RU2735756C1 - Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы - Google Patents

Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы Download PDF

Info

Publication number
RU2735756C1
RU2735756C1 RU2020112359A RU2020112359A RU2735756C1 RU 2735756 C1 RU2735756 C1 RU 2735756C1 RU 2020112359 A RU2020112359 A RU 2020112359A RU 2020112359 A RU2020112359 A RU 2020112359A RU 2735756 C1 RU2735756 C1 RU 2735756C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
manure
sample
batch
samples
water
Prior art date
Application number
RU2020112359A
Other languages
English (en)
Inventor
Олег Борисович Арно
Анатолий Кузьмич Арабский
Владимир Николаевич Башкин
Рауф Валиевич Галиулин
Роза Адхамовна Галиулина
Лариса Анатольевна Соловищук
Оксана Валентиновна Маклюк
Венер Рифкатович Мурзагулов
Александр Иванович Линник
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург"
Priority to RU2020112359A priority Critical patent/RU2735756C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2735756C1 publication Critical patent/RU2735756C1/ru

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
    • G01N21/77—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator
    • G01N21/78—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator producing a change of colour
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/18—Water

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Plasma & Fusion (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области геоэкологии и может быть использовано для идентификации микробного загрязнения водной среды. С этой целью на территории пастбищного скотоводства, по карта-схеме крупного масштаба, М 1:200000 и крупнее, определяют место выпаса скота. Затем с места выпаса скота отбирают усредненный репрезентативный образец навоза, который высушивают (при комнатной температуре) и просеивают (через сито диаметром ячеек 3 мм) для получения сухого образца. Из этого образца берут пробы массой по 1 г в количестве 5 партий по 6 штук в каждой, т.е. всего 30 проб. Первая партия представляет собой сухие пробы навоза и идет под номером №1 (соотношение навоз: вода в ней равно 1:0). Остальные 4 партии сухих проб навоза помещают в центрифужные пробирки на фильтровальную бумагу с размером пор 12-15 мкм (например, марки "Черная лента" по международной классификации). Затем в пробирки добавляют дистиллированную воду без перемешивания с пробой в соотношениях навоз: вода, равных 1:1 для второй партии, 1:2 для третьей партии, 1:3 для четвертой партии и 1:4 для пятой партии. Таким образом, имитируется низкообъемная влажность навоза, характерная в случае выпадения дождя (соотношение навоз: вода в пределах 1:1÷1:2), и высокообъемная влажность навоза, характерная в случае таяния снега (соотношение навоз: вода в пределах 1:3÷1:4). Центрифужные пробирки с пробами вставляют в ротор центрифуги и тут же центрифугируют не менее 5 минут для получения из них водных проб навоза соответственно под номерами №2, №3, №4 и №5. После этого каждую пробу первой партии и каждую водную пробу остальных партий помещают в индивидуальные модифицированные колбы Эрленмейера с добавлением необходимых реагентов и инкубируют их в термостате при +30°С в течение одних суток. По завершению инкубирования анализируют активность фермента дегидрогеназы в пробах №1, №2, №3, №4 и №5 спектрофотометрическим методом с необходимой математической обработкой полученных результатов для каждой партии проб. Достигается повышение оперативности и упрощение идентификации. 2 ил., 1 табл.

