RU2788097C2 - Therapeutic and neuroprotective peptides - Google Patents

Therapeutic and neuroprotective peptides Download PDF

Info

Publication number
RU2788097C2
RU2788097C2 RU2019126014A RU2019126014A RU2788097C2 RU 2788097 C2 RU2788097 C2 RU 2788097C2 RU 2019126014 A RU2019126014 A RU 2019126014A RU 2019126014 A RU2019126014 A RU 2019126014A RU 2788097 C2 RU2788097 C2 RU 2788097C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
retinal
cells
luminate
field
glycinyl
Prior art date
Application number
RU2019126014A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2019126014A (en
RU2019126014A3 (en
Inventor
Хампар Л. КАРАГЕОЗИАН
Джон И. ПАРК
Викен Х. КАРАГЕОЗИАН
Original Assignee
Аллегро Фармасьютикалс, Инк.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Аллегро Фармасьютикалс, Инк. filed Critical Аллегро Фармасьютикалс, Инк.
Priority claimed from PCT/US2018/014287 external-priority patent/WO2018136669A2/en
Publication of RU2019126014A publication Critical patent/RU2019126014A/en
Publication of RU2019126014A3 publication Critical patent/RU2019126014A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2788097C2 publication Critical patent/RU2788097C2/en

Links

Images

Abstract

FIELD: biotechnology; medicine.
SUBSTANCE: use of peptide is proposed, which contains glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteine acid-threonyl-proline for restoration of previously lost visual acuity in a subject, which is a human or an animal suffering from non-exudative or dry age-related macular degeneration, or for protection of the optic nerve, retinal Muller cells, retinal neurons, or retinal pigment epithelium cells from damage due to increased intraocular pressure or degenerative retinal disease.
EFFECT: invention provides improvement of best corrected visual acuity (hereinafter – BCVA) in subjects with dry age-related macular degeneration, in particular BCVA was improved for 20 letters.
6 cl, 6 dwg, 5 tbl, 6 ex

Description

Родственные заявкиRelated Applications

По настоящей заявке испрашивается приоритет в соответствии с предварительными заявками на патент США № 62/448300, озаглавленной «Нейропротекторные пептиды», поданной 19 января 2017 г., и 62/500998, озаглавленной «Терапевтические пептиды и их механизмы действия», поданной 3 мая 2017 г., полное раскрытие обоих этих заявок включено в настоящий документ посредством ссылки.This application claims priority under U.S. Provisional Applications No. 62/448,300 entitled "Neuroprotective Peptides" filed January 19, 2017 and 62/500998 entitled "Therapeutic Peptides and Their Mechanisms of Action" filed May 3, 2017 the full disclosure of both of these applications is incorporated herein by reference.

Перечень последовательностейSequence listing

Настоящая заявка содержит Перечень последовательностей, который был представлен в электронном виде в формате ASCII и настоящим полностью включен посредством ссылки. Указанная копия ASCII, созданная 31 мая 2018 г., называется ALLEG-008PC_SL.txt и имеет размер 591 байт. This application contains a Sequence Listing which has been submitted electronically in ASCII format and is hereby incorporated by reference in its entirety. The specified ASCII copy, created on May 31, 2018, is named ALLEG-008PC_SL.txt and is 591 bytes in size.

Область техники, к которой относится настоящее изобретениеThe field of technology to which the present invention relates

Настоящее изобретение в целом относится к областям биологии и медицины и, в частности, к нейропротекторным пептидам, используемым для лечения повреждений нервов, возникающих в результате нейродегенеративных или нейропатических заболеваний (например, глаукомы, пигментного ретинита, наследственных или приобретенных дегенераций сетчатки, периферической нейропатии, нейродегенеративной центральной нервной системы (ЦНС) или периферических нарушений), гипоксических поражений (например, остановки сердца или инсульта) или механических повреждений (например, травмы, повреждений спинного мозга), а также применимы для усиления восстановления сетчатки и неврологических тканей и регенерационной терапии сетчатки и неврологических заболеваний посредством улучшения иммуномодулирующей функции.The present invention generally relates to the fields of biology and medicine and, in particular, to neuroprotective peptides used to treat nerve damage resulting from neurodegenerative or neuropathic diseases (for example, glaucoma, retinitis pigmentosa, hereditary or acquired retinal degenerations, peripheral neuropathy, neurodegenerative central nervous system (CNS) or peripheral disorders), hypoxic injury (e.g., cardiac arrest or stroke) or mechanical injury (e.g., trauma, spinal cord injury), and are also applicable to enhance retinal and neurological tissue repair and regeneration therapy of the retina and neurological diseases by improving immunomodulatory function.

Предшествующий уровень техники настоящего изобретенияBackground of the Invention

В соответствии с 37 CFR 1.71(e) настоящий патентный документ содержит материал, который подлежит защите авторских прав, и владелец настоящего патентного документа сохраняет за собой все авторские права.Pursuant to 37 CFR 1.71(e), this patent document contains material that is subject to copyright protection, and the owner of this patent document retains all copyright.

Известно, что помимо травматических повреждений нервов и гипоксических поражений различные заболевания вызывают нейродегенеративные или нейропатические эффекты. Например, глаукома представляет собой нейропатию зрительного нерва, которая вызывает экскавацию или «купирование» диска зрительного нерва, дегенерацию ганглиозных клеток сетчатки и, как следствие, потерю поля зрения. Поскольку повышенное внутриглазное давление (IOP) является основным фактором риска развития глаукомы, многие стратегии лечения были направлены на снижение внутриглазного давления.In addition to traumatic nerve injuries and hypoxic lesions, various diseases are known to cause neurodegenerative or neuropathic effects. For example, glaucoma is an optic neuropathy that causes excavation or “cupping” of the optic disc, degeneration of retinal ganglion cells, and consequent loss of the visual field. Because elevated intraocular pressure (IOP) is a major risk factor for the development of glaucoma, many treatment strategies have focused on lowering intraocular pressure.

Недавние исследования показывают, что дегенерация нерва, возникающая при глаукоме, может быть результатом процесса, подобного тому, который происходит после травматического повреждения нейронов центральной нервной системы (ЦНС). Например, после повреждения ЦНС уровни некоторых нейротоксичных веществ увеличиваются во внеклеточной жидкости. Считается, что эти токсичные вещества затем вызывают вторичное повреждение нейронов в дополнение к механическому повреждению, которое произошло в результате первичной травмы. Лекарственные средства, способные предотвращать или уменьшать действие этих нейротоксических веществ, могут быть кандидатами для разработки не только в качестве нейропротекторов для глаз, но также и в качестве нейропротекторов, применимых для уменьшения гибели или нарушений нейронов после повреждения или травмы других нейрональных тканей, включая в себя головной и спинной мозг. Смотрите Yoles, E., et al.; a2-Adrenoreceptor Agonists Are Neuroprotective in a Rat Model of Optic Nerve Degeneration; Investigative Ophthalmology & Visual Science, Vol. 40, No. 1, pp. 65-73 (January 1999) и Neufeld, A.H., et al.; Inhibition of Nitric-Oxide Synthase 2 by Aminoguanidine Provides Neuroprotection of Retinal Ganglion Cells in a Rat Model of Chronic Glaucoma; Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96 (1999).Recent studies suggest that the nerve degeneration that occurs in glaucoma may be the result of a process similar to that which occurs after traumatic injury to central nervous system (CNS) neurons. For example, after CNS injury, the levels of certain neurotoxic substances increase in the extracellular fluid. It is believed that these toxic substances then cause secondary neuronal damage in addition to the mechanical damage that occurred as a result of the primary injury. Drugs capable of preventing or reducing the effects of these neurotoxic agents may be candidates for development not only as neuroprotective agents for the eye, but also as neuroprotective agents useful in reducing neuronal death or damage following damage or injury to other neuronal tissues, including brain and spinal cord. See Yoles, E., et al.; a2-Adrenoreceptor Agonists Are Neuroprotective in a Rat Model of Optic Nerve Degeneration; Investigative Ophthalmology & Visual Science, Vol. 40, no. 1, pp. 65-73 (January 1999) and Neufeld, A.H., et al.; Inhibition of Nitric-Oxide Synthase 2 by Aminoguanidine Provides Neuroprotection of Retinal Ganglion Cells in a Rat Model of Chronic Glaucoma; Proc. Natl. Acad. sci. USA 96 (1999).

