RU2741095C2 - Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg - Google Patents
Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg Download PDFInfo
- Publication number
- RU2741095C2 RU2741095C2 RU2018147553A RU2018147553A RU2741095C2 RU 2741095 C2 RU2741095 C2 RU 2741095C2 RU 2018147553 A RU2018147553 A RU 2018147553A RU 2018147553 A RU2018147553 A RU 2018147553A RU 2741095 C2 RU2741095 C2 RU 2741095C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- human
- lymphocytes
- antibodies
- mature
- hybridoma
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P21/00—Preparation of peptides or proteins
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Область техникиTechnology area
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к гибридомной технологии, позволяющей получать немодифицированные полностью человеческие антитела класса IgG. Изобретение может быть использовано в научных организациях и фармацевтических компаниях, занимающихся разработкой препаратов на основе терапевтических антител.The invention relates to the field of biotechnology, in particular to hybridoma technology, which makes it possible to obtain unmodified fully human IgG antibodies. The invention can be used in scientific organizations and pharmaceutical companies involved in the development of drugs based on therapeutic antibodies.
Предшествующий уровень техникиPrior art
Терапевтические моноклональные антитела прочно вошли в клиническую практику, объем мирового рынка препаратов на их основе увеличивается с каждым годом. Опыт использования в клинике химерных, гуманизированных и даже полностью человеческих антител показывает, что при продолжительном введении у значительного числа пациентов развивается иммунный ответ на препарат, что сильно снижает его эффективность. Дело в том, что химерные и гуманизированные антитела содержат белковые последовательности животного происхождения, что делает МкАт «видимыми» для иммунной системы. Полностью человеческие получают либо при помощи технологии фагового дисплея, либо с использованием трансгенных мышей, и в обоих случаях процесс включает в себя стадии мутагенеза для повышения аффинитета антител, так называемое созревание аффинности, что также приводит к появлению «нечеловеческих» последовательностей.Therapeutic monoclonal antibodies have become firmly established in clinical practice, the volume of the world market for drugs based on them is increasing every year. The experience of using chimeric, humanized and even fully human antibodies in the clinic shows that with prolonged administration, a significant number of patients develop an immune response to the drug, which greatly reduces its effectiveness. The point is that chimeric and humanized antibodies contain protein sequences of animal origin, which makes MAb "visible" to the immune system. Fully human are obtained either using phage display technology or using transgenic mice, and in both cases, the process involves mutagenesis steps to increase the affinity of antibodies, the so-called affinity maturation, which also leads to the appearance of "non-human" sequences.
Принципиальное преимущество гибридомной технологии для получения человеческих антител состоит в том, эта технология сохраняет аутентичность последовательностей ДНК антител, полученных от нативных В-лимфоцитов, и не предполагает генетических модификаций, способных привести к появлению антигенных детерминант. Тем не менее, пока еще не зарегистрировано ни одного препарата, антитело для которого было бы получено при помощи гибридомной технологии без дополнительных генетических модификаций. Главной причиной этому является неэффективность гибридизации В-лимфоцитов человека с опухолевым партнером из-за неполного их генетического соответствия, что в итоге приводит к низкому выходу гибридомных клонов и нестабильной антителопродукции.The principal advantage of hybridoma technology for the production of human antibodies is that this technology preserves the authenticity of the DNA sequences of antibodies obtained from native B-lymphocytes, and does not involve genetic modifications that could lead to the appearance of antigenic determinants. However, so far not a single drug has been registered for which the antibody could be obtained using hybridoma technology without additional genetic modifications. The main reason for this is the ineffectiveness of hybridization of human B-lymphocytes with a tumor partner due to their incomplete genetic correspondence, which ultimately leads to a low yield of hybridoma clones and unstable antibody production.
В 80-х годах прошлого столетия было предпринято немало попыток решить проблему при помощи различных приемов. Было замечено, что стабильность антителопродукции значительно повышается, если в качестве опухолевого партнера использовать гетерогибридому человек-мышь. Был получен целый ряд таких гетерогибридом, и во всех случаях использовали линию мышиной миеломы и опухолевую линию человека. Так были получены линии гетерогибридом SPAZ-4 (Ostberg L, Pursch Е. 1983. Human X (mouse X human) hybridomas stably producing human antibodies. Hybridoma 2:361-367.), SHM-D33 (Teng NN, Lam KS, Calvo Riera F, Kaplan HS. 1983. Construction and testing of mouse-human heteromyelomas for human monoclonal antibody production. Proc Natl Acad Sci USA 80:7308-7312), HMMA 2.5 (Posner MR, Elboim H, Santos D. 1987. The construction and use of a human-mouse myeloma analogue suitable for the routine production of hybridomas secreting human monoclonal antibodies. Hybridoma 6:611-625), K6H6/B5 (Carroll WL, Thielemans K, Dilley J, Levy R. 1986. Mouse x human heterohybridomas as fusion partners with human В cell tumors. J Immunol Methods 89:61-72.), SPYMEG (Ogura M, Morishima Y, Ohno R, Kato Y, Hirabayashi N, Nagura H, Saito H. 1985. Establishment of a novel human megakaryoblastic leukemia cell line, MEG-01, with positive Philadelphia chromosome. Blood 66:1384-1392.), B6B11 и MFP-2 (Kalantarov GF, Rudchenko SA, Lobel L, Trakht I. 2002. Development of a fusion partner cell line for efficient production of human monoclonal antibodies from peripheral blood lymphocytes. Hum Antibodies 11:85-96.). Также во всех этих случаях для эффективной гибридизации гетеромиеломы с человеческими лимфоцитами последние трансформировали вирусом Эпштейн-Барр (ВЭБ), что определяло наличие этого вируса в гибридомном продуценте. Контаминация конечного продукта этим онкогенным вирусом может привести к ятрогенному инфицированию и болезням, ассоциированным с ВЭБ, например, инфекционный мононуклеоз и лимфогранулематоз.In the 80s of the last century, many attempts were made to solve the problem using various methods. It was noted that the stability of antibody production is significantly increased if a human-mouse heterohybrid is used as a tumor partner. A number of such heterohybrid lines have been produced, and in all cases a murine myeloma lineage and a human tumor lineage were used. So lines were obtained by heterohybrid SPAZ-4 (Ostberg L, Pursch E. 1983. Human X (mouse X human) hybridomas stably producing human antibodies. Hybridoma 2: 361-367.), SHM-D33 (Teng NN, Lam KS, Calvo Riera F, Kaplan HS. 1983. Construction and testing of mouse-human heteromyelomas for human monoclonal antibody production. Proc Natl Acad Sci USA 80: 7308-7312), HMMA 2.5 (Posner MR, Elboim H, Santos D. 1987. The construction and use of a human-mouse myeloma analogue suitable for the routine production of hybridomas secreting human monoclonal antibodies. Hybridoma 6: 611-625), K6H6 / B5 (Carroll WL, Thielemans K, Dilley J, Levy R. 1986. Mouse x human heterohybridomas as fusion partners with human В cell tumors. J Immunol Methods 89: 61-72.), SPYMEG (Ogura M, Morishima Y, Ohno R, Kato Y, Hirabayashi N, Nagura H, Saito H. 1985. Establishment of a novel human megakaryoblastic leukemia cell line, MEG-01, with positive Philadelphia chromosome. Blood 66: 1384-1392.), B6B11 and MFP-2 (Kalantarov GF, Rudch enko SA, Lobel L, Trakht I. 2002. Development of a fusion partner cell line for efficient production of human monoclonal antibodies from peripheral blood lymphocytes. Hum Antibodies 11: 85-96.). Also, in all these cases, for effective hybridization of heteromyeloma with human lymphocytes, the latter were transformed with the Epstein-Barr virus (EBV), which determined the presence of this virus in the hybridoma producer. Contamination of the final product with this oncogenic virus can lead to iatrogenic infection and EBV-associated diseases, such as infectious mononucleosis and lymphogranulomatosis.