Description

Изобретение относится к области геоэкологии и может быть использовано для идентификации микробного загрязнения водной среды, например, из навоза скота, на территориях пастбищного скотоводства посредством анализа активности фермента дегидрогеназы, продуцируемого различными микробами. При этом учитывается то, что в результате просачивания через навоз дождевых и/или талых вод и образования поверхностных и внутрипочвенных стоков, может происходить микробное загрязнение поверхностных и подземных водоисточников, используемых местным населением для питьевых целей, что согласно санитарно-гигиеническим нормативам не допускается.
Заявляемый способ повышает оперативность, точность и качество оценки эпидемиологической ситуации, которая может быть вызвана патогенными микробами на территориях пастбищного скотоводства, первичным очагом которых, как правило, является навоз больных животных. Соответственно, способ позволяет обосновать принятие профилактических и/или ремедиационных мер для исключения инфицирования местного населения через загрязненные поверхностные и подземные водоисточники, используемые для питьевых целей.
Особую значимость заявляемый способ может приобрести для контроля ситуации, связанной с эпидемией сибирской язвы, возбудителем которой является спорообразующая бактерия Bacillus anthracis. Первичными очагами инфекции, как правило, является навоз больных оленей на пастбищах, а вторичные очаги данной бактерии создаются в результате просачивания через навоз дождевых и талых вод, которые образуют поверхностные и внутрипочвенные стоки. Пример - вспышка эпидемии сибирской язвы летом 2016 г. в Ямало-Ненецком автономном округе, на полуострове Ямал с развитым пастбищным оленеводством. В результате эпидемии заболело 2650 оленей и 36 человек с одним летальным исходом [см. журнал «Проблемы особо опасных инфекций». 2016. Вып. 4. С. 42-46; «Журнал инфектологии». 2016. Том 8. №3. С. 5-27.]. Одним из факторов передачи Bacillus anthracis человеку могло быть употребление сырой и/или недостаточно термически обработанной воды из озер - мест водопоев оленей, среди которых могли быть и больные животные.
Известен способ определения микробного загрязнения водной среды (Патент РФ на изобретение №2286565), включающий отбор проб воды, ее пропускание через бактерицидный фильтр, доведение рН пробы до значений 5-6 и определение микробного загрязнения водной среды по концентрации йода, выделившегося после взаимодействия пробы с бактерицидом формулы R4NIn((n-1)/2)H2O.
Существенными недостатками известного способа являются:
- использование устройства сложной конструкции для определения микробного загрязнения водной среды, включающего источник оптического излучения, кювету для исследуемой среды, фотоприемник, бактерицидный фильтр и реакционную камеру;
- отсутствие единообразия в определении микробного загрязнения водной среды, т.е. определение концентрации выделившегося из бактерицида йода, пропорциональной микробному заражению воды;
- использование недостаточно корректного, весового метода, требующего предварительного выделения и осаждения йода.
Известен способ определения микробного загрязнения водной среды (Патент РФ на изобретение №2476876), включающий измерение на анализаторе жидких проб - интенсивности люминолозависимой хемилюминесценции натуральной пробы (J0) и фильтратов натуральной пробы после ее тонкой фильтрации (J1) и ультрафильтрации (J2) через прозрачные аналитические трековые мембраны, определение процентного содержания непосредственно участвующих в образовании светосуммы реакции основных компонентов водной среды в виде микропланктона с микровзвесями (А), бактерий (В) и растворов органических и неорганических соединений (С) исходя из замеренных значений световыхода люминесцентной реакции (JA, JB, JC) по соответствующим формулам.
Существенными недостатками известного способа являются:
- использование сложного прибора в виде хемилюминесцентного анализатора (люминометра) жидких проб и вакуумной фильтрационной установки с прозрачными аналитическими трековыми мембранами и вакуумным насосом;
- необходимость фильтрационной подготовки анализируемых проб воды;
- сложность формирования аналитических данных для расчета результатов определения микробного загрязнения водной среды.
Наиболее близким к заявленному техническому решению является способ определения микробного загрязнения воды (Патент РФ на изобретение №2576030), включающий использование проб с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий. При освещении проб ультрафиолетовым излучением определяют интенсивность флуоресценции Iфл каждой пробы, а также интенсивность флуоресценции Iфлк контрольной пробы, содержащей дистиллированную воду при длине волны λфл=415±10 нм. Затем строят калибровочную кривую зависимости между КОЕ и значением Iфл-Iфлк в каждой пробе, определяют флуоресценцию Iфла анализируемой пробы и значение Iфла-Iфлк, и, наконец, по калибровочной кривой вычисляют соответствующую Iфла-Iфлк концентрацию КОЕап в анализируемой пробе. В случае превышения КОЕап допустимого значения более чем на заданную величину микробную загрязненность оценивают, как опасную.
