RU2576030C1 - Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды - Google Patents
Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды Download PDFInfo
- Publication number
- RU2576030C1 RU2576030C1 RU2015107670/15A RU2015107670A RU2576030C1 RU 2576030 C1 RU2576030 C1 RU 2576030C1 RU 2015107670/15 A RU2015107670/15 A RU 2015107670/15A RU 2015107670 A RU2015107670 A RU 2015107670A RU 2576030 C1 RU2576030 C1 RU 2576030C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sample
- cfu
- fluorescence
- water
- value
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
Изобретение относится к гигиенической медицине и экологии и может найти применение при оценке санитарного состояния водоемов. Для этого определяют микробиологическую загрязненность воды. Согласно предложенному способу используют пробы с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий. При возбуждении ультрафиолетовым излучением определяют интенсивность флуоресценции Iфл каждой пробы, а также интенсивность флуоресценции Iфлк контрольной пробы, содержащей дистиллированную воду при длине волны λфл=415±10 нм. Затем строят калибровочную кривую зависимости между КОЕ и значением Iфл-Iфлк в каждой пробе, определяют флуоресценцию Iфла анализируемой пробы и значение Iфла-Iфлк, по калибровочной кривой определяют соответствующую Iфла-Iфлк концентрацию КОЕап в анализируемой пробе. В случае превышения КОЕап допустимого значения более чем на заданную величину микробиологическую загрязненность оценивают как опасную. Изобретение обеспечивает точность оценки инфекционной опасности воды, упрощает и сокращает время определения и может быть использовано для мониторинга процесса очистки сточных вод. 2 ил., 2 пр.
Description
Изобретение относится к гигиенической медицине и экологии и может найти применение при оценке санитарного состояния водоемов, их пригодности для использования в качестве источника водозабора, а также для мониторинга процесса очистки сточных вод.
Для характеристики санитарно-гигиенического состояния водоемов первостепенное значение имеет степень их микробиологического загрязнения, а также выявление в них патогенных микроорганизмов и возбудителей паразитарных заболеваний. Это обусловлено тем, что инфекционная диарея является ведущей причиной заболеваемости населения и детской смертности. В связи с этим выявление загрязнения водных объектов микроорганизмами играет важную роль в определении степени экологического неблагополучия региона. Причем такая оценка необходима, в первую очередь, для источников водозабора, а также для контроля процесса очистки сточных вод.
Вместе с тем нередко возникает необходимость в экспресс-оценке санитарно-гигиенического состояния водоема, главным образом, в случае чрезвычайных ситуаций и экологических бедствий. Это требует определения микробиологической загрязненности непосредственно на месте происшествия. Однако нам не известен метод, который позволял бы в полевых условиях в течение нескольких минут дать оценку санитарного состояния водоема.
В настоящее время для определения опасности микробиологической загрязненности воды считается достаточным показать, что исследуемый образец воды содержит определенное количество бактерий, известных как специфические обитатели кишечного тракта, даже если они не являются прямыми возбудителями заболеваний, при этом в очаге эпидемии важен контроль как общей микробиологической загрязненности воды, так и наличия жизнеспособных бактерий. Индикаторами таких загрязнений чаще всего являются бактерии Escherichia coli. Большая часть стандартных методов включает посев бактерий, инкубацию при 37° или 44°C и последующий подсчет числа выросших колоний через 24-72 ч. Основным недостатком этих методов является их длительность (1-3 суток) и непригодность для экспресс-оценки санитарно-гигиенического состояния водоема, что особенно важно в чрезвычайных ситуациях.
Известны методы, включающие использование флуоресцентной индикации для определения β-D-галактозидазы фермента E. coli, который гидролизует 4-метилумбеллиферил β-D-галактозид. Это позволяет сократить время обнаружения микроорганизмов до 1,5 ч, Zweifel U.L. et al. Total counts of marine bacteria include a large fraction of non-nucleoid-containing bacteria (Ghosts). - Appl. Environm. Microbiol., 1995, V. 61, p. 2180-2185. Однако этот метод непригоден для объективной экспресс-оценки загрязненности водоемов живыми патогенными бактериями, которые не имеют этого фермента (например, Vibro cholerae).
