RU2749459C1 - UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR - Google Patents
UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR Download PDFInfo
- Publication number
- RU2749459C1 RU2749459C1 RU2020136988A RU2020136988A RU2749459C1 RU 2749459 C1 RU2749459 C1 RU 2749459C1 RU 2020136988 A RU2020136988 A RU 2020136988A RU 2020136988 A RU2020136988 A RU 2020136988A RU 2749459 C1 RU2749459 C1 RU 2749459C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pveal
- adi
- antibody
- plasmid
- vector
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
Abstract
Description
Изобретение относится к универсальному интеграционному вектору pVEAL и рекомбинантной плазмиде pVEAL-15742, обеспечивающей синтез и секрецию scFv-Fc антител ADI-15742, способных нейтрализовать вирус Эбола в клетках млекопитающих с применением универсального вектора pVEAL и может быть использовано в молекулярной генетике и биотехнологии.The invention relates to a universal integration vector pVEAL and a recombinant plasmid pVEAL-15742, which provides the synthesis and secretion of scFv-Fc antibodies ADI-15742 capable of neutralizing the Ebola virus in mammalian cells using the universal vector pVEAL and can be used in molecular genetics and biotechnology.
Уровень техники. Препараты на основе моноклональных антител являются наиболее перспективным инструментом экстренного противодействия вирусам вследствие их высокой специфичности и минимальным побочным эффектам. В настоящий момент по меньшей мере 570 антител по всему миру прошли клинические испытания (Lu R.М. et al. Development of therapeutic antibodies for the treatment of diseases. Journal of biomedical science. 2020; 27(1): 1-30; Wong G. et al. Post-exposure therapy of filovirus infections. Trends Microbiol. 2014; 22(8):456-63; Saphire E.O. An update on the use of antibodies against the filoviruses. Immunotherapy. 2013; 5(11): 1221- 33). Значительные технологические достижения сделали открытие и разработку методов лечения с помощью моноклональных антител более быстрыми и эффективными.State of the art. Preparations based on monoclonal antibodies are the most promising tool for emergency counteraction to viruses due to their high specificity and minimal side effects. To date, at least 570 antibodies worldwide have undergone clinical trials (Lu R.M. et al. Development of therapeutic antibodies for the treatment of diseases. Journal of biomedical science. 2020; 27 (1): 1-30; Wong G. et al. Post-exposure therapy of filovirus infections. Trends Microbiol. 2014; 22 (8): 456-63; Saphire EO An update on the use of antibodies against the filoviruses. Immunotherapy. 2013; 5 (11): 1221 - 33). Significant technological advances have made the discovery and development of monoclonal antibody therapies faster and more effective.
В настоящее время широко распространено получение антител формата scFv-Fc. Это одноцепочечные (single chain) антитела, состоящие из вариабельных фрагментов легкой и тяжелой цепей антитела и константной цепи. У scFv-Fc формата существует несколько преимуществ перед большими фрагментами или целыми антителами: меньшее количество сайтов расщепления для циркулирующих протеолитических ферментов и, следовательно, более высокая стабильность; scFv-Fc вариант подразумевает синтез одной цепи, что облегчает создание векторов и конструкций, упрощает схему получения и проверки, одноцепочечные антитела достигают цели быстрее, быстрее выводятся из организма (Huston J.S. et al. Protein engineering of single-chain Fv analogs and fusion proteins. Methods in enzymology. 1991, 203: 46-88; WO 1993/16185; US 5571894). Возможные аллергические реакции на неканоническую структуру несущественны в случае антител против инфекционных заболеваний. Такие антитела, в первую очередь должны обладать эффективностью et al. High level transient production of recombinant antibodies and antibody fusion proteins in HEK293 cells. BMC biotechnology. 2013, 13(1): 52; Girgis M.D. et al. Targeting CEA in pancreas cancer xenografts with a mutated scFv-Fc antibody fragment. EJNMMI research. 2011, 1(1): 1-10).Currently, the production of scFv-Fc antibodies is widespread. These are single-chain antibodies composed of variable fragments of the light and heavy chains of an antibody and a constant chain. The scFv-Fc format has several advantages over large fragments or whole antibodies: fewer cleavage sites for circulating proteolytic enzymes and, therefore, higher stability; The scFv-Fc variant involves the synthesis of a single chain, which facilitates the creation of vectors and constructs, simplifies the scheme of obtaining and testing, single-chain antibodies reach the target faster, and are cleared from the body faster (Huston JS et al. Protein engineering of single-chain Fv analogs and fusion proteins. Methods in enzymology 1991,203: 46-88; WO 1993/16185; US 5571894). Possible allergic reactions to the non-canonical structure are insignificant in the case of antibodies against infectious diseases. Such antibodies, first of all, should be effective et al. High level transient production of recombinant antibodies and antibody fusion proteins in HEK293 cells. BMC biotechnology. 2013, 13 (1): 52; Girgis MD et al. Targeting CEA in pancreas cancer xenografts with a mutated scFv-Fc antibody fragment. EJNMMI research. 2011, 1 (1): 1-10).
Одним из способов получения моноклональных scFv-Fc антител является встройка нуклеотидных последовательностей, кодирующих вариабельные последовательности тяжелой и легкой цепей антител, в интеграционные вектора. Эти вектора обеспечивают репликацию и экспрессию рекомбинантных генных конструкций в подходящем хозяине путем интеграции в хромосому данного хозяина. Интеграционный вектор включает в себя: рекомбинантные иммуноглобулиновые домены, точку начала репликации или автономно реплицирующуюся последовательность, доминантные маркерные последовательности, сигнальные последовательности, последовательности, контролирующие экспрессию и транскрипцию рекомбинантных генов, систему, отвечающую за интеграцию в геном (RU 2469093 С2, RU 2639519). Трансфекция линий клеток млекопитающих данными векторами и дальнейшее их культивирование позволяет клеткам синтезировать антитела непосредственно в культуральную жидкость (RU 2292353 С2).One way to obtain monoclonal scFv-Fc antibodies is to insert nucleotide sequences encoding the variable sequences of the heavy and light chains of antibodies into integration vectors. These vectors allow the replication and expression of recombinant gene constructs in a suitable host by integration into the chromosome of the host. The integration vector includes: recombinant immunoglobulin domains, the origin of replication or autonomously replicating sequence, dominant marker sequences, signal sequences, sequences that control expression and transcription of recombinant genes, a system responsible for integration into the genome (RU 2469093 C2, RU 2639519). Transfection of mammalian cell lines with these vectors and their further cultivation allows cells to synthesize antibodies directly into the culture fluid (RU 2292353 C2).
В качестве интеграционного вектора могут выступать системы доставки на основе вирусов и невирусные ДНК-векторы. Системы доставки на основе вирусов имеют следующие недостатки: 1) препараты вирусов имеют риск заражения инфекционными агентами, включая репликационно-компетентный вирус; 2) вирусный вектор может вызывать нежелательные клеточные последствия, например острые иммунные, воспалительные или нейротоксические ответы; 3) эффективное генетическое размножение вирусных векторов может ограничивать размер терапевтического груза и может потребовать генетических мотивов для регуляции репликации вектора. Напротив, препараты невирусных ДНК-векторов на основе плазмид относительно недороги для очистки, в значительной степени неиммуногенны и не имеют жестких ограничений на последовательности, которые могут быть доставлены. Основные проблемы невирусных систем на основе плазмид заключаются в следующем: 1) низкие скорости доставки векторов к ядрам клеток-мишеней; 2) низкие скорости интеграции трансгенов, как правило, с сопутствующими плазмидными последовательностями, которые имеют склонность к подавлению экспрессии; 3) интеграция множественных копий трансгена, что также может подавлять их экспрессию (Hackett Р.В., et al. А transposon and transposase system for human application. Molecular therapy. 2010, 18(4): 674-683).Viral delivery systems and non-viral DNA vectors can act as an integration vector. Virus-based delivery systems have the following disadvantages: 1) virus preparations have a risk of being infected by infectious agents, including replication-competent virus; 2) the viral vector can cause undesirable cellular consequences, for example, acute immune, inflammatory or neurotoxic responses; 3) efficient genetic propagation of viral vectors can limit the size of the therapeutic load and may require genetic motives to regulate vector replication. In contrast, plasmid-based non-viral DNA vector preparations are relatively inexpensive to purify, largely non-immunogenic, and do not have severe restrictions on the sequences that can be delivered. The main problems of non-viral systems based on plasmids are as follows: 1) low rates of delivery of vectors to the nuclei of target cells; 2) low rates of integration of transgenes, usually with concomitant plasmid sequences that tend to suppress expression; 3) integration of multiple copies of the transgene, which can also suppress their expression (Hackett RV, et al. A transposon and transposase system for human application. Molecular therapy. 2010, 18 (4): 674-683).
Указанные выше основные проблемы, связанные с невирусными векторами, можно преодолеть, используя систему на основе транспозазы SB (Sleeping Beauty). Эта система проста и не требует создания вирусных конструкций. Для обеспечения интеграции последовательности в геном необходимо наличие двух векторов, один должен содержать последовательность целевой встройки, фланкированной последовательностями IR/DR (L/R), второй вектор долен обеспечивать синтез транспозазы SB. По увеличению активности фермента выделяют транспозазы SB10, SB11, SB100 и т.д. (Hackett Р.В., et al. A transposon and transposase system for human application. Molecular therapy. 2010, 18(4): 674-683; Tipanee J. et al. Transposons: moving forward from preclinical studies to clinical trials. Human Gene Therapy. 2017, 28(11): 1087-1104). Достоинства систем на основе транспозазы: биобезопасность, легкость в работе, длина встраиваемого фрагмента не ограничена, стабильная экспрессия встраиваемого гена.The above main problems associated with non-viral vectors can be overcome using the SB (Sleeping Beauty) transposase-based system. This system is simple and does not require the creation of viral constructs. To ensure the integration of the sequence into the genome, two vectors are required, one must contain the sequence of the target insertion flanked by the IR / DR (L / R) sequences, the second vector must provide the synthesis of SB transposase. By increasing the enzyme activity, transposases SB10, SB11, SB100, etc. are isolated. (Hackett R. V., et al. A transposon and transposase system for human application. Molecular therapy. 2010, 18 (4): 674-683; Tipanee J. et al. Transposons: moving forward from preclinical studies to clinical trials. Human Gene Therapy. 2017,28 (11): 1087-1104). Advantages of transposase-based systems: biosafety, ease of use, the length of the inserted fragment is not limited, stable expression of the inserted gene.
Ближайшие аналоги. В работе (Оксанич А.С. и др. Конструирование плазмидного вектора для получения химерных антител заданной специфичности в клетках млекопитающих. Журн. микробиол. 2017, 6:56-63) представлен универсальный плазмидный вектор, позволяющий получать полноразмерные химерные антитела различной специфичности различных классов и изотипов. Данный вектор создан на основе известного эукариотического плазмидного вектора pCI-neo и включает в себя сильный промотор CMV, гены устойчивости к антибиотикам, легкую и тяжелую цепи заданного антитела. Вектор прост в конструировании, для получения готовых препаратов антител используются доступные и недорогие методики. Однако конечный выход антитела невелик (4 мг/л).The closest analogues. In the work (Oksanich A.S. et al. Construction of a plasmid vector for obtaining chimeric antibodies of a given specificity in mammalian cells. Zh.Microbiol. 2017, 6: 56-63), a universal plasmid vector is presented that makes it possible to obtain full-length chimeric antibodies of various specificities of various classes and isotypes. This vector is based on the well-known eukaryotic plasmid vector pCI-neo and includes a strong CMV promoter, antibiotic resistance genes, light and heavy chains of a given antibody. The vector is simple to construct; available and inexpensive methods are used to obtain ready-made antibody preparations. However, the final antibody yield is low (4 mg / L).
В международной заявке WO 2007/081336 описан вектор для получения рекомбинантных белков с высоким уровнем секреции. Достоинством данного изобретения является тройная лидерная последовательность, CMV промотор в комбинации с регуляторным элементом elongation factor-1, что должно обеспечивать значительный уровень синтеза белка. Также вектор содержит PolyA, SV40 ori, SV40 PA, pUC Origin Site, гены устойчивости к антибиотикам ампициллин, неомицин. В описании изобретения отсутствуют данные о том, какой выход белка можно получить.International application WO 2007/081336 describes a vector for the production of highly secreted recombinant proteins. The advantage of this invention is the triple leader sequence, the CMV promoter in combination with the regulatory element elongation factor-1, which should provide a significant level of protein synthesis. The vector also contains PolyA, SV40 ori, SV40 PA, pUC Origin Site, antibiotic resistance genes ampicillin, neomycin. In the description of the invention, there is no data on what kind of protein yield can be obtained.
Недостатками приведенных выше изобретений является отсутствие цис-регуляторных элементов. При трансфекции клеток такими векторами последние хаотично встраиваются в хромосому, конформация участка встройки значительно влияет на транскрипцию гена и его экспрессию. Цис-регуляторные элементы позволяют увеличить экспрессию гена без воздействия на структуру хроматина в регионе встройки. К цис-регуляторным элементам относятся: locus control region (LCR), scaffold/matrix attachment region (S/MAR), insulator, ubiquitous chromatin open element (UCOE), anti-repressor (STAR element).The disadvantages of the above inventions are the lack of cis-regulatory elements. When cells are transfected with such vectors, the latter are randomly inserted into the chromosome; the conformation of the insertion site significantly affects gene transcription and its expression. Cis regulatory elements allow an increase in gene expression without affecting the chromatin structure in the insertion region. Cis-regulatory elements include: locus control region (LCR), scaffold / matrix attachment region (S / MAR), insulator, ubiquitous chromatin open element (UCOE), anti-repressor (STAR element).
Наиболее близким аналогом (прототипом) является универсальный вектор, описанный в патенте Китая (CN 105255895, МПК C12N 15/85, опубл. 20.01.2016 г.). Авторы утверждают, что предложенная система экспрессии обеспечивает высокий выход белка, экспрессия является стабильной и длительной. Вектор создан на основе транспозазы SB, что позволяет легко интегрировать нужную последовательность в геном клетки. В качестве цис-регуляторного элемента выступает matrix attachment region - MAR2. Тяжелая и легкая цепи антитела соединены с помощью IRES. «Сайт внутренней посадки рибосомы» или «IRES» описывает последовательность, которая функционально обеспечивает инициацию трансляции и позволяет двум цистронам (открытым рамкам считывания) быть транслированными с одного транскрипта в животной клетке. Применение IRES элементов в векторных конструкциях описано ранее (Ramesh, N., et al. Nucl. Acids Res. 1996, 24: 2697-2700; Mosser, D.D. et al. BioTechniques. 1997, 22: 150-152). Для инициации транскрипции использовался цитогмегаловирусный промотр CMV.The closest analogue (prototype) is a universal vector described in the Chinese patent (CN 105255895, IPC C12N 15/85, publ. 20.01.2016). The authors argue that the proposed expression system provides a high yield of the protein, the expression is stable and long-term. The vector is based on SB transposase, which makes it easy to integrate the desired sequence into the cell genome. The cis-regulatory element is the matrix attachment region - MAR2. The heavy and light chains of the antibody are linked by IRES. An "internal ribosome entry site" or "IRES" describes a sequence that functionally initiates translation and allows two cistrons (open reading frames) to be translated from a single transcript in an animal cell. The use of IRES elements in vector constructs has been previously described (Ramesh, N., et al. Nucl. Acids Res. 1996, 24: 2697-2700; Mosser, D.D. et al. BioTechniques. 1997, 22: 150-152). The CMV cytomegalovirus promoter was used to initiate transcription.
Однако, известный универсальный вектор-прототип обеспечивает синтез только полноразмерных антител, которые, как упоминалось ранее, по многим параметрам уступают антителам формата scFv-Fc.However, the known universal prototype vector provides the synthesis of only full-length antibodies, which, as mentioned earlier, are inferior in many parameters to antibodies of the scFv-Fc format.
Прототипом рекомбинантной плазмиды, обеспечивающей синтез антитела против вируса Эбола, является конструкция, описанная в патенте США (US 10640550, МПК А61Р 31/14, опубл. 05.05.2020 г.). Вектор, сконструированный в данной работе, содержит промотор с энхансером, IRES, PolyA, гены устойчивости к антибиотикам ампициллин, неомицин. Возможна интеграция генетического материала в геном с помощью системы на основе траспозазы. Наработка антитела может осуществляться с помощью гибридомной технологии, либо путем трансфекции эукариотических клеток с последующим выходом синтезированных антител в культуральную жидкость.The prototype of the recombinant plasmid that provides the synthesis of antibodies against the Ebola virus is the construct described in US patent (US 10640550, IPC A61P 31/14, publ. 05.05.2020). The vector constructed in this work contains a promoter with an enhancer, IRES, PolyA, antibiotic resistance genes ampicillin, neomycin. Integration of genetic material into the genome is possible using a transposase-based system. The production of antibodies can be carried out using hybridoma technology, or by transfection of eukaryotic cells with subsequent release of the synthesized antibodies into the culture fluid.
Недостатками данной конструкции является отсутствие цис-регуляторных элементов, необходимость встройки полноразмерных легкой и тяжелой цепей антитела. В описании вектора не указано какой промотор использовался для инициации транскрипции, отсутствуют данные о выходе целевого белка, что не позволяет судить об эффективности данной конструкции.The disadvantages of this design are the absence of cis-regulatory elements, the need to insert full-length light and heavy antibody chains. The description of the vector does not indicate which promoter was used to initiate transcription, there is no data on the yield of the target protein, which does not allow judging the effectiveness of this construct.