Существенными недостатками известного способа являются:
- обязательное использование проб с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерии кишечной палочки Escherichia coli, культивирование которой на питательной среде (агаре) занимает продолжительное время - несколько суток;
- сложность подготовки аналитических данных к расчетам микробного загрязнения воды;
- необходимость дополнительного сравнительного анализа тех же проб воды с использованием сложной технологии, представленной в другом способы (Патент РФ на изобретение №2078138).
Целью предлагаемого изобретения является решение технической задачи оперативной (в течение 1 суток) и доступной для региональных лабораторий идентификации на территории пастбищного скотоводства микробного загрязнения водной среды, например, из навоза скота, посредством анализа активности фермента дегидрогеназы в сухих пробах навоза и водных пробах из навоза, получаемых методом центрифугирования.
Данная техническая задача решается благодаря тому, что на территории пастбищного скотоводства, по карта-схеме крупного масштаба, М 1:200000 и крупнее, определяют место выпаса скота. Затем с места выпаса скота отбирают усредненный репрезентативный образец навоза, который высушивают (при комнатной температуре) и просеивают (через сито диаметром ячеек 3 мм) для получения сухого образца. Из этого образца берут пробы массой по 1 г в количестве 5 партий по 6 штук в каждой, т.е. всего 30 проб. Первая партия представляет собой сухие пробы навоза и идет под номером №1 (соотношение навоз: вода в ней равно 1:0). Остальные 4 партии сухих проб навоза помещают в центрифужные пробирки на фильтровальную бумагу с размером пор 12-15 мкм (например, марки "Черная лента" по международной классификации). Затем в пробирки добавляют дистиллированную воду без перемешивания с пробой в соотношениях навоз: вода, равных 1:1 для второй партии, 1:2 для третьей партии, 1:3 для четвертой партии и 1:4 для пятой партии. Таким образом имитируется низкообъемная влажность навоза, характерная в случае выпадения дождя (соотношение навоз: вода в пределах 1:1÷1:2), и высокообъемная влажность навоза, характерная в случае таяния снега (соотношение навоз: вода в пределах 1:3÷1:4). Центрифужные пробирки с пробами вставляют в ротор центрифуги и тут же центрифугируют не менее 5 минут для получения из них водных проб навоза соответственно под номерами №2, №3, №4 и №5. После этого каждую пробу первой партии и каждую водную пробу остальных партий помещают в индивидуальные модифицированные колбы Эрленмейера с добавлением необходимых реагентов и инкубируют их в термостате при +30°С в течение одних суток. По завершению инкубирования анализируют активность фермента дегидрогеназы в пробах №1, №2, №3, №4 и №5 спектрофотометрическим методом с необходимой математической обработкой полученных результатов для каждой партии проб.
На фиг. 1 приведена схема дюралюминиевой центрифужной пробирки (в разрезе) для получения водных проб из навоза и в ней использованы следующие обозначения:
1 - цилиндр;
2 - проба навоза;
3 - кружок фильтровальной бумаги;
4 - дюралюминиевое ситечко;
5 - внешняя резьба;
6 - внутренняя резьба;
7 - накопитель;
8 - водная проба навоза.
На фиг. 2 приведено оборудование и устройство для анализа активности фермента дегидрогеназы сухой пробы навоза и водных проб из навоза с использованием следующих обозначений:
9 - термостат;
10 - модифицированная колба Эрленмейера;
11 - реакционная смесь;
12 - коленчатый отросток колбы Эрленмейера с насыщенным щелочным раствором пирогаллола.
Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы реализуют следующим образом.
На территории пастбищного скотоводства, по карта-схеме крупного масштаба М 1:200000 или крупнее, определяют место выпаса скота и намечают точки, в которых будут отобраны образцы навоза. Определение этих точек и их число производится с учетом того, чтобы в конечном итоге был получен усредненный репрезентативный образец навоза. Отобранные образцы навоза высушивают (при комнатной температуре), просеивают (через сито диаметром ячеек 3 мм) и тщательно перемешивают для получения сухого образца. Из этого, полученного таким образом образца, берут пробы массой по 1 г в количестве 5 партий по 6 штук в каждой, т.е. всего 30 проб.
Первая партия представляет собой сухие пробы навоза и идет под номером №1 (соотношение навоз: вода в ней равно 1:0).