Наиболее близким к заявляемому является способ получения гибридомных моноклональных антител соматической гибридизацией иммунных лимфобластов, получаемых из лимфоидных органов (селезенка, лимфоузлы) и миеломной клеточной линией сходного с лимфобластами генотипа. Генетическое соответствие достигается использованием линейных животных, в противном случае эффективность гибридизации и стабильность антителопродукции гибридом чрезвычайно низки (обзор Microbiol Spectr. 2015 Feb;3(l): AID-0027-2014. Use of Human Hybridoma Technology To Isolate Human Monoclonal Antibodies. Smith SA, Crowe JE Jr.). Такой способ для получения человеческих антител недоступен из-за отсутствия линейности опухолевого партнера и В-лимфоцитов, а также ограниченной доступности человеческих лимфатических органов.Closest to the claimed is a method for producing hybridoma monoclonal antibodies by somatic hybridization of immune lymphoblasts obtained from lymphoid organs (spleen, lymph nodes) and a myeloma cell line of a genotype similar to lymphoblasts. Genetic matching is achieved using linear animals, otherwise the hybridization efficiency and the stability of hybridoma antibody production are extremely low (reviewed by Microbiol Spectr. 2015 Feb; 3 (l): AID-0027-2014. Use of Human Hybridoma Technology To Isolate Human Monoclonal Antibodies. Smith SA , Crowe JE Jr.). Such a method for obtaining human antibodies is not available due to the lack of linearity of the tumor partner and B-lymphocytes, as well as the limited availability of human lymphatic organs.
Раскрытие изобретенияDisclosure of invention
Технической проблемой, на решение которой направлено настоящее изобретение является разработка способа получения полностью человеческих антител с аутентичными иммуноглобулиновыми последовательностями и без каких-либо генетических модификаций.The technical problem to be solved by the present invention is the development of a method for producing fully human antibodies with authentic immunoglobulin sequences and without any genetic modifications.
Техническим результатом являются полученные без участия человеческих опухолевых линий и человеческих вирусов гибридомные линии, стабильно продуцирующие человеческие антитела класса IgG желаемой специфичности.The technical result is obtained without the participation of human tumor lines and human viruses hybridoma lines, stably producing human IgG antibodies of the desired specificity.
Техническая проблема решается способом получения стабильного продуцента человеческого антитела класса IgG, представляющего собой гибридому (триому): мышиная миелома - человеческий лимфоцит - человеческий лимфоцит, при этом продуцент получают соматической гибридизацией гетерогибридомы человек-мышь и лимфобластов человека, полученных из зрелых В-лимфоцитов человека, с последующим отбором и наработкой гибридомных клонов, секретирующих иммуноглобулины человека класса IgG требуемой специфичности, выделение полученных антител. В частности, гетерогибридому человек-мышь получают методом соматической гибридизации мышиной линии P3/NSI/1-Ag4-1 [NS-1] (АТСС® ТГВ-18™) и В-лимфоцитов периферической крови человека при помощи ПЭГ4000. В-лимфоциты из периферической крови человека выделяют любым известным из уровня техники способом, например при помощи коммерческого набора RosetteSep Human В cell Enrichment Cocktail (StemCell, США), затем выделенные В-лимфоциты культивируют в присутствии ИЛ2, ИЛ4, ИЛ6, ИЛ10, митогена poke weed (Phytolacca americana). Гибриды (гетерогибридомы) отбирают на селективной среде с ГАТ (гуанин-аминоптерин-тимидин) и тестируют на присутствие в культуральной жидкости человеческих антител класса IgG. Гетерогибридомы культивируют, контролируя продукцию антител любым подходящим для этого методом, в частности методом иммуноферментного анализа. Клон гетергибридомы, дольше остальных сохранявший продукцию антител, нарабатывают в присутствии 8-азагуанина. 8-азагуанин добавляют в соответствии с рекомендациями производителя для восстановления чувствительности ГАТ (гуанин-аминоптерин-тимидин).The technical problem is solved by a method of obtaining a stable producer of a human IgG antibody, which is a hybridoma (trioma): mouse myeloma - human lymphocyte - human lymphocyte, while the producer is obtained by somatic hybridization of human-mouse heterohybridoma and human lymphoblasts obtained from mature human B-lymphocytes, with the subsequent selection and production of hybridoma clones secreting human immunoglobulins of the IgG class of the required specificity, the isolation of the obtained antibodies. In particular, a human-mouse heterohybrid is obtained by somatic hybridization of the mouse line P3 / NSI / 1-Ag4-1 [NS-1] (ATCC® THV-18 ™) and human peripheral blood B-lymphocytes using PEG4000. B-lymphocytes from human peripheral blood are isolated by any method known in the art, for example, using the commercial RosetteSep Human B cell Enrichment Cocktail (StemCell, USA), then the isolated B-lymphocytes are cultured in the presence of IL2, IL4, IL6, IL10, poke mitogen weed (Phytolacca americana). Hybrids (heterohybridomas) are selected on a selective medium with GAT (guanine-aminopterin-thymidine) and tested for the presence of human IgG antibodies in the culture fluid. Heterohybridomas are cultured by monitoring the production of antibodies by any suitable method, in particular, by enzyme immunoassay. The heterhybridoma clone, which retained the production of antibodies longer than the others, is produced in the presence of 8-azaguanine. 8-azaguanine is added according to the manufacturer's recommendations to restore GAT (guanine-aminopterin-thymidine) sensitivity.