Техническим результатом заявляемого изобретения является создание универсального интеграционного вектора pVEAL и плазмидной генетической конструкции pVEAL-15742, обеспечивающей синтез и секрецию целевого белка - scFv-Fc антитела ADI 15742 против вируса Эбола (Anna Z. Wec, et al. Antibodies from a Human Survivor Define Sites of Vulnerability for Broad Protection against Ebolaviruses. Cell. 2017, 169(5): 878-890) в клетках млекопитающих CHO-K1, полученного с использованием указанного универсального вектора pVEAL, который лишен недостатков прототипа.The technical result of the claimed invention is the creation of a universal integration vector pVEAL and a plasmid genetic construct pVEAL-15742, providing the synthesis and secretion of the target protein - scFv-
Указанный технический результат достигается тем, что универсальный интеграционный вектор pVEAL служит для создания целевых плазмидных конструкций, обеспечивающих синтез и секрецию scFv-Fc моноклональных антител, имеет нуклеотидную последовательность SEQ ID No. 1 и содержит в соответствии с физической и генетической картой, представленной на Фиг. 1, следующие элементы:The specified technical result is achieved in that the universal integration vector pVEAL serves to create target plasmid constructs that provide the synthesis and secretion of scFv-Fc monoclonal antibodies, has the nucleotide sequence SEQ ID No. 1 and contains, in accordance with the physical and genetic map shown in FIG. 1, the following items:
- участок начала репликации ori (8616-9204);- site of the beginning of replication ori (8616-9204);
- последовательности IR/DR (L/R), являющиеся частью системы на основе транспозазы SB100 (139-403, 7832-8127);- IR / DR (L / R) sequences, which are part of the SB100 transposase-based system (139-403, 7832-8127);
- последовательности UCOE, предотвращающих хромосомное «замалчивание» рекомбинантной экспрессионной кассеты (416 - 1549, 6272-7820);- UCOE sequences preventing chromosomal silencing of the recombinant expression cassette (416-1549, 6272-7820);
- CMV Enhancer (2108-2487), CMV промотор (2488-2699) - сильный наиболее часто используемый промотор в генно-терапевтических конструкциях;- CMV Enhancer (2108-2487), CMV promoter (2488-2699) - the strongest most commonly used promoter in gene therapy constructs;
- Chimeric intron (2860-2992), увеличивающий эффективность CMV промотора;- Chimeric intron (2860-2992), which increases the efficiency of the CMV promoter;
- лидерный пептид VI9, обеспечивающий экспорт белка из клетки (3114-3164);- the leader peptide VI9, which ensures the export of the protein from the cell (3114-3164);
- место для встройки вариабельных фрагментов тяжелой и легкой цепей антитела, соединенных пептидным линкером, по сайтам гидролиза AfeI (3157), BamHI (3339);- a place for the insertion of variable fragments of the heavy and light chains of the antibody, connected by a peptide linker, at the sites of hydrolysis AfeI (3157), BamHI (3339);
- константную цепь антитела человека IgGl (СН1-СН2-СН3) (3348-4031) с мутациями M252Y, S254T, Т256Е, Е333А, H433K/N434F. Мутации увеличивают период полураспада антитела за счет взаимодействия с неонатальными рецепторами;- constant chain of a human IgG1 antibody (CH1-CH2-CH3) (3348-4031) with mutations M252Y, S254T, T256E, E333A, H433K / N434F. Mutations increase the half-life of an antibody by interacting with neonatal receptors;
- участок внутренней посадки рибосомы EMCV IRES (4046-4620);- site of internal landing of the ribosome EMCV IRES (4046-4620);
- последовательность Bleo, кодирующую фактор устойчивости к антибиотику блеомицину (4625-4995);- the Bleo sequence encoding the antibiotic resistance factor bleomycin (4625-4995);
- последовательность SV40 poly(A) signal, необходимую для стабилизации мРНК-транскриптов (5042-5163);- SV40 poly (A) signal sequence required for stabilization of mRNA transcripts (5042-5163);
- SV40 промотор (5921-6262), обеспечивающий автономную репликацию в клетках млекопитающих, комбинация с CMV промотором существенно увеличивает выход белка;- SV40 promoter (5921-6262), providing autonomous replication in mammalian cells, the combination with the CMV promoter significantly increases the yield of the protein;
- ген устойчивости к антибиотику ампициллин AmpR и бактериальный промотор гена устойчивости к ампициллину, позволяющие проводить препаративную наработку плазмиды в E.coli (9375-10235).- antibiotic resistance gene ampicillin AmpR and bacterial promoter of ampicillin resistance gene, allowing preparative plasmid production in E. coli (9375-10235).
Указанный технический результат достигается также тем, что плазмидная генетическая конструкция pVEAL-15742, обеспечивающая синтез и секрецию целевого белка - scFv-Fc антитела ADI 15742 против вируса Эбола, имеет нуклеотидную последовательность SEQ ID No. 2 и содержит в соответствии с физической и генетической картой, представленной на Фиг. 2, следующие элементы:The specified technical result is also achieved in that the plasmid genetic construct pVEAL-15742, providing the synthesis and secretion of the target protein - scFv-
- участок начала репликации ori (8616-9204);- site of the beginning of replication ori (8616-9204);
- последовательности IR/DR (L/R), являющиеся частью системы на основе транспозазы SB 100 (139-403, 8393-8688);- sequences IR / DR (L / R), which are part of the system based on transposase SB 100 (139-403, 8393-8688);
- последовательности UCOE, предотвращающих хромосомное «замалчивание» рекомбинантной экспрессионной кассеты (416 - 1549, 6833-8381);- UCOE sequences preventing chromosomal silencing of the recombinant expression cassette (416-1549, 6833-8381);
- CMV Enhancer (2108-2487), CMV промотор (2488-2699) - сильный наиболее часто используемый промотор в генно-терапевтических конструкциях;- CMV Enhancer (2108-2487), CMV promoter (2488-2699) - the strongest most commonly used promoter in gene therapy constructs;
- Chimeric intron (2860-2992), увеличивающий эффективность CMV промотора;- Chimeric intron (2860-2992), which increases the efficiency of the CMV promoter;
- лидерный пептид VI9, обеспечивающий экспорт белка из клетки (3114-3164);- the leader peptide VI9, which ensures the export of the protein from the cell (3114-3164);
- ADI-15742-VH, последовательность, кодирующая вариабельный фрагмент тяжелой цепи антитела 15742 (3165-3533);- ADI-15742-VH, the sequence encoding the variable fragment of the heavy chain of the antibody 15742 (3165-3533);
- ADI-15742-VK, последовательность, кодирующая вариабельный фрагмент легкой цепи антитела 15742 (3579-3903);- ADI-15742-VK, the sequence encoding the variable fragment of the light chain of the antibody 15742 (3579-3903);
- константную цепь антитела человека IgG1 (СН1-СН2-СН3) (3909-4592) с мутациями M252Y, S254T, Т256Е, ЕЗЗЗА, H433K/N434F. Мутации увеличивают период полураспада антитела за счет взаимодействия с неонатальными рецепторами;- constant chain of a human IgG1 antibody (CH1-CH2-CH3) (3909-4592) with mutations M252Y, S254T, T256E, EZZZA, H433K / N434F. Mutations increase the half-life of an antibody by interacting with neonatal receptors;
- участок внутренней посадки рибосомы EMCV IRES (4607-5181);- site of internal landing of the ribosome EMCV IRES (4607-5181);
- последовательность Bleo, кодирующую фактор устойчивости к антибиотику блеомицину (5186-5556);- the Bleo sequence encoding the antibiotic resistance factor bleomycin (5186-5556);
- последовательность SV40 poly(A) signal, необходимую для стабилизации мРНК-транскриптов (5603-5724);- the SV40 poly (A) signal sequence required for the stabilization of mRNA transcripts (5603-5724);
- SV40 промотор (6482-6823), обеспечивающий автономную репликацию в клетках млекопитающих, комбинация с CMV промотором существенно увеличивает выход белка;- SV40 promoter (6482-6823), providing autonomous replication in mammalian cells, the combination with the CMV promoter significantly increases the yield of the protein;
- ген устойчивости к антибиотику ампициллин AmpR и бактериальный промотор гена устойчивости к ампициллину, позволяющие проводить препаративную наработку плазмиды в E.coli (9936-10796).- the gene for resistance to the antibiotic ampicillin AmpR and the bacterial promoter of the gene for resistance to ampicillin, allowing for preparative production of the plasmid in E. coli (9936-10796).
Заявляемые плазмиды являются значительно усовершенствованными по сравнению с прототипами т.к. в качестве системы интеграции используется транспозаза SB 100, имеющая высокую активность фермента (Mates L et al. Molecular evolution of a novel hyperactive Sleeping Beauty transposase enables robust stable gene transfer in vertebrates. Nat Genet. 2009, 41(6):753-61), имеются сильные цис-регуляторные элементы UCOE, предотвращающие хромосомное замалчивание (Neville JJ et al. Ubiquitous Chromatin-opening Elements (UCOEs): Applications in biomanufacturing and gene therapy. Biotechnol Adv. 2017, 35(5):557-564), комбинация CMV промотора с энхансером, интроном А и промотром SV40 существенно увеличивает выход белка (RU 2639519), сильный лидерный пептид V19, увеличивающий секрецию рекомбинантного белка (WO 2008/148519 А2), связанная посредством EMCV IRES соэкспрессия селекционного маркера Bleo и последовательностей антител может улучшить селекционный процесс (RU 2639519), scFv-Fc формат антител облегчает создание конструкции, упрощает схему получения и проверки необходимого антитела.The claimed plasmids are significantly improved in comparison with the prototypes because
Изобретение иллюстрируется следующими графическими фигурами. На фиг. 1 представлена физическая и генетическая карта универсального интеграционного вектора pVEAL. На фиг. 2 представлена физическая и генетическая карта интеграционного вектора pVEAL со вставкой scFv-Fc антитела ADI-15742 против вируса Эбола - pVEAL-15742. На фиг. 3 представлено определение минимальной концентрации блеомицина, необходимой для гибели нетрансфецированной линии клеток-хозяев. На фиг. 4 представлен анализ нейтрализующей активности моноклонального scFv-Fc антитела ADI 15742 против вируса Эбола. На фиг. 5 представлен анализ культуральной среды штамма-продуцента scFv-Fc антитела 15742. На фиг. 6 представлен анализ препарата scFv-Fc антитела 15742 после хроматографии на белке А.The invention is illustrated by the following graphical figures. FIG. 1 shows the physical and genetic map of the universal integration vector pVEAL. FIG. 2 shows the physical and genetic map of the integration vector pVEAL with the insert of the scFv-Fc antibody against the Ebola virus ADI-15742 - pVEAL-15742. FIG. 3 shows the determination of the minimum concentration of bleomycin required for the death of an untransfected host cell line. FIG. 4 shows an analysis of the neutralizing activity of the monoclonal scFv-
Для лучшего понимания сущности предлагаемого изобретения ниже приведены примеры (1-5) его осуществления. Все стандартные генно-инженерные и микробиологические манипуляции, а также амплификацию и секвенирование ДНК проводили по известным методикам (Маниатис Т., Фрич Э, Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование, М.: Мир, 1984; Клонирование ДНК. Методы. Под ред. Д. Гловера, Пер. с англ., Москва, Мир, 1988; Saiki R.K. et al. Science. 1988, 239(4839):487-491; Sanger F. et al. Proc. Nat. Acad. Sci. 1977, 74:5463-5467).For a better understanding of the essence of the invention, below are examples (1-5) of its implementation. All standard genetic engineering and microbiological manipulations, as well as amplification and sequencing of DNA were carried out according to known methods (Maniatis T., Fritsch E, Sambrook J. Molecular cloning, M .: Mir, 1984; DNA cloning. Methods. Ed. By D. Glover, Translated from English, Moscow, Mir, 1988; Saiki RK et al. Science. 1988, 239 (4839): 487-491; Sanger F. et al. Proc. Nat. Acad. Sci. 1977, 74: 5463-5467).
Пример 1. Конструирование универсального интеграционного вектора pVEALExample 1. Construction of a universal integration vector pVEAL
Для проектирования вектора pVEAL-использовали акцепторный вектор рТ2НВ (Addgene plasmid # 26557). Интеграционный вектор был получен в несколько этапов. На первом этапе из вектора рТ2НВ при помощи сайт-направленного мутагенеза был удален сайт гидролиза BamHI. Для этого проводили ПЦР с использованием праймеров:The pT2HB acceptor vector (Addgene plasmid # 26557) was used to design the pVEAL-vector. The integration vector was obtained in several stages. At the first stage, the BamHI hydrolysis site was removed from the pT2HB vector using site-directed mutagenesis. For this, PCR was performed using primers:
- и- and
- -
ПЦР фрагмента PCR-pT2HB проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (плазмиды рТ2НВ), 10 пМ каждого праймера (pT2HB-F, pT2HB-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С 30 с - 58°С, 45 с - 72°С (25 циклов); 120 с - 72°С.PCR of the PCR-pT2HB fragment was performed using a BIS PCR amplifier (BIS-N, Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (plasmids pT2HB), 10 pM of each primer (pT2HB-F, pT2HB-R), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP 2.5 mM each) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C 30 s - 58 ° C, 45 s - 72 ° C (25 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент PCR-pT2HB, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 709 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the PCR-pT2HB fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 709 bp, visualized with ultraviolet radiation (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПНР-продукт PCR-pT2HB и исходную плазмиду рТ2НВ обрабатывали эндонуклеазами рестрикции Psp124BI и KpnI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 688 и 2859 п. н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then, the isolated PCR-pT2HB PCR product and the original pT2HB plasmid were treated with restriction endonucleases Psp124BI and KpnI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 688 and 2859 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable с генотипом F' proA+В+lacIq Δ(lacZ)M15 zzf::Tn10 (TetR) Δ(ara-leu) 7697 araD139 fhuA ΔlacX74 galK16 galE15 el4- Ф80dlacZΔM15 recA1 relA1 endA1 nupG rpsL (StrR) rph spoT1 Δ(mrr-hsdRMS-mcrBC), предоставленные производителем "Invitrogen" (США). Для этого к 100 мкл клеток добавляли 10 мкл лигазной смеси, инкубировали на льду в течение 40 минут. После этого клетки подвергали «температурному шоку» при 42°С в течение 40 сек. Охлаждали клетки на льду в течение 4 минут, затем добавляли по 200 мкл среды "SOC" (20 г/л триптона, 5 г/л дрожжевого экстракта, 0,5 г/л NaCl, 250 мМ KCl, 10 мМ MgCl2) и инкубировали при 30°С в течение 60 минут. По окончании инкубации трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида рТ2НВ2.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable with genotype F 'proA + B + lacIq Δ (lacZ) M15 zzf :: Tn10 (TetR) Δ (ara-leu) 7697 araD139 fhuA ΔlacX74 galK16 galElac El4Δ- Ф80d recA1 relA1 endA1 nupG rpsL (StrR) rph spoT1 Δ (mrr-hsdRMS-mcrBC) supplied by Invitrogen (USA). For this, 10 μl of ligase mixture was added to 100 μl of cells, incubated on ice for 40 minutes. Thereafter, the cells were subjected to "temperature shock" at 42 ° C for 40 seconds. The cells were cooled on ice for 4 minutes, then 200 μl of SOC medium (20 g / l tryptone, 5 g / l yeast extract, 0.5 g / l NaCl, 250 mM KCl, 10 mM MgCl2) was added and incubated at 30 ° C for 60 minutes. At the end of incubation, the transformed cells were plated on a Petri dish with a solid LB nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pT2HB2 was obtained.
Следующим шагом была встройка последовательностей UCOE-R и UCOE-L. Для получения последовательностей UCOE-R и UCOE-L использовали геномную ДНК человека. Для амплификации последовательности UCOE-R была проведена ПЦР с помощью праймеров:The next step was to insert the UCOE-R and UCOE-L sequences. Human genomic DNA was used to generate the UCOE-R and UCOE-L sequences. To amplify the UCOE-R sequence, PCR was performed using primers:
- и- and
- -
ПЦР фрагмента UCOE-R проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (геномная ДНК человека), 10 пМ каждого праймера (UCOE-R-F, UCOE-R-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с - 59°С, 95 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.PCR of the UCOE-R fragment was performed using a BIS PCR amplifier (BIS-N, Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (human genomic DNA), 10 pM of each primer (UCOE-RF, UCOE-RR), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP at 2.5 mM) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s - 59 ° C, 95 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент UCOE-R, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 1572 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the UCOE-R fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 1572 bp, visualized using ultraviolet radiation (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПЦР-продукт UCOE-R обрабатывали эндонуклеазами рестрикции BseX3I и BamHI, плазмиду рТ2НВ2 обрабатывали эндонуклеазами рестрикции BseX3I и BglII согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 1555 и 3529 п. н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then the isolated PCR product UCOE-R was treated with restriction endonucleases BseX3I and BamHI, plasmid pT2HB2 was treated with restriction endonucleases BseX3I and BglII according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 1555 and 3529 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pT2HB2-UCOE-R.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pT2HB2-UCOE-R was obtained.
Амплификация последовательности UCOE-L была проведена при помощи ПЦР с использованием праймеров:Amplification of the UCOE-L sequence was carried out by PCR using primers:
- и- and
- -
ПЦР фрагмента UCOE-L проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (геномная ДНК человека), 10 пМ каждого праймера (UCOE-L-F, UCOE-L-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с - 59°С, 97 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.PCR of the UCOE-L fragment was performed using a BIS PCR amplifier (BIS-N, Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (human genomic DNA), 10 pM of each primer (UCOE-LF, UCOE-LR), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP at 2.5 mM) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s - 59 ° C, 97 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент UCOE-L, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 1593 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the UCOE-L fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 1593 bp, visualized using ultraviolet radiation (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПЦР-продукт UCOE-L и плазмиду pT2HB2-UCOE-R обрабатывали эндонуклеазами рестрикции HindIII и BseX3I согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 1581 и 5051 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then, the isolated PCR product UCOE-L and plasmid pT2HB2-UCOE-R were treated with restriction endonucleases HindIII and BseX3I according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 1581 and 5051 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pT2HB2-UCOE-RL.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the procedure of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pT2HB2-UCOE-RL was obtained.
Дальнейшее конструирование вектора заключалось во встройке последовательности V19-ADI (синтезирована по заказу ООО «ДНК-синтез»), кодирующей лидерный пептид V19 и уникальные сайты гидролиза AfeI и BamHI, по которым будет проводиться вставка цепей необходимого антитела и scFV-Fc фрагмента.Further construction of the vector consisted in the insertion of the V19-ADI sequence (synthesized by order of DNA-Synthesis LLC), which encodes the V19 leader peptide and the unique AfeI and BamHI hydrolysis sites, through which the chains of the required antibody and scFV-Fc fragment will be inserted.
Лигирование последовательности V19-ADI с коммерческим вектором pJet (CloneJET PCR Cloning Kit, Thermo Scientific) проводили согласно инструкции производителя. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Получена конструкция pJet-V19-ADI.Ligation of the V19-ADI sequence to a commercial pJet vector (CloneJET PCR Cloning Kit, Thermo Scientific) was performed according to the manufacturer's instructions. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The pJet-V19-ADI construct was obtained.
Далее вставку последовательности V19-ADI проводили в вектор pCI-neo-hEST2 (#1781). Этот вектор был выбран, потому что содержит в своем составе сильный эукариотический промотор CMV, а также набор генов устойчивости к антибиотикам, делающим его удобным для работы.Next, the V19-ADI sequence was inserted into the pCI-neo-hEST2 vector (# 1781). This vector was chosen because it contains a strong eukaryotic CMV promoter, as well as a set of antibiotic resistance genes that make it convenient to work with.
Вектор pCI-neo-hEST2 и pJet-V19-ADI обрабатывали эндонуклеазами рестрикции PspCI и SalI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% и 2% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 5467 и 182 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Vector pCI-neo-hEST2 and pJet-V19-ADI were treated with restriction endonucleases PspCI and SalI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% and 2% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 5467 and 182 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pCI-neo-hEST2-V19-ADI.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pCI-neo-hEST2-V19-ADI was obtained.
Далее было проведено клонирование последовательности, кодирующей константную часть тяжелой цепи антитела человека (СН) Human IgG1 в вектор pCI-neo-hEST2-V19-ADI. Для амплификации последовательности, кодирующей константную часть тяжелой цепи антитела человека, использовали праймеры:Next, the cloning of the sequence encoding the constant part of the heavy chain of the human antibody (CH) Human IgG1 into the vector pCI-neo-hEST2-V19-ADI was carried out. Primers were used to amplify the sequence encoding the constant part of the heavy chain of a human antibody:
- и- and
- -
В качестве ДНК матрицы использовали плазмиду pMAB-CH-100VH.The plasmid pMAB-CH-100VH was used as a DNA template.
ПЦР фрагмента PCR-Human IgG1 проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (рМАВ-СН-100VH), 10 пМ каждого праймера (Hinge_Bspl3I_F, CH3_SalI_R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с - 60°С, 43 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.PCR of a PCR-Human IgG1 fragment was performed using a BIS PCR amplifier manufactured by OOO BIS-N (Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (rMAB-CH-100VH), 10 pM of each primer (Hinge_Bspl3I_F, CH3_SalI_R), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dTCP 2.5 mM) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s - 60 ° C, 43 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент PCR-Human IgG1, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 708 п. н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the PCR-Human IgG1 fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 708 bp, visualized with ultraviolet radiation (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПЦР-продукт PCR-Human IgG1 и плазмиду pCI-neo-hEST2-V19-ADI обрабатывали эндонуклеазами рестрикции Bsp13I и SalI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 690 и 5635 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then, the isolated PCR product PCR-Human IgG1 and plasmid pCI-neo-hEST2-V19-ADI were treated with restriction endonucleases Bsp13I and SalI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 690 and 5635 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-21.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the procedure of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-21 was obtained.
