RU2723894C1 - Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии - Google Patents

Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии Download PDF

Info

Publication number
RU2723894C1
RU2723894C1 RU2019123980A RU2019123980A RU2723894C1 RU 2723894 C1 RU2723894 C1 RU 2723894C1 RU 2019123980 A RU2019123980 A RU 2019123980A RU 2019123980 A RU2019123980 A RU 2019123980A RU 2723894 C1 RU2723894 C1 RU 2723894C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
suspension
mixture
solution
nanoparticles
iron
Prior art date
Application number
RU2019123980A
Other languages
English (en)
Inventor
Максим Артемович Абакумов
Алевтина Сергеевна Семкина
Владимир Павлович Чехонин
Александр Георгиевич Мажуга
Original Assignee
Максим Артемович Абакумов
Алевтина Сергеевна Семкина
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Максим Артемович Абакумов, Алевтина Сергеевна Семкина filed Critical Максим Артемович Абакумов
Priority to RU2019123980A priority Critical patent/RU2723894C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2723894C1 publication Critical patent/RU2723894C1/ru

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B5/00Measuring for diagnostic purposes; Identification of persons
    • A61B5/05Detecting, measuring or recording for diagnosis by means of electric currents or magnetic fields; Measuring using microwaves or radio waves 
    • A61B5/055Detecting, measuring or recording for diagnosis by means of electric currents or magnetic fields; Measuring using microwaves or radio waves  involving electronic [EMR] or nuclear [NMR] magnetic resonance, e.g. magnetic resonance imaging
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/24Heavy metals; Compounds thereof
    • A61K33/26Iron; Compounds thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/06Nuclear magnetic resonance [NMR] contrast preparations; Magnetic resonance imaging [MRI] contrast preparations
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B82NANOTECHNOLOGY
    • B82BNANOSTRUCTURES FORMED BY MANIPULATION OF INDIVIDUAL ATOMS, MOLECULES, OR LIMITED COLLECTIONS OF ATOMS OR MOLECULES AS DISCRETE UNITS; MANUFACTURE OR TREATMENT THEREOF
    • B82B1/00Nanostructures formed by manipulation of individual atoms or molecules, or limited collections of atoms or molecules as discrete units
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B82NANOTECHNOLOGY
    • B82YSPECIFIC USES OR APPLICATIONS OF NANOSTRUCTURES; MEASUREMENT OR ANALYSIS OF NANOSTRUCTURES; MANUFACTURE OR TREATMENT OF NANOSTRUCTURES
    • B82Y5/00Nanobiotechnology or nanomedicine, e.g. protein engineering or drug delivery

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Radiology & Medical Imaging (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • High Energy & Nuclear Physics (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности и касается способа получения контрастного препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии (МРТ), выполненного на основе магнитных модифицированных наночастиц (МНЧ) оксида железа FeO. Для этого путем нагрева при перемешивании раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте и его выдерживания при достигнутой температуре, проводимыми в атмосфере инертного газа, с последующим охлаждением полученной смеси с получением суспензии наночастиц оксида железа, добавлением в суспензию водорастворимого полярного органического растворителя, отделением наночастиц, их ресуспендированием в водном растворе щелочи, смешением полученной суспензии с водным щелочным раствором человеческого сывороточного альбумина, инкубированием смеси и ее очисткой, добавлением в суспензию водного раствора глутарового альдегида, инкубированием смеси, добавлением в смесь раствора боргидрида натрия, инкубированием смеси и ее очисткой, используют раствор ацетилацетоната железа (III) с концентрацией 48-70 г/л, нагрев проводят в течение 5-12 ч до температуры 160-205°С, выдерживание при достигнутой температуре осуществляют в течение 1-60 мин, а охлаждение полученной смеси проводят в присутствии кислорода с получением суспензии наночастиц FeO. Изобретение позволяет в 2 раза повысить продолжительность хранения препарата как в виде суспензии, так и в виде лиофилизата. 4 ил., 4 пр.

Description

Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности и касается способа получения контрастного препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии (МРТ), выполненного на основе магнитных модифицированных наночастиц (МНЧ) оксида железа Fe2O3.