Для получения зрелых дендритных клеток человека из периферической крови человека выделяют моноциты любым известным из уровня техники способом, например, при помощи коммерческого набора RosetteSep Human Monocyte Enrichment Cocktail (StemCell, США). Моноциты культивируют в присутствии ГМКСФ и ИЛ4, при этом моноциты превращаются в незрелые дендритные клетки. К этим клеткам добавляют антиген (иммуноген), к которому желают получить антитело, например, гликопротеин Ж вируса бешенства либо антирабическую вакцину Рабипур. Культивируют в течение времени, необходимого для созревания дендритных клеток под действием антигена, как правило в течение 1 суток. За это время незрелые дендритные клетки нагружаются антигеном и превращаются в зрелые дендритные клетки.To obtain mature human dendritic cells from human peripheral blood, monocytes are isolated by any method known in the art, for example, using the commercial RosetteSep Human Monocyte Enrichment Cocktail kit (StemCell, USA). Monocytes are cultured in the presence of GMCSF and IL4, while monocytes are converted into immature dendritic cells. To these cells is added the antigen (immunogen) to which the antibody is desired, for example, the glycoprotein G of the rabies virus or the rabies vaccine Rabipur. It is cultivated for the time required for maturation of dendritic cells under the action of antigen, usually within 1 day. During this time, immature dendritic cells are loaded with antigen and turn into mature dendritic cells.
Для получения зрелых В-лимфоцитов человека требуются стимулированные CD4+ Т-лимфоциты. CD4+ Т-лимфоциты выделяют из периферической крови человека любым известным из уровня техники способом, например, при помощи коммерческого набора RosetteSep Human CD4+ Т cell Enrichment Cocktail (StemCell, США). Выделенные CD4+ T-лимфоциты стимулируют при помощи дендритных клеток, нагруженных антигеном. Культивируют в течение времени необходимого для стимуляции CD4+ Т-лимфоцитов дендритными клетками, как правило в течение 4 часов. В-лимфоциты выделяют из периферической крови человека любым подходящим для этого способом, например, при помощи коммерческого набора RosetteSep Human В cell Enrichment Cocktail (StemCell, США). Добавляют антиген, культивируют в течение времени необходимого для первичной стимуляции В-лимфоцитов, ориентировочно в течение 8 часов. К В-лимфоцитам добавляют стимулированные CD4+ Т-лимфоциты, ИЛ2, ИЛ4, ИЛ6, ИЛ10 и культивируют до созревания или в течение времени необходимого для полного созревания В-лимфоцитов, ориентировочно 4-5 суток). К полученным зрелым В-лимфоцитам, добавляют митоген и культивируют в течение времени необходимого для превращения зрелых В-лимфоцитов в лимфобласты (прохождения бласттрансформации, примерно 3 суток).Stimulated CD4 + T lymphocytes are required to produce mature human B lymphocytes. CD4 + T-lymphocytes are isolated from human peripheral blood by any method known in the art, for example, using the commercial RosetteSep Human CD4 + T cell Enrichment Cocktail kit (StemCell, USA). Selected CD4 + T-lymphocytes are stimulated with antigen-loaded dendritic cells. It is cultured for the time necessary to stimulate CD4 + T-lymphocytes with dendritic cells, usually for 4 hours. B-lymphocytes are isolated from human peripheral blood by any suitable method, for example, using the commercial RosetteSep Human B cell Enrichment Cocktail (StemCell, USA). The antigen is added, cultivated for the time required for the primary stimulation of B-lymphocytes, approximately for 8 hours. Stimulated CD4 + T-lymphocytes, IL2, IL4, IL6, IL10 are added to B-lymphocytes and cultured until maturation or for the time required for full maturation of B-lymphocytes, approximately 4-5 days). To the obtained mature B-lymphocytes, a mitogen is added and cultured for the time necessary for the transformation of mature B-lymphocytes into lymphoblasts (blast transformation, about 3 days).
Для получения гибридомных клонов полученные лимфобласты подвергают соматической гибридизации с ГАТ-чувствительной гетерогибридомой при помощи ПЭГ4000. Высевают в культуральные 96-луночные планшеты в среде с ГАТ. Через 7-10 дней оценивают количество гибридомных клонов и эффективность гибридизации (отношение выросших клонов к исходному количеству В-лимфоцитов). После гибридизации производят тестирование супернатантов (культуральных жидкостей) выросших гибридомных клонов на содержание в них антител требуемой специфичности. Тестирование может быть проведено методом ИФА или другим подходящим для этого способом. Клоны с наибольшей активностью отбирают для дальнейшей работы (клонирования). Клонирование проводят с целью получения однородной популяции гибридомных клеток, то есть из единственной клетки получают клеточную линию. Клонирование проводят методом предельных разведений или другим подходящим для этого методом. Нарабатывают линии гибридомных клонов, имеющие устойчивую продукцию антител. После каждого пассажа оценивают содержание антител в культуральных жидкостях. Производят криоконсервирование клеточных гибридомных линий.To obtain hybridoma clones, the resulting lymphoblasts are subjected to somatic hybridization with a HAT-sensitive heterohybridoma using PEG4000. Seeded in culture 96-well plates in medium with HAT. After 7-10 days, the number of hybridoma clones and the hybridization efficiency (the ratio of grown clones to the initial number of B-lymphocytes) are assessed. After hybridization, the supernatants (culture liquids) of the grown hybridoma clones are tested for the content of antibodies of the required specificity. Testing can be performed by ELISA or other suitable method. The clones with the highest activity are selected for further work (cloning). Cloning is carried out in order to obtain a homogeneous population of hybridoma cells, that is, a cell line is obtained from a single cell. Cloning is carried out by the limiting dilution method or other suitable method. Hybridoma clone lines with stable antibody production are being developed. After each passage, the content of antibodies in the culture liquids is assessed. Cryopreservation of hybridoma cell lines is performed.