Заявитель в настоящее время разрабатывает синтетический олигопептид (Luminate®, Allegro Ophthalmics, LLC), который ингибирует ряд интегринов и при введении в глаз может вызывать витреолиз, заднюю витреоретинальную отслойку (PVD) и может использоваться для лечения нарушений зрения, таких как влажная форма макулодистрофии (WMD), диабетическая ретинопатия (PDR), диабетическая макулопатия (DME) и витреомакулярная тракция (VMT). Как описано в настоящем документе, заявитель обнаружил, что этот синтетический олигопептид также демонстрирует нейропротекторные эффекты в крысиной модели дегенерации зрительного нерва и, как указано выше, также может быть эффективным для предотвращения или восстановления других типов повреждения или дегенерации нерва, таких как вторичное повреждение нейронов, связанное с травматическими повреждениями.Applicant is currently developing a synthetic oligopeptide (Luminate®, Allegro Ophthalmics, LLC) that inhibits a number of integrins and when injected into the eye can cause vitreolysis, posterior vitreoretinal detachment (PVD) and can be used to treat visual impairments such as wet macular degeneration ( WMD), diabetic retinopathy (PDR), diabetic maculopathy (DME), and vitreomacular traction (VMT). As described herein, Applicant has found that this synthetic oligopeptide also exhibits neuroprotective effects in a rat model of optic nerve degeneration and, as stated above, may also be effective in preventing or repairing other types of nerve injury or degeneration such as secondary neuronal injury, associated with traumatic injuries.

Краткое раскрытие настоящего изобретенияBrief summary of the present invention

В соответствии с настоящим изобретением предложен способ индукции у человека или отличного от человека животного эффекта, выбранного из следующих: нейропротекция, защита от патологии или повреждения нервов или их уменьшение, лечение глаукомы, лечение возрастной макулярной дегенерации или других унаследованных или приобретенных дегенераций сетчатки, усиление восстановления ткани сетчатки, усиление регенеративной терапии сетчатки посредством активации врожденных иммунных клеток или лечение наследственной или приобретенной дегенерации сетчатки. Такой способ предусматривает введение субъекту неприродного пептида, который вызывает такой эффект, в количестве, которое эффективно для того, чтобы вызвать такой эффект.The present invention provides a method for inducing in a human or non-human animal an effect selected from the following: neuroprotection, protection against or reduction of nerve pathology or damage, treatment of glaucoma, treatment of age-related macular degeneration or other inherited or acquired retinal degenerations, enhancement of recovery retinal tissue, enhancing retinal regenerative therapy by activating innate immune cells, or treating hereditary or acquired retinal degeneration. Such a method involves administering to the subject a non-natural peptide that causes such an effect, in an amount that is effective to cause such an effect.

В соответствии с настоящим изобретением, пептид может содержать глицинил-аргинил-глицинил-цистеиновую кислоту-треонил-пролин (SEQ ID NO: 1), включая в себя любой фрагмент, аналог, производное, фармацевтически приемлемую соль, гидрат, изомер, мультимер, циклическую форму, линейную форму, конъюгат, производное или другую модифицированную форму, которая вызывает указанный эффект. Другие неприродные пептиды, которые могут быть использованы в способах по настоящему изобретению, могут включать в себя некоторые из соединений, описанных в рассматриваемой предварительной заявке на патент США № 62/521984, поданной 19 июня 2017 г., полное описание которой прямо включено в настоящий документ посредством ссылки.In accordance with the present invention, the peptide may contain glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteinic acid-threonyl-proline (SEQ ID NO: 1), including any fragment, analogue, derivative, pharmaceutically acceptable salt, hydrate, isomer, multimer, cyclic form, linear form, conjugate, derivative or other modified form that causes the specified effect. Other non-natural peptides that may be used in the methods of the present invention may include some of the compounds described in pending US Provisional Application No. 62/521,984, filed June 19, 2017, the full disclosure of which is expressly incorporated herein. through a link.

Кроме того, в соответствии с настоящим изобретением, способ может быть осуществлен для защиты от повреждения, уменьшения повреждения или восстановления функции после повреждения зрительного нерва и/или сетчатки у субъекта, страдающего от глаукомы, возрастной макулярной дегенерации, сухой макулярной дегенерации или других наследственных или приобретенных дегенераций сетчатки, таких как пигментный ретинит.In addition, in accordance with the present invention, the method can be carried out to protect against damage, reduce damage, or restore function after damage to the optic nerve and/or retina in a subject suffering from glaucoma, age-related macular degeneration, dry macular degeneration, or other hereditary or acquired retinal degenerations such as retinitis pigmentosa.

Кроме того, в соответствии с настоящим изобретением способ может быть осуществлен для лечения субъекта, который перенес травму, механическое повреждение или поражение (например, гипоксическое или ишемическое поражение) головного мозга, спинного мозга, ЦНС или периферической нервной системы.In addition, in accordance with the present invention, the method can be carried out for the treatment of a subject who has suffered trauma, mechanical damage or damage (for example, hypoxic or ischemic damage) to the brain, spinal cord, CNS or peripheral nervous system.

Кроме того, в соответствии с настоящим изобретением способ может быть осуществлен для лечения или восстановления ослабленной функции головного мозга или другой части нервной системы субъекта после события, повреждающего нерв или головной мозг, такого как заболевание, травма или поражение, включая в себя, без ограничения, остановку сердца, инсульт, гипоксическое или ишемическое поражение, заболевание, нарушение или травму.In addition, in accordance with the present invention, the method can be carried out to treat or restore impaired function of the brain or other part of the nervous system of a subject after a nerve or brain damaging event, such as a disease, injury, or injury, including, without limitation, cardiac arrest, stroke, hypoxic or ischemic injury, disease, disorder or injury.

Кроме того, в соответствии с настоящим изобретением способ может быть осуществлен для защиты или уменьшения повреждения нерва из-за нейропатического или нейродегенеративного заболевания или нарушения, будь то глазное или системное.In addition, according to the present invention, the method can be carried out to protect or reduce nerve damage due to a neuropathic or neurodegenerative disease or disorder, whether ocular or systemic.

Другие аспекты и детали настоящего изобретения будут понятны после прочтения подробного описания и примеров, изложенных ниже.Other aspects and details of the present invention will become apparent upon reading the detailed description and examples set forth below.

Краткое описание графических материаловBrief description of graphic materials

Следующее подробное описание и примеры предоставлены с целью неисчерпывающего описания некоторых, но не обязательно всех, примеров или вариантов осуществления настоящего изобретения и никоим образом не должны ограничивать объем настоящего изобретения.The following detailed description and examples are provided for the purpose of non-exhaustive description of some, but not necessarily all, examples or embodiments of the present invention and should in no way limit the scope of the present invention.

Фиг. 1 представляет собой гистограмму сравнения количества ганглиозных клеток в каждом поле с количеством исследованных полей, как описано в примере 1 ниже, при обработке люминатом по сравнению с контролем.Fig. 1 is a bar graph comparing the number of ganglion cells in each field with the number of fields examined, as described in Example 1 below, when treated with luminate compared to control.

Фиг. 2 представляет собой гистограмму сравнения общего количества клеток во всех полях с количеством всех клеток при обработке люминатом и контроле, как описано в примере 1 ниже, при обработке люминатом и контроле.Fig. 2 is a bar graph comparing the total number of cells in all fields with the number of all cells in the luminate treatment and control, as described in Example 1 below, in the luminate treatment and control.

Фиг. 3 представляет собой гистограмму сравнения количества клеток пигментного эпителия сетчатки (RPE) в контрольных и обработанных планшетах, как описано в примере 2 ниже (условные обозначения: Cont = контрольная (BSS) обработка; Lu = обработка люминатом (только); H2O2, 100 мкМ = обработка пероксидом (только); Lu, H2O2, 100 мкМ = люминат с последующей обработкой пероксидом).Fig. 3 is a bar graph comparing the number of retinal pigment epithelial (RPE) cells in control and treated plates as described in Example 2 below (symbols: Cont = control (BSS) treatment; Lu = luminate treatment (only); H2O2, 100 μM = peroxide treatment (only); Lu, H2O2, 100 μM = luminate followed by peroxide treatment).