Для получения водных проб из навоза используют метод центрифугирования с применением, например, центрифуги марки К-24 с холодильным устройством. Для этого остальные 4 партии сухих проб навоза, т.е. всего 24 штуки проб, помещают в цилиндры (1) отдельных дюралюминиевых центрифужных пробирок на кружки фильтровальной бумаги (3) с размером пор 12-15 мкм (например, марки "Черная лента" по международной классификации). Эти кружки фильтровальной бумаги предварительно укладываются на дюралюминиевые ситечки (4), лежащие на выступах цилиндров, фиг. 1. Затем в пробы в центрифужных пробирках добавляют дистиллированную воду без перемешивания в соотношениях навоз: вода, равных 1:1 для второй партии, 1:2 для третьей партии, 1:3 для четвертой партии и 1:4 для пятой партии. Таким образом имитируется низкообъемная влажность навоза, характерная в случае выпадения дождя (соотношение навоз: вода в пределах 1:1÷1:2), и высокообъемная влажность навоза, характерная в случае таяния снега (соотношение навоз: вода в пределах 1:3÷1:4). Центрифужные пробирки с пробами вставляют в ячейки ротора центрифуги, плотно завинчивают крышку ротора и тут же центрифугируют для получения из них водных проб навоза соответственно под номерами №2, №3, №4 и №5. Процедуру центрифугирования производят при 10000 оборотах в минуту не менее 5 минут при температуре около 12°С для получения водных проб навоза (8) в их накопителе (7), т.е. отвинчивающейся нижней части центрифужной пробирки. В накопителе (7), благодаря внешней (5) и внутренней (6) резьбе центрифужной пробирки происходит, без каких-либо потерь, сбор отдельных водных проб навоза.
Затем в сухой пробе навоза №1 и водных пробах из навоза №2, №3, №4 и №5 анализируют активность фермента дегидрогеназы спектрофотометрическим методом, фиг. 2. Для этого каждую пробу первой партии и каждую водную пробу остальных партий помещают в индивидуальные модифицированные колбы Эрленмейера (10). В эти колбы последовательно добавляют по 1 мл 1%-х водных растворов глюкозы (С6Н12О6) и 2,3,5-трифенилтетразолийхлорида (C19H15N4Cl), и всю эту реакционную смесь (11) перемешивают. Далее в коленчатый отросток колбы Эрленмейера (12) с помощью шприца вводят насыщенный щелочной раствор пирогаллола (С6Н3(ОН)3) в гидроксиде калия (КОН) для создания анаэробных условий. Колбы герметизируют стеклянными шлифованными пробками, дополнительно используя вакуумную смазку, и ставят на инкубирование в термостат (9) при +30°С на одни сутки.
После завершения инкубирования проб в течение 1 суток, производят экстракцию, образующегося в них 2,3,5-трифенилформазана (C19H16N4) с помощью этанола (С2Н5ОН) - 5 раз по 4 мл. Экстракты каждой отдельной пробы объединяют, доводят этанолом до объема 25 мл и измеряют оптическую плотность на спектрофотометре (при длине волны λ=490 им). Затем по заранее подготовленному калибровочному графику для различных количеств C19H16N4 в этаноле (например, 1-30 мкг/л), рассчитывают количество образованного вещества, выражаемое в единицах мкг или мг C19H16N4/(г⋅сут) для сухого навоза. Для водных проб навоза количество образованного вещества пересчитывают на 1 мл и выражают единицах мкг или мг C19H16N4/(мл⋅сут), различающиеся в различных вариантах. По результатам анализа активности фермента дегидрогеназы идентифицируют микробное загрязнение водной среды из навоза скота, происходящее в результате просачивания через навоз дождевых и/или талых вод, которые образуют поверхностные и внутрипочвенные стоки.
Например, были проведены опыты с усредненным репрезентативным образцом навоза, отобранным с места выпаса крупного рогатого скота на территории пастбищного скотоводства в Московской области. Образец прошел операции последующего высушивания, просеивания с перемешиванием. Из него были получены сухие пробы навоза и водные пробы из навоза. После проведения описанных и дополнительных процедур лабораторных анализов было установлено статистически доказанное микробное загрязнение воды, которое определяется посредством анализа активности фермента дегидрогеназы, табл. 1.
Figure 00000001
При этом значения активности фермента дегидрогеназы были подтверждены, результатами анализа количества микробов, продуцирующих данный фермент в различных пробах, проведенного по общепринятой методике [см. Звягинцев Д.Г., Асеева И.В., Бабьева И.П., Мирчинк Т.Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1980. С. 15-20, 34-38]. Из этих, сравнительных исследований и полученных аналитических данных, видно, что проба сухого навоза №1, как первичного очага микробов, характеризуется максимальными значениями активности фермента дегидрогеназы, 667 мкг C19H16N4/(г⋅сут), и количеством микробов, 2,2⋅109 клеток/г, продуцирующих данный фермент. В водных пробах навоза №2, №3, №4 и №5, как вторичного очага микробов, при расширении соотношения навоз: вода в ряду - 1:1, 1:2, 1:3 и 1:4, активность фермента оказалась в прямо пропорциональной зависимости от количества микробов, т.е. чем ниже была активность дегидрогеназы, тем меньшее количество микробов идентифицировалось в водной пробе и наоборот. Следует отметить, что если результаты анализа показывают нулевое значение активности фермента дегидрогеназы, то означает полное отсутствие микробного загрязнения водной среды из навоза.
Способ позволяет оперативно (в течение 1 суток):
- идентифицировать микробное загрязнение водной среды из навоза скота, происходящее в результате просачивания через навоз дождевых и талых вод, которые образуют поверхностные и внутрипочвенные стоки;
- обеспечить высокую точность и качество оценки эпидемиологической ситуации, вызванной патогенными микробами на территориях пастбищного скотоводства, первичным очагом которых может быть навоз больных животных;
- обосновать принятие профилактических или ремедиационных мер, чтобы избежать инфицирования местного населения через загрязненные поверхностные и подземные водоисточники, используемые для питьевых целей.

