RU2741368C1 - Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial - Google Patents
Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial Download PDFInfo
- Publication number
- RU2741368C1 RU2741368C1 RU2020130042A RU2020130042A RU2741368C1 RU 2741368 C1 RU2741368 C1 RU 2741368C1 RU 2020130042 A RU2020130042 A RU 2020130042A RU 2020130042 A RU2020130042 A RU 2020130042A RU 2741368 C1 RU2741368 C1 RU 2741368C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sample
- parts
- hexane
- extract
- biomaterial
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
- G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N30/00—Investigating or analysing materials by separation into components using adsorption, absorption or similar phenomena or using ion-exchange, e.g. chromatography or field flow fractionation
- G01N30/02—Column chromatography
- G01N30/04—Preparation or injection of sample to be analysed
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/483—Physical analysis of biological material
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Hematology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Sampling And Sample Adjustment (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к способам количественного определения стойких хлорорганических соединений – хлорорганических пестицидов (α-, β-, γ-, δ- гексахлорциклогексана, 2,4- и 4,4-дихлордифенилтрихлорэтана, 2,4- и 4,4-дихлордифенилдихдорэтана, 2,4- и 4,4-дихлордифенилэтилена, дильдрина, эндрина) и полихлорированных бифенилов – газохроматографическими методами в биологических жидкостях и придатках кожи человека и может быть использовано в биологии, экологии, медицине.The invention relates to methods for the quantitative determination of persistent organochlorine compounds - organochlorine pesticides (α-, β-, γ-, δ-hexachlorocyclohexane, 2,4- and 4,4-dichlorodiphenyltrichloroethane, 2,4- and 4,4-dichlorodiphenyldichloroethane, 2, 4- and 4,4-dichlorodiphenylethylene, dieldrin, endrin) and polychlorinated biphenyls - by gas chromatographic methods in biological fluids and human skin appendages and can be used in biology, ecology, medicine.
Известен способ подготовки пробы для газохроматографического определения хлорорганических пестицидов в крови, включающий экстракцию пестицидов из крови n-гексаном, очистку от соэкстративных веществ концентрированной серной кислотой, концентрирование n-гексанового экстракта (см. RU № 2414711, МПК G01N 33/50, G01N 33/48, 2011).A known method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine pesticides in blood, including the extraction of pesticides from the blood with n-hexane, purification of coextractive substances with concentrated sulfuric acid, concentration of n-hexane extract (see RU No. 2414711, IPC G01N 33/50, G01N 33 / 48, 2011).
Недостатком этого решения является ограниченная область применения из-за невозможности исследования всего спектра биологических жидкостей человека, а также полная невозможность работы с придатками кожи – волосом или ногтевой пластиной.The disadvantage of this solution is the limited scope of application due to the impossibility of studying the entire spectrum of human biological fluids, as well as the complete impossibility of working with skin appendages - hair or nail plate.
Известны методические указания по избирательному газохроматографическому определению хлорорганических пестицидов в биологических средах (моче, крови, жировой ткани и грудном женском молоке), отличающиеся обработкой проб раствором оксалата калия и далее этанолом, диэтиловым эфиром и гексаном (МУ № 3151 от 27.11.84 и № 4362 от 08.06.87).Known guidelines for the selective gas chromatographic determination of organochlorine pesticides in biological media (urine, blood, adipose tissue and breast milk), differing in the processing of samples with a solution of potassium oxalate and then ethanol, diethyl ether and hexane (MU No. 3151 dated November 27, 1984 and No. 4362 06/08/87).
Недостатком этого решения является сравнительно неполный выход хлорорганических соединений (ХОС) в n-гексановый экстракт, а также невозможность работы с волосом или ногтевой пластиной.The disadvantage of this solution is the relatively incomplete yield of organochlorine compounds (OCs) in the n-hexane extract, as well as the impossibility of working with the hair or nail plate.
Известен также способ подготовки пробы для газохроматографического определения хлорорганических соединений в биоматериале, включающий отбор пробы, ее измельчение и последующую экстракцию хлорорганических соединений n-гексаном, и последующую очистку от соэкстрактивных веществ концентрированной серной кислотой и получение концентрата n-гексанового экстракта хлорорганических соединений (см. патент РФ № 2543360, МПК G01N 33/483, 2015).There is also known a method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial, including sampling, grinding and subsequent extraction of organochlorine compounds with n-hexane, and subsequent purification from co-extractive substances with concentrated sulfuric acid and obtaining a concentrate of n-hexane extract of organochlorine compounds (see patent RF No. 2543360, IPC G01N 33/483, 2015).