Известен способ определения микробиологической загрязненности воды, описанный в заявке CA 2264272 (A1), опубл. 26.03.1998. Согласно данному способу отбирается жидкая проба, содержащая микроорганизмы, в контейнер, где находится флуоресцентный сенсор, позволяющий определить по снижению интенсивности флуоресценции уровень дыхания исследуемых бактерий в жидкости. Сопоставление этого параметра для анализируемого образца и контрольного образца, не содержащего дышащих бактерий, позволяет рассчитать по специальной программе наличие живых микроорганизмов в среде. Однако этот способ требует применения сложного и достаточно дорогостоящего оборудования, а определение флуоресценции в среде связано с расходом дефицитного флуорохрома, причем весь процесс изменений дыхания бактерий может быть обусловлен вариациями парциального давления кислорода в атмосфере, что в итоге также отражается на показателях аэробного пути обеспечения энергии микроорганизмами и может привести к неадекватной трактовке полученных результатов.
Известен способ определения микробиологического загрязнения водных сред, заключающийся в отборе проб исследуемой среды, ее пропускании через бактерицид формулы R4NIn((n-1)/2)H2O, доведении pH пробы до значений 5-6 и определении числа живых микробных тел среды по концентрации йода, выделившегося после взаимодействия пробы с бактерицидом, RU 2286565 C2, опубл. 27.10.2006. Способ позволяет в пробе воды объемом 50 см3 количественно определить активное микробное загрязнение в течение 30 мин с точностью до 400 бактерий/см3. Однако этот способ, как и вышеупомянутый, может быть реализован только в стационарных условиях и требует наличия специального оборудования.
Известен способ определения микробиологической загрязненности воды путем обработки пробы воды неионным детергентом, инкубации ее с 4′,6-диамидино-2-фенилиндолом (красителем) и последующего определения флуоресценции при ультрафиолетовом возбуждении. Согласно данному способу используют стандартные пробы с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий, определяют интенсивность флуоресценции каждой пробы, а также контрольной пробы, содержащей дистиллированную воду, строят калибровочную кривую зависимости между концентрацией КОЕ и разностью интенсивности флуоресценции в каждой стандартной пробе и контрольной пробе, определяют флуоресценцию анализируемой пробы и разность значения этой флуоресценции и флуоресценции контрольной пробы, по калибровочной кривой определяют соответствующую этой разности концентрацию КОЕ в анализируемой пробе и в случае превышения этой концентрацией допустимого значения более чем на 20% микробиологическую загрязненность оценивают как опасную. Детергентную обработку проводят в присутствии комплексона и при ионной силе, соответствующей концентрации NaCl выше 1 М, а определение интенсивности флуоресценции осуществляют при λфл=460±5 нм, для детергентной обработки используют раствор 0,05-ного тритона X-100, содержащего 0,1 моль Na2ЭДТА и 2 моль NaCl при pH 7,8 8,2, RU 2079138 C1, опубл. 10.05.1997.
Недостаток данного способа, принятого за прототип настоящего изобретения, состоит в следующем. В способе-прототипе, осуществляемом при λфл=460±5 нм, происходит определение, главным образом, концентрации ДНК, величина которой пропорциональна общему количеству микроорганизмов. Данная λфл=460±5 нм соответствует максимальному свечению 4′,6-диамидино-2-фенилиндола для анализируемого количества ДНК. Вместе с тем при обработке сточных вод дезинфицирующими средствами жизнеспособность патогенных микроорганизмов и, соответственно, опасность инфицирования потребителей воды резко уменьшаются. Поэтому для более корректной оценки инфекционной опасности воды необходимо определять не общее число микроорганизмов, а количество жизнеспособных (колониеобразующих) бактерий. Однако способ-прототип позволяет определить только общее количество микроорганизмов по ДНК, среди которых только часть является жизнеспособной.