Далее проводилась встройка гена устойчивости к антибиотику блеомицину и последовательности EMCV IRES. Праймеры, используемые для амплификации:Next, the gene for resistance to the antibiotic bleomycin and the EMCV IRES sequence were inserted. Primers used for amplification:
- -
- -
ПЦР фрагмента PCR-Bleo-scFv проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (FUGW, Addgene plasmid # 14883), 10 пМ каждого праймера (Bleo-scFv-F, Bleo-scFv-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с - 58°С, 25 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.PCR of the PCR-Bleo-scFv fragment was performed using a BIS PCR amplifier (BIS-N, Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (FUGW, Addgene plasmid # 14883), 10 pM of each primer (Bleo-scFv-F, Bleo-scFv-R), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP 2.5 mM each) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s - 58 ° C, 25 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент PCR-Bleo-scFv, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 400 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the PCR-Bleo-scFv fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, a band corresponding to the amplification product - 400 bp, visualized with ultraviolet (UV), was excised from an agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПЦР-продукт PCR-Bleo-scFv и плазмиду pJet-EMCV-IRES-V17-100VH-CH-2018 обрабатывали эндонуклеазами рестрикции Msp20I и AsuNHI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 380 и 4578 п. н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then, the isolated PCR product PCR-Bleo-scFv and plasmid pJet-EMCV-IRES-V17-100VH-CH-2018 were treated with restriction endonucleases Msp20I and AsuNHI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the bands corresponding to the required fragments - 380 and 4578 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from the agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pJet-IRES-Bleo.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pJet-IRES-Bleo was obtained.
ПЦР фрагмента EMCV-IRES-BleoR проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Праймеры, используемые для амплификации:PCR of the EMCV-IRES-BleoR fragment was performed using a BIS PCR amplifier (BIS-N, Russia). Primers used for amplification:
- и- and
- -
Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК (pJet-IRES-Bleo), 10 пМ каждого праймера (IRES-scFv-R и IRES-Bleo-scFv-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с -58°С, 60 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (pJet-IRES-Bleo), 10 pM of each primer (IRES-scFv-R and IRES-Bleo-scFv-R), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), mixture deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP 2.5 mM each) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s -58 ° C, 60 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую фрагмент EMCV-IRES-BleoR, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 984 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the EMCV-IRES-BleoR fragment was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 984 bp, visualized by ultraviolet (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Затем выделенный ПЦР-продукт EMCV-IRES-BleoR и плазмиду pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-21 обрабатывали эндонуклеазами рестрикции XhoI и NotI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 965 и 6300 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Then, the isolated PCR product EMCV-IRES-BleoR and plasmid pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-21 were treated with restriction endonucleases XhoI and NotI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 965 and 6300 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск). В результате была получена плазмида pCI-neo- hEST2-V19-ADI-CH-IRES-BLEO-21.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-IRES-BLEO-21 was obtained.
Последним шагом в получении целевого вектора pVEAL являлось объединение конструкций pT2HB2-UCOE-RL и pCI-neo- hEST2-V19-ADI-CH-IRES-BLEO-21. Плазмиду pT2HB2-UCOE-RL обрабатывали эндонуклеазами рестрикции BamHI и Mox20I, плазмиду pCI-neo-scFv-ADI-CH-IRES-BLEO-21 обрабатывали эндонуклеазами рестрикции BglII и HpaI.The last step in obtaining the target vector pVEAL was the combination of the pT2HB2-UCOE-RL and pCI-neo-hEST2-V19-ADI-CH-IRES-BLEO-21 constructs. Plasmid pT2HB2-UCOE-RL was treated with restriction endonucleases BamHI and Mox20I, plasmid pCI-neo-scFv-ADI-CH-IRES-BLEO-21 was treated with restriction endonucleases BglII and HpaI.
Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 6617 и 4297 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 6617 and 4297 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г. Новосибирск).Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the procedure of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was carried out according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk).
Встройка последовательностей вариабельных фрагментов тяжелой и легкой цепей любого антитела в универсальный вектор pVEAl проводится по уникальным сайтам гидролиза AfeI и BamHI.The insertion of the sequences of the variable fragments of the heavy and light chains of any antibody into the universal vector pVEAl is carried out at the unique AfeI and BamHI hydrolysis sites.
Пример 2. Получение генетической конструкции pVEAL-15742, кодирующей scFv-Fc антитело ADI-15742, для трансфекции линии клеток СНО-K1.Example 2. Obtaining the genetic construct pVEAL-15742 encoding the scFv-Fc antibody ADI-15742 for transfection of the CHO-K1 cell line.
Для подтверждения эффективности универсального интеграционного вектора pVEAL проводили встройку вариабельных последовательностей тяжелой и легкой цепей антитела ADI-15742 и связывающего их sc-Fv фрагмента.To confirm the effectiveness of the universal integration vector pVEAL, the variable sequences of the heavy and light chains of the ADI-15742 antibody and the sc-Fv fragment that bind them were inserted.
Для начала были амплифицированы тяжелая и легкая цепи антитела ADI-15742. ПЦР фрагмента PCR-ADI-15742VH проводилась с синтезированной последовательности ADI-15742VH (ООО «ДНК-синтез») с помощью праймеров:To begin with, the heavy and light chains of the ADI-15742 antibody were amplified. PCR of the PCR-ADI-15742VH fragment was carried out from the synthesized sequence ADI-15742VH (DNA-synthesis LLC) using primers:
- и- and
- -
ПЦР фрагмента PCR-ADI-15742VK с синтезированной последовательности ADI-15742VK (ООО «ДНК-синтез») с помощью праймеров:PCR fragment of PCR-ADI-15742VK with synthesized sequence ADI-15742VK (DNA-synthesis LLC) using primers:
- и- and
- -
ПЦР фрагментов PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK проводили с использованием ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционные смеси объемом 50 мкл содержали 2 мкг ДНК (ADI-15742VH/ ADI-15742VK), 10 пМ каждого праймера (V19-ADI-F, V19-ADI-L-R/ V19-ADI-L-F, V19-ADI-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с -58°С, 30 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.PCR of fragments PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK was carried out using a PCR amplifier "BIS" manufactured by OOO BIS-N (Russia). Reaction mixtures with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA (ADI-15742VH / ADI-15742VK), 10 pM of each primer (V19-ADI-F, V19-ADI-LR / V19-ADI-LF, V19-ADI-R), 5 μl 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP 2.5 mM each) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s -58 ° C, 30 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционные смеси, содержащие фрагменты PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле е с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие продуктам амплификации - 487 и 384 п. н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.Reaction mixtures containing fragments of PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the amplification products - 487 and 384 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее был проведен отжиг и последующая амплификация последовательностей PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK с использованием праймеров V19-ADI-F и V19-ADI-R при помощи ПЦР-амплификатора «БИС» фирмы ООО БИС-Н (Россия). Реакционная смесь объемом 50 мкл содержала 2 мкг ДНК каждого фрагмента (PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK), 10 пМ каждого праймера (V19-ADI-F и V19-ADI-R), 5 мкл 10xTaq буфера (фирмы Sibenzyme (Россия)), смесь дезоксинуклеотидтрифосфатов (дАТФ, дЦТФ, дТТФ, дГТФ по 2,5 мМ) и 1 ед. ДНК-полимеразы Taq-SE фирмы Sibenzyme (Россия); реакцию осуществляли при следующих параметрах: 3 мин - 95°С; 30 с - 95°С, 30 с -58°С, 51 с - 72°С (30 циклов); 120 с - 72°С.Then, annealing and subsequent amplification of the sequences PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK were carried out using primers V19-ADI-F and V19-ADI-R using a PCR amplifier "BIS" manufactured by OOO BIS-N (Russia). The reaction mixture with a volume of 50 μl contained 2 μg of DNA for each fragment (PCR-ADI-15742VH, PCR-ADI-15742VK), 10 pM of each primer (V19-ADI-F and V19-ADI-R), 5 μl of 10xTaq buffer (Sibenzyme (Russia)), a mixture of deoxynucleotide triphosphates (dATP, dCTP, dTTP, dGTP 2.5 mM each) and 1 unit. DNA polymerase Taq-SE from Sibenzyme (Russia); the reaction was carried out with the following parameters: 3 min - 95 ° C; 30 s - 95 ° C, 30 s -58 ° C, 51 s - 72 ° C (30 cycles); 120 s - 72 ° C.
Реакционную смесь, содержащую амплифицированный фрагмент scFv-ADI-15742, разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосу, соответствующую продукту амплификации - 851 п.н., визуализированную при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирку объемом 1,5 мл. Фрагмент выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The reaction mixture containing the amplified fragment scFv-ADI-15742 was separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, the band corresponding to the amplification product - 851 bp, visualized by ultraviolet (UV), was excised from the agarose gel, and placed in a 1.5 ml tube. The fragment was isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Универсальный интеграционный вектор pVEAL и фрагмент scFv-ADI-15742 обрабатывали эндонуклеазами рестрикции AfeI и BamHI согласно протоколу фирмы-производителя (Sibenzyme (Россия)). Рестрицированные фрагменты разделяли электрофорезом в 1% агарозном геле с добавлением бромистого этидия (0,4 мкг/мл). Для выделения ДНК полосы, соответствующие необходимым фрагментам - 10732 и 743 п.н., визуализированные при помощи ультрафиолета (УФ), вырезали из агарозного геля, помещали в пробирки объемом 1,5 мл. Фрагменты выделяли из геля с помощью набора «Gel Extraction Kit» фирмы Qiagen (Германия) в соответствии с инструкцией производителя.The universal integration vector pVEAL and the scFv-ADI-15742 fragment were treated with restriction endonucleases AfeI and BamHI according to the manufacturer's protocol (Sibenzyme (Russia)). Restricted fragments were separated by electrophoresis in 1% agarose gel with the addition of ethidium bromide (0.4 μg / ml). To isolate DNA, bands corresponding to the required fragments - 10732 and 743 bp, visualized with ultraviolet (UV), were excised from an agarose gel, and placed in 1.5 ml tubes. Fragments were isolated from the gel using the Qiagen Gel Extraction Kit (Germany) according to the manufacturer's instructions.
Далее проводили лигирование фрагментов ДНК-лигазой фага Т4 (Sibenzyme (Россия)) в стандартном буферном растворе по методике производителя фермента. Полученной лигазной смесью трансформировали «компетентные» клетки E.coli штамма NEB Stable как было описано выше. Трансформированные клетки высевали на чашку Петри с твердой питательной средой LB (среда LB с 1,5% агара), содержащей антибиотик (ампициллин, 50-100 мкг/мл). Чашку Петри помещали в термостат на 18 часов при 30°С. Отдельные клоны трансформантов инокулировали в 5 мл питательного бульона LB с добавлением ампициллина в концентрации 50 мкг/мл, наращивали 18 часов при 30°С и проводили выделение плазмидной ДНК при помощи наборов "Plasmid Mini Kit", "Qiagen" (Германия) в соответствии с инструкциями производителя. Первичную структуру полученных плазмид подтверждали секвенированием. Секвенирование проводили по методу Сэнгера в ЦКП «Геномика» СО РАН (г.Новосибирск). В результате была получена плазмида pVEAL-15742.Then, the fragments were ligated with T4 phage DNA ligase (Sibenzyme (Russia)) in a standard buffer solution according to the method of the enzyme manufacturer. The resulting ligase mixture was used to transform "competent" cells of E. coli strain NEB Stable as described above. The transformed cells were plated on a Petri dish with LB solid nutrient medium (LB medium with 1.5% agar) containing an antibiotic (ampicillin, 50-100 μg / ml). The Petri dish was placed in a thermostat for 18 hours at 30 ° C. Individual clones of transformants were inoculated into 5 ml of LB nutrient broth supplemented with ampicillin at a concentration of 50 μg / ml, grown for 18 hours at 30 ° C, and plasmid DNA was isolated using Plasmid Mini Kit, Qiagen (Germany) in accordance with manufacturer's instructions. The primary structure of the resulting plasmids was confirmed by sequencing. Sequencing was performed according to the Sanger method at the Genomics Center for Collective Use, Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences (Novosibirsk). As a result, the plasmid pVEAL-15742 was obtained.
Пример 3. Получение клонов-продуцентов scFv-Fc антитела 15742Example 3. Obtaining clones-producers of scFv-
Для получения клеток продуцентов были выбраны клетки СНО-K1 (клон К1 линии СНО, выделенной из яичника китайского хомячка). Использование этих клеток опирается на опыт их коммерческого использования для создания продуцентов терапевтических белков, в том числе антител. Линия поддерживалась в среде на основе DMEM/F12 с добавлением 10% термоинактивированной (30 мин при температуре 56°С) фетальной сыворотки крови коров (FBS), L-глутамина. По достижении монослоя клетки пересаживались.To obtain producer cells, CHO-K1 cells (clone K1 of the CHO line isolated from Chinese hamster ovary) were selected. The use of these cells is based on the experience of their commercial use to create producers of therapeutic proteins, including antibodies. The line was maintained in a medium based on DMEM / F12 supplemented with 10% heat-inactivated (30 min at 56 ° C) fetal bovine blood serum (FBS), L-glutamine. Upon reaching the monolayer, the cells were transplanted.
Для получения стабильной клеточной линии, синтезирующей рекомбинантный белок, определяли минимальную концентрацию селективного антибиотика блеомицина, необходимую для гибели нетрансфецированной линии клеток-хозяев. Для определения IC50 и IC100 блеомицина клетки рассаживали в 12-луночный культуральный планшет со средой DMEM/F12 с добавлением 10% фетальной сыворотки крови коров (FBS) и L-глутамином, по достижении 90% конфлюэнтности монослоя производили замену культуральной среды на 2% DMEM/F12 с добавлением антибиотика блеомицина (50-700 мкг/мл). В течение 14 суток каждые 48-72 часов производили замену культуральной среды в лунках на 2% DMEM/F12 с добавлением блеомицина (50-700 мкг/мл).To obtain a stable cell line that synthesizes the recombinant protein, the minimum concentration of the selective antibiotic bleomycin required for the death of the untransfected host cell line was determined. To determine the IC50 and IC100 of bleomycin, the cells were seeded into a 12-well culture plate with DMEM / F12 medium supplemented with 10% fetal bovine blood serum (FBS) and L-glutamine, after reaching 90% confluence of the monolayer, the culture medium was replaced with 2% DMEM / F12 with the addition of the antibiotic bleomycin (50-700 μg / ml). Within 14 days, every 48-72 hours, the culture medium in the wells was replaced with 2% DMEM / F12 with the addition of bleomycin (50-700 μg / ml).
При добавлении блеомицина чувствительные к нему клетки проявляли следующие морфологические изменения:When bleomycin was added, cells sensitive to it showed the following morphological changes:
• Увеличение размера (аналогично воздействию цитомегаловируса, инфицирующего клетки)• Increase in size (similar to the effects of cytomegalovirus infecting cells)
• Аномальная форма клеток, включая появление длинных придатков• Abnormal cell shape, including the appearance of long appendages
• Наличие больших пустых везикул в цитоплазме (пробой эндоплазматического ретикулума и аппарата Гольджи)• The presence of large empty vesicles in the cytoplasm (breakdown of the endoplasmic reticulum and Golgi apparatus)
• Разрушение плазмы и ядерной мембраны (появление множества отверстий в этих мембранах). В конце концов, клетки полностью разрушатся, и останется только клеточный «мусор».• Destruction of plasma and nuclear membrane (the appearance of many holes in these membranes). Eventually, the cells will completely collapse, and only cellular debris will remain.
Указанные изменения проиллюстрированы на фиг. 3. На фиг. 3а представлена фотография клеток, не подвергшихся воздействию блеомицина, - положительный контроль К+. На фиг. 3б - 3и представлены фотографии клеток, подвергшихся воздействию блеомицина в количестве от 50 до 700 мкг/мл. На данных фигурах показано, что при увеличении концентрации антибиотика клетки существенно меняются морфологически. На фиг. 3д при концентрации блеомицина 300 мкг/мл видно, что примерно половина клеток сохраняют жизнеспособность и присущую им морфологию. На фиг. 3е, 3ж клетки практически полностью погибли, преобладают измененные и разрушенные клетки.These changes are illustrated in FIG. 3. In FIG. 3a shows a photograph of cells not exposed to bleomycin - positive control K +. FIG. Figures 3b - 3i show photographs of cells exposed to bleomycin in an amount of 50 to 700 μg / ml. These figures show that with an increase in the concentration of the antibiotic, the cells change significantly morphologically. FIG. 3d, at a bleomycin concentration of 300 μg / ml, it can be seen that about half of the cells retain their viability and their inherent morphology. FIG. 3f, 3g cells almost completely died, altered and destroyed cells predominate.
Таким образом, установлена полуингибирующая и ингибирующая дозы блеомицина для СНО-K1 (IC50=325 мкг/мл, IC100=475 мкг/мл).Thus, the semi-inhibitory and inhibitory doses of bleomycin for CHO-K1 were established (IC50 = 325 μg / ml, IC100 = 475 μg / ml).
Для встройки экспрессионой кассеты проводили котрансфекцию методом катионно-липидной трансфекции (Lipofectamine 3000, Invitrogen) клеток СНО-K1 двумя плазмидами. Первая содержала последовательность scFv-Fc антитела 15742, pVEAL-15742, вторая содержала последовательность транспозазы SB100, pCMV(CAT)T7-SB100. После трансфекции инкубировали клетки 96 часов в CO2-инкубаторе согласно рекомендациям производителя Lipofectamine 3000. Затем проводили замену среды на поддерживающую (с содержанием 2% фетальной бычьей сыворотки) с добавлением селективного антибиотика блеомицина (475 мкг/мл). Эту манипуляцию повторяли каждые 72-96 часов на протяжении 2-3 недель до тех пор, пока в отрицательном контроле клетки не погибли. Затем делали один пассаж на культуральных чашках и рассаживали в 96-луночные планшеты по одной клетке на лунку.To insert the expression cassette, CHO-K1 cells were co-transfected by cation-lipid transfection (Lipofectamine 3000, Invitrogen) with two plasmids. The first contained the sequence of the scFv-
Получено 4 клона 15742 с нейтрализующим титром, определенным для IC90, (анализировали культуральную среду) от 1:8 до 1:32768. Реакцию вируснейтрализации проводили на псевдовирусной системе.4
Пример 4. Анализ нейтрализующей активности scFv-Fc моноклонального антитела ADI15742 против вируса ЭболаExample 4. Assay of scFv-Fc neutralizing activity of anti-Ebola monoclonal antibody ADI15742
Препараты антитела 15742 титровали с шагом 4, инкубировали 30 мин в CO2-инкубаторе со смесью псевдовирусных частиц вируса Эбола (50 мкл, физический титр 5×108 частиц) и переносили в 96-луночный плоскодонный планшет к суспензии культуры клеток HEK293T (50 мкл, 100 тыс/мл). Инкубировали 48 ч в CO2-инкубаторе. По истечении времени из лунок планшета удаляли ростовую среду, промывали 100 мкл PBS, добавляли 40 мкл 1×лизирующего буфера (Promega, США), инкубировали 10 минут при комнатной температуре, суспендировали и переносили по 35 мкл в оптический планшет, добавляли 35 мкл LAR (Promega, США), и считывали результаты при помощи люминометра (LuMate). Результаты анализа на примере одного из клонов представлены на фиг. 4. График, приведенный на фиг. 4, отражает зависимость нейтрализующей активности scFv-Fc антитела ADI 15742 против вируса Эбола, определенной для IC90, от степени разведения препарата. При разведении 1:8 препарат антитела обладает стопроцентной нейтрализующей активностью. При разведении до 1:32768 нейтрализующая активность составляет 75%.