Недостатком этого способа является низкая эффективность и точность исследования из-за многократности этапов экстракции и очистки экстракта серной кислотой и, кроме того, сравнительно невысокий «выход» хлорорганических соединений в концентрат n-гексанового экстракта.The disadvantage of this method is the low efficiency and accuracy of the study due to the multiple stages of extraction and purification of the extract with sulfuric acid and, in addition, the relatively low "yield" of organochlorine compounds in the concentrate of n-hexane extract.
Задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является повышение «выхода» хлорорганических соединений в концентрат n-гексанового экстракта.The problem to be solved by the claimed invention is to increase the "yield" of organochlorine compounds in the concentrate of n-hexane extract.
Технический результат, проявляющийся при решении поставленной задачи, выражается в повышении «выхода» хлорорганических соединений в концентрат n-гексанового экстракта за счет повышения полноты его извлечения из материала проб и исключения многоэтапности процесса очистки концентрированной серной кислотой.The technical result, which manifests itself in solving the problem, is expressed in an increase in the "yield" of organochlorine compounds in the concentrate of n-hexane extract by increasing the completeness of its extraction from the sample material and eliminating the multistage purification process with concentrated sulfuric acid.
Для решения поставленной задачи предложен способ подготовки пробы для газохроматографического определения хлорорганических соединений в биоматериале, включающий отбор пробы, ее измельчение и последующую экстракцию хлорорганических соединений n-гексаном, и последующую очистку от соэкстрактивных веществ концентрированной серной кислотой и получение концентрата n-гексанового экстракта хлорорганических соединений, отличающийся тем, что в качестве биоматериала используют биологические жидкости или придатки кожи, из которых получают измельченные гомогенизированные образцы, увлажненные бидистиллированной водой до влажности не менее 80% и двукратно криоденатурированные, отбирают пробу образца в количестве, достаточном для получения не более 0,5 г сухого липофильного экстракта, при этом в навеску пробы образца, которую принимают за 5 частей по массе, вносят 3 см3 1%-ного раствора бикарбоната натрия, и после интенсивного встряхивания добавляют экстрагент, в качестве которого используют смесь трихлорметан: метиловый спирт: гексан, причем на 5 частей навески пробы образца в г берут 6 частей трихлорметана в см3, 3 части метилового спирта в см3 и 5 частей n-гексана в см3, интенсивно встряхивают 5 минут и проводят экстракцию в течение 25 мин, липофильный экстракт хлорорганического соединения отстаивают до разделения фаз, после чего водно-спиртовой слой удаляют, а экстракт фильтруют через безводный сульфат натрия, выпаривают и затем очищают концентрированной серной кислотой.To solve the problem, a method for preparing a sample for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial is proposed, including sampling, grinding it and subsequent extraction of organochlorine compounds with n-hexane, and subsequent purification from co-extractive substances with concentrated sulfuric acid and obtaining a concentrate of n-hexane extract of organochlorine compounds, characterized in that biological fluids or skin appendages are used as a biomaterial, from which crushed homogenized samples are obtained, moistened with bidistilled water to a moisture content of at least 80% and cryodenatured twice, a sample is taken in an amount sufficient to obtain not more than 0.5 g of dry lipophilic extract, while in the weighed sample of the sample, which is taken as 5 parts by weight, add 3 cm 3 of a 1% sodium bicarbonate solution, and after vigorous shaking, add the extractant, which is used as a mixture of tr ichloromethane: methyl alcohol: hexane, and 6 parts of trichloromethane in cm 3 , 3 parts of methyl alcohol in cm 3 and 5 parts of n-hexane in cm 3 are taken for 5 parts of the weighed portion of the sample in g, shaking vigorously for 5 minutes and extraction is carried out for 25 min, the lipophilic extract of the organochlorine compound is defended until the phases are separated, after which the aqueous-alcoholic layer is removed, and the extract is filtered through anhydrous sodium sulfate, evaporated and then purified with concentrated sulfuric acid.