Claims (1)

  1. Способ идентификации микробного загрязнения водной среды из навоза скота посредством анализа активности фермента дегидрогеназы, отличающийся тем, что на территории пастбищного скотоводства, по карта-схеме крупного масштаба М 1:200000 или крупнее, определяют место выпаса скота, затем с места выпаса скота отбирают усредненный репрезентативный образец навоза, который высушивают и просеивают для получения сухого образца, из которого берут пробы массой по 1 г в количестве 5 партий по 6 штук в каждой, первую партию, под номером №1, оставляют сухой, а остальные пробы навоза помещают в центрифужные пробирки на фильтровальную бумагу с размером пор 12-15 мкм, после чего в пробирки добавляют дистиллированную воду без перемешивания с пробой в соотношениях навоз : вода, равных 1:1 для второй партии, 1:2 для третьей партии, 1:3 для четвертой партии и 1:4 для пятой партии, после чего пробирки помещают в ротор центрифуги и тут же центрифугируют не менее пяти минут для получения из них водных проб из навоза соответственно под номерами партий №2, №3, №4 и №5, после чего каждую пробу первой партии и каждую водную пробу остальных партий помещают в индивидуальные модифицированные колбы Эрленмейера с добавлением необходимых реагентов и инкубируют их в термостате при +30°С в течение одних суток, после чего анализируют активность фермента дегидрогеназы спектрофотометрическим методом в каждой пробе, по которой судят о микробном загрязнении водной среды из навоза скота.
RU2020112359A 2020-03-24 2020-03-24 Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы RU2735756C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020112359A RU2735756C1 (ru) 2020-03-24 2020-03-24 Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020112359A RU2735756C1 (ru) 2020-03-24 2020-03-24 Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2735756C1 true RU2735756C1 (ru) 2020-11-06

Family

ID=73398325

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020112359A RU2735756C1 (ru) 2020-03-24 2020-03-24 Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2735756C1 (ru)