Фиг. 4 представляет собой гистограмму сравнения количества клеток Мюллера сетчатки в контрольных и обработанных планшетах, как описано в примере 3 ниже (условные обозначения: Cont = контрольная (BSS) обработка; Lu = обработка люминатом (только); KA = обработка каиновой кислотой (только) и KA-Lu, 500 мкМ = люминат с последующей обработкой каиновой кислотой).Fig. 4 is a bar graph comparing the number of retinal Müller cells in control and treated plates as described in Example 3 below (symbols: Cont = control (BSS) treatment; Lu = luminate treatment (only); KA = kainic acid treatment (only) and KA-Lu, 500 μM = luminate followed by treatment with kainic acid).

На фиг. 5 показаны гистологические микрофотографии ткани сетчатки, взятые у крыс, обработанных контрольными или увеличивающимися дозами нейротоксического средства каиновой кислотой, как описано в примере 4 ниже.In FIG. 5 shows histological micrographs of retinal tissue taken from rats treated with control or increasing doses of the neurotoxic agent kainic acid as described in Example 4 below.

Фиг. 6 представляет собой гистограмму сравнения количества нейронов сетчатки в контрольных и обработанных планшетах, как описано в примере 5 ниже (условные обозначения: Cont = контрольная (BSS) обработка; Lu = обработка люминатом (только); KA, 100 мкМ = обработка каиновой кислотой (только) и Lu-KA, 100 мкМ = люминат с последующей обработкой каиновой кислотой).Fig. 6 is a bar graph comparing the number of retinal neurons in control and treated plates as described in Example 5 below (label: Cont = control (BSS) treatment; Lu = luminate treatment (only); KA, 100 μM = kainic acid treatment (only ) and Lu-KA, 100 μM = luminate followed by treatment with kainic acid).

Подробное описание настоящего изобретенияDetailed description of the present invention

Следующее подробное описание и сопровождающие графические материалы, на которые оно ссылается, предназначены для описания некоторых, но не обязательно всех, примеров или вариантов осуществления настоящего изобретения. Описанные варианты осуществления следует рассматривать во всех отношениях только как иллюстративные, а не ограничивающие. Содержание этого подробного описания и прилагаемых графических материалов никоим образом не ограничивают объем настоящего изобретения.The following detailed description and the accompanying drawings to which it refers are intended to describe some, but not necessarily all, examples or embodiments of the present invention. The described embodiments are to be considered in all respects only as illustrative and not restrictive. The contents of this detailed description and the accompanying drawings do not limit the scope of the present invention in any way.

Заявитель изучил безопасность и нейропротектекторные эффекты соединения, содержащего неприродный пептид глицинил-аргинил-глицинил-цистеиновая кислота-треонил-пролин (SEQ ID NO: 1), имеющего структурную формулу соединения 1 ниже (также упоминаемого как ALG-1001 или Luminate®, Allegro Ophthalmics, LLC):Applicant studied the safety and neuroprotective effects of a compound containing a non-natural peptide glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteic acid-threonyl-proline (SEQ ID NO: 1) having the structural formula of Compound 1 below (also referred to as ALG-1001 or Luminate®, Allegro Ophthalmics , LLC):

Figure 00000001
Figure 00000001

Циклическая форма неприродного пептида глицинил-аргинил-глицинил-цистеиновая кислота-треонил-пролин (SEQ ID NO: 1) показана ниже как соединение 2:The cyclic form of the unnatural peptide glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteinic acid-threonyl-proline (SEQ ID NO: 1) is shown below as Compound 2:

Figure 00000002
Figure 00000002

Соединения 1 и 2, а также другие родственные соединения описаны в рассматриваемых патентных заявках США с серийными номерами 13/467995 и 14/696250, причем полное раскрытие каждой такой заявки специально включено в настоящий документ посредством ссылки.Compounds 1 and 2, as well as other related compounds, are described in pending US Patent Applications Serial Nos. 13/467,995 and 14/696,250, the full disclosure of each such application being specifically incorporated herein by reference.

Пример 1Example 1

Глазная нейропротекция in vivo на крысиной моделе повышенного внутриглазного давленияOcular neuroprotection in vivo in a rat model of elevated intraocular pressure

Здоровых крыс Wister (n=8) в возрасте десяти (10) недель содержали в виварии, в котором поддерживалась постоянная температура 26°C и постоянный цикл свет-темнота (14 часов и 10 часов, соответственно) с доступной по желанию пищей. Крыс случайным образом делили на группу лечения люминатом из пяти (5) животных (группа А) и группу лечения основным солевым раствором (контроль BSS) из трех (3) животных (группа В).Healthy Wister rats (n=8) at ten (10) weeks of age were housed in a vivarium maintained at a constant temperature of 26°C and a constant light-dark cycle (14 hours and 10 hours, respectively) with food available at will. Rats were randomly divided into a luminate treatment group of five (5) animals (Group A) and a basic saline treatment (BSS control) group of three (3) animals (Group B).

Каждое животное группы А получало одну интравитреальную инъекцию в дозе 1,28 мг/20 мкл люмината в правый глаз. Каждое животное группы В получало по одной интравитреальной инъекции в дозе 20 мкл сбалансированного солевого раствора (BSS). Левые глаза всех животных в группах A и B не подвергали инъекции и использовали в качестве необработанных контролей. Интравитреальные инъекции вводили на расстоянии 2 мм за каймой в супроназальном квадранте с использованием иглы 30-го калибра, прикрепленной к шприцу объемом 1,0 куб. Были приняты меры, чтобы избежать повреждения линзы или сетчатки.Each animal in group A received one intravitreal injection of 1.28 mg/20 μl of luminate into the right eye. Each animal in group B received one intravitreal injection of 20 μl of balanced salt solution (BSS). The left eyes of all animals in groups A and B were not injected and were used as untreated controls. Intravitreal injections were administered 2 mm behind the border in the supronasal quadrant using a 30-gauge needle attached to a 1.0 cc syringe. Care was taken to avoid damage to the lens or retina.

Через двадцать четыре (24) часа после введения инъекций крыс анестезировали путем внутрибрюшинной инъекции в дозе 3,0 мл/кг смеси гидрохлорида кетамина (2,5 мг/мл), диазепама (2,0 мг/мл) и атропина (0,1 мг/мл). Затем глаза подвергали перитонеальной отслойке конъюнктивы боковой прямой мышцы, чтобы обнажить зрительный нерв. Затем зрительный нерв лигировали шелковым швом в течение 60 минут, в течение которых отсутствие кровотока в сетчатке каждого лигированного глаза проверяли с помощью контактной линзы Plano. Лигатуры удаляли через 60 минут, и восстановление кровотока в сетчатке проверяли в каждом ранее лигированном глазу с использованием контактной линзы Plano.Twenty-four (24) hours after injection, rats were anesthetized by intraperitoneal injection of 3.0 ml/kg of a mixture of ketamine hydrochloride (2.5 mg/ml), diazepam (2.0 mg/ml) and atropine (0.1 mg/ml). The eyes were then subjected to a peritoneal detachment of the conjunctiva of the lateral rectus muscle to expose the optic nerve. The optic nerve was then ligated with a silk suture for 60 minutes, during which time the absence of retinal blood flow in each ligated eye was checked with a Plano contact lens. The ligatures were removed after 60 minutes and restoration of retinal blood flow was checked in each previously ligated eye using a Plano contact lens.

После удаления лигатур и проверки восстановления кровотока в сетчатке крыс содержали живыми в течение 48 часов, а затем умерщвляли посредством направления в брюшную аорту и нижнюю полую вену и перфузии 200 мл 10% формальдегида.After removing the ligatures and checking for restoration of blood flow in the retina, the rats were kept alive for 48 hours and then sacrificed by directing to the abdominal aorta and inferior vena cava and perfusion with 200 ml of 10% formaldehyde.