Известен способ получения препарата для диагностики новообразований методом МРТ путем растворения человеческого сывороточного альбумина (ЧСА) в воде, содержащий суспензию МНЧ магнетита (Fe3O4) последовательных добавлений в смесь вначале водного раствора NaOH до достижения рН смеси 8,4, затем этанола, после чего раствора глутарового альдегида, выдерживания полученной смеси в течение 24 ч, очистки полученных МРИ путем трехкратного центрифугирования и повторного ресуспендирования в воде под действием ультразвука (УЗ) (заявка на изобретение US 20080206146 A1, A61K 49/18 от 09.11.2007).
Данный способ содержит признаки, совпадающие с существенными признаками предлагаемого технического решения, такие как использование при получении препарата МНЧ оксида железа и их последовательная обработка раствором ЧСА, затем раствором глутарового альдегида, и очистка препарата.
Известен способ получения препарата для диагностики новообразований методом МРТ путем нагрева в токе инертного газа раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте при постоянном перемешивании до 110°С, выдерживания смеси при данной температуре в течение 1 ч, повторного нагрева смеси со скоростью 25°С/ч до 200°С, выдерживания смеси при данной температуре в течение 40 ч, медленного охлаждения смеси до комнатной температуры, добавления в смесь безводного ацетона, отделения МНЧ центрифугированием, промывки осадка МНЧ ацетоном, удаления ацетона на роторном испарителе, смешения МНЧ с дистиллированной водой, добавления в смесь раствора NaOH до достижения значения рН смеси, равного 11, диспергирования МНЧ в смеси под действием УЗ, добавления в полученную дисперсию водного раствора бычьего сывороточного альбумина, инкубирования смеси при постоянном перемешивании, очистки смеси диализом против воды, добавления в очищенную смесь вначале раствора NaOH, затем по каплям при перемешивании водного раствора глутарового альдегида, инкубирования смеси при перемешивании в течение 15 мин, добавления вначале водного раствора глицина с рН 9,2, затем водного раствора боргидрида натрия, инкубирования полученной смеси в течение 60 мин, очистки модифицированных МНЧ с использованием центрифужных фильтров с диаметров пор 100 килодальтон (кДа) и получения конъюгатов модифицированных МНЧ с моноклональными антителами к фактору роста эндотелия сосудов (патент RU 2530762 от 14.12.2012, А61В 5/055 (2006.01).
Данный способ содержит признаки, совпадающие с существенными признаками предлагаемого технического решения, такие как использование при получении препарата МНЧ оксида железа, полученных путем нагрева в токе инертного газа раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте, выдерживания при достигнутой температуре с последующим охлаждением смеси с получением суспензии наночастиц оксида железа, добавления в суспензию водорастворимого полярного органического растворителя, отделения МНЧ, их ресуспендирования в водном растворе щелочи, смешения полученной суспензии с водным щелочным раствором сывороточного альбумина, инкубирования полученной смеси и ее очистки, добавления в очищенную смесь водного раствора глутарового альдегида, инкубирования смеси, добавления в смесь водного раствора боргидрида натрия, инкубирования смеси и ее очистки.
Наиболее близким к заявляемому является известный способ получения препарата для диагностики новообразований методом МРТ путем нагрева при перемешивании раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте до температуры кипения бензилового спирта (205,5°С), выдерживания смеси при достигнутой температуре и ее охлаждения до комнатной температуры, проводимыми в атмосфере инертного газа, с получением суспензии МНЧ оксида железа Fe3O4, добавления в суспензию водорастворимого полярного органического растворителя, отделения наночастиц методом центрифугирования, их ресуспендирования в водной растворе щелочи, смешения полученной суспензии с водным щелочным раствором ЧСА, инкубирования полученной смеси и ее очистки диализом против воды с последующими добавлением водного щелочного раствора глутарового альдегида, инкубированием смеси, добавлением в смесь водного щелочного раствора глицина, инкубированием смеси, добавлением раствора боргидрида натрия в фосфатно-солевом буфере, инкубированием смеси и ее очисткой методом ультрафильтрации с использованием центрифужных фильтров (патент RU 2659949 С1, 2017, А61В 5/055 (2006.01) - прототип, см. описание).
Прототип имеет признаки, совпадающие с существенными признаками предлагаемого технического решения, такие как нагрев при перемешивании раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте и его выдерживание при достигнутой температуре, проводимые в атмосфере инертного газа, охлаждение полученной смеси с получением суспензии наночастиц оксида железа, добавление в смесь водорастворимого полярного органического растворителя, отделение наночастиц, их ресуспендирование в водном растворе щелочи, смешение полученной суспензии с водным щелочным раствором ЧСА, инкубирование полученной смеси и ее очистка с последующим добавлением водного раствора глутарового альдегида, инкубированием смеси, добавлением в смесь раствора боргидрида натрия, инкубированием смеси и ее очисткой.