Сопоставительный анализ признаков заявленного решения с признаками прототипа и аналогов свидетельствует о соответствии заявленного решения критерию «новизна».Comparative analysis of the features of the claimed solution with the features of the prototype and analogs indicates the compliance of the declared solution with the "novelty" criterion.
Совокупность признаков формулы изобретения обеспечивает возможность повышения «выхода» хлорорганических соединений в концентрат n-гексанового экстракта за счет повышения полноты его извлечения из материала проб и исключения многоэтапности процесса очистки концентрированной серной кислотой от соэкстрактивных веществ в ходе реакции с ней липофильного экстракта. Например, при использовании навески грудного молока, в результате экстракции которой образуется менее 0,5 г липофильного экстракта, «выход» всех заявленных ХОС может быть не полный, а соединения, которые находятся в минимальных концентрациях – «не выходить» вовсе. При этом если взять навеску, в результате экстракции которой образуется более 0,5 г липофильного экстракта, то потребуется несколько стадий промывки серной кислотой, что ведет за собой «потери» концентраций искомых соединений и увеличение времени общего анализа.The set of features of the claims provides the possibility of increasing the "yield" of organochlorine compounds in the concentrate of n-hexane extract by increasing the completeness of its extraction from the sample material and eliminating the multistage process of purification with concentrated sulfuric acid from coextractive substances during the reaction of the lipophilic extract with it. For example, when using a sample of breast milk, as a result of the extraction of which less than 0.5 g of lipophilic extract is formed, the "yield" of all declared COS may not be complete, and the compounds that are in minimal concentrations may "not come out" at all. At the same time, if we take a sample, as a result of the extraction of which more than 0.5 g of lipophilic extract is formed, then several stages of washing with sulfuric acid will be required, which leads to a “loss” of concentrations of the desired compounds and an increase in the time of the general analysis.
При этом признаки отличительной части формулы изобретения решают следующие функциональные задачи.In this case, the features of the characterizing part of the claims solve the following functional problems.
Признак, указывающий, что «в качестве биоматериала используют биологические жидкости или придатки кожи», расширяет область применения исследования всего спектра биологических жидкостей человека, а также возможность работы с придатками кожи – волосом или ногтевой пластиной.The sign indicating that "biological fluids or skin appendages are used as a biomaterial" expands the scope of research of the entire spectrum of human biological fluids, as well as the ability to work with skin appendages - hair or nail plate.
Признаки «…используют измельченные гомогенизированные образцы, увлажненные бидистиллированной водой до влажности не менее 80%...» указывают параметры пробоподготовки, необходимые для более эффективного процесса криоденатурации.The signs "... use crushed homogenized samples, moistened with bidistilled water to a moisture content of at least 80% ..." indicate the sample preparation parameters required for a more efficient cryodenaturation process.
Признаки, указывающие, что гомогенизированные образцы «двукратно криоденатурированные» обеспечивают значительное увеличение «выхода» экстрагируемых веществ за счет процессов повторяющейся низкотемпературной денатурации белково-липидных комплексов образца.Signs indicating that homogenized samples "double cryodenatured" provide a significant increase in the "yield" of extracted substances due to the processes of repeated low-temperature denaturation of protein-lipid complexes of the sample.
Признаки, указывающие, что отбирают пробу образца «в количестве, достаточном для получения не более 0,5 г сухого липофильного экстракта» обеспечивают максимальный выход исследуемого вещества из образца.Signs indicating that a sample is taken "in an amount sufficient to obtain no more than 0.5 g of dry lipophilic extract" provide the maximum yield of the analyte from the sample.
Признак, указывающий, что «в навеску пробы образца, которую принимают за 5 частей по массе, вносят 3 см3 1%-ного раствора бикарбоната натрия» обеспечивает высокую степень денатурации казеиногена, связывание ионов кальция, улучшение смачиваемости образца.A sign indicating that "3 cm 3 of a 1% sodium bicarbonate solution is added to the weighed portion of the sample, which is taken as 5 parts by weight," provides a high degree of caseinogen denaturation, binding of calcium ions, and improved sample wettability.