Затем глаза энуклеировали и фиксировали для гистопатологического анализа. Образцы сетчатки и зрительного нерва от каждого глаза обезвоживали и погружали в парафин. Горизонтальные срезы толщиной 4 микрона разрезали и окрашивали гематоксилином и эозином. Посредством световой микроскопии подсчитывали количество ганглиозных клеток в осевых срезах сетчатки каждого глаза от границы между зрительно и слепой частями сетчатки до зрительного нерва. Кроме того, в каждом сечении число ганглиозных клеток на миллиметр по всей длине сетчатки рассчитывали в цифровом виде с использованием калибровочного предметного стекла, откалиброванного для этой цели.The eyes were then enucleated and fixed for histopathological analysis. Retinal and optic nerve samples from each eye were dehydrated and embedded in paraffin. Horizontal sections 4 microns thick were cut and stained with hematoxylin and eosin. Using light microscopy, the number of ganglion cells was counted in axial sections of the retina of each eye from the border between the visual and blind parts of the retina to the optic nerve. In addition, in each section, the number of ganglion cells per millimeter along the entire length of the retina was calculated digitally using a calibration slide calibrated for this purpose.

Измерение внутреннего сетчатого слоя проводили путем наблюдения срезов при увеличении в 40 раз не более 1 мм от зрительного нерва.Measurement of the inner reticular layer was performed by observing sections at a magnification of 40 times no more than 1 mm from the optic nerve.

Результаты подвергали статистическому анализу. Результаты для каждой группы выражали как среднее ± стандартное отклонение, и статистическую значимость между результатами групп оценивали с помощью двухфакторного дисперсионного анализа, а также U-критерия Манна-Уитни. Вероятности <0,05 считались значимыми.The results were subjected to statistical analysis. Results for each group were expressed as mean ± standard deviation, and statistical significance between group results was assessed using a two-way analysis of variance as well as the Mann-Whitney U-test. Probabilities <0.05 were considered significant.

В таблице 1 ниже показано количество ганглиозных клеток на поле для пяти (5) глаз, обработанных LUMINATE®, и трех глаз, обработанных BSS (контроль):Table 1 below shows the number of ganglion cells per field for five (5) LUMINATE® treated eyes and three BSS treated eyes (control):

Таблица 1Table 1

Случай 1Case 1 Случай 2Case 2 Случай 3Case 3 Случай 4Case 4 Случай 5Case 5 Поле 1Field 1 2020 5five 88 16sixteen 14fourteen Поле 2Field 2 1717 14fourteen 1010 16sixteen 2424 Поле 3Field 3 19nineteen 2525 2121 1313 2020 Поле 4Field 4 19nineteen 16sixteen 9nine 2828 16sixteen Поле 5Field 5 16sixteen 5five 2323 2424 1212 Поле 6Field 6 2121 2525 2929 16sixteen 1515 Поле 7Field 7 2222 3737 2929 1515 16sixteen Поле 8Field 8 19nineteen 1515 3131 2525 1010 Поле 9Field 9 4040 16sixteen 4141 3333 1212 Поле 10Field 10 2828 77 2929 88 19nineteen Поле 11Field 11 1313 2929 2424 1717 СуммаSum 234234 165165 259259 218218 175175 SDSD 7,2687.268 10,15710.157 10,59610.596 7,4547.454 4,0364.036 Контроль 1Control 1 Контроль 2Control 2 Контроль 3Control 3 Поле 1Field 1 33 5five 4four Поле 2Field 2 66 14fourteen 22 Поле 3Field 3 33 2525 11eleven Поле 4Field 4 1313 16sixteen 1515 Поле 5Field 5 33 5five 1010 Поле 6Field 6 00 2525 14fourteen Поле 7Field 7 00 3737 1515 Поле 8Field 8 11 1515 88 Поле 9Field 9 33 16sixteen 1010 Поле 10Field 10 00 77 19nineteen Поле 11Field 11 22 16sixteen СуммаSum 3434 165165 124124 SDSD 3,7543.754 10,15710.157 5,1985.198

В таблице 2 ниже представлен двухфакторный дисперсионный анализ данных, представленных в таблице 1. Группа A включает в себя глаза, обработанные ALG1001, а группа B включает в себя глаза, обработанные BSS (контроль):Table 2 below presents a two-way analysis of variance on the data presented in Table 1. Group A includes eyes treated with ALG1001 and group B includes eyes treated with BSS (control):

Таблица 2table 2

Сгруппировано в табличный форматGrouped in tabular format Группа AGroup A Группа BGroup B Случаиcases Контролиcontrols A:Y1A:Y1 A:Y2A:Y2 A:Y3A:Y3 A:Y4A:Y4 A:Y5A:Y5 B:Y1B:Y1 B:Y2B:Y2 B:Y3B:Y3 B:Y4B:Y4 B:Y5B:Y5 Поле 1Field 1 2020 5five 88 16sixteen 14fourteen 33 5five 4four Поле 2Field 2 1717 14fourteen 1010 16sixteen 2424 66 14fourteen 22 Поле 3Field 3 19nineteen 2525 2121 1313 2020 33 2525 11eleven Поле 4Field 4 19nineteen 16sixteen 9nine 2828 16sixteen 1313 16sixteen 1515 Поле 5Field 5 16sixteen 5five 2323 2424 1212 33 5five 1010 Поле 6Field 6 2121 2525 2929 16sixteen 1515 00 2525 14fourteen Поле 7Field 7 2222 3737 2929 1515 16sixteen 00 3737 1515 Поле 8Field 8 19nineteen 1515 3131 2525 1010 11 1515 88 Поле 9Field 9 4040 16sixteen 4141 3333 1212 33 16sixteen 1010 Поле 10Field 10 2828 77 2929 88 19nineteen 00 77 19nineteen Поле 11Field 11 1313 2929 2424 1717 22 16sixteen

В таблице 3 приведены результаты дисперсионного анализа в виде таблицы, представленные в таблице 2, с указанием статистически значимой разницы (р<0,0001) между глазами, обработанными люминатом (группа A), и глазами, обработанными BSS (контроль) (группа B).Table 3 summarizes the results of the analysis of variance in the form of a table presented in Table 2, indicating a statistically significant difference (p<0.0001) between eyes treated with luminate (group A) and eyes treated with BSS (control) (group B) .

Таблица 3Table 3

Табличные результаты двухфакторного дисперсионного анализаTabular results of two-way analysis of variance

Анализируемая таблицаAnalyzed table Двухфакторный дисперсионный анализ, не RMTwo-way analysis of variance, not RM Двухфакторный дисперсионный анализTwo-way analysis of variance ЕдиничныйUnit АльфаAlpha 0,050.05 Источник изменчивостиSource of variability % полной вариации% total variation P-значениеp-value Итоговое Р-значениеFinal P-value Статистически значимый?Statistically significant? НеаддитивностьNonadditivity 3,8103.810 0,93850.9385 Незнач.Insignificant НетNot Фактор строкиRow factor 12,3712.37 0,23860.2386 Незнач.Insignificant НетNot Фактор столбцаcolumn factor 22,6222.62 <0,0001<0.0001 ******** ДаYes Таблица дисперсионного анализаAnalysis of variance table SSSS DFD.F. MSMS F (DFn,DFd)F (DFn,DFd) P-значениеp-value НеаддитивностьNonadditivity 297,7297.7 1010 29,7729.77 F(10,64)=0,4070F(10.64)=0.4070 P=0,9385P=0.9385 Фактор строкиRow factor 966,7966.7 1010 96,6796.67 F(10,64)=1,321F(10.64)=1.321 P=02386P=02386 Фактор столбцаcolumn factor 17671767 11 17671767 F(10,64)=24,16F(10.64)=24.16 P<0,0001P<0.0001 Остаточноеresidual 46824682 6464 73,1673.16

Фиг. 1 представляет собой столбчатую диаграмму количества ганглиозных клеток в каждом поле относительно количества полей, исследованных в отношении обработки люминатом и контроля, иллюстрирующую различия между средним.Fig. 1 is a bar graph of the number of ganglion cells in each field versus the number of fields examined for luminate treatment and control, illustrating the differences between the mean.

В таблице 4 показаны результаты в табличном виде U-критерия Манна-Уитни, которые также указывают на статистически значимое различие (р<0,0001) между глазами, обработанными люминатом (группа A), и глазами, обработанными BSS (контроль) (группа B).Table 4 shows the results in tabular form of the Mann-Whitney U-test, which also indicate a statistically significant difference (p<0.0001) between Luminate treated eyes (group A) and BSS treated eyes (control) (group B ).