Выделение антител из культуральных жидкостей гибридом. Клеточную суспензию центрифугируют для осаждения клеток и клеточных фрагментов. Супернатант фильтруют, полученные антитела выделяют аффинной хроматографией на белок Ж-сефарозе или другим подходящим для этого способом. Раствор антител диализуют против фосфатного буфера, рН 7,2-7,5, стерилизуют фильтрованием через бактериальный фильтр с размером пор 0,22 мкм, либо добавляют консервант, либо замораживают.Isolation of antibodies from hybridoma culture liquids. The cell suspension is centrifuged to pellet the cells and cell fragments. The supernatant is filtered, the obtained antibodies are isolated by affinity chromatography for protein G-Sepharose or by another suitable method. The antibody solution is dialyzed against a phosphate buffer, pH 7.2-7.5, sterilized by filtration through a bacterial filter with a pore size of 0.22 μm, or a preservative is added or frozen.
Полученные антитела тестируют по следующим параметрам:The resulting antibodies are tested according to the following parameters:
концентрация белка;protein concentration;
относительное содержание в образце;the relative content in the sample;
связывание с антигеном, определяют соответствующие константы;binding to antigen, determine the corresponding constants;
биологическая активность.biological activity.
Краткое описание чертежейBrief Description of Drawings
Изобретение поясняется следующими чертежами.The invention is illustrated by the following drawings.
На фиг. 1 представлены результаты электрофореза 12% SDS-PAGE образцов антител в восстанавливающих условиях.FIG. 1 shows the results of electrophoresis of 12% SDS-PAGE of antibody samples under reducing conditions.
Осуществление изобретенияImplementation of the invention
Ниже представлено более детальное описание заявляемого способа, которое не ограничивает объем притязаний заявляемого изобретения, а демонстрирует возможность осуществления изобретения с достижением заявляемого технического результата.Below is a more detailed description of the proposed method, which does not limit the scope of the claimed invention, but demonstrates the possibility of implementing the invention with the achievement of the claimed technical result.
Для реализации заявляемого способа были использованы:To implement the proposed method were used:
1. гетерогибридома (триома) человек мышь, что существенно повысило эффективность гибридизации и стабильность получаемых гибридом. Данная гетерогибридома была получена методом гибридомной технологии путем соматической гибридизации коммерчески доступной ГАТ (гуанин-аминоптерин-тимидин) чувствительной мышиной линии P3/NSI/1-Ag4-1 [NS-1] (АТСС® TIB-18™) и В-лимфоцитов периферической крови человека, предварительно стимулированных in vitro при помощи цитокинов ИЛ-2, ИЛ-4 и ИЛ-6, митогена и иммуногена. Подобный метод описан в работе [Усовершенствованная технология получения моноклональных антител для определения трансфузионно опасных антигенов эритроцитов. Хлябич Г.Н., Дубинкин И.В., Донсков С.И., Суханов Ю.С., Персанова Л.В. Вестник службы крови России. 2010. №1. С. 5-9; KOHLER G; MILSTEIN С: "Continuous cultures of fused cells secreting antibody of pre-defined specificity", NATURE, vol. 256, 1975, pages 495 - 7].1. heterohybridoma (trioma) human mouse, which significantly increased the efficiency of hybridization and the stability of the resulting hybridomas. This heterohybridoma was obtained by the method of hybridoma technology by somatic hybridization of the commercially available GAT (guanine-aminopterin-thymidine) sensitive mouse line P3 / NSI / 1-Ag4-1 [NS-1] (ATCC® TIB-18 ™) and peripheral B-lymphocytes human blood, pre-stimulated in vitro with cytokines IL-2, IL-4 and IL-6, mitogen and immunogen. A similar method is described in the work [Improved technology for obtaining monoclonal antibodies for the determination of transfusion-hazardous antigens of erythrocytes. Khlyabich G.N., Dubinkin I.V., Donskov S.I., Sukhanov Yu.S., Persanova L.V. Bulletin of the blood service of Russia. 2010. No. 1. S. 5-9; KOHLER G; MILSTEIN C: "Continuous cultures of fused cells secreting antibody of pre-defined specificity", NATURE, vol. 256, 1975, pages 495-7].
На селективной среде с ГАТ был отобран гибридомный клон с наибольшей продолжительностью продукции человеческого IgG1 (Hybrid Hybridomics. 2004 Dec; 23(6):362-7. Sensitive detection of human IgG in ELISA using a monoclonal anti-IgG-peroxidase conjugate. Chevrier MC, Lemieux R.). После потери антителопродукции гетерогибридому культивировали в присутствии 8-азагуанина (Sigma, США) для восстановления чувствительности к ГАТ. Через 2 месяца культивирования с 8-азагуанином чувствительность гетерогибридомы к ГАТ была полностью восстановлена. Теоретически таким способом может быть получена гетерогибридома мышиной миеломы NS1 с В-лимфоцитом любой видовой принадлежности.On selective medium with HAT, a hybridoma clone with the longest duration of human IgG1 production was selected (Hybrid Hybridomics. 2004 Dec; 23 (6): 362-7. Sensitive detection of human IgG in ELISA using a monoclonal anti-IgG-peroxidase conjugate. Chevrier MC , Lemieux R.). After loss of antibody production, the heterohybridoma was cultured in the presence of 8-azaguanine (Sigma, United States) to restore sensitivity to HAT. After 2 months of cultivation with 8-azaguanine, the sensitivity of the heterohybridoma to HAT was completely restored. Theoretically, this method can be used to obtain heterohybridoma of mouse NS1 myeloma with B-lymphocyte of any species.
2. мононуклеарные клетки периферической крови человека. Для эффективной гибридизации требуются лимфобласты, которых обычно в периферической крови практически нет. Лимфобласты, специфичные к желаемому антигену, были получены в 2 этапа: получение зрелых В-лимфоцитов и их бласттрансформация.2. human peripheral blood mononuclear cells. For effective hybridization, lymphoblasts are required, which are usually practically absent in the peripheral blood. Lymphoblasts specific to the desired antigen were obtained in 2 stages: obtaining mature B-lymphocytes and their blast transformation.