Пример 5. Наработка и очистка scFv-Fc моноклонального антитела ADI15742Example 5. Production and purification of scFv-Fc monoclonal antibody ADI15742
Каждый индивидуальный клон-продуцент рекомбинантного scFv-Fc антитела 15742 нарабатывался в культуральной среде DMEM/F12 с 10% содержанием фетальной телячьей сыворотки. Культивирование клонов-продуцентов проводилось в объеме 200 мл в роллерных бутылях при 37°С в течение 10 суток. Затем среда заменялась на поддерживающую, содержащую 2% фетальной телячьей сыворотки. Культивирование продолжали до тех пор, пока клетки сохраняли жизнеспособность. Далее полученную культуральную жидкость сливали, осаждали клеточный дебрис при помощи центрифугирования при 6000 g, 4°С в течение 15 мин.Each individual clone-producer of the recombinant scFv-
Очистку рекомбинантных антител проводили при помощи аффинной хроматографии с использованием сорбента, содержащего на своей поверхности белок A (MabSelect SuRe, GE Healthcare, США), и хроматографической системы AKTAprime plus (GE Healthcare, США). Очистка включает в себя следующие стадии: уравновешивание хроматографической колонки, нанесение образца, промывка колонки, элюция белка.The recombinant antibodies were purified by affinity chromatography using a sorbent containing protein A on its surface (MabSelect SuRe, GE Healthcare, USA) and an AKTAprime plus chromatographic system (GE Healthcare, USA). Purification includes the following steps: equilibration of the chromatographic column, sample application, column washing, protein elution.
Уравновешивание хроматографической колонки включает в себя промывание пятикратным объемом базового буфера (50 mM Трис-НСl, 150 мМ NaCl, рН 7,0-7,2). Скорость потока определялась временем контакта буфера с сорбентом, время контакта составляло не менее 4 мин.Equilibration of the chromatographic column involves washing with a five-fold volume of base buffer (50 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, pH 7.0-7.2). The flow rate was determined by the contact time of the buffer with the sorbent; the contact time was at least 4 min.
Далее наносили культуральную жидкость, содержащую антитела, на колонку, время контакта образца с сорбентом составляло не менее 5 мин.Then, the culture liquid containing antibodies was applied to the column; the contact time of the sample with the sorbent was at least 5 min.
Отмывку колонки от несвязавшихся белков, а также от белков, обладающих низкой силой взаимодействия с сорбентом, проводили при помощи последовательной промывки хромоатографической колонки базовым буфером и буфером для промывки (20 мМ Трис-HCl, рН 6,8-7,0). Объемы базового и промывочного буферов составляли 3,5 объема колонки. Скорость потока определялась временем контакта буфера с сорбентом, время контакта составляло не менее 3,5 мин.The column was washed from unbound proteins, as well as from proteins with a low interaction strength with the sorbent, by sequential washing of the chromoatographic column with the base buffer and the wash buffer (20 mM Tris-HCl, pH 6.8-7.0). The volumes of the base and wash buffers were 3.5 column volumes. The flow rate was determined by the contact time of the buffer with the sorbent; the contact time was at least 3.5 min.
Элюцию проводили пятикратным объемом элюирующего буфера (100 mM Глицин-HCl, рН 3,4-3,5). Скорость потока определялась временем контакта буфера с сорбентом, время контакта составляло не менее 6 мин. Полученные образцы нейтрализовали до рН 7,0 при помощи буфера для титрования (1М Трис). Полученные препараты анализировали при помощи разделения в полиакриламидном геле (ПААГ) по стандартной методике (Фиг. 5). Препараты, нанесенные на ПААГ: дорожка 1 - исходная культуральная жидкость, содержащая наработанное антитело, до очистки на хроматографической колонке, 10 мкл; дорожка 2 - культуральная жидкость, прошедшая через хроматографическую колонку, и содержащая несвязавшиеся с сорбентом клеточные белки, 10 мкл; дорожка 3 - препарат после промывки колонки уравновешивающим буфером, содержит слабо связавшиеся с сорбентом клеточные белки, 10 мкл; дорожка 4 - препарат после промывки колонки буфером для промывки, содержит остатки несвязавшихся белков, 10 мкл; 5 - маркер длин белков 10-260 kDa; дорожка 6 - препарат антитела 15742 после очистки, 10 мкл. На представленной электрофореграмме видно, что полученное антитело очищено от посторонних белков, имеет массу порядка 50 kDa.Elution was performed with a five-fold volume of elution buffer (100 mM Glycine-HCl, pH 3.4-3.5). The flow rate was determined by the contact time of the buffer with the sorbent; the contact time was at least 6 min. The resulting samples were neutralized to pH 7.0 using titration buffer (1M Tris). The resulting preparations were analyzed by separation in polyacrylamide gel (PAGE) according to the standard method (Fig. 5). Preparations applied to PAGE: lane 1 - initial culture liquid containing the accumulated antibody, before purification on a chromatographic column, 10 μl;
Препараты, содержащие рекомбинантное антитело, фильтровали от выпавших в осадок белков при помощи насадки на шприц с диаметром пор 0,22 мкм (ТРР, Швейцария). Элюаты концентрировались при помощи центрифугирования препаратов антитела в концентраторах (Sartorius AG, Германия) при 6000 g, 17°С. Концентрация антител определялась с помощью прибора для определения сверхмалых концентраций NanoPhotometer NP80 (Implen, Германия) согласно инструкции производителя. Контроль проводили при помощи разделения в ПААГ. Пример определения концентрации препарата очищенного scFv-Fc антитела 15742, полученного с одного из клонов-продуцентов, приведен на фиг. 6. Для определения приблизительной концентрации разводили препараты очищенного scFv-Fc антитела 15742 в 10, 20, 40, 80 раз и сравнивали с бычьим сывороточным альбумином (БСА) в концентрации от 0,025 до 1 мкг. Препараты, нанесенные на ПААГ: дорожка 1 - препарат очищенного антитела 15742 после концентрирования в 1-кратном разведении (выделение из 1 л культуральной среды), 10 мкл; дорожка 2 - препарат очищенного антитела 15742 до концентрирования в 10-кратном разведении (выделение из 1 л культуральной среды), 10 мкл; дорожка 3 - препарат очищенного антитела 15742 до концентрирования в 20-кратном разведении (выделение из 1 л культуральной среды), 10 мкл; дорожка 4 - препарат очищенного антитела 15742 до концентрирования в 40-кратном разведении (выделение из 1 л культуральной среды), 10 мкл; дорожка 5 - препарат очищенного антитела 15742 до концентрирования в 80-кратном разведении (выделение из 1 л культуральной среды), 10 мкл; дорожка 6-маркер длин белков 10-260 kDa; 7 - БСА - 1 мкг; 8 - БСА - 0,1 мкг; 9 - БСА - 0,05 мкг; 10 - БСА - 0,025 мкг. При сопоставлении концентраций scFv-Fc антитела 15742 и БСА сделан вывод, что концентрация целевого белка, полученная с одного из клонов-продуцентов, составляет примерно 150 мг/л.The preparations containing the recombinant antibody were filtered from precipitated proteins using a syringe attachment with a pore diameter of 0.22 μm (TPP, Switzerland). Eluates were concentrated by centrifugation of antibody preparations in concentrators (Sartorius AG, Germany) at 6000 g, 17 ° C. The concentration of antibodies was determined using a device for determining ultra-low concentrations NanoPhotometer NP80 (Implen, Germany) according to the manufacturer's instructions. The control was carried out using separation in PAGE. An example of determining the concentration of a preparation of purified scFv-
Анализ культуральной жидкости различных клонов-продуцентов показал, что наработка антител у них идет неравномерно. Содержание антител в препаратах после хроматографии и концентрирования варьируется в пределах от 35 мг до 150,6 мг с одного литра культуральной жидкости.Analysis of the culture fluid of various producer clones showed that the production of antibodies in them is uneven. The content of antibodies in the preparations after chromatography and concentration varies from 35 mg to 150.6 mg from one liter of the culture liquid.
Список последовательностей:Sequence list:
<110> Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный научный центр<110> Federal Budgetary Institution of Science "State Scientific Center
вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в virology and biotechnology "Vector" of the Federal Service for Surveillance in
сфере защиты прав потребителей и благополучия человека the sphere of consumer protection and human well-being
(ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора) (FBSI SSC VB "Vector" Rospotrebnadzor)
<120> Универсальный интеграционный вектор pVEAL и рекомбинантная плазмида <120> Universal integration vector pVEAL and recombinant plasmid
pVEAL-15742, обеспечивающая синтез и секрецию scFv-Fc антитела ADI-15742 pVEAL-15742, providing synthesis and secretion of scFv-Fc antibody ADI-15742
против вируса Эбола в клетках млекопитающих и полученная с использованием against the Ebola virus in mammalian cells and obtained using
вектора pVEAL vector pVEAL
<160> SEQ ID NO 2 <160>
<210> SEQ ID NO: 1 <210> SEQ ID NO: 1
<211> 10914 <211> 10914
<212> PRT <212> PRT
<213> Artificial Sequence <213> Artificial Sequence
<223> Нуклеотидная последовательность универсального интеграционного <223> Nucleotide sequence of the universal integration
вектора pVEAL vector pVEAL
<400> 1 <400> 1
1 caaggcgatt aagttgggta acgccagggt tttcccagtc acgacgttgt aaaacgacgg 1 caaggcgatt aagttgggta acgccagggt tttcccagtc acgacgttgt aaaacgacgg
61 ccagtgagcg cgcgtaatac gactcactat agggcgaatt ggagctcggt tccctataca 61 ccagtgagcg cgcgtaatac gactcactat agggcgaatt ggagctcggt tccctataca
121 gttgaagtcg gaagtttaca tacacttaag ttggagtcat taaaactcgt ttttcaacta 121 gttgaagtcg gaagtttaca tacacttaag ttggagtcat taaaactcgt ttttcaacta
181 ctccacaaat ttcttgttaa caaacaatag ttttggcaag tcagttagga catctacttt 181 ctccacaaat ttcttgttaa caaacaatag ttttggcaag tcagttagga catctacttt
241 gtgcatgaca caagtcattt ttccaacaat tgtttacaga cagattattt cacttataat 241 gtgcatgaca caagtcattt ttccaacaat tgtttacaga cagattattt cacttataat
301 tcactgtatc acaattccag tgggtcagaa gtttacatac actaagttga ctgtgccttt 301 tcactgtatc acaattccag tgggtcagaa gtttacatac actaagttga ctgtgccttt
361 aaacagcttg gaaaattcca gaaaatgatg tcatggcttt agaagcttca ttggcgccct 361 aaacagcttg gaaaattcca gaaaatgatg tcatggcttt agaagcttca ttggcgccct
421 ccgcgcctac agctcaagcc acatccgaag ggggagggag ccgggagctg cgcgcggggc 421 ccgcgcctac agctcaagcc acatccgaag ggggagggag ccgggagctg cgcgcggggc
481 cgccgggggg aggggtggca ccgcccacgc cgggcggcca cgaagggcgg ggcagcgggc 481 cgccgggggg aggggtggca ccgcccacgc cgggcggcca cgaagggcgg ggcagcgggc
541 gcgcgcgcgg cggggggagg ggccggcgcc gcgcccgctg ggaattgggg ccctaggggg 541 gcgcgcgcgg cggggggagg ggccggcgcc gcgcccgctg ggaattgggg ccctaggggg
601 agggcggagg cgccgacgac cgcggcactt accgttcgcg gcgtggcgcc cggtggtccc 601 agggcggagg cgccgacgac cgcggcactt accgttcgcg gcgtggcgcc cggtggtccc
661 caaggggagg gaagggggag gcggggcgag gacagtgacc ggagtctcct cagcggtggc 661 caaggggagg gaagggggag gcggggcgag gacagtgacc ggagtctcct cagcggtggc
721 ttttctgctt ggcagcctca gcggctggcg ccaaaaccgg actccgccca cttcctcgcc 721 ttttctgctt ggcagcctca gcggctggcg ccaaaaccgg actccgccca cttcctcgcc
781 cgccggtgcg agggtgtgga atcctccaga cgctggggga gggggagttg ggagcttaaa 781 cgccggtgcg agggtgtgga atcctccaga cgctggggga gggggagttg ggagcttaaa
841 aactagtacc cctttgggac cactttcagc agcgaactct cctgtacacc aggggtcagt 841 aactagtacc cctttgggac cactttcagc agcgaactct cctgtacacc aggggtcagt
901 tccacagacg cgggccaggg gtgggtcatt gcggcgtgaa caataatttg actagaagtt 901 tccacagacg cgggccaggg gtgggtcatt gcggcgtgaa caataatttg actagaagtt
961 gattcgggtg tttccggaag gggccgagtc aatccgccga gttggggcac ggaaaacaaa 961 gattcgggtg tttccggaag gggccgagtc aatccgccga gttggggcac ggaaaacaaa
1021 aagggaaggc tactaagatt tttctggcgg gggttatcat tggcgtaact gcagggacca 1021 aagggaaggc tactaagatt tttctggcgg gggttatcat tggcgtaact gcagggacca
1081 cctcccgggt tgagggggct ggatctccag gctgcggatt aagcccctcc cgtcggcgtt 1081 cctcccgggt tgagggggct ggatctccag gctgcggatt aagcccctcc cgtcggcgtt
1141 aatttcaaac tgcgcgacgt ttctcacctg ccttcgccaa ggcaggggcc gggaccctat 1141 aatttcaaac tgcgcgacgt ttctcacctg ccttcgccaa ggcaggggcc gggaccctat
1201 tccaagaggt agtaactagc aggactctag ccttccgcaa ttcattgagc gcatttacgg 1201 tccaagaggt agtaactagc aggactctag ccttccgcaa ttcattgagc gcatttacgg
1261 aagtaacgtc gggtactgtc tctggccgca agggtgggag gagtacgcat ttggcgtaag 1261 aagtaacgtc gggtactgtc tctggccgca agggtgggag gagtacgcat ttggcgtaag
1321 gtggggcgta gagccttccc gccattggcg gcggataggg cgtttacgcg acggcctgac 1321 gtggggcgta gagccttccc gccattggcg gcggataggg cgtttacgcg acggcctgac
1381 gtagcggaag acgccttagt gggggggaag gttctagaaa agcggcggca gcggctctag 1381 gtagcggaag acgccttagt gggggggaag gttctagaaa agcggcggca gcggctctag
1441 cggcagtagc agcagcgccg ggtcccgtgc ggaggtgctc ctcgcagagt tgtttctcca 1441 cggcagtagc agcagcgccg ggtcccgtgc ggaggtgctc ctcgcagagt tgtttctcca
1501 gcagcggcag ttctcactac agcgccagga cgagtccggt tcgtgttcgt ccgcggagat 1501 gcagcggcag ttctcactac agcgccagga cgagtccggt tcgtgttcgt ccgcggagat
1561 ctctctcatc tcgctcggct gcgggaaatc gggctgaagc gactgagtcc gcgatggagg 1561 ctctctcatc tcgctcggct gcgggaaatc gggctgaagc gactgagtcc gcgatggagg
1621 taacgggttt gaaatcaatg agttattgaa aagggcatgg cgaggccgtt ggcgcctcag 1621 taacgggttt gaaatcaatg agttattgaa aagggcatgg cgaggccgtt ggcgcctcag
1681 tggaagtcgg ccagccgcct ccgtgggaga gaggcaggaa atcggaccaa ttcagtagca 1681 tggaagtcgg ccagccgcct ccgtgggaga gaggcaggaa atcggaccaa ttcagtagca
1741 gtggggctta aggtttatga acggggtctt gagcggaggc ctgagcgtac aaacagcttc 1741 gtggggctta aggtttatga acggggtctt gagcggaggc ctgagcgtac aaacagcttc
1801 cccaccctca gcctcccggc gccatttccc ttcactgggg gtgggggatg gggagctttc 1801 cccaccctca gcctcccggc gccatttccc ttcactgggg gtgggggatg gggagctttc
1861 acatggcgga cgctgccccg ctggggtgaa agtggggcgc ggaggcggga cttcttattc 1861 acatggcgga cgctgccccg ctggggtgaa agtggggcgc ggaggcggga cttcttattc