Жизнеспособность клеток обеспечивают окислительно-восстановительные реакции, в которых принимает участие никотинамидадениндинуклеотид (НАД). Являясь коферментом энзимов, обеспечивающих эти реакции, он принимает водород и электроны от окисляемых веществ, а восстановленная форма - (НАД·Н) способна переносить их на другие вещества. Наличие НАД является свидетельством осуществления ферментативных реакций, характерной чертой живых бактерий. Однако известно, что при λфл=460±5 нм НАД удовлетворительно не определяется, поскольку наиболее интенсивное свечение исходит не от НАД, а от окрашенной флуорохромом ДНК. Недостатком способа-прототипа является необходимость использования лизирующей смеси, что усложняет процесс и увеличивает его продолжительность.
Задачей настоящего изобретения является повышение точности оценки инфекционной опасности воды, упрощение и сокращение продолжительности процесса.
Согласно изобретению в способе определения опасности микробиологической загрязненности воды, при котором используют пробы с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий, определяют интенсивность флуоресценции Iфл каждой пробы, а также интенсивность флуоресценции Iфлк контрольной пробы, содержащей дистиллированную воду, при возбуждении ультрафиолетовым излучением, строят калибровочную кривую зависимости между КОЕ и значением Iфл-Iфлк в каждой пробе, определяют флуоресценцию Iфла анализируемой пробы и значение Iфла-Iфлк, по калибровочной кривой определяют соответствующую Iфла-Iфлк концентрацию КОЕап в анализируемой пробе и в случае превышения КОЕап допустимого значения более чем на заданную величину микробиологическую загрязненность оценивают как опасную, определение Iфл, Iфлк, Iфла, осуществляют при длине волны флуоресценции λфл=415±10 нм.
Заявителем не выявлены какие-либо технические решения, идентичные заявленному, что позволяет сделать вывод о соответствии изобретения условию патентоспособности «Новизна».
Реализация отличительных признаков заявленного изобретения обусловливает весьма важный технический результат. Если способ-прототип позволяет определить общее количество микроорганизмов, независимо от их жизнеспособности, то заявленный способ обеспечивает возможность преимущественного определения количества жизнеспособных и, следовательно, опасных микроорганизмов с учетом НАД, при этом установлено, что максимальное свечение НАД имеет место при λфл=415±10 нм; при больших отклонениях λфл от 415 нм свечение НАД существенно снижается, что значительно уменьшает точность определения концентрации КОЕ. Какой-либо краситель или иные вспомогательные вещества не требуются.
Заявителем не выявлены источники информации, в которых содержались бы сведения о влиянии отличительных признаков изобретения на достигаемый технический результат.
Указанные обстоятельства позволяют сделать вывод о соответствии заявленного технического решения условию патентоспособности «Изобретательский уровень».
На фиг. 1 приведена зависимость Iфл-Iфлк (в относительных единицах) и концентрация КОЕ бактерий в пробах, используемых при построении калибровочной кривой; на фиг. 2 - фрагмент калибровочной кривой, иллюстрирующий ее использование при определении концентрации КОЕ бактерий в анализируемой пробе.
Заявленный способ реализуют следующим образом. Для построения калибровочной кривой использовали пробы объемом 2,0 мл, содержащие от 0 (контрольная проба) до 15×103 кл/мл. Контрольная проба представляла собой дистиллированную воду, в качестве остальных проб использована суспензия бактерий Escherichia coli. Коли-индекс установлен путем высева бактерий на агар и подсчета титра КОЕ. Пробы воды облучают ультрафиолетовым излучением с длиной волны λвозб=350±10 нм. Интенсивность флуоресценции проб в конкретных примерах определяли при длине волны флуоресценции λфл=415 нм на флуориметре MPF-850 (Hitachi, Япония), после чего строили калибровочную кривую (фиг. 1).
В примере 1 анализируемую пробу в объеме 2,0 мл брали с поверхности воды в районе пляжа яхт-клуба на озере Разлив (г. Сестрорецк) и подвергали ультрафиолетовому облучению аналогично описанным выше пробам, использованным при построении калибровочной кривой. Затем с помощью флуориметра при длине волны λфл=415 нм определили интенсивность флуоресценции Iфл анализируемой пробы и Iфла-Iфлк.
По калибровочной кривой установили, что данному значению Iфла-Iфлк соответствует концентрация КОЕ=1,14×103 кл/мл, что значительно превышает опасный уровень.