Зрелые В-лимфоциты получали следующим образом: из цельной крови человека выделяли субпопуляцию моноцитов при помощи коммерческого набора и получали из них незрелые дендритные клетки культивированием в присутствии гранулоцит-макрофаг-колониестимулирующего фактора (ГМКСФ) и ИЛ4 (Патент WO 2011095592 А1 In vitro process for the preparation of antibodies of the igg type). После стимуляции антигеном незрелые дендритные клетки превращались в зрелые и могли участвовать в стимуляции В-лимфоцитов в качестве антиген-презентирующих клеток. Затем из цельной крови того же донора при помощи коммерческого набора получали CD4+ Т-лимфоциты, их инкубировали с зрелыми дендритными клетками для получения стимулированных Т-лимфоцитов. В-лимфоциты также выделяли из цельной крови аутологичного донора и стимулировали добавлением антигена (Патент WO 2011095592 А1). Для окончательного созревания В-лимфоциты культивировали в присутствии зрелых дендритных клеток, стимулированных CD4+ Т-лимфоцитов и цитокинов ИЛ2, ИЛ4, ИЛ6 и ИЛ10 в течение 5 суток. При этом наблюдали клеточную пролиферацию и формирование клеточных синапсов.Mature B-lymphocytes were obtained as follows: a subpopulation of monocytes was isolated from human whole blood using a commercial kit, and immature dendritic cells were obtained from them by cultivation in the presence of granulocyte-macrophage-colony-stimulating factor (GMCSF) and IL4 (Patent WO 2011095592 A1 In vitro process for the preparation of antibodies of the igg type). After stimulation with antigen, immature dendritic cells turned into mature ones and could participate in the stimulation of B-lymphocytes as antigen-presenting cells. Then, CD4 + T-lymphocytes were obtained from the whole blood of the same donor using a commercial kit, and they were incubated with mature dendritic cells to obtain stimulated T-lymphocytes. B-lymphocytes were also isolated from the whole blood of an autologous donor and stimulated by the addition of antigen (Patent WO 2011095592 A1). For final maturation, B-lymphocytes were cultured in the presence of mature dendritic cells stimulated by CD4 + T-lymphocytes and cytokines IL2, IL4, IL6, and IL10 for 5 days. At the same time, cell proliferation and the formation of cell synapses were observed.
Зрелые В-клетки непригодны для получения гибридом, поэтому их превращали в лимфобласты при помощи коммерчески доступного митогена лаконоса американского, культивируя их в его присутствии еще 3 суток. Пролиферация в присутствии митогена продолжилась, таким образом из 10 мл донорской крови и без участия онкогенных вирусов получали лимфобласты, количество которых было достаточно для получения гибридом.Mature B cells are unsuitable for obtaining hybridomas; therefore, they were transformed into lymphoblasts using the commercially available Lakonos American mitogen, cultivating them in its presence for another 3 days. Proliferation in the presence of mitogen continued, so lymphoblasts were obtained from 10 ml of donor blood without the participation of oncogenic viruses, the number of which was sufficient to obtain hybridomas.
Гибридизацию проводили по стандартному протоколу с использованием полиэтиленгликоля 4000. Клетки высевали на фидерный слой перитонеальных клеток мыши в полной ростовой среде DMEM с добавлением 8% телячьей фетальной сыворотки и ГАТ. Супернатанты тестировали иммуноферментным анализом, отбирали клоны, секретирующие антитела класса IgG к требуемому антигену, клонировали методом предельных разведений и нарабатывали в культуральных флаконах, контролируя антителопродукцию. Из культуральных жидкостей антитела выделяли аффинной хроматографией на белок Ж-сефарозе, определяли их концентрацию и активность в ИФА. Дополнительно определяли биологическую активность антител.Hybridization was performed according to a standard protocol using polyethylene glycol 4000. The cells were plated onto the feeder layer of mouse peritoneal cells in complete growth medium DMEM supplemented with 8% fetal calf serum and HAT. The supernatants were tested by enzyme immunoassay, clones secreting IgG antibodies to the required antigen were selected, cloned by the limiting dilution method and accumulated in culture flasks, monitoring antibody production. Antibodies were isolated from culture liquids by affinity chromatography for protein G-Sepharose, their concentration and activity were determined in ELISA. Additionally, the biological activity of antibodies was determined.
Заявленным способом можно получать антитела любой видовой принадлежности, например, лошади, собаки, кошки и других млекопитающих. (Но это только теоретически, мы не пробовали). Для этого требуется мышиная миелома и цитокины этой видовой принадлежности, если они видоспецифичны.The claimed method can produce antibodies of any species, for example, horses, dogs, cats and other mammals. (But this is only theoretically, we have not tried it). This requires murine myeloma and the species-specific cytokines, if species-specific.
Для реализации заявляемого способа могут быть использованы любые миеломные линии (Усовершенствованная технология получения моноклональных антител для определения трансфузионно опасных антигенов эритроцитов. Хлябич Г.Н., Дубинкин И.В., Донсков С.И., Суханов Ю.С., Персанова Л.В. Вестник службы крови России. 2010. №1. С. 5-9).To implement the proposed method, any myeloma lines can be used (Improved technology for obtaining monoclonal antibodies to determine transfusion-hazardous antigens of erythrocytes. Khlyabich GN, Dubinkin IV, Donskov SI, Sukhanov Yu.S., Persanova L. V. Bulletin of the blood service of Russia. 2010. No. 1. S. 5-9).
Таким образом, использование гетерогибридомы в качестве опухолевого партнера обеспечивает стабильную антителопродукцию результирующей гибридомы. Разнесение во времени процессов созревания В-лимфоцитов in vitro и превращение их в лимфобласты позволило сначала получить полноценные зрелые В-лимфоциты, а потом превратить их в пригодные для гибридизации лимфобласты, что привело к получению множества первичных IgG-продуцирующих гибридомных клонов.Thus, the use of a heterohybridoma as a tumor partner ensures stable antibody production of the resulting hybridoma. The time separation of the processes of maturation of B-lymphocytes in vitro and their transformation into lymphoblasts made it possible to first obtain full-fledged mature B-lymphocytes, and then turn them into lymphoblasts suitable for hybridization, which led to the production of many primary IgG-producing hybridoma clones.