1921 cctttctaaa gcacgctgct tcgggggcca cggcgtctcc tcggggatct tcaatattgg 1921 cctttctaaa gcacgctgct tcgggggcca cggcgtctcc tcggggatct tcaatattgg
1981 ccattagcca tattattcat tggttatata gcataaatca atattggcta ttggccattg 1981 ccattagcca tattattcat tggttatata gcataaatca atattggcta ttggccattg
2041 catacgttgt atctatatca taatatgtac atttatattg gctcatgtcc aatatgaccg 2041 catacgttgt atctatatca taatatgtac atttatattg gctcatgtcc aatatgaccg
2101 ccatgttggc attgattatt gactagttat taatagtaat caattacggg gtcattagtt 2101 ccatgttggc attgattatt gactagttat taatagtaat caattacggg gtcattagtt
2161 catagcccat atatggagtt ccgcgttaca taacttacgg taaatggccc gcctggctga 2161 catagcccat atatggagtt ccgcgttaca taacttacgg taaatggccc gcctggctga
2221 ccgcccaacg acccccgccc attgacgtca ataatgacgt atgttcccat agtaacgcca 2221 ccgcccaacg acccccgccc attgacgtca ataatgacgt atgttcccat agtaacgcca
2281 atagggactt tccattgacg tcaatgggtg gagtatttac ggtaaactgc ccacttggca 2281 atagggactt tccattgacg tcaatgggtg gagtatttac ggtaaactgc ccacttggca
2341 gtacatcaag tgtatcatat gccaagtccg ccccctattg acgtcaatga cggtaaatgg 2341 gtacatcaag tgtatcatat gccaagtccg ccccctattg acgtcaatga cggtaaatgg
2401 cccgcctggc attatgccca gtacatgacc ttacgggact ttcctacttg gcagtacatc 2401 cccgcctggc attatgccca gtacatgacc ttacgggact ttcctacttg gcagtacatc
2461 tacgtattag tcatcgctat taccatggtg atgcggtttt ggcagtacac caatgggcgt 2461 tacgtattag tcatcgctat taccatggtg atgcggtttt ggcagtacac caatgggcgt
2521 ggatagcggt ttgactcacg gggatttcca agtctccacc ccattgacgt caatgggagt 2521 ggatagcggt ttgactcacg gggatttcca agtctccacc ccattgacgt caatgggagt
2581 ttgttttggc accaaaatca acgggacttt ccaaaatgtc gtaacaactg cgatcgcccg 2581 ttgttttggc accaaaatca acgggacttt ccaaaatgtc gtaacaactg cgatcgcccg
2641 ccccgttgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga ggtctatata agcagagctc 2641 ccccgttgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga ggtctatata agcagagctc
2701 gtttagtgaa ccgtcagatc actagaagct ttattgcggt agtttatcac agttaaattg 2701 gtttagtgaa ccgtcagatc actagaagct ttattgcggt agtttatcac agttaaattg
2761 ctaacgcagt cagtgcttct gacacaacag tctcgaactt aagctgcagt gactctctta 2761 ctaacgcagt cagtgcttct gacacaacag tctcgaactt aagctgcagt gactctctta
2821 aggtagcctt gcagaagttg gtcgtgaggc actgggcagg taagtatcaa ggttacaaga 2821 aggtagcctt gcagaagttg gtcgtgaggc actgggcagg taagtatcaa ggttacaaga
2881 caggtttaag gagaccaata gaaactgggc ttgtcgagac agagaagact cttgcgtttc 2881 caggtttaag gagaccaata gaaactgggc ttgtcgagac agagaagact cttgcgtttc
2941 tgataggcac ctattggtct tactgacatc cactttgcct ttctctccac aggtgtccac 2941 tgataggcac ctattggtct tactgacatc cactttgcct ttctctccac aggtgtccac
3001 tcccagttca attacagctc ttaaggctag agtacttaat acgactcact ataggctagc 3001 tcccagttca attacagctc ttaaggctag agtacttaat acgactcact ataggctagc
3061 ctcgagaatt cgtcctgctg cgcacgtggg aagccctggc cccggccgcc accatgatga 3061 ctcgagaatt cgtcctgctg cgcacgtggg aagccctggc cccggccgcc accatgatga
3121 ggcccatcgt gctggtgctg ctgttcgcca cctcagcgct ggccggcgag tgcgagtgcg 3121 ggcccatcgt gctggtgctg ctgttcgcca cctcagcgct ggccggcgag tgcgagtgcg
3181 agtgcgagtc gtacgtacgt acgtacgtac gtacgtatat atatatatat attatatata 3181 agtgcgagtc gtacgtacgt acgtacgtac gtacgtatat atatatatat attatatata
3241 ttaatatatg gcgagtgcga gtgcgagtgc gagtcgtacg tacgtacgta cgtacgtacg 3241 ttaatatatg gcgagtgcga gtgcgagtgc gagtcgtacg tacgtacgta cgtacgtacg
3301 tatatatata tatatattat atatattaat atatatatgg atccggagac aaaactcaca 3301 tatatatata tatatattat atatattaat atatatatgg atccggagac aaaactcaca
3361 catgcccacc gtgcccagca cctgaactcc tggggggacc gtcagtcttc ctcttccccc 3361 catgcccacc gtgcccagca cctgaactcc tggggggacc gtcagtcttc ctcttccccc
3421 caaaacccaa ggacaccctc tacatcaccc gggaacctga ggtcacatgc gtggtggtgg 3421 caaaacccaa ggacaccctc tacatcaccc gggaacctga ggtcacatgc gtggtggtgg
3481 acgtgagcca cgaagaccct gaggtcaagt tcaactggta cgtggacggc gtggaggtgc 3481 acgtgagcca cgaagaccct gaggtcaagt tcaactggta cgtggacggc gtggaggtgc
3541 ataatgccaa gacaaagccg cgggaggagc agtacaacag cacgtaccgt gtggtcagcg 3541 ataatgccaa gacaaagccg cgggaggagc agtacaacag cacgtaccgt gtggtcagcg
3601 tcctcaccgt cctgcaccag gactggctga atggcaagga gtacaagtgc aaggtctcca 3601 tcctcaccgt cctgcaccag gactggctga atggcaagga gtacaagtgc aaggtctcca
3661 acaaagccct cccagccccc atcgcgaaaa ccatctccaa agccaaaggg cagccccgag 3661 acaaagccct cccagccccc atcgcgaaaa ccatctccaa agccaaaggg cagccccgag
3721 aaccacaggt gtacaccctg cccccatccc gggaggagat gaccaagaac caggtcagcc 3721 aaccacaggt gtacaccctg cccccatccc gggaggagat gaccaagaac caggtcagcc
3781 tgacctgcct ggtcaaaggc ttctatccca gcgacatcgc cgtggagtgg gagagcaatg 3781 tgacctgcct ggtcaaaggc ttctatccca gcgacatcgc cgtggagtgg gagagcaatg
3841 ggcagccgga gaacaactac aagaccacgc ctcccgtgct ggactccgac ggctccttct 3841 ggcagccgga gaacaactac aagaccacgc ctcccgtgct ggactccgac ggctccttct
3901 tcctctacag caagctcacc gtggacaaga gcaggtggca gcaggggaac gtcttctcat 3901 tcctctacag caagctcacc gtggacaaga gcaggtggca gcaggggaac gtcttctcat
3961 gctccgtgat gcatgaggct ctgaagttcc actacacgca gaagagcctc tccctgtctc 3961 gctccgtgat gcatgaggct ctgaagttcc actacacgca gaagagcctc tccctgtctc
4021 cgggtaaatg agtcgagcgg ttcccgcccc tctccctccc ccccccctaa cgttactggc 4021 cgggtaaatg agtcgagcgg ttcccgcccc tctccctccc ccccccctaa cgttactggc
4081 cgaagccgct tggaataagg ccggtgtgcg tttgtctata tgttattttc caccatattg 4081 cgaagccgct tggaataagg ccggtgtgcg tttgtctata tgttattttc caccatattg
4141 ccgtcttttg gcaatgtgag ggcccggaaa cctggccctg tcttcttgac gagcattcct 4141 ccgtcttttg gcaatgtgag ggcccggaaa cctggccctg tcttcttgac gagcattcct
4201 aggggtcttt cccctctcgc caaaggaatg caaggtctgt tgaatgtcgt gaaggaagca 4201 aggggtcttt cccctctcgc caaaggaatg caaggtctgt tgaatgtcgt gaaggaagca
4261 gttcctctgg aagcttcttg aagacaaaca acgtctgtag cgaccctttg caggcagcgg 4261 gttcctctgg aagcttcttg aagacaaaca acgtctgtag cgaccctttg caggcagcgg
4321 aaccccccac ctggcgacag gtgcctctgc ggccaaaagc cacgtgtata agatacacct 4321 aaccccccac ctggcgacag gtgcctctgc ggccaaaagc cacgtgtata agatacacct
4381 gcaaaggcgg cacaacccca gtgccacgtt gtgagttgga tagttgtgga aagagtcaaa 4381 gcaaaggcgg cacaacccca gtgccacgtt gtgagttgga tagttgtgga aagagtcaaa
4441 tggctcacct caagcgtatt caacaagggg ctgaaggatg cccagaaggt accccattgt 4441 tggctcacct caagcgtatt caacaagggg ctgaaggatg cccagaaggt accccattgt
4501 atgggatctg atctggggcc tcggtgcaca tgctttacat gtgtttagtc gaggttaaaa 4501 atgggatctg atctggggcc tcggtgcaca tgctttacat gtgtttagtc gaggttaaaa
4561 aacgtctagg ccccccgaac cacggggacg tggttttcct ttgaaaaaca cgatgataat 4561 aacgtctagg ccccccgaac cacggggacg tggttttcct ttgaaaaaca cgatgataat
4621 atggccaagt tgaccagtgc cgttccggtg ctcaccgcgc gcgacgtcgc cggagcggtc 4621 atggccaagt tgaccagtgc cgttccggtg ctcaccgcgc gcgacgtcgc cggagcggtc
4681 gagttctgga ccgaccggct cgggttctcc cgggacttcg tggaggacga cttcgccggt 4681 gagttctgga ccgaccggct cgggttctcc cgggacttcg tggaggacga cttcgccggt
4741 gtggtccggg acgacgtgac cctgttcatc agcgcggtcc aggaccaggt ggtgccggac 4741 gtggtccggg acgacgtgac cctgttcatc agcgcggtcc aggaccaggt ggtgccggac
4801 aacaccctgg cctgggtgtg ggtgcgcggc ctggacgagc tgtacgccga gtggtcggag 4801 aacaccctgg cctgggtgtg ggtgcgcggc ctggacgagc tgtacgccga gtggtcggag
4861 gtcgtgtcca cgaacttccg ggacgcctcc gggccggcca tgaccgagat cggcgagcag 4861 gtcgtgtcca cgaacttccg ggacgcctcc gggccggcca tgaccgagat cggcgagcag
4921 ccgtgggggc gggagttcgc cctgcgcgac ccggccggca actgcgtgca cttcgtggcc 4921 ccgtgggggc gggagttcgc cctgcgcgac ccggccggca actgcgtgca cttcgtggcc
4981 gaggagcagg actgagcggc cgcttccctt tagtgagggt taatgcttcg agcagacatg 4981 gaggagcagg actgagcggc cgcttccctt tagtgagggt taatgcttcg agcagacatg
5041 ataagataca ttgatgagtt tggacaaacc acaactagaa tgcagtgaaa aaaatgcttt 5041 ataagataca ttgatgagtt tggacaaacc acaactagaa tgcagtgaaa aaaatgcttt
5101 atttgtgaaa tttgtgatgc tattgcttta tttgtaacca ttataagctg caataaacaa 5101 atttgtgaaa tttgtgatgc tattgcttta tttgtaacca ttataagctg caataaacaa
5161 gttaacaaca acaattgcat tcattttatg tttcaggttc agggggagat gtgggaggtt 5161 gttaacaaca acaattgcat tcattttatg tttcaggttc agggggagat gtgggaggtt
5221 ttttaaagca agtaaaacct ctacaaatgt ggtaaaatcc gataaggatc gatccgggct 5221 ttttaaagca agtaaaacct ctacaaatgt ggtaaaatcc gataaggatc gatccgggct
5281 ggcgtaatag cgaagaggcc cgcaccgatc gcccttccca acagttgcgc agcctgaatg 5281 ggcgtaatag cgaagaggcc cgcaccgatc gcccttccca acagttgcgc agcctgaatg
5341 gcgaatggac gcgccctgta gcggcgcatt aagcgcggcg ggtgtggtgg ttacgcgcag 5341 gcgaatggac gcgccctgta gcggcgcatt aagcgcggcg ggtgtggtgg ttacgcgcag
5401 cgtgaccgct acacttgcca gcgccctagc gcccgctcct ttcgctttct tcccttcctt 5401 cgtgaccgct acacttgcca gcgccctagc gcccgctcct ttcgctttct tcccttcctt
5461 tctcgccacg ttcgccggct ttccccgtca agctctaaat cgggggctcc ctttagggtt 5461 tctcgccacg ttcgccggct ttccccgtca agctctaaat cgggggctcc ctttagggtt
5521 ccgatttagt gctttacggc acctcgaccc caaaaaactt gattagggtg atggttcacg 5521 ccgatttagt gctttacggc acctcgaccc caaaaaactt gattagggtg atggttcacg
5581 tagtgggcca tcgccctgat agacggtttt tcgccctttg acgttggagt ccacgttctt 5581 tagtgggcca tcgccctgat agacggtttt tcgccctttg acgttggagt ccacgttctt
5641 taatagtgga ctcttgttcc aaactggaac aacactcaac cctatctcgg tctattcttt 5641 taatagtgga ctcttgttcc aaactggaac aacactcaac cctatctcgg tctattcttt
5701 tgatttataa gggattttgc cgatttcggc ctattggtta aaaaatgagc tgatttaaca 5701 tgatttataa gggattttgc cgatttcggc ctattggtta aaaaatgagc tgatttaaca
5761 aaaatttaac gcgaatttta acaaaatatt aacgcttaca atttcctgat gcggtatttt 5761 aaaatttaac gcgaatttta acaaaatatt aacgcttaca atttcctgat gcggtatttt
5821 ctccttacgc atctgtgcgg tatttcacac cgcatacgcg gatctgcgca gcaccatggc 5821 ctccttacgc atctgtgcgg tatttcacac cgcatacgcg gatctgcgca gcaccatggc
5881 ctgaaataac ctctgaaaga ggaacttggt taggtacctt ctgaggcgga aagaaccagc 5881 ctgaaataac ctctgaaaga ggaacttggt taggtacctt ctgaggcgga aagaaccagc
5941 tgtggaatgt gtgtcagtta gggtgtggaa agtccccagg ctccccagca ggcagaagta 5941 tgtggaatgt gtgtcagtta gggtgtggaa agtccccagg ctccccagca ggcagaagta
6001 tgcaaagcat gcatctcaat tagtcagcaa ccaggtgtgg aaagtcccca ggctccccag 6001 tgcaaagcat gcatctcaat tagtcagcaa ccaggtgtgg aaagtcccca ggctccccag
6061 caggcagaag tatgcaaagc atgcatctca attagtcagc aaccatagtc ccgcccctaa 6061 caggcagaag tatgcaaagc atgcatctca attagtcagc aaccatagtc ccgcccctaa
6121 ctccgcccat cccgccccta actccgccca gttccgccca ttctccgccc catggctgac 6121 ctccgcccat cccgccccta actccgccca gttccgccca ttctccgccc catggctgac
6181 taattttttt tatttatgca gaggccgagg ccgcctcggc ctctgagcta ttccagaagt 6181 taattttttt tatttatgca gaggccgagg ccgcctcggc ctctgagcta ttccagaagt
6241 agtgaggagg cttttttgga ggccacggcc ggccctccgc gcctacagct caagccacat 6241 agtgaggagg cttttttgga ggccacggcc ggccctccgc gcctacagct caagccacat
6301 ccgaaggggg agggagccgg gagctgcgcg cggggccgcc ggggggaggg gtggcaccgc 6301 ccgaaggggg agggagccgg gagctgcgcg cggggccgcc ggggggaggg gtggcaccgc
6361 ccacgccggg cggccacgaa gggcggggca gcgggcgcgc gcgcggcggg gggaggggcc 6361 ccacgccggg cggccacgaa gggcggggca gcgggcgcgc gcgcggcggg gggaggggcc
6421 ggcgccgcgc ccgctgggaa ttggggccct agggggaggg cggaggcgcc gacgaccgcg 6421 ggcgccgcgc ccgctgggaa ttggggccct agggggaggg cggaggcgcc gacgaccgcg
6481 gcacttaccg ttcgcggcgt ggcgcccggt ggtccccaag gggagggaag ggggaggcgg 6481 gcacttaccg ttcgcggcgt ggcgcccggt ggtccccaag gggagggaag ggggaggcgg
6541 ggcgaggaca gtgaccggag tctcctcagc ggtggctttt ctgcttggca gcctcagcgg 6541 ggcgaggaca gtgaccggag tctcctcagc ggtggctttt ctgcttggca gcctcagcgg
6601 ctggcgccaa aaccggactc cgcccacttc ctcgcccgcc ggtgcgaggg tgtggaatcc 6601 ctggcgccaa aaccggactc cgcccacttc ctcgcccgcc ggtgcgaggg tgtggaatcc
6661 tccagacgct gggggagggg gagttgggag cttaaaaact agtacccctt tgggaccact 6661 tccagacgct gggggagggg gagttgggag cttaaaaact agtacccctt tgggaccact
6721 ttcagcagcg aactctcctg tacaccaggg gtcagttcca cagacgcggg ccaggggtgg 6721 ttcagcagcg aactctcctg tacaccaggg gtcagttcca cagacgcggg ccaggggtgg
6781 gtcattgcgg cgtgaacaat aatttgacta gaagttgatt cgggtgtttc cggaaggggc 6781 gtcattgcgg cgtgaacaat aatttgacta gaagttgatt cgggtgtttc cggaaggggc
6841 cgagtcaatc cgccgagttg gggcacggaa aacaaaaagg gaaggctact aagatttttc 6841 cgagtcaatc cgccgagttg gggcacggaa aacaaaaagg gaaggctact aagatttttc
6901 tggcgggggt tatcattggc gtaactgcag ggaccacctc ccgggttgag ggggctggat 6901 tggcgggggt tatcattggc gtaactgcag ggaccacctc ccgggttgag ggggctggat
6961 ctccaggctg cggattaagc ccctcccgtc ggcgttaatt tcaaactgcg cgacgtttct 6961 ctccaggctg cggattaagc ccctcccgtc ggcgttaatt tcaaactgcg cgacgtttct
7021 cacctgcctt cgccaaggca ggggccggga ccctattcca agaggtagta actagcagga 7021 cacctgcctt cgccaaggca ggggccggga ccctattcca agaggtagta actagcagga
7081 ctctagcctt ccgcaattca ttgagcgcat ttacggaagt aacgtcgggt actgtctctg 7081 ctctagcctt ccgcaattca ttgagcgcat ttacggaagt aacgtcgggt actgtctctg
7141 gccgcaaggg tgggaggagt acgcatttgg cgtaaggtgg ggcgtagagc cttcccgcca 7141 gccgcaaggg tgggaggagt acgcatttgg cgtaaggtgg ggcgtagagc cttcccgcca
7201 ttggcggcgg atagggcgtt tacgcgacgg cctgacgtag cggaagacgc cttagtgggg 7201 ttggcggcgg atagggcgtt tacgcgacgg cctgacgtag cggaagacgc cttagtgggg
7261 gggaaggttc tagaaaagcg gcggcagcgg ctctagcggc agtagcagca gcgccgggtc 7261 gggaaggttc tagaaaagcg gcggcagcgg ctctagcggc agtagcagca gcgccgggtc
7321 ccgtgcggag gtgctcctcg cagagttgtt tctccagcag cggcagttct cactacagcg 7321 ccgtgcggag gtgctcctcg cagagttgtt tctccagcag cggcagttct cactacagcg
7381 ccaggacgag tccggttcgt gttcgtccgc ggagatctct ctcatctcgc tcggctgcgg 7381 ccaggacgag tccggttcgt gttcgtccgc ggagatctct ctcatctcgc tcggctgcgg
7441 gaaatcgggc tgaagcgact gagtccgcga tggaggtaac gggtttgaaa tcaatgagtt 7441 gaaatcgggc tgaagcgact gagtccgcga tggaggtaac gggtttgaaa tcaatgagtt
7501 attgaaaagg gcatggcgag gccgttggcg cctcagtgga agtcggccag ccgcctccgt 7501 attgaaaagg gcatggcgag gccgttggcg cctcagtgga agtcggccag ccgcctccgt
7561 gggagagagg caggaaatcg gaccaattca gtagcagtgg ggcttaaggt ttatgaacgg 7561 gggagagagg caggaaatcg gaccaattca gtagcagtgg ggcttaaggt ttatgaacgg
7621 ggtcttgagc ggaggcctga gcgtacaaac agcttcccca ccctcagcct cccggcgcca 7621 ggtcttgagc ggaggcctga gcgtacaaac agcttcccca ccctcagcct cccggcgcca
7681 tttcccttca ctgggggtgg gggatgggga gctttcacat ggcggacgct gccccgctgg 7681 tttcccttca ctgggggtgg gggatgggga gctttcacat ggcggacgct gccccgctgg