Затем для сравнения данную пробу анализировали с использованием способа-прототипа. В результате установили, что в данной пробе концентрация бактерий (общее микробное число - ОМЧ) составляет 2,8×103 кл/мл. Таким образом, заявленный способ позволяет определять, главным образом, количество жизнеспособных клеток (КОЕ), значительно меньшее общего микробного числа, в котором преобладает количество нежизнеспособных бактерий.
В примере 2 анализируемая проба была взята из реки Олонка, респ. Карелия. Аналогичным образом установлено, что концентрация КОЕ в анализируемой пробе составляет 0,25×103 кл/мл, что несколько превышает опасный уровень. В примере 2 при анализе пробы воды с использованием способа-прототипа было установлено, что ОМЧ составляет 7,6×103 кл/мл. Долю жизнеспособных бактерий в ОМЧ с помощью способа-прототипа оценить невозможно, поэтому его результаты более чем в 30 раз завышают оценку опасности микробиологической загрязненности воды р. Олонка, осуществленную с помощью заявленного способа.
Таким образом, заявленный способ позволяет быстро, просто и надежно с достаточной точностью оценить опасность микробиологической загрязненности воды с учетом жизнеспособных бактерий, представляющих биологическую опасность. Калибровочная кривая строится для определенного флуориметра и используется при работе с ним многократно, время анализа пробы занимает не более 3 минут.
Claims (1)
- Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды, при котором используют пробы с различной концентрацией колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий, определяют интенсивность флуоресценции Iфл каждой пробы, а также интенсивность флуоресценции Iфлк контрольной пробы, содержащей дистиллированную воду, при возбуждении ультрафиолетовым излучением, строят калибровочную кривую зависимости между КОЕ и значением Iфл-Iфлк в каждой пробе, определяют флуоресценцию Iфла анализируемой пробы и значение Iфла-Iфлк, по калибровочной кривой определяют соответствующую Iфла-Iфлк концентрацию КОЕап в анализируемой пробе и в случае превышения КОЕап допустимого значения более чем на заданную величину микробиологическую загрязненность оценивают как опасную, отличающийся тем, что определение Iфл, Iфлк, Iфла осуществляют при длине волны флуоресценции λфл=415±10 нм.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015107670/15A RU2576030C1 (ru) | 2015-03-04 | 2015-03-04 | Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2015107670/15A RU2576030C1 (ru) | 2015-03-04 | 2015-03-04 | Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2576030C1 true RU2576030C1 (ru) | 2016-02-27 |
Family
ID=55435574
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2015107670/15A RU2576030C1 (ru) | 2015-03-04 | 2015-03-04 | Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2576030C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2688745C1 (ru) * | 2018-06-25 | 2019-05-22 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)" | Способ определения токсичности проб |
RU2735756C1 (ru) * | 2020-03-24 | 2020-11-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" | Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2079138C1 (ru) * | 1996-01-30 | 1997-05-10 | Центральный научно-исследовательский рентгено-радиологический институт МЗМП РФ | Способ определения микробиологической загрязненности воды |
CA2264272A1 (en) * | 1996-09-18 | 1998-03-26 | Timothy G. Foley | Microbial monitoring device |
RU2286565C2 (ru) * | 2004-02-10 | 2006-10-27 | Евгений Викторович Скиданов | Способ определения микробиологического загрязнения водных сред и устройство для его осуществления |
-
2015
- 2015-03-04 RU RU2015107670/15A patent/RU2576030C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2079138C1 (ru) * | 1996-01-30 | 1997-05-10 | Центральный научно-исследовательский рентгено-радиологический институт МЗМП РФ | Способ определения микробиологической загрязненности воды |
CA2264272A1 (en) * | 1996-09-18 | 1998-03-26 | Timothy G. Foley | Microbial monitoring device |