Последующие примеры приведены для целей объяснения и не ограничивают каким-либо образом рамки настоящего изобретения.The following examples are provided for purposes of explanation and do not limit the scope of the present invention in any way.
Пример 1. Получение гибридомы, стабильно продуцирующей человеческое моноклональное антитело против гликопротеина G вируса бешенства.Example 1. Obtaining a hybridoma stably producing a human monoclonal antibody against rabies virus glycoprotein G.
Процедуру in vitro стимуляции В-лимфоцитов проводили следующим образом: ранее выделенные из крови моноциты (300 тысяч клеток) размораживали, сеяли в лунки 6-луночного культурального планшета в присутствии 800 МЕ/мл ГМКСФ и 500 МЕ/мл ИЛ4, культивировали в течение 5 суток в безбелковой среде для дендритных клеток CellGro DC производства CellGenix GMP, Германия. В результате культивирования моноциты приобрели морфологию незрелых дендритных клеток. Затем добавили вакцину Рабипур до конечного разведения 1:200 и культивировали еще в течение 24 часов. К концу срока культивирования клетки приобрели морфологию зрелых дендритных клеток. Пролиферации или существенной гибели клеток при этом не наблюдали, соответственно, было получено около 300 тысяч зрелых дендритных клеток, нагруженных антигенами вируса бешенства.The procedure for in vitro stimulation of B-lymphocytes was carried out as follows: previously isolated from blood monocytes (300 thousand cells) were thawed, seeded in the wells of a 6-well culture plate in the presence of 800 IU / ml GMKSF and 500 IU / ml IL4, cultured for 5 days in a protein-free medium for dendritic cells CellGro DC manufactured by CellGenix GMP, Germany. As a result of culturing, monocytes acquired the morphology of immature dendritic cells. Then added Rabipur vaccine to a final dilution of 1: 200 and cultured for another 24 hours. By the end of the cultivation period, the cells acquired the morphology of mature dendritic cells. In this case, no proliferation or significant cell death was observed; accordingly, about 300 thousand mature dendritic cells loaded with antigens of the rabies virus were obtained.
Из 10 мл крови аутологичного донора выделили В-лимфоциты и из 5 мл крови CD4+ Т-лимфоциты, для выделения использовали наборы для выделения CD4+ Т-лимфоцитов, В-лимфоцитов производства RosetteSep (STEMCELL TECHNOLOGIES INC, США). В результате было получено 2 млн CD4+ Т-лимфоцитов и 1,8 млн В-лимфоцитов. Выделенные В-лимфоциты культивировали в среде CellGro DC в течение 8 часов с антирабической вакциной Рабипур в конечном разведении 1:200. К CD4+ Т-лимфоцитам добавляли зрелые дендритные клетки, снятые с поверхности флакона клеточным скребком, и культивировали в среде CellGro DC в течение 4 часов. Затем стимулированные вирусными частицами В-лимфоциты переносили к стимулированным CD4+ Т-лимфоцитам и добавляли цитокины ИЛ-2 до конечной концентрации 20 ед/мл, ИЛ-4 до конечной концентрации 500 ед/мл, ИЛ-6 до конечной концентрации 1800 ед/мл, ИЛ-10 до конечной концентрации 2 ед/мл. Культивировали в течение 5 суток. За это время клетки образовали крупные клеточные синапсы, видимые невооруженным глазом, общее количество клеток возросло в десятки раз, что свидетельствует об их активной пролиферации и клональной экспансии.B-lymphocytes were isolated from 10 ml of blood of an autologous donor and CD4 + T-lymphocytes were isolated from 5 ml of blood; for isolation, sets for the isolation of CD4 + T-lymphocytes, B-lymphocytes manufactured by RosetteSep (STEMCELL TECHNOLOGIES INC, USA) were used. As a result, 2 million CD4 + T-lymphocytes and 1.8 million B-lymphocytes were obtained. The isolated B-lymphocytes were cultured in CellGro DC medium for 8 hours with Rabipur antirabies vaccine at a final dilution of 1: 200. Mature dendritic cells removed from the surface of the flask with a cell scraper were added to the CD4 + T lymphocytes and cultured in CellGro DC medium for 4 hours. Then the B-lymphocytes stimulated with viral particles were transferred to the stimulated CD4 + T-lymphocytes and cytokines IL-2 were added to a final concentration of 20 U / ml, IL-4 to a final concentration of 500 U / ml, IL-6 to a final concentration of 1800 U / ml, IL-10 to a final concentration of 2 U / ml. Cultivated for 5 days. During this time, the cells formed large cellular synapses, visible to the naked eye, the total number of cells increased tenfold, which indicates their active proliferation and clonal expansion.
Для перевода зрелых В-лимфоцитов в стадию лимфобластов по истечении 5 суток добавляли митоген Phytolacca americana и инкубировали еще 3 суток. При этом наблюдали дальнейшую пролиферацию клеток. Морфологию получившихся клеток не изучали, поскольку практически все лимфоциты и лимфобласты находились в составе плотных клеточных синапсов. Половину всех клеток заморозили, другую половину подвергли процедуре гибридизации с гетерогибридомой мышь-человек с использованием полиэтиленгликоля 4000. Гибридизованные клетки высевали на 96-луночные культуральные планшеты в полной ростовой среде DMEM в присутствии гипоксантина-аминоптерина-тимидина (ГАТ) с предварительно посеянными на них перитонеальными клетками мыши. Рост гибридомных клонов регистрировали при помощи микроскопа, всего было получена порядка 1-2 тысяч гибридомных клонов. Считается, что при успешной гибридизации лимфобластов и миеломных клеток от животных одной линии эффективность гибридизации составляет 1:104 клеток, то есть один жизнеспособный гибрид получается из 10000 исходных клеток. Учитывая, что всего было выделено 1,8 млн В-лимфоцитов человека, в процессе in vitro иммунизации их количество увеличилось в 20-30 раз, и была использована половина полученных клеток, то общее количество гибридом должно составить порядка 2-3 тысяч или 20-30 клонов в лунке при посеве на один планшет. Таким образом, эффективность гибридизации оказалась сравнима с эффективностью при получении мышиных гибридом.To transfer mature B-lymphocytes to the stage of lymphoblasts, after 5 days, the mitogen Phytolacca americana was added and incubated for another 3 days. In this case, further cell proliferation was observed. The morphology of the resulting cells was not studied, since almost all lymphocytes and lymphoblasts were located in dense cellular synapses. Half of all cells were frozen, the other half underwent hybridization with mouse-human heterohybridoma using polyethylene glycol 4000. The hybridized cells were plated on 96-well culture plates in complete growth medium DMEM in the presence of hypoxanthine-aminopterin-thymidine (HAT) with pre-seeded peritoneal mouse cells. The growth of hybridoma clones was recorded using a microscope; in total, about 1-2 thousand hybridoma clones were obtained. It is believed that with successful hybridization of lymphoblasts and myeloma cells from animals of the same line, the hybridization efficiency is 1:10 4 cells, that is, one viable hybrid is obtained from 10,000 initial cells. Considering that a total of 1.8 million human B-lymphocytes were isolated, in the process of in vitro immunization their number increased 20-30 times, and half of the cells obtained were used, the total number of hybridomas should be about 2-3 thousand or 20 30 clones per well when plated per plate. Thus, the efficiency of hybridization was found to be comparable to the efficiency in obtaining murine hybridomas.