7741 ggtgaaagtg gggcgcggag gcgggacttc ttattccctt tctaaagcac gctgcttcgg 7741 ggtgaaagtg gggcgcggag gcgggacttc ttattccctt tctaaagcac gctgcttcgg
7801 gggccacggc gtctcctcgg ggatctagct tgtggaaggc tactcgaaat gtttgaccca 7801 gggccacggc gtctcctcgg ggatctagct tgtggaaggc tactcgaaat gtttgaccca
7861 agttaaacaa tttaaaggca atgctaccaa atactaattg agtgtatgta aacttctgac 7861 agttaaacaa tttaaaggca atgctaccaa atactaattg agtgtatgta aacttctgac
7921 ccactgggaa tgtgatgaaa gaaataaaag ctgaaatgaa tcattctctc tactattatt 7921 ccactgggaa tgtgatgaaa gaaataaaag ctgaaatgaa tcattctctc tactattatt
7981 ctgatatttc acattcttaa aataaagtgg tgatcctaac tgacctaaga cagggaattt 7981 ctgatatttc acattcttaa aataaagtgg tgatcctaac tgacctaaga cagggaattt
8041 ttactaggat taaatgtcag gaattgtgaa aaagtgagtt taaatgtatt tggctaaggt 8041 ttactaggat taaatgtcag gaattgtgaa aaagtgagtt taaatgtatt tggctaaggt
8101 gtatgtaaac ttccgacttc aactgtatag ggttcctcta gctagagacg acctcgggta 8101 gtatgtaaac ttccgacttc aactgtatag ggttcctcta gctagagacg acctcgggta
8161 cccagctttt gttcccttta gtgagggtta attgcgcgct tggcgtaatc atggtcatag 8161 cccagctttt gttcccttta gtgagggtta attgcgcgct tggcgtaatc atggtcatag
8221 ctgtttcctg tgtgaaattg ttatccgctc acaattccac acaacatacg agccggaagc 8221 ctgtttcctg tgtgaaattg ttatccgctc acaattccac acaacatacg agccggaagc
8281 ataaagtgta aagcctgggg tgcctaatga gtgagctaac tcacattaat tgcgttgcgc 8281 ataaagtgta aagcctgggg tgcctaatga gtgagctaac tcacattaat tgcgttgcgc
8341 tcactgcccg ctttccagtc gggaaacctg tcgtgccagc tgcattaatg aatcggccaa 8341 tcactgcccg ctttccagtc gggaaacctg tcgtgccagc tgcattaatg aatcggccaa
8401 cgcgcgggga gaggcggttt gcgtattggg cgctcttccg cttcctcgct cactgactcg 8401 cgcgcgggga gaggcggttt gcgtattggg cgctcttccg cttcctcgct cactgactcg
8461 ctgcgctcgg tcgttcggct gcggcgagcg gtatcagctc actcaaaggc ggtaatacgg 8461 ctgcgctcgg tcgttcggct gcggcgagcg gtatcagctc actcaaaggc ggtaatacgg
8521 ttatccacag aatcagggga taacgcagga aagaacatgt gagcaaaagg ccagcaaaag 8521 ttatccacag aatcagggga taacgcagga aagaacatgt gagcaaaagg ccagcaaaag
8581 gccaggaacc gtaaaaaggc cgcgttgctg gcgtttttcc ataggctccg cccccctgac 8581 gccaggaacc gtaaaaaggc cgcgttgctg gcgtttttcc ataggctccg cccccctgac
8641 gagcatcaca aaaatcgacg ctcaagtcag aggtggcgaa acccgacagg actataaaga 8641 gagcatcaca aaaatcgacg ctcaagtcag aggtggcgaa acccgacagg actataaaga
8701 taccaggcgt ttccccctgg aagctccctc gtgcgctctc ctgttccgac cctgccgctt 8701 taccaggcgt ttccccctgg aagctccctc gtgcgctctc ctgttccgac cctgccgctt
8761 accggatacc tgtccgcctt tctcccttcg ggaagcgtgg cgctttctca tagctcacgc 8761 accggatacc tgtccgcctt tctcccttcg ggaagcgtgg cgctttctca tagctcacgc
8821 tgtaggtatc tcagttcggt gtaggtcgtt cgctccaagc tgggctgtgt gcacgaaccc 8821 tgtaggtatc tcagttcggt gtaggtcgtt cgctccaagc tgggctgtgt gcacgaaccc
8881 cccgttcagc ccgaccgctg cgccttatcc ggtaactatc gtcttgagtc caacccggta 8881 cccgttcagc ccgaccgctg cgccttatcc ggtaactatc gtcttgagtc caacccggta
8941 agacacgact tatcgccact ggcagcagcc actggtaaca ggattagcag agcgaggtat 8941 agacacgact tatcgccact ggcagcagcc actggtaaca ggattagcag agcgaggtat
9001 gtaggcggtg ctacagagtt cttgaagtgg tggcctaact acggctacac tagaaggaca 9001 gtaggcggtg ctacagagtt cttgaagtgg tggcctaact acggctacac tagaaggaca
9061 gtatttggta tctgcgctct gctgaagcca gttaccttcg gaaaaagagt tggtagctct 9061 gtatttggta tctgcgctct gctgaagcca gttaccttcg gaaaaagagt tggtagctct
9121 tgatccggca aacaaaccac cgctggtagc ggtggttttt ttgtttgcaa gcagcagatt 9121 tgatccggca aacaaaccac cgctggtagc ggtggttttt ttgtttgcaa gcagcagatt
9181 acgcgcagaa aaaaaggatc tcaagaagat cctttgatct tttctacggg gtctgacgct 9181 acgcgcagaa aaaaaggatc tcaagaagat cctttgatct tttctacggg gtctgacgct
9241 cagtggaacg aaaactcacg ttaagggatt ttggtcatga gattatcaaa aaggatcttc 9241 cagtggaacg aaaactcacg ttaagggatt ttggtcatga gattatcaaa aaggatcttc
9301 acctagatcc ttttaaatta aaaatgaagt tttaaatcaa tctaaagtat atatgagtaa 9301 acctagatcc ttttaaatta aaaatgaagt tttaaatcaa tctaaagtat atatgagtaa
9361 acttggtctg acagttacca atgcttaatc agtgaggcac ctatctcagc gatctgtcta 9361 acttggtctg acagttacca atgcttaatc agtgaggcac ctatctcagc gatctgtcta
9421 tttcgttcat ccatagttgc ctgactcccc gtcgtgtaga taactacgat acgggagggc 9421 tttcgttcat ccatagttgc ctgactcccc gtcgtgtaga taactacgat acgggagggc
9481 ttaccatctg gccccagtgc tgcaatgata ccgcgagacc cacgctcacc ggctccagat 9481 ttaccatctg gccccagtgc tgcaatgata ccgcgagacc cacgctcacc ggctccagat
9541 ttatcagcaa taaaccagcc agccggaagg gccgagcgca gaagtggtcc tgcaacttta 9541 ttatcagcaa taaaccagcc agccggaagg gccgagcgca gaagtggtcc tgcaacttta
9601 tccgcctcca tccagtctat taattgttgc cgggaagcta gagtaagtag ttcgccagtt 9601 tccgcctcca tccagtctat taattgttgc cgggaagcta gagtaagtag ttcgccagtt
9661 aatagtttgc gcaacgttgt tgccattgct acaggcatcg tggtgtcacg ctcgtcgttt 9661 aatagtttgc gcaacgttgt tgccattgct acaggcatcg tggtgtcacg ctcgtcgttt
9721 ggtatggctt cattcagctc cggttcccaa cgatcaaggc gagttacatg atcccccatg 9721 ggtatggctt cattcagctc cggttcccaa cgatcaaggc gagttacatg atcccccatg
9781 tgtgcaaaa aagcggttag ctccttcggt cctccgatcg ttgtcagaag taagttggcc 9781 tgtgcaaaa aagcggttag ctccttcggt cctccgatcg ttgtcagaag taagttggcc
9841 gcagtgttat cactcatggt tatggcagca ctgcataatt ctcttactgt catgccatcc 9841 gcagtgttat cactcatggt tatggcagca ctgcataatt ctcttactgt catgccatcc
9901 gtaagatgct tttctgtgac tggtgagtac tcaaccaagt cattctgaga atagtgtatg 9901 gtaagatgct tttctgtgac tggtgagtac tcaaccaagt cattctgaga atagtgtatg
9961 cggcgaccga gttgctcttg cccggcgtca atacgggata ataccgcgcc acatagcaga 9961 cggcgaccga gttgctcttg cccggcgtca atacgggata ataccgcgcc acatagcaga
10021 actttaaaag tgctcatcat tggaaaacgt tcttcggggc gaaaactctc aaggatctta 10021 actttaaaag tgctcatcat tggaaaacgt tcttcggggc gaaaactctc aaggatctta
10081 ccgctgttga gatccagttc gatgtaaccc actcgtgcac ccaactgatc ttcagcatct 10081 ccgctgttga gatccagttc gatgtaaccc actcgtgcac ccaactgatc ttcagcatct
10141 tttactttca ccagcgtttc tgggtgagca aaaacaggaa ggcaaaatgc cgcaaaaaag 10141 tttactttca ccagcgtttc tgggtgagca aaaacaggaa ggcaaaatgc cgcaaaaaag
10201 ggaataaggg cgacacggaa atgttgaata ctcatactct tcctttttca atattattga 10201 ggaataaggg cgacacggaa atgttgaata ctcatactct tcctttttca atattattga
10261 agcatttatc agggttattg tctcatgagc ggatacatat ttgaatgtat ttagaaaaat 10261 agcatttatc agggttattg tctcatgagc ggatacatat ttgaatgtat ttagaaaaat
10321 aaacaaatag gggttccgcg cacatttccc cgaaaagtgc cacctgacgc gccctgtagc 10321 aaacaaatag gggttccgcg cacatttccc cgaaaagtgc cacctgacgc gccctgtagc
10381 ggcgcattaa gcgcggcggg tgtggtggtt acgcgcagcg tgaccgctac acttgccagc 10381 ggcgcattaa gcgcggcggg tgtggtggtt acgcgcagcg tgaccgctac acttgccagc
10441 gccctagcgc ccgctccttt cgctttcttc ccttcctttc tcgccacgtt cgccggcttt 10441 gccctagcgc ccgctccttt cgctttcttc ccttcctttc tcgccacgtt cgccggcttt
10501 ccccgtcaag ctctaaatcg ggggctccct ttagggttcc gatttagtgc tttacggcac 10501 ccccgtcaag ctctaaatcg ggggctccct ttagggttcc gatttagtgc tttacggcac
10561 ctcgacccca aaaaacttga ttagggtgat ggttcacgta gtgggccatc gccctgatag 10561 ctcgacccca aaaaacttga ttagggtgat ggttcacgta gtgggccatc gccctgatag
10621 acggtttttc gccctttgac gttggagtcc acgttcttta atagtggact cttgttccaa 10621 acggtttttc gccctttgac gttggagtcc acgttcttta atagtggact cttgttccaa
10681 actggaacaa cactcaaccc tatctcggtc tattcttttg atttataagg gattttgccg 10681 actggaacaa cactcaaccc tatctcggtc tattcttttg atttataagg gattttgccg
10741 atttcggcct attggttaaa aaatgagctg atttaacaaa aatttaacgc gaattttaac 10741 atttcggcct attggttaaa aaatgagctg atttaacaaa aatttaacgc gaattttaac
10801 aaaatattaa cgcttacaat ttccattcgc cattcaggct gcgcaactgt tgggaagggc 10801 aaaatattaa cgcttacaat ttccattcgc cattcaggct gcgcaactgt tgggaagggc
10861 gatcggtgcg ggcctcttcg ctattacgcc agctggcgaa agggggatgt gctg 10861 gatcggtgcg ggcctcttcg ctattacgcc agctggcgaa agggggatgt gctg
<210> SEQ ID NO: 2 <210> SEQ ID NO: 2
<211> 11475 <211> 11475
<212> PRT <212> PRT
<213> Artificial Sequence <213> Artificial Sequence
<223> Нуклеотидная последовательность рекомбинантной плазмиды pVEAL-15742, <223> Nucleotide sequence of the recombinant plasmid pVEAL-15742,
обеспечивающая синтез и секрецию scFv-Fc антитела ADI-15742 против providing the synthesis and secretion of scFv-Fc antibodies ADI-15742 against
вируса Эбола. the Ebola virus.
<400> 2 <400> 2
1 caaggcgatt aagttgggta acgccagggt tttcccagtc acgacgttgt aaaacgacgg 1 caaggcgatt aagttgggta acgccagggt tttcccagtc acgacgttgt aaaacgacgg
61 ccagtgagcg cgcgtaatac gactcactat agggcgaatt ggagctcggt tccctataca 61 ccagtgagcg cgcgtaatac gactcactat agggcgaatt ggagctcggt tccctataca
121 gttgaagtcg gaagtttaca tacacttaag ttggagtcat taaaactcgt ttttcaacta 121 gttgaagtcg gaagtttaca tacacttaag ttggagtcat taaaactcgt ttttcaacta
181 ctccacaaat ttcttgttaa caaacaatag ttttggcaag tcagttagga catctacttt 181 ctccacaaat ttcttgttaa caaacaatag ttttggcaag tcagttagga catctacttt
241 gtgcatgaca caagtcattt ttccaacaat tgtttacaga cagattattt cacttataat 241 gtgcatgaca caagtcattt ttccaacaat tgtttacaga cagattattt cacttataat
301 tcactgtatc acaattccag tgggtcagaa gtttacatac actaagttga ctgtgccttt 301 tcactgtatc acaattccag tgggtcagaa gtttacatac actaagttga ctgtgccttt
361 aaacagcttg gaaaattcca gaaaatgatg tcatggcttt agaagcttca ttggcgccct 361 aaacagcttg gaaaattcca gaaaatgatg tcatggcttt agaagcttca ttggcgccct
421 ccgcgcctac agctcaagcc acatccgaag ggggagggag ccgggagctg cgcgcggggc 421 ccgcgcctac agctcaagcc acatccgaag ggggagggag ccgggagctg cgcgcggggc
481 cgccgggggg aggggtggca ccgcccacgc cgggcggcca cgaagggcgg ggcagcgggc 481 cgccgggggg aggggtggca ccgcccacgc cgggcggcca cgaagggcgg ggcagcgggc
541 gcgcgcgcgg cggggggagg ggccggcgcc gcgcccgctg ggaattgggg ccctaggggg 541 gcgcgcgcgg cggggggagg ggccggcgcc gcgcccgctg ggaattgggg ccctaggggg
601 agggcggagg cgccgacgac cgcggcactt accgttcgcg gcgtggcgcc cggtggtccc 601 agggcggagg cgccgacgac cgcggcactt accgttcgcg gcgtggcgcc cggtggtccc
661 caaggggagg gaagggggag gcggggcgag gacagtgacc ggagtctcct cagcggtggc 661 caaggggagg gaagggggag gcggggcgag gacagtgacc ggagtctcct cagcggtggc
721 ttttctgctt ggcagcctca gcggctggcg ccaaaaccgg actccgccca cttcctcgcc 721 ttttctgctt ggcagcctca gcggctggcg ccaaaaccgg actccgccca cttcctcgcc
781 cgccggtgcg agggtgtgga atcctccaga cgctggggga gggggagttg ggagcttaaa 781 cgccggtgcg agggtgtgga atcctccaga cgctggggga gggggagttg ggagcttaaa
841 aactagtacc cctttgggac cactttcagc agcgaactct cctgtacacc aggggtcagt 841 aactagtacc cctttgggac cactttcagc agcgaactct cctgtacacc aggggtcagt
901 tccacagacg cgggccaggg gtgggtcatt gcggcgtgaa caataatttg actagaagtt 901 tccacagacg cgggccaggg gtgggtcatt gcggcgtgaa caataatttg actagaagtt
961 gattcgggtg tttccggaag gggccgagtc aatccgccga gttggggcac ggaaaacaaa 961 gattcgggtg tttccggaag gggccgagtc aatccgccga gttggggcac ggaaaacaaa
1021 aagggaaggc tactaagatt tttctggcgg gggttatcat tggcgtaact gcagggacca 1021 aagggaaggc tactaagatt tttctggcgg gggttatcat tggcgtaact gcagggacca
1081 cctcccgggt tgagggggct ggatctccag gctgcggatt aagcccctcc cgtcggcgtt 1081 cctcccgggt tgagggggct ggatctccag gctgcggatt aagcccctcc cgtcggcgtt
1141 aatttcaaac tgcgcgacgt ttctcacctg ccttcgccaa ggcaggggcc gggaccctat 1141 aatttcaaac tgcgcgacgt ttctcacctg ccttcgccaa ggcaggggcc gggaccctat
1201 tccaagaggt agtaactagc aggactctag ccttccgcaa ttcattgagc gcatttacgg 1201 tccaagaggt agtaactagc aggactctag ccttccgcaa ttcattgagc gcatttacgg
1261 aagtaacgtc gggtactgtc tctggccgca agggtgggag gagtacgcat ttggcgtaag 1261 aagtaacgtc gggtactgtc tctggccgca agggtgggag gagtacgcat ttggcgtaag
1321 gtggggcgta gagccttccc gccattggcg gcggataggg cgtttacgcg acggcctgac 1321 gtggggcgta gagccttccc gccattggcg gcggataggg cgtttacgcg acggcctgac
1381 gtagcggaag acgccttagt gggggggaag gttctagaaa agcggcggca gcggctctag 1381 gtagcggaag acgccttagt gggggggaag gttctagaaa agcggcggca gcggctctag
1441 cggcagtagc agcagcgccg ggtcccgtgc ggaggtgctc ctcgcagagt tgtttctcca 1441 cggcagtagc agcagcgccg ggtcccgtgc ggaggtgctc ctcgcagagt tgtttctcca
1501 gcagcggcag ttctcactac agcgccagga cgagtccggt tcgtgttcgt ccgcggagat 1501 gcagcggcag ttctcactac agcgccagga cgagtccggt tcgtgttcgt ccgcggagat
1561 ctctctcatc tcgctcggct gcgggaaatc gggctgaagc gactgagtcc gcgatggagg 1561 ctctctcatc tcgctcggct gcgggaaatc gggctgaagc gactgagtcc gcgatggagg
1621 taacgggttt gaaatcaatg agttattgaa aagggcatgg cgaggccgtt ggcgcctcag 1621 taacgggttt gaaatcaatg agttattgaa aagggcatgg cgaggccgtt ggcgcctcag
1681 tggaagtcgg ccagccgcct ccgtgggaga gaggcaggaa atcggaccaa ttcagtagca 1681 tggaagtcgg ccagccgcct ccgtgggaga gaggcaggaa atcggaccaa ttcagtagca
1741 gtggggctta aggtttatga acggggtctt gagcggaggc ctgagcgtac aaacagcttc 1741 gtggggctta aggtttatga acggggtctt gagcggaggc ctgagcgtac aaacagcttc
1801 cccaccctca gcctcccggc gccatttccc ttcactgggg gtgggggatg gggagctttc 1801 cccaccctca gcctcccggc gccatttccc ttcactgggg gtgggggatg gggagctttc
1861 acatggcgga cgctgccccg ctggggtgaa agtggggcgc ggaggcggga cttcttattc 1861 acatggcgga cgctgccccg ctggggtgaa agtggggcgc ggaggcggga cttcttattc
1921 cctttctaaa gcacgctgct tcgggggcca cggcgtctcc tcggggatct tcaatattgg 1921 cctttctaaa gcacgctgct tcgggggcca cggcgtctcc tcggggatct tcaatattgg
1981 ccattagcca tattattcat tggttatata gcataaatca atattggcta ttggccattg 1981 ccattagcca tattattcat tggttatata gcataaatca atattggcta ttggccattg
2041 catacgttgt atctatatca taatatgtac atttatattg gctcatgtcc aatatgaccg 2041 catacgttgt atctatatca taatatgtac atttatattg gctcatgtcc aatatgaccg
2101 ccatgttggc attgattatt gactagttat taatagtaat caattacggg gtcattagtt 2101 ccatgttggc attgattatt gactagttat taatagtaat caattacggg gtcattagtt
2161 catagcccat atatggagtt ccgcgttaca taacttacgg taaatggccc gcctggctga 2161 catagcccat atatggagtt ccgcgttaca taacttacgg taaatggccc gcctggctga
2221 ccgcccaacg acccccgccc attgacgtca ataatgacgt atgttcccat agtaacgcca 2221 ccgcccaacg acccccgccc attgacgtca ataatgacgt atgttcccat agtaacgcca
2281 atagggactt tccattgacg tcaatgggtg gagtatttac ggtaaactgc ccacttggca 2281 atagggactt tccattgacg tcaatgggtg gagtatttac ggtaaactgc ccacttggca
2341 gtacatcaag tgtatcatat gccaagtccg ccccctattg acgtcaatga cggtaaatgg 2341 gtacatcaag tgtatcatat gccaagtccg ccccctattg acgtcaatga cggtaaatgg
2401 cccgcctggc attatgccca gtacatgacc ttacgggact ttcctacttg gcagtacatc 2401 cccgcctggc attatgccca gtacatgacc ttacgggact ttcctacttg gcagtacatc
2461 tacgtattag tcatcgctat taccatggtg atgcggtttt ggcagtacac caatgggcgt 2461 tacgtattag tcatcgctat taccatggtg atgcggtttt ggcagtacac caatgggcgt