Признаки, указывающие, что «после интенсивного встряхивания добавляют экстрагент, в качестве которого используют смесь трихлорметан: метиловый спирт: гексан» необходимы для эффективного разрушения липопротеидных комплексов пробы и более полного извлечения хлорорганических соединений.Signs indicating that "after vigorous shaking, an extractant is added, which is a mixture of trichloromethane: methyl alcohol: hexane" are necessary for effective destruction of lipoprotein complexes of the sample and more complete extraction of organochlorine compounds.
Признаки, указывающие, что «на 5 частей навески пробы образца в г берут 6 частей трихлорметана в см3, 3 части метилового спирта в см3 и 5 частей n-гексана в см3» необходимы для уточнения наилучшего соотношения реагентов, эффективно разрушающих липогликопротеидные комплексы пробы и в результате повышающие «выход» исследуемых хлорорганических веществ.Signs indicating that "6 parts of trichloromethane in cm 3 , 3 parts of methyl alcohol in cm 3 and 5 parts of n-hexane in cm 3 are taken for 5 parts of the sample in g" are necessary to clarify the best ratio of reagents that effectively destroy lipoglycoprotein complexes samples and, as a result, increasing the "yield" of the investigated organochlorine substances.
Признак, указывающий, что «интенсивно встряхивают 5 минут и проводят экстракцию в течение 25 мин» обеспечивает ускорение работ за счет увеличения площади границы раздела фаз трихлорметаново-гексанового и водно-спиртового слоев.The sign indicating that "vigorously shake for 5 minutes and carry out the extraction for 25 minutes" provides acceleration of work due to an increase in the area of the interface between the phases of trichloromethane-hexane and water-alcohol layers.
Признаки, указывающие, что «липофильный экстракт хлорорганического соединения отстаивают до разделения фаз, после чего водно-спиртовой слой удаляют» описывают технологический процесс отделения липофильного экстракта хлорорганических соединений от водно-спиртового слоя.Signs indicating that "the lipophilic extract of the organochlorine compound is defended before phase separation, after which the aqueous-alcoholic layer is removed" describe the technological process of separating the lipophilic extract of organochlorine compounds from the aqueous-alcoholic layer.
Признаки, указывающие, что «экстракт фильтруют через безводный сульфат натрия» описывают процесс осушения и удаления твердых фрагментов коагулировавшего белка из трихлорметан-гексанового экстракта.Signs indicating that "the extract is filtered through anhydrous sodium sulfate" describes the process of drying and removal of solid fragments of coagulated protein from the trichloromethane-hexane extract.
Признаки, указывающие, что экстракт «выпаривают и затем очищают концентрированной серной кислотой» описывают последовательность действий, значительно ускоряющую технологический процесс.Signs indicating that the extract is “evaporated and then purified with concentrated sulfuric acid” describe a sequence of steps that significantly speeds up the process.
На фиг. показано распределение липидов в биологических жидкостях и таких придатках кожи человека, как волосы и ногтевые пластины для определения объема навески в зависимости от типа материала.FIG. shows the distribution of lipids in biological fluids and such appendages of human skin as hair and nail plates to determine the volume of the sample depending on the type of material.
Объем пробы определяют исходя из концентраций анализируемых веществ в образце, чувствительности аналитического метода и воспроизводимости результатов при повторе количественного анализа.The sample volume is determined based on the concentration of the analytes in the sample, the sensitivity of the analytical method and the reproducibility of the results when the quantitative analysis is repeated.
Предел обнаружения определялся из расчета три стандартных отклонения на восемь – десять анализируемых на ХОС образцов. Для анализа следовых концентраций ХОС обычно используют образцы от 1 до 10 г. Однако для более эффективного определения ХОС с высоким коэффициентом «октанол-вода» необходимо учитывать различное содержание липидов в биологических жидкостях и придатках кожи человека, а также степень их химического участия в фосфолипидных комплексах мембран или кератинового матрикса придатков кожи, поскольку такой подход позволяет унифицировать дальнейшие этапы, включая экстракцию.The detection limit was determined on the basis of three standard deviations per eight to ten samples analyzed on COS. For the analysis of trace concentrations of COS, samples from 1 to 10 g are usually used. However, for a more efficient determination of COS with a high octanol-water coefficient, it is necessary to take into account the different lipid content in biological fluids and human skin appendages, as well as the degree of their chemical participation in phospholipid complexes. membranes or keratin matrix of skin appendages, since this approach allows unification of further steps, including extraction.