Пример 2. Тестирование супернатантов гибридом, продуцирующих человеческие антитела против вируса бешенстваExample 2. Testing of hybridoma supernatants producing human antibodies against rabies virus
Для отбора клонов, секретирующих антитела класса IgG против вируса бешенства, использовали следующую схему иммуноферментного анализа: в лунки планшета для ИФА иммобилизовали мышиное антитело против G1 тяжелой цепи иммуноглобулинов человека 2С11, 5 мкг/мл, затем инкубировали с гибридомными супернатантами, разведенными пополам с PBS-AT, после отмывки инкубировали с антирабической вакциной Рабипур, разведенной 1:25 в PBS-AT, затем с мышиным антителом против вируса бешенства 1С5, конъюгированным с пероксидазой. Таким образом, иммобилизованные антитела 2С11 связывают из супернатантов человеческие иммуноглобулины класса IgG1; среди них антитела, специфичные к вирусу бешенства, связывают из раствора вакцины вирусные частицы; с этими частицами в свою очередь связываются мышиные антитела 1С5, несущие на себе ферментную метку. При такой схеме сигнал появляется только в том случае, если в супернатанте содержится антитело против вирусной частицы класса IgG1. Результаты тестирования показали, что в большинстве лунок планшета находились клоны, продуцирующие антитела против вируса бешенства. (Таблица 1).To select clones secreting antibodies of the IgG class against the rabies virus, the following scheme of enzyme-linked immunosorbent assay was used: a mouse antibody against G1 heavy chain of human immunoglobulins 2C11, 5 μg / ml was immobilized into the wells of an ELISA plate, then incubated with hybridoma supernatants diluted in half with PBS- AT, after washing, incubated with rabies vaccine Rabipur, diluted 1:25 in PBS-AT, then with murine antibody against rabies virus 1C5 conjugated with peroxidase. Thus, the immobilized 2C11 antibodies bind human IgG1 immunoglobulins from the supernatants; among them, antibodies specific to the rabies virus bind viral particles from the vaccine solution; these particles, in turn, bind mouse antibodies 1C5, which carry an enzymatic tag. With this scheme, the signal appears only if the supernatant contains an antibody against a viral particle of the IgG1 class. The test results showed that most of the wells of the plate contained clones producing antibodies against rabies virus. (Table 1).
Пример 3. Наработка гибридомных клонов RabD4 и Rab5G6.Example 3. Production of hybridoma clones RabD4 and Rab5G6.
Гибридомные клоны RabD4 и Rab5G6, секретирующие антитела против вируса бешенства, культивировали более 3 месяцев, проведя не менее 10 пассажей. Антителопродукцию каждого пассажа контролировали методом ИФА с использованием серийных 2-кратных разведений супернатантов (Таблицы 2 и 3). Уровень антителопродукции практически не менялся от пассажа к пассажу для клона Rab5G6 и несколько возрастал для клона RabD4.Hybridoma clones RabD4 and Rab5G6, secreting antibodies against rabies virus, were cultured for more than 3 months after at least 10 passages. Antibody production of each passage was monitored by ELISA using serial 2-fold dilutions of supernatants (Tables 2 and 3). The level of antibody production practically did not change from passage to passage for clone Rab5G6 and slightly increased for clone RabD4.
Всего было наработано 350 мл супернатанта клона RabD4 и 450 мл супернатанта клона Rab5G6. Антитела были выделены из супернатантов методом аффинной хроматографии на колонке с белок G - сефарозой (GE Healthcare, №17-0618-05). Выход антител из 1 мл культуральной жидкости составил 0,47 мг для клона RabD4 и 0,57 мг для клона RabG6. Анализ образцов антител проводили методом электрофореза в 12% ПААГ фиг. 1).A total of 350 ml of RabD4 clone supernatant and 450 ml of Rab5G6 clone supernatant were produced. Antibodies were isolated from supernatants by protein G-Sepharose affinity chromatography (GE Healthcare, # 17-0618-05). The yield of antibodies from 1 ml of culture fluid was 0.47 mg for the RabD4 clone and 0.57 mg for the RabG6 clone. Analysis of antibody samples was performed by electrophoresis in 12% PAGE of FIG. one).
Пример 4. Анализ биологической активности гибридомных человеческих антител RabD4 и Rab5G6.Example 4. Analysis of the biological activity of hybridoma human antibodies RabD4 and Rab5G6.
Наибольшую ценность имеют антитела к вирусу бешенства, обладающие вирус-нейтрализующей активностью. Нейтрализующую активность оценивали методом FAVN. Антитела инкубировали с вирусом бешенства штамма CVS11, затем добавляли к клеткам ВНК-21 С13. По включению вирусных частиц в цитоплазму клеток определяли нейтрализующую активность антител в сравнении с международным стандартом ВОЗ International Laboratory For Biological Standards, Copengagen, Denmark: Second International Standard for Rabies Immunoglobulin, и европейским стандартом European Pharmacopoeia Reference Standard Human rabies immunoglobulin BPR, Strasburg. По результатам анализа было установлено, что антитело RabD4 обладает высокой нейтрализующей активностью 305,7 МЕ/мг, тогда как антитело Rab5G6 нейтрализующей активности не проявило.The antibodies to rabies virus, which have virus-neutralizing activity, are of the greatest value. The neutralizing activity was assessed by the FAVN method. Antibodies were incubated with rabies virus strain CVS11, then added to BHK-21 C13 cells. The neutralizing activity of antibodies was determined by the incorporation of viral particles into the cytoplasm of the cells in comparison with the international WHO International Laboratory For Biological Standards, Copengagen, Denmark: Second International Standard for Rabies Immunoglobulin, and the European Pharmacopoeia Reference Standard Human rabies immunoglobulin BPR, Strasburg. According to the results of the analysis, it was found that the RabD4 antibody has a high neutralizing activity of 305.7 IU / mg, while the Rab5G6 antibody did not show any neutralizing activity.