Из прототипа известно, что описанные в нем МНЧ с гидродинамическим размером до и после модификации до 20 нм и до 50 нм, соответственно, могут быть получены в форме их коллоидного раствора или в форме лиофилизата частиц. В прототипе также указано, что продолжительность хранения лиофилизата полученных МНЧ равна 1 году. Однако, для МРТ-диагностики может быть использован лишь коллоидный раствор (суспензия) МНЧ, приготовление которого из лиофилизата является нетривиальной задачей и требует ресуспендирования лиофилизата в водосодержащей среде (воде, буфере или буферно-солевом растворе) и обязательной стерилизации полученного коллоидного раствора перед внутривенным введением суспензии препарата с использованием специальных фильтров, не всегда имеющихся в наличии. Продолжительность хранения такого раствора в прототипе не указана, однако, проведенный контрольный опыт (пример 4) показал, что она относительна невелика и составляет 1 мес. Таким образом, недостатком известного препарата является относительно небольшая продолжительность его хранения как в виде коллоидного раствора, так и в виде лиофилизата.
Техническая проблема изобретения заключается в разработке способа получения препарата для диагностики новообразований методом МРТ, лишенного вышеуказанного недостатка.
Технический результат изобретения состоит в повышении продолжительности хранения препарата.
Предварительно были проведены эксперименты с различными способами получения препаратов, выполненными на основе МНЧ оксида железа, которые показали, что указанный технический результат достигается в том случае, когда в способе получения препарата для диагностики новообразований методом МРТ путем нагрева раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте при перемешивании и его выдерживания при достигнутой температуре, проводимыми в атмосфере инертного газа, с последующим охлаждением полученной смеси с получением суспензии наночастиц оксида железа, добавлением в суспензию водорастворимого полярного органического растворителя, отделением наночастиц, их ресуспендированием в водном растворе щелочи, смешением полученной суспензии с водным щелочным раствором ЧСА, инкубированием смеси и ее очисткой, добавлением в суспензию водного раствора глутарового альдегида, инкубированием смеси, добавлением в смесь раствора боргидрида натрия, инкубированием смеси и ее очисткой, используют раствор ацетилацетоната железа (III) с концентрацией 48-70 г/л, нагрев проводят в течение 5-12 ч до температуры 160-205°С, выдерживание при достигнутой температуре осуществляют в течение 1-60 мин, а охлаждение полученной смеси проводят в присутствии кислорода с получением суспензии наночастиц Fe2O3.
Предлагаемый способ получения препарата является новым и не описан в патентной и научно-технической литературе.
Все использованные при получении предлагаемого препарата реагенты и расходные материалы (мембраны) коммерчески доступны.
Оптимальные значения исходной концентрации раствора ацетилацетоната трехвалентного железа в бензиловом спирте 48-70 г/л, продолжительность нагрева данного раствора 5-12 ч, температура до которой необходимо нагревать исходный раствор 160-205°С и продолжительность выдерживания нагретого раствора при достигнутой температуре 1-60 мин были установлены экспериментально. Указанные стадии синтеза так же, как и в прототипе, проводят в атмосфере инертного газа, в качестве которого можно использовать, например, азот, аргон, криптон и т.д. Так же, как и в прототипе, после выдерживания смеси при достигнутой температуре ее охлаждают до комнатной температуры. Однако, в отличие от прототипа, охлаждение проводят не в инертной атмосфере, а в присутствии кислорода. Для этого перед началом охлаждения перестают подавать в реакционный сосуд инертный газ, а подают либо кислород, либо воздух, ток которых вытесняет инертный газ. Также возможно прекращение подачи относительно легкого инертного газа, например, такого как азот, и извлечение из горла реакционного сосуда холодильника с последующим самопроизвольным поступлением в систему воздуха.
При этом экспериментально было обнаружено, что в данных условиях после охлаждение реакционной смеси (до комнатной температуры) в ней образуется суспензия наночастиц оксида железа Fe2O3, тогда как в прототипе описано образование наночастиц только Fe3O4. Образование в данных условиях именно Fe2O3 было экспериментально доказано методом Мессбауэровской спектроскопии (см. пример 1).