Установлено, что наиболее эффективная очистка концентрированной серной кислотой исследуемых соединений от соэкстрактивных веществ происходит в ходе реакции липофильного экстракта, растворенного в 20 см3 n-гексана, и концентрированной серной кислоты объемом 10 см3 при перемешивании на лабораторном шейкере.It was found that the most effective purification of the studied compounds from co-extractive substances with concentrated sulfuric acid occurs during the reaction of a lipophilic extract dissolved in 20 cm 3 of n-hexane and concentrated sulfuric acid with a volume of 10 cm 3 with stirring on a laboratory shaker.
Наибольшая масса липофильного экстракта, которая может быть очищена указанным объемом серной кислоты, составляет 0,5 г. На фиг. показано распределение липидов в биологических жидкостях и таких придатках кожи человека, как волос или ногтевая пластина.The largest mass of the lipophilic extract that can be purified with the indicated volume of sulfuric acid is 0.5 g. FIG. shows the distribution of lipids in biological fluids and in such appendages of human skin as hair or nail plate.
В таблице 1 приведен максимальный объем проб, который может быть оптимально очищен при однократной кислотной экстракции.Table 1 shows the maximum sample volume that can be optimally cleaned with a single acid extraction.
Таблица 1Table 1
Распределение липидов в органах и тканях человекаDistribution of lipids in human organs and tissues
Для обеспечения повторяемости исследований обязательны к соблюдению следующие правила сбора проб.To ensure repeatability of studies, the following sampling rules are mandatory.
Для мочи рекомендуется использовать суточную пробу мочи, предварительно упаренную до объема 100 мл.For urine, it is recommended to use a daily urine sample, pre-stripped to a volume of 100 ml.
При низкой концентрации липидов в пробе образцы предварительно концентрируются упариванием и далее передаются в технологическую цепочку экстракции.At a low lipid concentration in the sample, the samples are pre-concentrated by evaporation and then transferred to the extraction process chain.
Волос: сбор проб производится с затылочной области головы; волос должен быть срезан максимально близко к корню.Hair: samples are collected from the occipital region of the head; the hair should be cut as close to the root as possible.
Ногтевая пластина: выступающая над подушечкой I, II или III пальца левой руки часть ногтевой пластины, длиной не менее 3 мм, срезают повторяя анатомические очертания подушечки пальца.The nail plate: the part of the nail plate, at least 3 mm long, protruding above the pad of the I, II or III finger of the left hand, is cut off repeating the anatomical outlines of the finger pad.
Для слюны рекомендуется сбор пробы в спокойном состоянии не ранее, чем через 3 часа после приема пищи или питья.For saliva, it is recommended to collect a sample in a calm state no earlier than 3 hours after eating or drinking.
Для желчи рекомендуется исследование порции в связи с наиболее высокой стабильной концентрацией липидного комплекса – 7,69 г/литр.For bile, it is recommended to study the portion due to the highest stable concentration of the lipid complex - 7.69 g / liter.
Для сбора проб применяют одноразовый инструмент во избежание контаминации анализируемыми веществами.A disposable instrument is used to collect samples to avoid contamination with analytes.
Пример реализации способаAn example of the implementation of the method
Отбирают образцы биологических жидкостей или придатков кожи. Все отобранные образцы помещают в стеклянные контейнеры достаточного объема и замораживают до температуры -20°С или ниже. Пустая пробирка необходима для контроля чистоты тары.Samples of biological fluids or skin appendages are taken. All collected samples are placed in glass containers of sufficient volume and frozen to a temperature of -20 ° C or below. An empty test tube is required to control the cleanliness of the container.
Пробы образцов измельчают механически на ультрагомогенизаторе, при необходимости увлажняют бидистиллированной водой до 80%. Далее производят двукратную криоденатурацию со скоростью более 5 K/минуту.Samples are crushed mechanically in an ultrahomogenizer, if necessary, moistened with bidistilled water to 80%. Further, double cryodenaturation is performed at a rate of more than 5 K / minute.