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1255934A1 (ru) * 1984-01-02 1986-09-07 1-Й Ленинградский Ордена Трудового Красного Знамени Медицинский Институт Им.Акад.И.П.Павлова Способ определени активности никотинамидных дегидрогеназ
RU2476598C2 (ru) * 2011-04-27 2013-02-27 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Северный (Арктический) федеральный университет" (С(А)ФУ) Способ количественного определения дегидрогеназной активности микроорганизмов
RU2576030C1 (ru) * 2015-03-04 2016-02-27 Сергей Дмитриевич Иванов Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды
CN106405031A (zh) * 2016-08-23 2017-02-15 河海大学 一种废水中铜离子浓度对微生物活性影响程度的检测方法
RU2617533C1 (ru) * 2016-04-28 2017-04-25 Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" Способ диагностики хронического и аварийного загрязнения почв тяжелыми металлами посредством анализа активности фермента дегидрогеназы

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1255934A1 (ru) * 1984-01-02 1986-09-07 1-Й Ленинградский Ордена Трудового Красного Знамени Медицинский Институт Им.Акад.И.П.Павлова Способ определени активности никотинамидных дегидрогеназ
RU2476598C2 (ru) * 2011-04-27 2013-02-27 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Северный (Арктический) федеральный университет" (С(А)ФУ) Способ количественного определения дегидрогеназной активности микроорганизмов
RU2576030C1 (ru) * 2015-03-04 2016-02-27 Сергей Дмитриевич Иванов Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды
RU2617533C1 (ru) * 2016-04-28 2017-04-25 Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" Способ диагностики хронического и аварийного загрязнения почв тяжелыми металлами посредством анализа активности фермента дегидрогеназы
CN106405031A (zh) * 2016-08-23 2017-02-15 河海大学 一种废水中铜离子浓度对微生物活性影响程度的检测方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ГОСТ Р 56989-2016/ISO/TR 15462:2006 Качество воды. Оценка биоразлагаемости органических соединений в водной среде. Выбор метода оценки. Введен в действие 01.02.2017. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN1055728C (zh) 快速大肠杆菌类检测系统
Manfra et al. Long-term lethal toxicity test with the crustacean Artemia franciscana
CN105651748A (zh) 一种定量分析微塑料在水生生物体内富集分布的方法
JPH06510666A (ja) 液体監視装置
Maal-Bared et al. Campylobacter spp. distribution in biofilms on different surfaces in an agricultural watershed (Elk Creek, British Columbia): using biofilms to monitor for Campylobacter
JPH04504663A (ja) 蛍光水性バイオアッセイ及び方法
US20070224659A1 (en) Harmful Substance Evaluating Method and Harmful Substance Evaluation Kit
RU2735756C1 (ru) Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы
CA1089339A (en) Method of staining micro-organisms
Dinrifo et al. Physico-Chemical properties of rain water collected from some industrial areas of Lagos State Nigeria
CN103789397A (zh) 检测细菌总数的试剂盒和检测方法
WO2010151131A2 (en) Apparatus for detecting viable microorganisms or spores in a sample and use thereof.
Narender et al. Treatment of water with Moringa Oleifera as a coagulant
Korsholm et al. An evaluation of direct microscopical counts and endotoxin measurements as alternatives for total plate counts
RU2314349C2 (ru) Способ оценки экологического состояния агробиоценоза в зоне антропогенного влияния
CN103940789B (zh) 水毒性检测中发光细菌荧光行为的规范和数值解析
RU2369867C1 (ru) Способ определения токсичности водных сред
Barua et al. Physicochemical Study of Livestock Farm Oriented Wastewater as a Source of Surface Water Pollution
Correia et al. Physicochemical, microbiological and parasitological analysis of water for human consumption in a quilombola community in Alagoas
Kumar Physico-Chemical Characterization of Rain Water Collected from Industrial Areas of Hisar, India
Idroos et al. Optimization of a standard method for enumeration of total cell counts of colonial Microcystis aeruginosa in environmental samples collected from Boralasgamuwa Lake, Sri Lanka
RU2083983C1 (ru) Способ оценки суммарной токсичности химических факторов окружающей среды
RU2281495C1 (ru) Способ определения биологической активности (токсичности) компонентов твердых материалов и ее воздействия на особи живых организмов
CN113324963A (zh) 一种基于蚯蚓体腔液的生物传感器及其在检测四环素类抗生素中的应用和检测方法
CN116183594A (zh) 一种可视化定量分析水溶液中银离子的方法