Таблица 4Table 4

Табличные результаты Манна-УитниMann-Whitney tabular results

Проанализированная таблицаParsed Table Данные 1Data 1 Колонка BColumn B Контролиcontrols противvs противvs Колонки AColumns A Случаевcases Критерий Манна-УитниMann-Whitney test P-значениеp-value <0,0001<0.0001 Точное или приближенное значение?Exact or approximate value? ТочноеExact Итоговое P-значениеFinal P-value ******** Значимо различны? (P<0,05)Significantly different? (P<0.05) ДаYes Одно- или двустороннее значение?Single or double value? Двустороннееbilateral Сумма рангов в колонке A,BSum of ranks in column A,B 2871, 870,52871, 870.5 U Манна-УитниU Manna-Whitney 342,5342.5 Разность медианMedian difference Медиана колонки AMedian of column A 18,00, n=5418.00, n=54 Медиана колонки BMedian of column B 9,000, n=329,000, n=32 Разница: фактическаяDifference: actual -9,000-9,000 Разница: Ходжеса-ЛеманаDifference: Hodges-Lehman -10,00-10.00 95,05% CI разницы95.05% CI difference От -13,00 до -6,000-13.00 to -6.000 Точный или приближенный CI?Exact or approximate CI? ТочныйAccurate

Фиг. 2 представляет собой гистограмму сравнения среднего количества ганглиозных клеток на поле между глазами, обработанными люминатом (группа A), и глазами, обработанными BSS (контроль) (группа B), с использованием U-критерия Манна-Уитни.Fig. 2 is a bar graph comparing the mean number of ganglion cells per field between luminate-treated eyes (Group A) and BSS-treated (control) eyes (Group B) using the Mann-Whitney U-test.

На основании этих данных примера 1 сделан вывод, что интравитреальное введение препарата, содержащего эффективное количество пептида глицинил-аргинил-глицинил-цистеиновая кислота-треонил-пролин (SEQ ID NO: 1) (люминат), характеризовалось значительными нейропротективными эффектами у этой крысиной модели повышенного IOP. Как отмечалось выше, положительные результаты на этой животной модели индуцированного глаукомой повреждения нейронов в глазу не только свидетельствуют о его полезности в качестве нейропротекторного средства для глаз, но также и в качестве нейропротекторного средства, применимого для снижения гибели или нарушения нейрональной функции после повреждения или травмы других нейрональных тканей, в том числе головного и спинного мозга.Based on these data from Example 1, it was concluded that intravitreal administration of a preparation containing an effective amount of the peptide glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteic acid-threonyl-proline (SEQ ID NO: 1) (luminate) was characterized by significant neuroprotective effects in this rat model of increased IOP. As noted above, the positive results in this animal model of glaucoma-induced neuronal injury in the eye not only suggest its usefulness as a neuroprotective agent for the eye, but also as a neuroprotective agent useful in reducing neuronal death or impairment following damage or injury to others. neuronal tissues, including the brain and spinal cord.

Пример 2Example 2

InVitro нейропротекторное действие люмината на пигментный эпителий сетчатки (RPE)InVitro Neuroprotective Effect of Luminate on Retinal Pigment Epithelium (RPE)

Известно, что пероксид водорода (H2O2), физиологический медиатор окислительного стресса, вызывает апоптоз в эпителиальных клетках сетчатки (RPE).Hydrogen peroxide (H2O2), a physiological mediator of oxidative stress, is known to induce apoptosis in retinal epithelial cells (RPE).

Клетки ARPE-19 инкубировали в среде DMEM/F12 с добавлением фетальной бычьей сыворотки (FBS) в концентрации 10% и стрептомицина в концентрации 50 мкг/мл и пенициллина в концентрации 50 мкг/мл при температуре 37°C в атмосфере 5% CO2. Для индукции дифференцировки клетки ARP-19 культивировали в трансвелах с покрытием ламинином в течение 2 недель в той же среде, дополненной 1% FBS и антибиотиками. Затем клетки RPE выделяли и аликвоты приблизительно 150-200 мкл клеточной суспензии распределяли в чашки Петри, содержащие контрольную среду. Затем клетки инкубировали при температуре 37°С в течение 24 часов перед использованием.ARPE-19 cells were incubated in DMEM/F12 medium supplemented with fetal bovine serum (FBS) at a concentration of 10% and streptomycin at a concentration of 50 μg/ml and penicillin at a concentration of 50 μg/ml at a temperature of 37°C in an atmosphere of 5% CO 2 . To induce differentiation, ARP-19 cells were cultured in laminin-coated transveils for 2 weeks in the same medium supplemented with 1% FBS and antibiotics. The RPE cells were then isolated and approximately 150-200 μl aliquots of the cell suspension were dispensed into petri dishes containing control medium. The cells were then incubated at 37° C. for 24 hours before use.

После этого готовили следующие четыре (4) отдельные чашки нейронов, как показано ниже:After that, the following four (4) individual dishes of neurons were prepared, as shown below:

А) Контрольные клетки сетчатки RPE;A) Control cells of the retina RPE;

B) Клетки сетчатки RPE, инкубированные с ALG-1001 (люминат) в концентрации 1,0 мг/мл;B) RPE retinal cells incubated with ALG-1001 (luminate) at a concentration of 1.0 mg/ml;

C) Клетки сетчатки RPE, инкубированные с пероксидом водорода в концентрации 100 мкМ; а такжеC) Retinal RPE cells incubated with 100 μM hydrogen peroxide; as well as

D) Клетки RPE сетчатки, инкубированные с ALG-1001 (люминат) в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов перед воздействием пероксидом водорода в концентрации 100 мкМ.D) Retinal RPE cells incubated with ALG-1001 (luminate) at a concentration of 1.0 mg/ml for 24 hours prior to exposure to hydrogen peroxide at a concentration of 100 μM.

Через восемь (8) часов после воздействия количество клеток измеряли с использованием способа вытеснения трипанового синего в камере Нейбауэра. Фиг. 3 представляет собой гистограмму сравнения количества клеток RPE на планшетах A, B, C и D. Эти данные примера 2 показывают, что пероксид водорода был токсичен для клеток RPE, о чем свидетельствует тот факт, что количество клеток RPE в планшете, обработанном только пероксидом водорода (планшет C), составляло только 78% от количества контрольных клеток (планшет A). Однако количество клеток RPE в планшете, предварительно обработанном ALG-1001 (люминатом) до воздействия пероксида водорода (пластина D), составляло 90% от количества контрольных клеток (пластина A), что указывает на то, что предварительная обработка ALG-1001 (люминатом), характеризовалась нейропротекторным эффектом в этой модели in vitro.Eight (8) hours after exposure, cell counts were measured using the trypan blue displacement method in a Neubauer chamber. Fig. 3 is a bar graph comparing the number of RPE cells on plates A, B, C, and D. This data from Example 2 shows that hydrogen peroxide was toxic to RPE cells, as evidenced by the fact that the number of RPE cells in a plate treated with hydrogen peroxide alone (plate C) was only 78% of the control cells (plate A). However, the number of RPE cells in the plate pretreated with ALG-1001 (luminate) before exposure to hydrogen peroxide (plate D) was 90% of the control cells (plate A), indicating that pretreatment with ALG-1001 (luminate) , was characterized by a neuroprotective effect in this in vitro model.

Пример 3Example 3

InVitro нейропротекторные эффекты люмината на клетки Мюллера сетчаткиInVitro Neuroprotective Effects of Luminate on Retinal Müller Cells

Мышей CD1 умерщвляли путем декапитации, глаза быстро энуклеировали в комплемент DMEM с раствором антибиотика и хранили в течение ночи при комнатной температуре. Затем интактные глазные яблоки инкубировали в DMEM, содержащей 0,1% трипсина и 70 Ед/мл коллагеназы, при температуре 37°С в течение 60 минут.CD1 mice were sacrificed by decapitation, the eyes were rapidly enucleated in DMEM complement with antibiotic solution and stored overnight at room temperature. The intact eyeballs were then incubated in DMEM containing 0.1% trypsin and 70 U/ml collagenase at 37° C. for 60 minutes.