Взвешивают такое количество гомогенизированного образца, чтобы получить до 0,5 г сухого липофильного экстракта (табл. 1). Например, для грудного молока жирностью 4% берется навеска 12,5 г, что будет соответствовать 0,5 г сухого липофильного экстракта (табл. 1). В цилиндрическую делительную воронку вместимостью 50 см3 вносят 3 см3 1% бикарбоната натрия и интенсивно встряхивают 1 минуту, вносят смесь трихлорметан-метиловый спирт в расчетном количестве по пропорции массово-объемного соотношения «навеска образца(12,5 г): трихлорметан (15 см3): метиловый спирт (7,5 см3): n-гексан (12,5 см3): как 5:6:3:5, и интенсивно встряхивают, после чего добавляют необходимый для экстракции объем п-гексана (при использовании высоколипидных образцов с жирностью выше 5%, например, ногтевой пластины, объемы растворителей должны быть 9 см3 смеси «трихлорметан-метиловый спирт» и 5 см3 п-гексана, соответственно, для предотвращения потерь), закрывают колбу парафиновой пленкой типа Parafilm и интенсивно встряхивают 5 минут и оставляют экстрагироваться на 25 минут. После разделения фаз водно-спиртовой слой удаляют.Weigh such an amount of the homogenized sample to obtain up to 0.5 g of dry lipophilic extract (Table 1). For example, for breast milk with a fat content of 4%, a sample of 12.5 g is taken, which will correspond to 0.5 g of dry lipophilic extract (Table 1). Into a cylindrical separating funnel with a capacity of 50 cm 3, add 3 cm 3 of 1% sodium bicarbonate and shake vigorously for 1 minute, add a mixture of trichloromethane-methyl alcohol in a calculated amount according to the proportion of the mass-volume ratio "sample sample (12.5 g): trichloromethane (15 cm 3 ): methyl alcohol (7.5 cm 3 ): n-hexane (12.5 cm 3 ): as 5: 6: 3: 5, and shake vigorously, after which the volume of n-hexane required for extraction is added (at using high-lipid samples with a fat content above 5%, for example, a nail plate, the volumes of solvents should be 9 cm 3 of a mixture of "trichloromethane-methyl alcohol" and 5 cm 3 of p-hexane, respectively, to prevent losses), cover the flask with a Parafilm paraffin film and shake vigorously for 5 minutes and leave to extract for 25 minutes. After phase separation, the aqueous-alcoholic layer is removed.
На аналитических весах (4 класс точности) взвешивают круглодонную колбу К-1-100-29/32, предварительно просушенную в сушильном шкафу в течение 30-40 минут до стабилизации веса, охлажденную до комнатной температуры в эксикаторе с индикаторным силикагелем. Данные вносят в лабораторный журнал.A round-bottom flask K-1-100-29 / 32, previously dried in an oven for 30-40 minutes until the weight stabilizes, cooled to room temperature in a desiccator with indicator silica gel, is weighed on an analytical balance (4th class of accuracy). The data are entered into the laboratory log.
Оставшийся в воронке слой фильтруют через безводный сульфат натрия, смоченный в n-гексане, в круглодонную колбу К-1-100-29/32 и ставят на роторный испаритель (водяная баня – 35°С + вакуум) до полного выпаривания n-гексана. Далее круглодонную колбу помещают в сушильный шкаф при температуре 102°С до стабилизации веса.The layer remaining in the funnel is filtered through anhydrous sodium sulfate, soaked in n-hexane, into a round-bottom flask K-1-100-29 / 32 and placed on a rotary evaporator (water bath - 35 ° C + vacuum) until n-hexane is completely evaporated. Next, the round bottom flask is placed in an oven at 102 ° C until the weight is stabilized.
После стабилизации веса липофильного экстракта круглодонную колбу взвешивают повторно. Данные вносят в лабораторный журнал и рассчитывают массу навески и процентное содержание общих жиров, полученных во время экстракции, для последующего пересчета концентраций ХОС как нг/г липидов (общепринятые измерения концентрации органических загрязняющих веществ в живых организмах).After stabilizing the weight of the lipophilic extract, the round bottom flask is reweighed. The data are entered into a laboratory log and the weight of the sample and the percentage of total fats obtained during the extraction are calculated for the subsequent conversion of COS concentrations as ng / g lipids (generally accepted measurements of the concentration of organic pollutants in living organisms).