2521 ggatagcggt ttgactcacg gggatttcca agtctccacc ccattgacgt caatgggagt 2521 ggatagcggt ttgactcacg gggatttcca agtctccacc ccattgacgt caatgggagt
2581 ttgttttggc accaaaatca acgggacttt ccaaaatgtc gtaacaactg cgatcgcccg 2581 ttgttttggc accaaaatca acgggacttt ccaaaatgtc gtaacaactg cgatcgcccg
2641 ccccgttgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga ggtctatata agcagagctc 2641 ccccgttgac gcaaatgggc ggtaggcgtg tacggtggga ggtctatata agcagagctc
2701 gtttagtgaa ccgtcagatc actagaagct ttattgcggt agtttatcac agttaaattg 2701 gtttagtgaa ccgtcagatc actagaagct ttattgcggt agtttatcac agttaaattg
2761 ctaacgcagt cagtgcttct gacacaacag tctcgaactt aagctgcagt gactctctta 2761 ctaacgcagt cagtgcttct gacacaacag tctcgaactt aagctgcagt gactctctta
2821 aggtagcctt gcagaagttg gtcgtgaggc actgggcagg taagtatcaa ggttacaaga 2821 aggtagcctt gcagaagttg gtcgtgaggc actgggcagg taagtatcaa ggttacaaga
2881 caggtttaag gagaccaata gaaactgggc ttgtcgagac agagaagact cttgcgtttc 2881 caggtttaag gagaccaata gaaactgggc ttgtcgagac agagaagact cttgcgtttc
2941 tgataggcac ctattggtct tactgacatc cactttgcct ttctctccac aggtgtccac 2941 tgataggcac ctattggtct tactgacatc cactttgcct ttctctccac aggtgtccac
3001 tcccagttca attacagctc ttaaggctag agtacttaat acgactcact ataggctagc 3001 tcccagttca attacagctc ttaaggctag agtacttaat acgactcact ataggctagc
3061 ctcgagaatt cgtcctgctg cgcacgtggg aagccctggc cccggccgcc accatgatga 3061 ctcgagaatt cgtcctgctg cgcacgtggg aagccctggc cccggccgcc accatgatga
3121 ggcccatcgt gctggtgctg ctgttcgcca cctcagcgct ggccggcgag gtgcagctgg 3121 ggcccatcgt gctggtgctg ctgttcgcca cctcagcgct ggccggcgag gtgcagctgg
3181 tggagtccgg gggaggcttg gtacagccgg gggggtccct gagactctcc tgtgcagcct 3181 tggagtccgg gggaggcttg gtacagccgg gggggtccct gagactctcc tgtgcagcct
3241 ctggattcac ctttagcagc tatgccatga gctgggtccg ccaggctcca gggaaggggc 3241 ctggattcac ctttagcagc tatgccatga gctgggtccg ccaggctcca gggaaggggc
3301 tggagtgggt ctccgaaatt agcggtcttg gtggtagcac atactacgca gactccgcga 3301 tggagtgggt ctccgaaatt agcggtcttg gtggtagcac atactacgca gactccgcga
3361 agggccggtt caccatctcc agagacaatt ccaagagcac cctgtatctg caaatgaaca 3361 agggccggtt caccatctcc agagacaatt ccaagagcac cctgtatctg caaatgaaca
3421 gcctgagagc cgaagacacg gccgtatatt actgtgcgaa agatcatcgc gtttgggcac 3421 gcctgagagc cgaagacacg gccgtatatt actgtgcgaa agatcatcgc gtttgggcac
3481 ctggatatta ctttgaccac tggggccagg gaaccctggt cactgtgagc tctggtggtg 3481 ctggatatta ctttgaccac tggggccagg gaaccctggt cactgtgagc tctggtggtg
3541 gtggtagcgg cggcggcggc tctggtggtg gtggttccga tattgtgctg acacagtctc 3541 gtggtagcgg cggcggcggc tctggtggtg gtggttccga tattgtgctg acacagtctc
3601 cttccaccct gtctgcatct gtcggagaca gagtcaccat cacttgccgg gccagtcaga 3601 cttccaccct gtctgcatct gtcggagaca gagtcaccat cacttgccgg gccagtcaga
3661 gtattagtag ctggttggcc tggtatcagc agaaaccagg gaaagcccct aaactcctga 3661 gtattagtag ctggttggcc tggtatcagc agaaaccagg gaaagcccct aaactcctga
3721 tctatgatgc ctccagtttg gaaagtgggg tcccatcaag gttcagcggc agtggatctg 3721 tctatgatgc ctccagtttg gaaagtgggg tcccatcaag gttcagcggc agtggatctg
3781 ggacagagtt cactctcacc atcagcagcc tgcagcctga tgattttgca acttatttct 3781 ggacagagtt cactctcacc atcagcagcc tgcagcctga tgattttgca acttatttct
3841 gccaacagta taataggtcc cccactttcg gcggagggac caaggtggaa atcaagggtg 3841 gccaacagta taataggtcc cccactttcg gcggagggac caaggtggaa atcaagggtg
3901 gatccggaga caaaactcac acatgcccac cgtgcccagc acctgaactc ctggggggac 3901 gatccggaga caaaactcac acatgcccac cgtgcccagc acctgaactc ctggggggac
3961 cgtcagtctt cctcttcccc ccaaaaccca aggacaccct ctacatcacc cgggaacctg 3961 cgtcagtctt cctcttcccc ccaaaaccca aggacaccct ctacatcacc cgggaacctg
4021 aggtcacatg cgtggtggtg gacgtgagcc acgaagaccc tgaggtcaag ttcaactggt 4021 aggtcacatg cgtggtggtg gacgtgagcc acgaagaccc tgaggtcaag ttcaactggt
4081 acgtggacgg cgtggaggtg cataatgcca agacaaagcc gcgggaggag cagtacaaca 4081 acgtggacgg cgtggaggtg cataatgcca agacaaagcc gcgggaggag cagtacaaca
4141 gcacgtaccg tgtggtcagc gtcctcaccg tcctgcacca ggactggctg aatggcaagg 4141 gcacgtaccg tgtggtcagc gtcctcaccg tcctgcacca ggactggctg aatggcaagg
4201 agtacaagtg caaggtctcc aacaaagccc tcccagcccc catcgcgaaa accatctcca 4201 agtacaagtg caaggtctcc aacaaagccc tcccagcccc catcgcgaaa accatctcca
4261 aagccaaagg gcagccccga gaaccacagg tgtacaccct gcccccatcc cgggaggaga 4261 aagccaaagg gcagccccga gaaccacagg tgtacaccct gcccccatcc cgggaggaga
4321 tgaccaagaa ccaggtcagc ctgacctgcc tggtcaaagg cttctatccc agcgacatcg 4321 tgaccaagaa ccaggtcagc ctgacctgcc tggtcaaagg cttctatccc agcgacatcg
4381 ccgtggagtg ggagagcaat gggcagccgg agaacaacta caagaccacg cctcccgtgc 4381 ccgtggagtg ggagagcaat gggcagccgg agaacaacta caagaccacg cctcccgtgc
4441 tggactccga cggctccttc ttcctctaca gcaagctcac cgtggacaag agcaggtggc 4441 tggactccga cggctccttc ttcctctaca gcaagctcac cgtggacaag agcaggtggc
4501 agcaggggaa cgtcttctca tgctccgtga tgcatgaggc tctgaagttc cactacacgc 4501 agcaggggaa cgtcttctca tgctccgtga tgcatgaggc tctgaagttc cactacacgc
4561 agaagagcct ctccctgtct ccgggtaaat gagtcgagcg gttcccgccc ctctccctcc 4561 agaagagcct ctccctgtct ccgggtaaat gagtcgagcg gttcccgccc ctctccctcc
4621 ccccccccta acgttactgg ccgaagccgc ttggaataag gccggtgtgc gtttgtctat 4621 ccccccccta acgttactgg ccgaagccgc ttggaataag gccggtgtgc gtttgtctat
4681 atgttatttt ccaccatatt gccgtctttt ggcaatgtga gggcccggaa acctggccct 4681 atgttatttt ccaccatatt gccgtctttt ggcaatgtga gggcccggaa acctggccct
4741 gtcttcttga cgagcattcc taggggtctt tcccctctcg ccaaaggaat gcaaggtctg 4741 gtcttcttga cgagcattcc taggggtctt tcccctctcg ccaaaggaat gcaaggtctg
4801 ttgaatgtcg tgaaggaagc agttcctctg gaagcttctt gaagacaaac aacgtctgta 4801 ttgaatgtcg tgaaggaagc agttcctctg gaagcttctt gaagacaaac aacgtctgta
4861 gcgacccttt gcaggcagcg gaacccccca cctggcgaca ggtgcctctg cggccaaaag 4861 gcgacccttt gcaggcagcg gaacccccca cctggcgaca ggtgcctctg cggccaaaag
4921 ccacgtgtat aagatacacc tgcaaaggcg gcacaacccc agtgccacgt tgtgagttgg 4921 ccacgtgtat aagatacacc tgcaaaggcg gcacaacccc agtgccacgt tgtgagttgg
4981 atagttgtgg aaagagtcaa atggctcacc tcaagcgtat tcaacaaggg gctgaaggat 4981 atagttgtgg aaagagtcaa atggctcacc tcaagcgtat tcaacaaggg gctgaaggat
5041 gcccagaagg taccccattg tatgggatct gatctggggc ctcggtgcac atgctttaca 5041 gcccagaagg taccccattg tatgggatct gatctggggc ctcggtgcac atgctttaca
5101 tgtgtttagt cgaggttaaa aaacgtctag gccccccgaa ccacggggac gtggttttcc 5101 tgtgtttagt cgaggttaaa aaacgtctag gccccccgaa ccacggggac gtggttttcc
5161 tttgaaaaac acgatgataa tatggccaag ttgaccagtg ccgttccggt gctcaccgcg 5161 tttgaaaaac acgatgataa tatggccaag ttgaccagtg ccgttccggt gctcaccgcg
5221 cgcgacgtcg ccggagcggt cgagttctgg accgaccggc tcgggttctc ccgggacttc 5221 cgcgacgtcg ccggagcggt cgagttctgg accgaccggc tcgggttctc ccgggacttc
5281 gtggaggacg acttcgccgg tgtggtccgg gacgacgtga ccctgttcat cagcgcggtc 5281 gtggaggacg acttcgccgg tgtggtccgg gacgacgtga ccctgttcat cagcgcggtc
5341 caggaccagg tggtgccgga caacaccctg gcctgggtgt gggtgcgcgg cctggacgag 5341 caggaccagg tggtgccgga caacaccctg gcctgggtgt gggtgcgcgg cctggacgag
5401 ctgtacgccg agtggtcgga ggtcgtgtcc acgaacttcc gggacgcctc cgggccggcc 5401 ctgtacgccg agtggtcgga ggtcgtgtcc acgaacttcc gggacgcctc cgggccggcc
5461 atgaccgaga tcggcgagca gccgtggggg cgggagttcg ccctgcgcga cccggccggc 5461 atgaccgaga tcggcgagca gccgtggggg cgggagttcg ccctgcgcga cccggccggc
5521 aactgcgtgc acttcgtggc cgaggagcag gactgagcgg ccgcttccct ttagtgaggg 5521 aactgcgtgc acttcgtggc cgaggagcag gactgagcgg ccgcttccct ttagtgaggg
5581 ttaatgcttc gagcagacat gataagatac attgatgagt ttggacaaac cacaactaga 5581 ttaatgcttc gagcagacat gataagatac attgatgagt ttggacaaac cacaactaga
5641 atgcagtgaa aaaaatgctt tatttgtgaa atttgtgatg ctattgcttt atttgtaacc 5641 atgcagtgaa aaaaatgctt tatttgtgaa atttgtgatg ctattgcttt atttgtaacc
5701 attataagct gcaataaaca agttaacaac aacaattgca ttcattttat gtttcaggtt 5701 attataagct gcaataaaca agttaacaac aacaattgca ttcattttat gtttcaggtt
5761 cagggggaga tgtgggaggt tttttaaagc aagtaaaacc tctacaaatg tggtaaaatc 5761 cagggggaga tgtgggaggt tttttaaagc aagtaaaacc tctacaaatg tggtaaaatc
5821 cgataaggat cgatccgggc tggcgtaata gcgaagaggc ccgcaccgat cgcccttccc 5821 cgataaggat cgatccgggc tggcgtaata gcgaagaggc ccgcaccgat cgcccttccc
5881 aacagttgcg cagcctgaat ggcgaatgga cgcgccctgt agcggcgcat taagcgcggc 5881 aacagttgcg cagcctgaat ggcgaatgga cgcgccctgt agcggcgcat taagcgcggc
5941 gggtgtggtg gttacgcgca gcgtgaccgc tacacttgcc agcgccctag cgcccgctcc 5941 gggtgtggtg gttacgcgca gcgtgaccgc tacacttgcc agcgccctag cgcccgctcc
6001 tttcgctttc ttcccttcct ttctcgccac gttcgccggc tttccccgtc aagctctaaa 6001 tttcgctttc ttcccttcct ttctcgccac gttcgccggc tttccccgtc aagctctaaa
6061 tcgggggctc cctttagggt tccgatttag tgctttacgg cacctcgacc ccaaaaaact 6061 tcgggggctc cctttagggt tccgatttag tgctttacgg cacctcgacc ccaaaaaact
6121 tgattagggt gatggttcac gtagtgggcc atcgccctga tagacggttt ttcgcccttt 6121 tgattagggt gatggttcac gtagtgggcc atcgccctga tagacggttt ttcgcccttt
6181 gacgttggag tccacgttct ttaatagtgg actcttgttc caaactggaa caacactcaa 6181 gacgttggag tccacgttct ttaatagtgg actcttgttc caaactggaa caacactcaa
6241 ccctatctcg gtctattctt ttgatttata agggattttg ccgatttcgg cctattggtt 6241 ccctatctcg gtctattctt ttgatttata agggattttg ccgatttcgg cctattggtt
6301 aaaaaatgag ctgatttaac aaaaatttaa cgcgaatttt aacaaaatat taacgcttac 6301 aaaaaatgag ctgatttaac aaaaatttaa cgcgaatttt aacaaaatat taacgcttac
6361 aatttcctga tgcggtattt tctccttacg catctgtgcg gtatttcaca ccgcatacgc 6361 aatttcctga tgcggtattt tctccttacg catctgtgcg gtatttcaca ccgcatacgc
6421 ggatctgcgc agcaccatgg cctgaaataa cctctgaaag aggaacttgg ttaggtacct 6421 ggatctgcgc agcaccatgg cctgaaataa cctctgaaag aggaacttgg ttaggtacct
6481 tctgaggcgg aaagaaccag ctgtggaatg tgtgtcagtt agggtgtgga aagtccccag 6481 tctgaggcgg aaagaaccag ctgtggaatg tgtgtcagtt agggtgtgga aagtccccag
6541 gctccccagc aggcagaagt atgcaaagca tgcatctcaa ttagtcagca accaggtgtg 6541 gctccccagc aggcagaagt atgcaaagca tgcatctcaa ttagtcagca accaggtgtg
6601 gaaagtcccc aggctcccca gcaggcagaa gtatgcaaag catgcatctc aattagtcag 6601 gaaagtcccc aggctcccca gcaggcagaa gtatgcaaag catgcatctc aattagtcag
6661 caaccatagt cccgccccta actccgccca tcccgcccct aactccgccc agttccgccc 6661 caaccatagt cccgccccta actccgccca tcccgcccct aactccgccc agttccgccc
6721 attctccgcc ccatggctga ctaatttttt ttatttatgc agaggccgag gccgcctcgg 6721 attctccgcc ccatggctga ctaatttttt ttatttatgc agaggccgag gccgcctcgg
6781 cctctgagct attccagaag tagtgaggag gcttttttgg aggccacggc cggccctccg 6781 cctctgagct attccagaag tagtgaggag gcttttttgg aggccacggc cggccctccg
6841 cgcctacagc tcaagccaca tccgaagggg gagggagccg ggagctgcgc gcggggccgc 6841 cgcctacagc tcaagccaca tccgaagggg gagggagccg ggagctgcgc gcggggccgc
6901 cggggggagg ggtggcaccg cccacgccgg gcggccacga agggcggggc agcgggcgcg 6901 cggggggagg ggtggcaccg cccacgccgg gcggccacga agggcggggc agcgggcgcg
6961 cgcgcggcgg ggggaggggc cggcgccgcg cccgctggga attggggccc tagggggagg 6961 cgcgcggcgg ggggaggggc cggcgccgcg cccgctggga attggggccc tagggggagg
7021 gcggaggcgc cgacgaccgc ggcacttacc gttcgcggcg tggcgcccgg tggtccccaa 7021 gcggaggcgc cgacgaccgc ggcacttacc gttcgcggcg tggcgcccgg tggtccccaa
7081 ggggagggaa gggggaggcg gggcgaggac agtgaccgga gtctcctcag cggtggcttt 7081 ggggagggaa gggggaggcg gggcgaggac agtgaccgga gtctcctcag cggtggcttt
7141 tctgcttggc agcctcagcg gctggcgcca aaaccggact ccgcccactt cctcgcccgc 7141 tctgcttggc agcctcagcg gctggcgcca aaaccggact ccgcccactt cctcgcccgc
7201 cggtgcgagg gtgtggaatc ctccagacgc tgggggaggg ggagttggga gcttaaaaac 7201 cggtgcgagg gtgtggaatc ctccagacgc tgggggaggg ggagttggga gcttaaaaac
7261 tagtacccct ttgggaccac tttcagcagc gaactctcct gtacaccagg ggtcagttcc 7261 tagtacccct ttgggaccac tttcagcagc gaactctcct gtacaccagg ggtcagttcc
7321 acagacgcgg gccaggggtg ggtcattgcg gcgtgaacaa taatttgact agaagttgat 7321 acagacgcgg gccaggggtg ggtcattgcg gcgtgaacaa taatttgact agaagttgat
7381 tcgggtgttt ccggaagggg ccgagtcaat ccgccgagtt ggggcacgga aaacaaaaag 7381 tcgggtgttt ccggaagggg ccgagtcaat ccgccgagtt ggggcacgga aaacaaaaag
7441 ggaaggctac taagattttt ctggcggggg ttatcattgg cgtaactgca gggaccacct 7441 ggaaggctac taagattttt ctggcggggg ttatcattgg cgtaactgca gggaccacct
7501 cccgggttga gggggctgga tctccaggct gcggattaag cccctcccgt cggcgttaat 7501 cccgggttga gggggctgga tctccaggct gcggattaag cccctcccgt cggcgttaat
7561 ttcaaactgc gcgacgtttc tcacctgcct tcgccaaggc aggggccggg accctattcc 7561 ttcaaactgc gcgacgtttc tcacctgcct tcgccaaggc aggggccggg accctattcc
7621 aagaggtagt aactagcagg actctagcct tccgcaattc attgagcgca tttacggaag 7621 aagaggtagt aactagcagg actctagcct tccgcaattc attgagcgca tttacggaag
7681 taacgtcggg tactgtctct ggccgcaagg gtgggaggag tacgcatttg gcgtaaggtg 7681 taacgtcggg tactgtctct ggccgcaagg gtgggaggag tacgcatttg gcgtaaggtg
7741 gggcgtagag ccttcccgcc attggcggcg gatagggcgt ttacgcgacg gcctgacgta 7741 gggcgtagag ccttcccgcc attggcggcg gatagggcgt ttacgcgacg gcctgacgta
7801 gcggaagacg ccttagtggg ggggaaggtt ctagaaaagc ggcggcagcg gctctagcgg 7801 gcggaagacg ccttagtggg ggggaaggtt ctagaaaagc ggcggcagcg gctctagcgg
7861 cagtagcagc agcgccgggt cccgtgcgga ggtgctcctc gcagagttgt ttctccagca 7861 cagtagcagc agcgccgggt cccgtgcgga ggtgctcctc gcagagttgt ttctccagca
7921 gcggcagttc tcactacagc gccaggacga gtccggttcg tgttcgtccg cggagatctc 7921 gcggcagttc tcactacagc gccaggacga gtccggttcg tgttcgtccg cggagatctc
7981 tctcatctcg ctcggctgcg ggaaatcggg ctgaagcgac tgagtccgcg atggaggtaa 7981 tctcatctcg ctcggctgcg ggaaatcggg ctgaagcgac tgagtccgcg atggaggtaa
8041 cgggtttgaa atcaatgagt tattgaaaag ggcatggcga ggccgttggc gcctcagtgg 8041 cgggtttgaa atcaatgagt tattgaaaag ggcatggcga ggccgttggc gcctcagtgg
8101 aagtcggcca gccgcctccg tgggagagag gcaggaaatc ggaccaattc agtagcagtg 8101 aagtcggcca gccgcctccg tgggagagag gcaggaaatc ggaccaattc agtagcagtg
8161 gggcttaagg tttatgaacg gggtcttgag cggaggcctg agcgtacaaa cagcttcccc 8161 gggcttaagg tttatgaacg gggtcttgag cggaggcctg agcgtacaaa cagcttcccc
8221 accctcagcc tcccggcgcc atttcccttc actgggggtg ggggatgggg agctttcaca 8221 accctcagcc tcccggcgcc atttcccttc actgggggtg ggggatgggg agctttcaca
8281 tggcggacgc tgccccgctg gggtgaaagt ggggcgcgga ggcgggactt cttattccct 8281 tggcggacgc tgccccgctg gggtgaaagt ggggcgcgga ggcgggactt cttattccct