Таким образом, разработан способ получения полностью человеческих антител с аутентичными иммуноглобулиновыми последовательностями и без каких-либо генетических модификаций, т.к. не предполагает манипуляций с генетическим материалом клеток (выделение ДНК или РНК, амплификация, конструирование векторов и т.д.,), а также полученные заявляемым способом гибридомные линии, стабильно продуцируют человеческие антитела класса IgG желаемой специфичности.Thus, a method has been developed for producing fully human antibodies with authentic immunoglobulin sequences and without any genetic modifications, since does not imply manipulations with the genetic material of cells (isolation of DNA or RNA, amplification, construction of vectors, etc.), as well as the hybridoma lines obtained by the claimed method, stably produce human IgG antibodies of the desired specificity.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018147553A RU2741095C2 (en) | 2018-12-29 | 2018-12-29 | Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018147553A RU2741095C2 (en) | 2018-12-29 | 2018-12-29 | Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2018147553A3 RU2018147553A3 (en) | 2020-06-29 |
RU2018147553A RU2018147553A (en) | 2020-06-29 |
RU2741095C2 true RU2741095C2 (en) | 2021-01-22 |
Family
ID=71509320
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2018147553A RU2741095C2 (en) | 2018-12-29 | 2018-12-29 | Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2741095C2 (en) |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4474893A (en) * | 1981-07-01 | 1984-10-02 | The University of Texas System Cancer Center | Recombinant monoclonal antibodies |
US4764465A (en) * | 1984-04-26 | 1988-08-16 | Cetus Corporation | Human monoclonal antibody against group A red blood cells |
US20110262895A1 (en) * | 2008-08-07 | 2011-10-27 | Harding Robert E | Methods for the diagnosis of varicella zoster virus infection |
EP3168232A1 (en) * | 2009-11-13 | 2017-05-17 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Compositions, kits, and methods for the diagnosis, prognosis, monitoring, treatment and modulation of post-transplant lymphoproliferative disorders and hypoxia associated angiogenesis disorders using galectin-1 |
US20180201680A1 (en) * | 2012-08-03 | 2018-07-19 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Single agent anti-pd-l1 and pd-l2 dual binding antibodies and methods of use |
-
2018
- 2018-12-29 RU RU2018147553A patent/RU2741095C2/en active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4474893A (en) * | 1981-07-01 | 1984-10-02 | The University of Texas System Cancer Center | Recombinant monoclonal antibodies |
US4764465A (en) * | 1984-04-26 | 1988-08-16 | Cetus Corporation | Human monoclonal antibody against group A red blood cells |
US20110262895A1 (en) * | 2008-08-07 | 2011-10-27 | Harding Robert E | Methods for the diagnosis of varicella zoster virus infection |
EP3168232A1 (en) * | 2009-11-13 | 2017-05-17 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Compositions, kits, and methods for the diagnosis, prognosis, monitoring, treatment and modulation of post-transplant lymphoproliferative disorders and hypoxia associated angiogenesis disorders using galectin-1 |
US20180201680A1 (en) * | 2012-08-03 | 2018-07-19 | Dana-Farber Cancer Institute, Inc. | Single agent anti-pd-l1 and pd-l2 dual binding antibodies and methods of use |
Non-Patent Citations (4)
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2018147553A3 (en) | 2020-06-29 |
RU2018147553A (en) | 2020-06-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4464465A (en) | Cell-driven viral transfer in eukaryotes | |
Melchers et al. | Lymphocyte Hybridomas: Second Workshop on “Functional Properties of Tumors of T and B Lymphoyctes” | |
US4634664A (en) | Process for the production of human mono-clonal antibodies | |
JPH02227096A (en) | Antibody and preparation thereof | |
CA2323681C (en) | Development of human monoclonal antibodies and uses thereof | |
US5114847A (en) | Process for the production of permanently culturable animal and human cell lines and the use thereof | |
WO1992001043A1 (en) | Hybridoma which produces avian specific immunoglobulin g | |
JPH05503214A (en) | Method for generating factor-dependent human B cell lines | |
US8859278B2 (en) | Fully human hybridoma fusion partner cell lines | |
Dorfman | The optimal technological approach to the development of human hybridomas | |
JP5160412B2 (en) | Fusion partner cell | |
RU2741095C2 (en) | Method of producing cell lines stably producing human monoclonal antibodies of class igg | |
DE3786673T2 (en) | METHOD FOR REMOVING UNWANTED CELLS FROM HUMAN LYMPHOCYTE POPULATIONS, APPLICATION OF THE METHOD FOR PRODUCING MONOCLONAL ANTIBODIES AND A KIT SUITABLE FOR THIS. | |
US4618585A (en) | Hybridoma cell lines producing monoclonal antibodies directed against cervical cancer cells | |
EP0131878A2 (en) | Process for producing human monoclonal antibodies | |
Jessup et al. | Preparation of human–mouse heterohybridomas against an immunising antigen | |
US20130196380A1 (en) | In vitro process for the preparation of antibodies of the igg type | |
Balint et al. | The pharmacology of monoclonal antibodies | |
JP2764101B2 (en) | Parent cell line for producing human hybridomas | |
James | Human monoclonal antibody technology | |
WO1989000607A1 (en) | Preparation of human monoclonal antibodies of selected specificity and isotypes | |
US5776778A (en) | Growth factor preparation of thymocyte cell culture medium its production and use | |
JPH10248577A (en) | Human-originated eternized b-lymphoblast-like cell line | |
RU2092554C1 (en) | Strain of the hybrid cultured animal cell mus musculus l - a producer of monoclonal antibody raised to aujeszky's disease virus, strain uniiev-18b | |
CS276448B6 (en) | Process for preparing permanent fused cells |