Для очистки полученного липофильного экстракта от соэкстративных веществ в вытяжном шкафу в круглодонную колбу с липофильным экстрактом вносят 20-25 см3 n-гексана, тщательно перемешивают и вносят 10 см3 H2SO4конц.To purify the obtained lipophilic extract from coextractive substances in a fume hood, 20-25 cm 3 of n-hexane are introduced into a round-bottom flask with a lipophilic extract, mix thoroughly and add 10 cm 3 H 2 SO 4 conc .
Содержимое повторно перемешивают и оставляют на 24 часа. Отделяют часть кислоты автоматическим кислотостойким дозатором с одноразовым полипропиленовым наконечником и n-гексановый слой переносят в делительную воронку ВД-3-250-29/32 с PTFE краном.The contents are mixed again and left for 24 hours. Part of the acid is separated by an automatic acid-resistant dispenser with a disposable polypropylene tip and the n-hexane layer is transferred to a separating funnel VD-3-250-29 / 32 with a PTFE tap.
Промывают раствор экстрагированных исследуемых веществ в n-гексане порцией 20 см3 1% бикарбоната натрия, и далее порциями бидистиллированной воды объемом 20-30 см3 до нейтральной реакции универсального бумажного индикатора.The solution of the extracted test substances in n-hexane is washed with a 20 cm 3 portion of 1% sodium bicarbonate, and then with 20-30 cm 3 portions of bidistilled water until the neutral reaction of the universal paper indicator.
Раствор исследуемых веществ в n-гексане фильтруют через безводный сульфат натрия в коническую колбу KО-30-14/23; КО-30-29/32 и ставят на роторный испаритель (водяная баня – 35°С) до полного выпаривания n-гексана.A solution of the test substances in n-hexane is filtered through anhydrous sodium sulfate into a conical flask KO-30-14 / 23; KO-30-29 / 32 and put on a rotary evaporator (water bath - 35 ° C) until n-hexane is completely evaporated.
Определение концентраций хлорорганических пестицидов и полихлорированных бифенилов в образцах проводят на газовом хроматографе с масс-селективным детектором и на газовом хроматографе с детектором электронного захвата.The determination of the concentrations of organochlorine pesticides and polychlorinated biphenyls in the samples is carried out on a gas chromatograph with a mass-selective detector and on a gas chromatograph with an electron capture detector.
Таким образом, предложенный способ подготовки пробы для газохроматографического определения хлорорганических соединений в биологических жидкостях и придатках кожи человека позволяет сократить расходы на серную кислоту, n-гексан и бидистиллированную воду, и уменьшить трудозатраты на производство одной пробы на 48-72 часа.Thus, the proposed method for preparing a sample for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biological fluids and human skin appendages can reduce the cost of sulfuric acid, n-hexane and bidistilled water, and reduce labor costs for producing one sample by 48-72 hours.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020130042A RU2741368C1 (en) | 2020-09-14 | 2020-09-14 | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2020130042A RU2741368C1 (en) | 2020-09-14 | 2020-09-14 | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2741368C1 true RU2741368C1 (en) | 2021-01-25 |
Family
ID=74213103
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2020130042A RU2741368C1 (en) | 2020-09-14 | 2020-09-14 | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2741368C1 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2414711C2 (en) * | 2008-12-26 | 2011-03-20 | Государственное учреждение здравоохранения "Центр функциональной хирургической гастроэнтерологии" департамента здравоохранения Краснодарского края | Method for preparing blood sample for gas chromatography of organochlorine pesticides |
RU2543360C1 (en) * | 2013-10-01 | 2015-02-27 | Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Дальневосточный Федеральный Университет" (Двфу) | Method of preparing sample for gas-chromatographic identification of pesticides in biomaterial |
-
2020
- 2020-09-14 RU RU2020130042A patent/RU2741368C1/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2414711C2 (en) * | 2008-12-26 | 2011-03-20 | Государственное учреждение здравоохранения "Центр функциональной хирургической гастроэнтерологии" департамента здравоохранения Краснодарского края | Method for preparing blood sample for gas chromatography of organochlorine pesticides |