8341 ttctaaagca cgctgcttcg ggggccacgg cgtctcctcg gggatctagc ttgtggaagg 8341 ttctaaagca cgctgcttcg ggggccacgg cgtctcctcg gggatctagc ttgtggaagg
8401 ctactcgaaa tgtttgaccc aagttaaaca atttaaaggc aatgctacca aatactaatt 8401 ctactcgaaa tgtttgaccc aagttaaaca atttaaaggc aatgctacca aatactaatt
8461 gagtgtatgt aaacttctga cccactggga atgtgatgaa agaaataaaa gctgaaatga 8461 gagtgtatgt aaacttctga cccactggga atgtgatgaa agaaataaaa gctgaaatga
8521 atcattctct ctactattat tctgatattt cacattctta aaataaagtg gtgatcctaa 8521 atcattctct ctactattat tctgatattt cacattctta aaataaagtg gtgatcctaa
8581 ctgacctaag acagggaatt tttactagga ttaaatgtca ggaattgtga aaaagtgagt 8581 ctgacctaag acagggaatt tttactagga ttaaatgtca ggaattgtga aaaagtgagt
8641 ttaaatgtat ttggctaagg tgtatgtaaa cttccgactt caactgtata gggttcctct 8641 ttaaatgtat ttggctaagg tgtatgtaaa cttccgactt caactgtata gggttcctct
8701 agctagagac gacctcgggt acccagcttt tgttcccttt agtgagggtt aattgcgcgc 8701 agctagagac gacctcgggt acccagcttt tgttcccttt agtgagggtt aattgcgcgc
8761 ttggcgtaat catggtcata gctgtttcct gtgtgaaatt gttatccgct cacaattcca 8761 ttggcgtaat catggtcata gctgtttcct gtgtgaaatt gttatccgct cacaattcca
8821 cacaacatac gagccggaag cataaagtgt aaagcctggg gtgcctaatg agtgagctaa 8821 cacaacatac gagccggaag cataaagtgt aaagcctggg gtgcctaatg agtgagctaa
8881 ctcacattaa ttgcgttgcg ctcactgccc gctttccagt cgggaaacct gtcgtgccag 8881 ctcacattaa ttgcgttgcg ctcactgccc gctttccagt cgggaaacct gtcgtgccag
8941 ctgcattaat gaatcggcca acgcgcgggg agaggcggtt tgcgtattgg gcgctcttcc 8941 ctgcattaat gaatcggcca acgcgcgggg agaggcggtt tgcgtattgg gcgctcttcc
9001 gcttcctcgc tcactgactc gctgcgctcg gtcgttcggc tgcggcgagc ggtatcagct 9001 gcttcctcgc tcactgactc gctgcgctcg gtcgttcggc tgcggcgagc ggtatcagct
9061 cactcaaagg cggtaatacg gttatccaca gaatcagggg ataacgcagg aaagaacatg 9061 cactcaaagg cggtaatacg gttatccaca gaatcagggg ataacgcagg aaagaacatg
9121 tgagcaaaag gccagcaaaa ggccaggaac cgtaaaaagg ccgcgttgct ggcgtttttc 9121 tgagcaaaag gccagcaaaa ggccaggaac cgtaaaaagg ccgcgttgct ggcgtttttc
9181 cataggctcc gcccccctga cgagcatcac aaaaatcgac gctcaagtca gaggtggcga 9181 cataggctcc gcccccctga cgagcatcac aaaaatcgac gctcaagtca gaggtggcga
9241 aacccgacag gactataaag ataccaggcg tttccccctg gaagctccct cgtgcgctct 9241 aacccgacag gactataaag ataccaggcg tttccccctg gaagctccct cgtgcgctct
9301 cctgttccga ccctgccgct taccggatac ctgtccgcct ttctcccttc gggaagcgtg 9301 cctgttccga ccctgccgct taccggatac ctgtccgcct ttctcccttc gggaagcgtg
9361 gcgctttctc atagctcacg ctgtaggtat ctcagttcgg tgtaggtcgt tcgctccaag 9361 gcgctttctc atagctcacg ctgtaggtat ctcagttcgg tgtaggtcgt tcgctccaag
9421 ctgggctgtg tgcacgaacc ccccgttcag cccgaccgct gcgccttatc cggtaactat 9421 ctgggctgtg tgcacgaacc ccccgttcag cccgaccgct gcgccttatc cggtaactat
9481 cgtcttgagt ccaacccggt aagacacgac ttatcgccac tggcagcagc cactggtaac 9481 cgtcttgagt ccaacccggt aagacacgac ttatcgccac tggcagcagc cactggtaac
9541 aggattagca gagcgaggta tgtaggcggt gctacagagt tcttgaagtg gtggcctaac 9541 aggattagca gagcgaggta tgtaggcggt gctacagagt tcttgaagtg gtggcctaac
9601 tacggctaca ctagaaggac agtatttggt atctgcgctc tgctgaagcc agttaccttc 9601 tacggctaca ctagaaggac agtatttggt atctgcgctc tgctgaagcc agttaccttc
9661 ggaaaaagag ttggtagctc ttgatccggc aaacaaacca ccgctggtag cggtggtttt 9661 ggaaaaagag ttggtagctc ttgatccggc aaacaaacca ccgctggtag cggtggtttt
9721 tttgtttgca agcagcagat tacgcgcaga aaaaaaggat ctcaagaaga tcctttgatc 9721 tttgtttgca agcagcagat tacgcgcaga aaaaaaggat ctcaagaaga tcctttgatc
9781 ttttctacgg ggtctgacgc tcagtggaac gaaaactcac gttaagggat tttggtcatg 9781 ttttctacgg ggtctgacgc tcagtggaac gaaaactcac gttaagggat tttggtcatg
9841 agattatcaa aaaggatctt cacctagatc cttttaaatt aaaaatgaag ttttaaatca 9841 agattatcaa aaaggatctt cacctagatc cttttaaatt aaaaatgaag ttttaaatca
9901 atctaaagta tatatgagta aacttggtct gacagttacc aatgcttaat cagtgaggca 9901 atctaaagta tatatgagta aacttggtct gacagttacc aatgcttaat cagtgaggca
9961 cctatctcag cgatctgtct atttcgttca tccatagttg cctgactccc cgtcgtgtag 9961 cctatctcag cgatctgtct atttcgttca tccatagttg cctgactccc cgtcgtgtag
10021 ataactacga tacgggaggg cttaccatct ggccccagtg ctgcaatgat accgcgagac 10021 ataactacga tacgggaggg cttaccatct ggccccagtg ctgcaatgat accgcgagac
10081 ccacgctcac cggctccaga tttatcagca ataaaccagc cagccggaag ggccgagcgc 10081 ccacgctcac cggctccaga tttatcagca ataaaccagc cagccggaag ggccgagcgc
10141 agaagtggtc ctgcaacttt atccgcctcc atccagtcta ttaattgttg ccgggaagct 10141 agaagtggtc ctgcaacttt atccgcctcc atccagtcta ttaattgttg ccgggaagct
10201 agagtaagta gttcgccagt taatagtttg cgcaacgttg ttgccattgc tacaggcatc 10201 agagtaagta gttcgccagt taatagtttg cgcaacgttg ttgccattgc tacaggcatc
10261 gtggtgtcac gctcgtcgtt tggtatggct tcattcagct ccggttccca acgatcaagg 10261 gtggtgtcac gctcgtcgtt tggtatggct tcattcagct ccggttccca acgatcaagg
10321 cgagttacat gatcccccat gttgtgcaaa aaagcggtta gctccttcgg tcctccgatc 10321 cgagttacat gatcccccat gttgtgcaaa aaagcggtta gctccttcgg tcctccgatc
10381 gttgtcagaa gtaagttggc cgcagtgtta tcactcatgg ttatggcagc actgcataat 10381 gttgtcagaa gtaagttggc cgcagtgtta tcactcatgg ttatggcagc actgcataat
10441 tctcttactg tcatgccatc cgtaagatgc ttttctgtga ctggtgagta ctcaaccaag 10441 tctcttactg tcatgccatc cgtaagatgc ttttctgtga ctggtgagta ctcaaccaag
10501 tcattctgag aatagtgtat gcggcgaccg agttgctctt gcccggcgtc aatacgggat 10501 tcattctgag aatagtgtat gcggcgaccg agttgctctt gcccggcgtc aatacgggat
10561 aataccgcgc cacatagcag aactttaaaa gtgctcatca ttggaaaacg ttcttcgggg 10561 aataccgcgc cacatagcag aactttaaaa gtgctcatca ttggaaaacg ttcttcgggg
10621 cgaaaactct caaggatctt accgctgttg agatccagtt cgatgtaacc cactcgtgca 10621 cgaaaactct caaggatctt accgctgttg agatccagtt cgatgtaacc cactcgtgca
10681 cccaactgat cttcagcatc ttttactttc accagcgttt ctgggtgagc aaaaacagga 10681 cccaactgat cttcagcatc ttttactttc accagcgttt ctgggtgagc aaaaacagga
10741 aggcaaaatg ccgcaaaaaa gggaataagg gcgacacgga aatgttgaat actcatactc 10741 aggcaaaatg ccgcaaaaaa gggaataagg gcgacacgga aatgttgaat actcatactc
10801 ttcctttttc aatattattg aagcatttat cagggttatt gtctcatgag cggatacata 10801 ttcctttttc aatattattg aagcatttat cagggttatt gtctcatgag cggatacata
10861 tttgaatgta tttagaaaaa taaacaaata ggggttccgc gcacatttcc ccgaaaagtg 10861 tttgaatgta tttagaaaaa taaacaaata ggggttccgc gcacatttcc ccgaaaagtg
10921 ccacctgacg cgccctgtag cggcgcatta agcgcggcgg gtgtggtggt tacgcgcagc 10921 ccacctgacg cgccctgtag cggcgcatta agcgcggcgg gtgtggtggt tacgcgcagc
10981 gtgaccgcta cacttgccag cgccctagcg cccgctcctt tcgctttctt cccttccttt 10981 gtgaccgcta cacttgccag cgccctagcg cccgctcctt tcgctttctt cccttccttt
11041 ctcgccacgt tcgccggctt tccccgtcaa gctctaaatc gggggctccc tttagggttc 11041 ctcgccacgt tcgccggctt tccccgtcaa gctctaaatc gggggctccc tttagggttc
11101 cgatttagtg ctttacggca cctcgacccc aaaaaacttg attagggtga tggttcacgt 11101 cgatttagtg ctttacggca cctcgacccc aaaaaacttg attagggtga tggttcacgt
11161 agtgggccat cgccctgata gacggttttt cgccctttga cgttggagtc cacgttcttt 11161 agtgggccat cgccctgata gacggttttt cgccctttga cgttggagtc cacgttcttt
11221 aatagtggac tcttgttcca aactggaaca acactcaacc ctatctcggt ctattctttt 11221 aatagtggac tcttgttcca aactggaaca acactcaacc ctatctcggt ctattctttt
11281 gatttataag ggattttgcc gatttcggcc tattggttaa aaaatgagct gatttaacaa 11281 gatttataag ggattttgcc gatttcggcc tattggttaa aaaatgagct gatttaacaa
11341 aaatttaacg cgaattttaa caaaatatta acgcttacaa tttccattcg ccattcaggc 11341 aaatttaacg cgaattttaa caaaatatta acgcttacaa tttccattcg ccattcaggc
11401 tgcgcaactg ttgggaaggg cgatcggtgc gggcctcttc gctattacgc cagctggcga 11401 tgcgcaactg ttgggaaggg cgatcggtgc gggcctcttc gctattacgc cagctggcga
11461 aagggggatg tgctg 11461 aagggggatg tgctg
Claims (29)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020136988A RU2749459C1 (en) | 2020-11-10 | 2020-11-10 | UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020136988A RU2749459C1 (en) | 2020-11-10 | 2020-11-10 | UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2749459C1 true RU2749459C1 (en) | 2021-06-11 |
Family
ID=76377310
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020136988A RU2749459C1 (en) | 2020-11-10 | 2020-11-10 | UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2749459C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2790134C1 (en) * | 2021-11-22 | 2023-02-14 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | Recombinant plasmid vector pveal-m12b9ch providing stable expression and secretion of chimeric monoclonal antibody m12b9ch against orthopoxviruses in mammalian cells and recombinant chimeric monoclonal scfv-fc antibody m12b9ch obtained using specified vector pveal-m12b9ch |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2019025984A1 (en) * | 2017-07-31 | 2019-02-07 | Reflection Biotechnologies Limited | Cellular models of and therapies for ocular diseases |
RU2713723C1 (en) * | 2018-11-15 | 2020-02-06 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | ARTIFICIAL GENES CODING EV.CTL AND EV.Th PROTEINS-IMMUNOGENS, RECOMBINANT PLASMID DNA pEV.CTL AND EV.Th, PROVIDING EXPRESSION OF ARTIFICIAL GENES, AND ARTIFICIAL T-CELL POLYEPITOPE PROTEINS-IMMUNOGENS EV.CTL AND EV.Th CONTAINING EPITOPES OF EBOLA VIRUS ANTIGENS, USED TO CREATE AN EBOLA VIRUS VACCINE |
WO2020132382A1 (en) * | 2018-12-21 | 2020-06-25 | Merck Sharp & Dohme Corp. | Expression vectors for eukaryotic expression systems |
-
2020
- 2020-11-10 RU RU2020136988A patent/RU2749459C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2019025984A1 (en) * | 2017-07-31 | 2019-02-07 | Reflection Biotechnologies Limited | Cellular models of and therapies for ocular diseases |
RU2713723C1 (en) * | 2018-11-15 | 2020-02-06 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | ARTIFICIAL GENES CODING EV.CTL AND EV.Th PROTEINS-IMMUNOGENS, RECOMBINANT PLASMID DNA pEV.CTL AND EV.Th, PROVIDING EXPRESSION OF ARTIFICIAL GENES, AND ARTIFICIAL T-CELL POLYEPITOPE PROTEINS-IMMUNOGENS EV.CTL AND EV.Th CONTAINING EPITOPES OF EBOLA VIRUS ANTIGENS, USED TO CREATE AN EBOLA VIRUS VACCINE |
WO2020132382A1 (en) * | 2018-12-21 | 2020-06-25 | Merck Sharp & Dohme Corp. | Expression vectors for eukaryotic expression systems |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2790134C1 (en) * | 2021-11-22 | 2023-02-14 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | Recombinant plasmid vector pveal-m12b9ch providing stable expression and secretion of chimeric monoclonal antibody m12b9ch against orthopoxviruses in mammalian cells and recombinant chimeric monoclonal scfv-fc antibody m12b9ch obtained using specified vector pveal-m12b9ch |
RU2817423C1 (en) * | 2023-08-29 | 2024-04-16 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | INTEGRATIVE PLASMID VECTOR pVEAL3-Lassa-Trim, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF RECOMBINANT SURFACE GLYCOPROTEIN GPC OF Lassa VIRUS IN MAMMALIAN CELLS, RECOMBINANT CELL LINE STRAIN CHO-K1-GPC-LASV AND RECOMBINANT PROTEIN GPC-LASV PRODUCED BY SAID CELL LINE STRAIN CHO-K1-GPC-LASV |
RU2817380C1 (en) * | 2023-10-30 | 2024-04-15 | Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) | INTEGRAL PLASMID VECTOR pVEAL2-B7, PROVIDING EXPRESSION AND SECRETION OF RECOMBINANT PROTEIN B7 OF SMALLPOX VIRUS (SV) IN MAMMALIAN CELLS, RECOMBINANT STRAIN OF CELL LINE CHO-K1-B7 AND SV RECOMBINANT PROTEIN B7, PRODUCED BY STRAIN OF CELL LINE CHO-K1-B7 AND USED TO PRODUCE IMMUNOBIOLOGICAL PREPARATIONS |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU2013282323B2 (en) | Massively parallel combinatorial genetics | |
KR102274445B1 (en) | Methods for genomic integration | |
JP2022180471A (en) | Combinatorial cancer immunotherapy | |
KR20220004703A (en) | Compositions and methods for the treatment of cancer using CD8 engineered T cell therapy | |
CN110511286B (en) | RNA base editing molecule | |
CN113766956A (en) | CD 19-directed chimeric antigen receptor and its use in immunotherapy | |
CN1867669B (en) | Method for producing gamma-carboxylated proteins | |
KR20220024053A (en) | model of tauopathy | |
US20040132133A1 (en) | Methods and compositions for the production, identification and purification of fusion proteins | |
CN113604469B (en) | CRISPR/CasRx based gene editing method and application thereof | |
US8673630B2 (en) | βGI-IgG intron for enhanced anti-IGF1R expression | |
CN108707626B (en) | Preparation method of monoclonal cell line capable of detecting pyrogen | |
RU2749459C1 (en) | UNIVERSAL INTEGRATION VECTOR pVEAL AND RECOMBINANT PLASMID pVEAL-15742, PROVIDING SYNTHESIS AND SECRETION OF scFv-Fc ANTIBODIES AGAINST EBOLA VIRUS ADI-15742 IN MAMMALIAN CELLS AND OBTAINED USING pVEAL VECTOR | |
CN110446782B (en) | Method for changing target site of DNA of cell and complex for the method | |
CN110423736B (en) | Base editing tool, application thereof and method for editing wide-window and non-sequence preference bases in eukaryotic cells | |
KR102461837B1 (en) | Fusion protein comprising extracellular domain of cd80 and anti-lag3 antibody fragments and use thereof | |
CN112522205B (en) | Cell line for over-expressing angiotensin converting enzyme 2 as well as preparation method and application thereof | |
KR20220139344A (en) | Compositions and methods for treating neurodegenerative diseases | |
CN107828876B (en) | Application of tag protein capable of covalently binding substrate in CLIP | |
Takahashi et al. | A plasmid that improves the efficiency of foreign gene expression by intracellular T7 RNA polymerase | |
US20040077573A1 (en) | Method for regulating the activity of an expression product of a gene transferred into living body | |
CN111518838A (en) | Primer and kit for editing single-base gene of eukaryotic cell, use method and application | |
CN114014924B (en) | Method for improving homologous recombination efficiency in gene editing process through BRCA1 and BARD1 proteins | |
CN113025651B (en) | Novel application of drug screening cell model, triciribine and structural analogue of targeted HBV core promoter | |
KR102664852B1 (en) | Vector system for light-inducible modulating of gene expression and uses thereof |