Методом просвечивающей электронной микроскопии было показано, что в предлагаемом техническом решении образуется МНЧ, имеющие размер (3-12)±1 нм. При этом после получения суспензии наночастиц Fe2O3 для их осаждения в нее добавляют водорастворимый полярный органический растворитель, в качестве которого можно использовать, например, ацетон, этанол, ацетонитрил и т.д. Можно также использовать смеси водорастворимых полярных органических растворителей. При этом соотношение объемов ранее использованного бензилового спирта и вводимого водорастворимого полярного органического растворителя может быть различным.
После этого проводят отделение полученных МНЧ путем их осаждения с использованием, например, центрифугирования или магнитной декантации, промывки осевших наночастиц Fe2O3 водорастворимым органическим растворителем и удаления растворителя, например, с использованием роторного испарителя. При использовании центрифугирования скорость вращения ротора центрифуги и продолжительность центрифугирования могут быть различными.
При осуществлении способа навеску полученных сухих МНЧ помещают в воду, добавляют в полученную смесь водный, например, 1М раствор щелочи до получения значений рН смеси, например, 10-11, затем ресуспендируют МНЧ перемешиванием или с использованием УЗ с получением суспензии, содержание Fe2O3 в которой может быть различно и составлять, например, 2-8 мг/мл. При этом можно использовать различные щелочи, например, NaOH, KOH, LiOH и т.д. После этого полученную суспензию смешивают с водным щелочным раствором ЧСА, концентрация которого может быть различна и составлять, например, 4-16 мг/мл. При этом преимущественно значения рН суспензии МНЧ и раствора ЧСА, а также соотношения объемов суспензии МНЧ и раствора ЧСА, должны быть одинаковыми или отличаться незначительно.
После смешения вышеуказанных растворов полученную смесь инкубируют (выдерживают) в течение определенного времени, например, в течение 10-20 мин. При этом для получения более однородных по размеру наночастиц выдержку целесообразно проводить при постоянном или периодическом перемешивании и для удобства ее целесообразно осуществлять при комнатной температуре. После этого проводят очистку полученной смеси от низкомолекулярных продуктов, например, диализом против воды и фильтрацией через шприцевой фильтр с диаметром пор 0,22-0,45 мкм для отделения нежелательных агрегатов МНЧ.
Очищенную суспензию смешивают с водным раствором глутарового альдегида, который для получения более однородного по строению продукта целесообразно добавлять по каплям при постоянном перемешивании. При этом известно [Migneault I. et al. Glutaraldehyde: behavior in aqueous solution, reaction with proteins, and application to enzyme crosslinking // Biotechniques. - 2004. - T. 37. - №.5. - C. 790-802], что глутаровый альдегид является неизбирательным сшивающим агентом первичных аминогрупп, содержащихся в ЧСА, с образованием основания Шиффа. В процессе такой обработки соотношение объемов суспензий МНЧ и раствора глутарового альдегида, а также концентрации раствора глутарового альдегида, могут быть различными.
После смешения вышеуказанных компонентов полученную смесь инкубируют, например, в течение 10-30 мин при постоянном или периодическим перемешивании, затем для восстановления неустойчивых двойных связей между углеродом и азотом в полученных основаниях Шиффа в смесь добавляют раствор восстанавливающего агента боргидрида натрия, концентрация которого и соотношение объемов смеси и раствора NaBH4 могут быть различными. Для получения более однородного по составу продукта полученную смесь инкубируют в течение определенного времени, например, в течение 1-3 ч. Также возможно перед смешением суспензии обработанных глутаровым альдегидом МНЧ с раствором боргидрида натрия в суспензию дополнительно вводить водный щелочной раствор глицина.
На заключительном этапе синтеза проводят очистку полученной суспензии МНЧ, которую осуществляют методом ультрафильтрации на фильтрах с диаметром пор 100-300 кДа. Ультрафильтрацию проводят при добавлении новых порций воды либо буферного раствора, состав которого может быть различным. После этого получают контрастный препарат для диагностики новообразований методом МРТ, выполненный в виде суспензии модифицированных наночастиц Fe2O3. Также возможна лиофильная сушка полученной суспензии с получением лиофилизата, который перед использованием ресуспендируют в воде, буфере или водно-солевом растворе. В любом случае перед внутривенным введением суспензии препарата целесообразно проводить ее стерилизацию, например, путем фильтрации с использованием специальных фильтров.