RU2543360C1 (en) * | 2013-10-01 | 2015-02-27 | Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Дальневосточный Федеральный Университет" (Двфу) | Method of preparing sample for gas-chromatographic identification of pesticides in biomaterial |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
FRIAS M.M. et al. Determination of organochlorine compounds in human biological samples by GC-MS/MS / Biomed. Chromatogr., 2004; 18, pages 102-111. * |
MINELLI EV et al. Quantitative Method for the Determination of Organochlorine Pesticides in Serum / Journal of Analytical Toxicology, 1996, vol. 20, pages 23-26. * |
MU 3151-84. METHODOLOGICAL INSTRUCTIONS FOR SELECTIVE GAS-CHROMATOGRAPHIC DETERMINATION OF ORGANOCHORGANIC PESTICIDES IN BIOLOGICAL MEDIA (urine, blood, adipose tissue and breast milk), developed by V.F. Demchenko, 1984. * |
МУ 3151-84. МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ИЗБИРАТЕЛЬНОМУ ГАЗОХРОМАТОГРАФИЧЕСКОМУ ОПРЕДЕЛЕНИЮ ХЛОРОРГАНИЧЕСКИХ ПЕСТИЦИДОВ В БИОЛОГИЧЕСКИХ СРЕДАХ (МОЧЕ, КРОВИ, ЖИРОВОЙ ТКАНИ И ГРУДНОМ ЖЕНСКОМ МОЛОКЕ), разработаны В.Ф. Демченко, 1984. MINELLI E.V. et al. Quantitative Method for the Determination of Organochlorine Pesticides in Serum / Journal of Analytical Toxicology, 1996, vol. 20, pages 23-26. FRIAS M.M. et al. Determination of organochlorine compounds in human biological samples by GC-MS/MS / Biomed. Chromatogr., 2004; 18, pages 102-111. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Jones et al. | Separation of organic insecticides from plant and animal tissues | |
US20210372988A1 (en) | Whole blood separation sampling apparatus | |
RU2741368C1 (en) | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial | |
RU2713661C1 (en) | Method of sample preparation for gas-chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial | |
Osselton et al. | Enzymic digestion of liver tissue to release barbiturates, salicylic acid and other acidic compounds in cases of human poisoning | |
RU2741367C1 (en) | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial | |
RU2543360C1 (en) | Method of preparing sample for gas-chromatographic identification of pesticides in biomaterial | |
RU2727589C1 (en) | Method of sample preparation for gas chromatographic determination of organochlorine compounds in biomaterial | |
Clegg | Skin penetration by cercariae of the bird schistosome Austrobilharzia terrigalensis: the stimulatory effect of cholesterol | |
McCallum | The measurement of cannabinols in the blood by gas chromatography | |
RU2413225C1 (en) | Method of detecting deltamethrin and lambda-cyhalothrin in biological material | |
RU2763107C1 (en) | Method for obtaining and analysing dry human blood samples | |
Chang et al. | Bioaccumulation of PCDDs and PCDFs in food animals III: A rapid cleanup of biological materials using reverse phase adsorbent columns | |
Thibaud et al. | An international intercalibration for methylmercury in biological tissue | |
TWI664998B (en) | Method for removing inorganic arsenic from Sargassum | |
GLICK et al. | FLAME PHOTOMETRIC DETERMINATION OF POTASSIUM IN MICROGRAM QUANTITIES OF TISSUE AND THE DISTRIBUTION OF POTASSIUM AND LIPID IN THE ADRENAL OF THE MONKEY AND GUINEA PIG (STUDIES IN HISTOCHEMISTRY XXXII) | |
RU2417372C1 (en) | Method of detecting tetraethyl thiuram disulphide in blood | |
RU2322674C1 (en) | Method of determining 2,6-bis[bis(beta-hydroxyethyl)amino]-4,8-di-n-pyperidino-pyrimido(5,4-d)pyrimidine in biological material | |
Khamidov et al. | Physico-chemical properties of calendula flower extract in bitter almond oil elemental composition and microbiological purity | |
RU2806370C1 (en) | Method of simultaneous quantitative determination of persistent organochlorine pesticides in animal hair using gas chromatography-mass spectrometry | |
SU789713A1 (en) | Method of quantitative determination of drotaverin hydrochloride | |
RU2153169C1 (en) | Method of determining complex nitrophenol preparation "nitrafen" in biological material | |
CN113933446B (en) | Method for in-situ rapid detection of 10 pyrethroid pesticide residues and kit thereof | |
RU2532386C2 (en) | Method for preparing haematogenous powder | |
Aremu et al. | Safety evaluation of bioactive sub-fraction of Lawsonia inermis Linn. leaves in male Wistar rats |