Инкубированные материалы помещали в чашку Петри, содержащую DMEM, дополненную 10% фетальной бычьей сывороткой, и сетчатки удаляли без клеток RPE в небольшие агрегаты и высевали в чашки 35 мм для культивирования. Среду не меняли в течение 6 дней, а затем пополняли каждые 3 - 4 дня. Культуры выдерживали при температуре 37°С в 55% СО2/95% О2 в увлажненном инкубаторе.The incubated materials were placed in a petri dish containing DMEM supplemented with 10% fetal bovine serum and the retinas were removed without RPE cells in small aggregates and plated in 35 mm culture dishes. The medium was not changed for 6 days and then replenished every 3 to 4 days. Cultures were maintained at 37° C. in 55% CO 2 /95% O 2 in a humidified incubator.

Когда разрастание клеток достигало полуконфлюентности, (80%) агрегатов сетчатки удаляли путем пипетирования среды в чашку. Эту операцию повторяли три (3) раза до получения очищенной плоской клеточной популяции. Через 24 часа клетки подвергали экспериментальным условиям.When cell outgrowth reached semi-confluency, (80%) retinal aggregates were removed by pipetting the medium into a dish. This operation was repeated three (3) times until a purified squamous cell population was obtained. After 24 hours, the cells were subjected to experimental conditions.

Готовили четыре (4) отдельные чашки для клеток Мюллера следующим образом: А) контрольные клетки Мюллера; B) клетки Мюллера, инкубированные с ALG-1001 (люминат) в концентрации 1,0 мг/мл; C) клетки Мюллера, инкубированные с каиновой кислотой в концентрации 500 мкМ и D) клетки Мюллера, инкубированные с люминатом в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов перед воздействием каиновой кислотой в концентрации 500 мкМ. Через сорок восемь (48) часов после воздействия количество клеток измеряли с использованием способа вытеснения трипанового синего в камере Нейбауэра.Four (4) separate dishes for Mueller cells were prepared as follows: A) control Mueller cells; B) Mueller cells incubated with ALG-1001 (luminate) at a concentration of 1.0 mg/ml; C) Muller cells incubated with kainic acid at a concentration of 500 μM; and D) Muller cells incubated with luminate at a concentration of 1.0 mg/ml for 24 hours prior to exposure to kainic acid at a concentration of 500 μM. Forty-eight (48) hours after exposure, cell numbers were measured using the trypan blue displacement method in a Neubauer chamber.

Фиг. 4 представляет собой гистограмму сравнения количества клеток Мюллера на планшетах A, B, C и D. Эти данные показывают, что планшет, инкубированный с люминатом в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов перед воздействием каиновой кислотой в концентрации 500 мкМ (планшет D), характеризовался более высоким количеством клеток Мюллера, чем любой из других планшетов (A, B или C), и значительно большим количеством клеток Мюллера, чем планшет (планшет C), который подвергался воздействию каиновой кислотой без предварительной обработки люминатом.Fig. 4 is a histogram comparing the number of Mueller cells on plates A, B, C and D. These data show that the plate incubated with 1.0 mg/mL luminate for 24 hours prior to exposure to 500 μM kainic acid (plate D) had a higher Mueller cell count than any of the other plates (A, B, or C) and a significantly higher Mueller cell count than the plate (plate C) that was exposed to kainic acid without luminate pretreatment.

Через сорок восемь (48) часов после воздействия количество клеток измеряли с использованием способа вытеснения трипанового синего в камере Нойбауэра. Фиг. 4 представляет собой гистограмму сравнения количества клеток Мюллера на планшетах A, B, C и D. Эти данные указывают на то, что планшет, инкубированный с люминатом в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов до воздействия каиновой кислотой в концентрации 500 мкМ (планшет D), характеризовался более высоким числом клеток Мюллера, чем любой из других планшетов (A, B или C), и значительно более высоким числом клеток Мюллера, чем планшет (планшет C), который подвергался воздействию каиновой кислотой без предварительной обработки люминатом.Forty-eight (48) hours after exposure, cell numbers were measured using the trypan blue displacement method in a Neubauer chamber. Fig. 4 is a histogram comparing the number of Mueller cells in plates A, B, C and D. These data indicate that the plate incubated with luminate at a concentration of 1.0 mg/ml for 24 hours prior to exposure to kainic acid at a concentration of 500 μM (plate D) had a higher Mueller cell count than any of the other plates (A, B, or C) and a significantly higher Mueller cell count than the plate (plate C) that was exposed to kainic acid without luminate pretreatment.

Пример 4Example 4

Дозозависимое нейротоксическое действие каиновой кислоты in vivo Dose-dependent neurotoxic effects of kainic acid in vivo

В правые глаза 4 крысам Wister вводили интравитреально 20 мкл четырех различных растворов, как указано ниже: A) раствор BSS в качестве контроля, B) каиновую кислоту в концентрации 0,5 мМ, C) каиновую кислоту в концентрации 5,0 мМ и D) каиновую кислоту в концентрации 50,0 мМ.The right eyes of 4 Wister rats were injected intravitreally with 20 μl of four different solutions as follows: A) BSS solution as a control, B) 0.5 mM kainic acid, C) 5.0 mM kainic acid, and D) kainic acid at a concentration of 50.0 mm.

Крыс умерщвляли через 24 часа после обработки, и глаза готовили к гистопатологическому исследованию. На фиг. 5 показаны репрезентативные гистологические срезы для каждого из четырех (4) обработанных глаз.Rats were sacrificed 24 hours after treatment, and the eyes were prepared for histopathological examination. In FIG. 5 shows representative histological sections for each of the four (4) treated eyes.

Результаты ясно демонстрируют дегенерацию сетчатки крыс Wister при увеличении концентрации каиновой кислоты от 0,5 мМ до 5,0 мМ. Это подтверждает, что каиновая кислота действительно вызывает дозозависимую нейротоксичность сетчатки in vitro, и подтверждает актуальность исследований с использованием обработанных каиновой кислотой клеток сетчатки in vitro, таких как примеры 2, 3 и 5 настоящей патентной заявки.The results clearly demonstrate retinal degeneration in Wister rats when the concentration of kainic acid is increased from 0.5 mM to 5.0 mM. This confirms that kainic acid does induce dose-dependent retinal neurotoxicity in vitro and confirms the relevance of studies using kainic acid-treated retinal cells in vitro such as examples 2, 3 and 5 of this patent application.

Пример 5Example 5

InVitro нейропротекторные эффекты люмината на нейроны сетчаткиInVitro Neuroprotective Effects of Luminate on Retinal Neurons

Мышей CD1 умерщвляли путем декапитации, глаза быстро энуклеировали в комплемент DMEM с раствором антибиотика и сетчатку выделяли из пигментного эпителия.CD1 mice were sacrificed by decapitation, the eyes were rapidly enucleated in DMEM complement with antibiotic solution, and the retina was isolated from the pigment epithelium.

Выделенную сетчатку инкубировали в среде Хэнка, содержащей папаин в концентрации 2,5 мг/мл и цистеин в концентрации 0,1 мг/мл, в течение 15 минут при температуре 30°С. После промывания средой Хэнка с добавлением CaCl2 в концентрации 1,9 мМ, MgCl2 в концентрации 0,6 мМ и бычьего сывороточного альбумина в концентрации 0,1 мг/мл.The isolated retina was incubated in Hank's medium containing papain at a concentration of 2.5 mg/ml and cysteine at a concentration of 0.1 mg/ml for 15 minutes at 30°C. After washing with Hank's medium with the addition of CaCl2 in concentration 1.9 mM, MgCl2 at a concentration of 0.6 mm and bovine serum albumin at a concentration of 0.1 mg / ml.

Сетчатку механически отделяли, приблизительно 150-200 мкл клеточной суспензии вносили в чашку Петри, содержащую контрольную среду. Биполярные клетки идентифицировали под микроскопом по морфологии клеток. Клетки инкубировали в течение 6 часов перед использованием.The retina was mechanically separated, approximately 150-200 μl of the cell suspension was added to a Petri dish containing control medium. Bipolar cells were identified under a microscope by cell morphology. Cells were incubated for 6 hours before use.

