с твердой питательной средой по прописи Мурасиге и Скуга, содержащую макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, феруловой кислоты 0,5 мг/л, кинетина 1мг/л, РРТ 0,01 мг/л. Культивирование растений (эксплантов) осуществляют в культуральной комнате при освещенности 5000 люкс, фотопериоде - 16 часов, температуре 25°С и влажности воздуха 70-80%. В процессе роста (интервал 14 суток) проводят оценку морфометрических показателей и наличие контаминантов в выросших растениях с 5-6 черенками. В таблице 1 представлены результаты исследований по размножению оздоровленных пробирочных растений картофеля сорта «Хозяюшка», полученных из меристемных линий, в условиях in vitro.
Таблица 1.
Морфологические показатели регенерации
Корневая система,
шт.
Листья,
шт.
Высота растений,
см.
Количество междоузлий, шт.
Кол-во дней 1 7 14 1 7 14 1 7 14 1 7 14
Предлагаемая
питательная среда
0 4,1 11,2 1,0 9,3 11,5 2,1 5,7 12,1 1,0 5,1 8,2
Контрольная питательная среда (прототип) 0 3,6 7,1 1,0 7,1 9,1 2,2 5,1 10,2 1,0 4,1 7,1
Использование заявляемого способа микроклонального размножения картофеля in vitro позволяет получить безвирусные растения-регенеранты отечественного сорта картофеля «Хозяюшка», полученных из меристемных линий, с повышенной жизнеспособностью, приживаемостью, высокими морфометрическими показателями, отсутствием контаминации при культивировании вирусной и бактериальной инфекциями.
Предлагаемый способ прост в использовании, экологически безопасен и может быть использован на предприятиях для получения стерильного семенного картофеля.

Claims (1)

  1. Способ микроклонального размножения картофеля, включающий размножение пробирочных растений картофеля in vitro при использовании питательной среды Мурасиге и Скуга, содержащей макросоли, микросоли, Fe-хелат, агар-агар, витамины по Уайту и сахарозу, глюкозу, агар, рН 5,7-5,8, отличающийся тем, что осуществляют предварительное оздоровление исходных растений картофеля от вирусной инфекции стерилизацией апикальных меристем размером 0,2-0,5 мм в 0,3%-ном растворе диацида в течение 3-5 минут с последующей трехкратной промывкой стерильной дистиллированной Н2О, оздоровленные растения и экспланты картофеля культивируют с использованием питательной среды Мурасиге и Скуга с дополнительным внесением феруловой кислоты 0,5 мг/л, кинетина 1 мг/л, РРТ 0,01 мг/л при следующем соотношении компонентов: макросоли 50 мг/л, микросоли 1 мг/л, Fe2SO4⋅7Н2О - 5,0 мг/л, CaCl2⋅2H2O - 440 мг/л, мезоинозит - 100 мг/л, тиамин - 1,0 мг/л, пиридоксин - 1,0 мг/л, сахароза - 20 000 мг/л, агар - 7000 мг/л, рН 5,7-5,8.
RU2022109154A 2022-04-07 Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта хозяюшка RU2789460C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2789460C1 true RU2789460C1 (ru) 2023-02-03

Family

ID=

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2814473C1 (ru) * 2023-12-21 2024-02-29 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук (СФНЦА РАН) Способ микроклонального размножения in vitro микрорастений картофеля сорта СОЛНЕЧНЫЙ

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2637361C1 (ru) * 2016-08-04 2017-12-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта картофеля алена
RU2702765C2 (ru) * 2018-03-12 2019-10-11 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Орловский государственный аграрный университет имени Н.В. Парахина" Способ микроклонального размножения картофеля

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2637361C1 (ru) * 2016-08-04 2017-12-04 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Омский государственный технический университет" Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта картофеля алена
RU2702765C2 (ru) * 2018-03-12 2019-10-11 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Орловский государственный аграрный университет имени Н.В. Парахина" Способ микроклонального размножения картофеля

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MURASHIGE Т., SKOOG F., A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures, Physiol. Plant., 1962., vol. 5, 95, p. 473-497. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2814473C1 (ru) * 2023-12-21 2024-02-29 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук (СФНЦА РАН) Способ микроклонального размножения in vitro микрорастений картофеля сорта СОЛНЕЧНЫЙ

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Batukaev et al. Use of growth regulators in grapes grinding by in vitro method
KR101453903B1 (ko) 기내 식물체로부터 채취한 생장점 배양을 통한 바이러스 무병주 생산방법
CN108419679B (zh) 西红花的组织培养法
KR100973839B1 (ko) 노랑무늬붓꽃의 잎 절편을 이용한 캘러스의 대량증식방법및 노랑무늬붓꽃의 대량분화방법
CN108419675A (zh) 一种紫果西番莲顶梢的组培育苗方法
Zinabu et al. Explants sterilization protocol for in-vitro propagation of elite enset (Ensete ventricosum (Welw.) Chessman) cultivars
US7189568B2 (en) Method and composition for clonal propagation of Pandanus amaryllifolius
Jane et al. In vitro propagation of two elite cooking banana cultivars-FHIA 17 and INJAGI
Radomir Comparative study on the in vitro multiplication potential of Magnolia stellata and Magnolia× soulangiana species.
RU2789460C1 (ru) Способ микроклонального размножения картофеля in vitro сорта хозяюшка
Nguyen et al. In vitro propagation of a Vietnam endemic lady’s slipper orchid (Paphiopedilum vietnamense O. Gruss & Perner)
Llorente et al. In vitro propagation of fraser photinia using Azospirillum-mediated root development
Zemene et al. Protocol optimization for micro-propagation of Green pepper (Capsicum annum L.) cultivated in Ethiopia
Buckseth et al. Effect of streptomycin and gentamycin on in vitro growth and cultural contaminants of potato cultivars
Putri et al. Tissue culture sterilization of Callophylum inophyllum: Renewable energy resources
Distabanjong et al. Production of phytoplasma-free plants in sugarcane (Saccharum spp.) using temporary immersion bioreactor
Sharma et al. Artificial seeds for propagation and preservation of Spilanthes acmella (L.) Murr., a threatened pesticidal plant species
Sarker et al. Establishment of a standard protocol for in vitro meristem culture and plant regeneration of Citrus aurantifollia
Maki et al. Time course study of ancymidol for micropropagation of Hosta in a liquid culture system
RU2702765C2 (ru) Способ микроклонального размножения картофеля
Naaty et al. In vitro regeneration via somatic embryogenesis of Schizozygia Coffeoides Baill (Mpelepele)
Wasiati et al. The combination of murashige and skoog (MS) media and activated charcoal on the growth of the Vanda helvola orchid plant in vitro
Kothawale et al. Response of BA and NAA on shoot proliferation of Punica granatum L
Mathew In vitro callus induction and plant regeneration in roseapple (Syzygium jambos L.)
Madhuri et al. Effect of chemical sterilants on surface sterilization of flower stalk during in vitro propagation of Phalaenopsis hybrids cv. Shagan