RU2286565C2 (ru) * | 2004-02-10 | 2006-10-27 | Евгений Викторович Скиданов | Способ определения микробиологического загрязнения водных сред и устройство для его осуществления |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Экспресс-метод определения микробиологических показателей качества питьевой воды, воды поверхностных и подземных источников. Методические указания, 18 января 1999 г., найдено 23.09.2015 в Интернете на сайте http://www.bestpravo.ru/rossijskoje/ot-zakony/r4v.htm. ГОСТ 18963-73 (2008), Вода питьевая. Методы санитарно-бактериологического анализа (взамен ГОСТ 5215-50 и ГОСТ 5216-50), 01.07.1974, найдено 23.09.2015 в Интернете на сайте http://www.estateline.ru/legislation/636/. WANG S.Q., Portable microfluidic chip for detection of Escherichia coli in produce and blood, International Journal of Nanomedicine 2012, 7, рр 2591-2600, найдено 23.09.2015 в Интернете на сайте http://canarycenter.stanford.edu/content/dam/sm/canarycenter/documents/research/bamm-lab/E.%20coli%20paper.pdf. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2688745C1 (ru) * | 2018-06-25 | 2019-05-22 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)" | Способ определения токсичности проб |
RU2735756C1 (ru) * | 2020-03-24 | 2020-11-06 | Общество с ограниченной ответственностью "Газпром добыча Ямбург" | Способ идентификации микробного загрязнения водной среды посредством анализа активности фермента дегидрогеназы |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Price et al. | E. coli as an indicator of contamination and health risk in environmental waters | |
Alleron et al. | VBNC Legionella pneumophila cells are still able to produce virulence proteins | |
Ayrapetyan et al. | The viable but non-culturable state and its relevance in food safety | |
Ramseier et al. | Kinetics of membrane damage to high (HNA) and low (LNA) nucleic acid bacterial clusters in drinking water by ozone, chlorine, chlorine dioxide, monochloramine, ferrate (VI), and permanganate | |
Hammes et al. | Cultivation-independent assessment of bacterial viability | |
Fleischmann et al. | How to evaluate non-growing cells—current strategies for determining antimicrobial resistance of VBNC bacteria | |
Vital et al. | Evaluating the growth potential of pathogenic bacteria in water | |
Wen et al. | Development of fungal spore staining methods for flow cytometric quantification and their application in chlorine-based disinfection | |
Cumberland et al. | Fluorescence spectroscopy as a tool for determining microbial quality in potable water applications | |
Aiken et al. | Evaluation of ATP bioluminescence assays for potential use in a hospital setting | |
Farhat et al. | Online characterization of bacterial processes in drinking water systems | |
Kong et al. | Considerable discrepancies among HPC, ATP, and FCM detection methods in evaluating the disinfection efficiency of Gram-positive and-negative bacterium by ultraviolet radiation and chlorination | |
Kramer et al. | Monitoring the live to dead transition of bacteria during thermal stress by a multi-method approach | |
Arroyo et al. | Effectiveness of ATP bioluminescence assay for presumptive identification of microorganisms in hospital water sources | |
Cheswick et al. | Chlorine disinfection of drinking water assessed by flow cytometry: New insights | |
Nie et al. | Flow cytometric assessment of the effects of chlorine, chloramine, and UV on bacteria by using nucleic acid stains and 5-cyano-2, 3-ditolyltetrazolium chloride | |
Nisar et al. | Detection and quantification of viable but non-culturable Legionella pneumophila from water samples using flow cytometry-cell sorting and quantitative PCR | |
WO2019028162A1 (en) | DETERMINING THE VIABILITY OF BACTERIA BY MEASURING THE TRANSIENT PRODUCTION OF BIOGENIC AMINES | |
Farnleitner et al. | Hydrolysis of 4-methylumbelliferyl-β-D-glucuronide in differing sample fractions of river waters and its implication for the detection of fecal pollution | |
RU2576030C1 (ru) | Способ определения опасности микробиологической загрязненности воды | |
EP3083983B1 (en) | Method for assaying for loss of an organism in an aqueous liquid | |
Imtiaz et al. | Fluorescence spectroscopy based characterization of pseudomonas aeruginosa suspension | |
Valente et al. | Are the defined substrate-based methods adequate to determine the microbiological quality of natural recreational waters? | |
Taguri et al. | A rapid detection method using flow cytometry to monitor the risk of Legionella in bath water | |
Linklater et al. | Evaluation of the adenosine triphosphate (ATP) bioluminescence assay for monitoring effluent quality and disinfection performance |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180305 |