Четыре (4) отдельные чашки нейронов готовили следующим образом: A) контрольные нейроны сетчатки, B) нейроны сетчатки, инкубированные с ALG-1001 (люминат) в концентрации 1,0 мг/мл, C) нейроны сетчатки, инкубированные с каиновой кислотой в концентрации 100 мкМ, D) нейроны сетчатки, инкубированные с люминатом в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов перед воздействием каиновой кислоты в концентрации 500 мкМ.Four (4) individual dishes of neurons were prepared as follows: A) control retinal neurons, B) retinal neurons incubated with ALG-1001 (luminate) at a concentration of 1.0 mg/ml, C) retinal neurons incubated with kainic acid at a concentration of 100 μM, D) retinal neurons incubated with luminate at a concentration of 1.0 mg/ml for 24 hours before exposure to kainic acid at a concentration of 500 μm.

Через восемь (8) часов после воздействия количество клеток измеряли с использованием способа вытеснения трипанового синего в камере Нейбауэра.Eight (8) hours after exposure, cell counts were measured using the trypan blue displacement method in a Neubauer chamber.

Фиг. 6 представляет собой гистограмму сравнения количества нейронов сетчатки на планшетах A, B, C и D. Эти данные показывают, что каиновая кислота была токсичной для нейронов сетчатки, и предварительная обработка люминатом существенно снижала эту токсичность. В частности, количество нейронов в планшете, обработанном только каиновой кислотой в концентрации 100 мкМ (планшет C), составляло 58% по сравнению с контролем, в то время как количество нейронов в планшете, инкубированном с люминатом в концентрации 1,0 мг/мл в течение 24 часов перед воздействием каиновой кислотой в концентрации 500 мкМ (планшет D), составляло 80% от контроля. Эти результаты заслуживают особого внимания, учитывая, что планшет D получил в пять (5) раз больше каиновой кислоты, чем планшет C.Fig. 6 is a bar graph comparing the number of retinal neurons in plates A, B, C, and D. These data show that kainic acid was toxic to retinal neurons, and pre-treatment with luminate significantly reduced this toxicity. In particular, the number of neurons in the plate treated with only kainic acid at a concentration of 100 μM (plate C) was 58% compared to the control, while the number of neurons in the plate incubated with luminate at a concentration of 1.0 mg/ml in within 24 hours before exposure to kainic acid at a concentration of 500 μm (plate D), was 80% of the control. These results are noteworthy given that Tablet D received five (5) times more kainic acid than Tablet C.

Пример 6Example 6

Проспективное открытое исследование на людях люмината при лечении сухой AMDA prospective open label human study of luminate in the treatment of dry AMD

Чтобы определить, оказывает ли единичная интравитреальная инъекция люмината в концентрации 1,0 мг/50 мкл какое-либо влияние на улучшение наибольшей остроты зрения с коррекцией (BCVA) у субъектов с сухой AMD, с умеренной или умеренно выраженной сухой AMD.To determine whether a single intravitreal injection of Luminate at a concentration of 1.0 mg/50 µl has any effect on improving maximal corrected visual acuity (BCVA) in subjects with dry AMD, with moderate to moderate dry AMD.

Это проспективное интервенционное, открытое, одобренное IRB клиническое подтверждение на людях концепции исследования проводили на 7 людях с умеренной и умеренно тяжелой сухой AMD.This prospective, interventional, open-label, IRB-approved clinical proof-of-concept study was performed in 7 people with moderate to moderately severe dry AMD.

Основные критерии включения включали в себя пациентов с сухой макулярной дегенерацией с относительно интактными фоторецепторными слоями и слоями RPE в центральном 1 мм макулы по OCT.The main inclusion criteria included patients with dry macular degeneration with relatively intact photoreceptor layers and RPE layers in the central 1 mm of the macula on OCT.

Исходный уровень BCVA у субъектов находился между 20/30 и 20/400 без каких-либо признаков субретинальной жидкости или CNV и отсутствии лечения анти-VEGF в анамнезе.Baseline BCVA levels in subjects were between 20/30 and 20/400 with no evidence of subretinal fluid or CNV and no history of anti-VEGF treatment.

Все включенные пациенты проходили базовую однократную интравитреальную инъекцию люмината в концентрации 1,0 мг/50 мкл и подвергались мониторингу ежемесячно, кроме того, получали толщину центральной макулы, OCT, цифровые цветные фотографии и BCVA до и после лечения.All included patients received a basic single intravitreal injection of Luminate at a concentration of 1.0 mg/50 μl and were monitored monthly, in addition, they received central macular thickness, OCT, digital color photographs and BCVA before and after treatment.

Результаты этого открытого подтверждающего концепцию исследования люмината при лечении сухого AMD у пациентов-людей, обобщены в таблице 5 ниже:The results of this open-label proof-of-concept study of Luminate in the treatment of dry AMD in human patients are summarized in Table 5 below:

Таблица 5Table 5

ПациентA patient Исходная BCVAoriginal BCVA BCVA через 3 месяца после леченияBCVA 3 months after treatment 11 0,5 log Mar (20/63)0.5 log Mar (20/63) 0,3 log Mar (20/40)
Добавилось 10 букв
0.3 log Mar (20/40)
Added 10 letters
22 1,0 log Mar (20/200)1.0 log Mar (20/200) 0,6 log Mar (20/80)
Добавилось 20 букв
0.6 log Mar (20/80)
Added 20 letters
33 1,3 log Mar (20/400)1.3 log Mar (20/400) 1,0 log Mar (20/200)
Добавилось 15 букв
1.0 log Mar (20/200)
Added 15 letters
4four 0,2 log Mar (20/32)0.2 log Mar (20/32) 1,0 log Mar (20/200)
Добавилось 15 букв
1.0 log Mar (20/200)
Added 15 letters
5five 1,3 log Mar (20/400)1.3 log Mar (20/400) 1,3 log Mar (20/400)
Не добавилось букв
1.3 log Mar (20/400)
No letters added
66 0,40 log Mar (20/50)0.40 log Mar (20/50) 0,20 log Mar (20/32)
Добавилось 10 букв
0.20 log Mar (20/32)
Added 10 letters

* У пациента 5 наблюдались худшие исходные фовеальные анатомические особенности в группе и не было обнаружено заметного улучшения BCVA.*Patient 5 had the worst baseline foveal anatomy in the group and no marked improvement in BCVA was found.

Эти результаты указывают на то, что в этом исследовании BCVA субъектов, получавших люминат, улучшилось до 20 букв.These results indicate that in this study, the BCVA of Luminate-treated subjects improved to 20 letters.

Следует принимать во внимание, что, хотя настоящее изобретение было описано выше со ссылкой на определенные примеры или варианты осуществления настоящего изобретения, в описанные примеры и варианты осуществления могут быть внесены различные дополнения, исключения, изменения и модификации, не отступая от предполагаемой сущности и объема настоящего изобретения. Например, любые элементы, стадии, представители, компоненты, композиции, реагенты или части одного варианта осуществления или примера могут быть включены или использованы с другим вариантом осуществления или примером, если не указано иное или если это не сделает этот вариант осуществления или пример неподходящим для его предполагаемого использования. Кроме того, если стадии способа или процесса были описаны или перечислены в определенном порядке, порядок таких стадий может быть изменен, если не указано иное, или если это не сделает способ или процесс непригодным для его предполагаемой цели. Кроме того, элементы, стадии, представители, компоненты, композиции, реагенты или части любого изобретения или примера, описанного в настоящем документе, могут необязательно существовать или использоваться при отсутствии или существенном отсутствии любого другого элемента, стадии, представителя, компонента, композиции, реагента или части, если не указано иное. Все разумные добавления, исключения, модификации и изменения должны рассматриваться как эквиваленты описанных примеров и вариантов осуществления и должны быть включены в объем следующей формулы изобретения.It should be appreciated that while the present invention has been described above with reference to certain examples or embodiments of the present invention, various additions, deletions, changes and modifications may be made to the described examples and embodiments without departing from the intended spirit and scope of the present invention. inventions. For example, any elements, steps, representatives, components, compositions, reagents, or parts of one embodiment or example may be included or used with another embodiment or example unless otherwise noted or unless this would make that embodiment or example unsuitable for its use. intended use. In addition, if the steps of a method or process have been described or listed in a particular order, the order of such steps may be changed, unless otherwise indicated, or unless this renders the method or process unsuitable for its intended purpose. In addition, elements, steps, representatives, components, compositions, reagents, or parts of any invention or example described herein may optionally exist or be used in the absence or substantial absence of any other element, step, representative, component, composition, reagent, or parts unless otherwise noted. All reasonable additions, deletions, modifications and alterations are to be considered equivalent to the examples and embodiments described and are to be included within the scope of the following claims.

--->--->

ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ SEQUENCE LIST

<110> АЛЛЕГРО ФАРМАСЬЮТИКАЛС, ИНК.<110> ALLEGRO PHARMACEUTICALS, INC.

<120> ТЕРАПЕВТИЧЕСКИЕ И НЕЙРОПРОТЕКТОРНЫЕ ПЕПТИДЫ<120> THERAPEUTIC AND NEUROPROTECTIVE PEPTIDES

<130> ALLEG-008PC<130> ALLEG-008PC

<140> PCT/US2018/014287<140> PCT/US2018/014287

<141> 2018-01-18<141> 2018-01-18

<150> 62/500998<150> 62/500998

<151> 2017-05-03<151> 2017-05-03

<150> 62/448,300<150> 62/448,300

<151> 2017-01-19<151> 2017-01-19

<160> 1 <160> 1

<170> PatentIn версия 3.5<170> PatentIn version 3.5

<210> 1<210> 1

<211> 6<211> 6

<212> PRT<212> PRT

<213> Искусственная последовательность<213> Artificial sequence

<220><220>

<223> Описание искусственной последовательности: синтетический<223> Artificial sequence description: synthetic

пептид peptide

<220><220>

<221> MOD_RES<221> MOD_RES

<222> (4)..(4)<222> (4)..(4)

<223> Цистеиновая кислота<223> Cysteic acid

<400> 1<400> 1

Gly Arg Gly Xaa Thr Pro Gly Arg Gly Xaa Thr Pro

1 5 15

<---<---

Claims (7)

1. Применение пептида, который содержит глицинил-аргинил-глицинил-цистеиновую кислоту-треонил-пролин для а) восстановления ранее утраченной остроты зрения у субъекта, представляющего собой человека или животного, страдающего от неэкссудативной или сухой возрастной макулярной дегенерации, или b) защиты зрительного нерва, клеток Мюллера сетчатки, нейронов сетчатки или клеток пигментного эпителия сетчатки от повреждения вследствие повышенного внутриглазного давления или дегенеративного заболевания сетчатки.1. The use of a peptide that contains glycinyl-arginyl-glycinyl-cysteinic acid-threonyl-proline for a) restoring previously lost visual acuity in a human or animal subject suffering from non-exudative or dry age-related macular degeneration, or b) protecting visual nerve, retinal Muller cells, retinal neurons, or retinal pigment epithelium cells from damage due to increased intraocular pressure or degenerative retinal disease. 2. Применение по п. 1, в котором пептид характеризуется формулой:2. Use according to claim 1, in which the peptide is characterized by the formula:
Figure 00000003
.
Figure 00000003
.
3. Применение по любому из предыдущих пунктов, в котором субъект характеризуется отсутствием признаков субретинальной жидкости и отсутствием лечения анти-VEGF в анамнезе.3. Use according to any one of the preceding claims, wherein the subject is characterized by no evidence of subretinal fluid and no history of anti-VEGF treatment. 4. Применение по любому из предыдущих пунктов, в котором композицию пептида вводят интравитреально.4. Use according to any one of the preceding claims, wherein the peptide composition is administered intravitreally. 5. Применение по п.4, в котором композицию пептида вводят путем интравитреальной инъекции.5. Use according to claim 4, wherein the peptide composition is administered by intravitreal injection. 6. Применение по п.5, в котором в глаз субъекта интравитреально вводят раствор, содержащий 1,0 мг композиции пептида на 50 мкл.6. Use according to claim 5, wherein a solution containing 1.0 mg of the peptide composition per 50 μl is administered intravitreally to the subject's eye.
RU2019126014A 2017-01-19 2018-01-18 Therapeutic and neuroprotective peptides RU2788097C2 (en)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201762448300P 2017-01-19 2017-01-19
US62/448,300 2017-01-19
US201762500998P 2017-05-03 2017-05-03
US62/500,998 2017-05-03
PCT/US2018/014287 WO2018136669A2 (en) 2017-01-19 2018-01-18 Therapeutic and neuroprotective peptides

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2019126014A RU2019126014A (en) 2021-02-19
RU2019126014A3 RU2019126014A3 (en) 2021-02-19
RU2788097C2 true RU2788097C2 (en) 2023-01-16

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2012118503A (en) * 2009-11-10 2013-12-20 Аллегро Фармасьютикалс, Инк. COMPOSITIONS AND METHODS FOR INHIBITING CELL ADHESION OR DIRECTION OF DIAGNOSTIC OR THERAPEUTIC AGENTS TO RGD LINKING SITES

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2012118503A (en) * 2009-11-10 2013-12-20 Аллегро Фармасьютикалс, Инк. COMPOSITIONS AND METHODS FOR INHIBITING CELL ADHESION OR DIRECTION OF DIAGNOSTIC OR THERAPEUTIC AGENTS TO RGD LINKING SITES

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KUPPERMANN B. D. "A Dual-Mechanism Drug for Vitreoretinal Diseases." Retina Today, July/August 2015; p. 85-87. *
SCHMIDT et al. "Neurodegenerative Diseases of the Retina and Potential for Protection and Recovery". Curr. Neuropharmacol. 2008; 6(2): p.164-178. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20210085749A1 (en) Therapeutic and Neuroprotective Peptides
DE69713032T2 (en) Use of SCF for corneal treatment
EP3643723B1 (en) Novel peptide and pharmaceutical composition for treatment of eye diseases comprising same novel peptide as active ingredient
JP5643237B2 (en) Method for inhibiting apoptosis of photoreceptor cells
TWI400080B (en) The use of substances for the treatment of loss of eyesight in humans with glaucoma and other degenerative eye diseases
WO2022194109A1 (en) Complex for treating optic nerve disease, and preparation method therefor and use thereof
SK65998A3 (en) Methods for treating photoreceptors using glial cell line-derived neurotrophic factor (gdnf) protein product
HU195523B (en) Process for producing fractions of hyaluronic acid and pharmaceutical compositions containing them
Glybina et al. Photoreceptor neuroprotection in RCS rats via low-dose intravitreal sustained-delivery of fluocinolone acetonide
CN102639141A (en) Composition and methods for the prevention and treatment of macular degeneration, diabetic retinopathy, and diabetic macular edema
WO2006096011A1 (en) PHARMACEUTICAL COMPOSITION FOR TREATING AVELLINO CORNEA DYSTROPHY COMPRISING AN ANTIBODY AGAINST TGF-β
EP3448388B1 (en) Dipeptidyl peptidase-4 inhibitors for topical eye treatment of retinal neurodegenerative diseases
RU2788097C2 (en) Therapeutic and neuroprotective peptides
WO1995029194A1 (en) Peptides as therapeutic agents for the treatment of auto-immune diseases
KR20170123502A (en) Pharmaceutical composition for preventing or treating angiogenic diseases comprising collagen and pigemented epithelium derived factor
KR20120096555A (en) Method for screening drug efficacious in treating dry eye and/or keratoconjunctival disorders and pharmaceutical composition obtained thereby
JP2020518678A (en) Gap junction intercellular communication modulators and their use for the treatment of diabetic eye disease
EP4082559A1 (en) Application of fusion protein in treating age-related macular degeneration
Duan et al. Preliminary study of a controllable device for subtenon drug infusion in a rabbit model
EP4159225A1 (en) Novel pharmaceutical composition for treating dry eye syndrome
RU2733392C1 (en) Combined ophthalmic agent
CN105017406B (en) Novel polypeptide with neuroprotective function
Navarro-Partida et al. Safety and Tolerability of Topical Ophthalmic Triamcinolone Acetonide-Loaded Liposomes Formulation and Evaluation of Its Biologic Activity in Patients with Diabetic Macular Edema. Pharmaceutics 2021, 13, 322
US20230077811A1 (en) Activation of neuropeptide receptors on plasmacytoid dendritic cells to treat or prevent ocular diseases associated with neovascularization and inflammation
US20230263860A1 (en) Methods And Compositions For Treating Stroke