Продолжительность хранения препарата определяют по отсутствию образования визуально обнаруживаемой взвеси в его суспензии или инструментально определяемому увеличению размеров наночастиц препарата в ней выше 60 нм.
Содержание железа в полученной суспензии препарата определяют традиционным методом атомно-эмиссионной спектроскопии с использованием индуктивно-связанной плазмы в качестве источника возбуждения. На первом этапе строят калибровочную кривую с использованием стандартных водных растворов различной концентрации железа в диапазоне от 500 до 2000 нг/мл. Затем готовят водный раствор образца с концентрацией железа в диапазоне от 500 до 2000 нг/мл, и исследуют на приборе. Полученное значение концентрации железа в водном растворе образца определяют с использованием полученной калибровочной кривой, после чего определяют концентрацию железа в исходном образце с учетом произведенных разбавлений.
Описанный в предложенном способе препарат малотоксичен и при внутривенном введении может быть использован для выявления новообразований (онкологических заболеваний) у животных и людей, поскольку он содержит ЧСА, раствор которого продается в аптечной сети и предназначен для внутривенных инъекций человеку.
В ходе облучения пациента радиочастотным возбуждающим импульсом резонансной частоты во время проведения МРТ-исследования происходит переход части протонов с нижнего энергетического уровня на верхний. Также протоны, получившие новый импульс, начинают прецессию вокруг внешнего магнитного поля, находясь в первоначальный момент в одной фазе. Затем происходит возвращение протонов с верхнего уровня на нижний с испусканием энергии. Данные процесс называется спин-решеточной или Т1 релаксацией. Одновременно происходит расфазировка спинов протонов, изначально находившихся в когерентном состоянии. При расфазировке интенсивность сигнала падает, и данный процесс называется спин-спиновой или Т2 релаксацией. На скорость расфазировки спинов влияют такие параметры, как негомогенность внешнего магнитного поля, а также присутствие магнитных материалов, неоднородно изменяющих окружение протонов воды. Именно за счет своих магнитных свойств наночастицы оксида железа искажают изначально гомогенное магнитное поле внутри томографа, способствуют расфазировке протонов и приводят к уменьшению времени Т2 релаксации протонов, которое в свою очередь приводит к уменьшению интенсивности сигнала в области накопления наночастиц. Таким образом, магнитные наночастицы являются негативными контрастными агентами, уменьшая яркость (интенсивность) на МРТ-снимке. Однако, важно заметить, что среди большого разнообразия магнитно-резонансных последовательностей существуют такие, которые более чувствительны именно к изменениям Т2 времени релаксации ткани, в частности Т2 и Т2* взвешенные последовательности. Как правило Т2* последовательности гораздо более чувствительны к локальному изменению магнитного поля, в том числе вызываемого частицами, однако именно в силу высокой чувствительности к неоднородностям магнитного поля эти режимы склонны к образованию артефактов при получении МРТ-снимков.
Как было сказано ранее, Т2 контрастные агенты в первую очередь ускоряют Т2* и Т2 время релаксации, поэтому их оценка производится с помощью специальных импульсных последовательностей, отличных от используемых с Т1 контрастными агентами. Чаще всего используют импульсную последовательность «градиентное эхо» с получением Т2* взвешенных изображений (Т2*ВИ). Однако со временем была разработана и вошла в широкую практику импульсная последовательность, обеспечивающая еще большую чувствительность к изменениям в Т2* времени релаксации ткани - Susceptibility Weighted Imaging (SWI). SWI был разработан Mark Haacke и коллегами [E. Mark Haacke et al. Susceptibility weighted imaging (SWI) // Magnetic Resonance in Medicine. - 2004. - T. 52. - C. 612-618], и с 2007 года стал широко применяться в клинической практике. Это специальная импульсная последовательность в МРТ, обладающая сильной взвешенностью по магнитной восприимчивости, что позволяет визуализировать на получаемых изображениях венозную кровь (следовательно, вены), кровоизлияния на различных стадиях биодеградации гемоглобина и депо (места скопления) железа. Благодаря высокой чувствительности к изменениям Т2* времени релаксации ткани по сравнению с градиентными Т2*ВИ, режим SWI лучше подходит для визуализации и изучения Т2 контрастных агентов. SWI основан на импульсной последовательности «градиентное эхо» с подавлением потока по трем направлениям, с использованием очищающих градиентов и длинного времени эха (ТЕ), обеспечивающего Т2* взвешенность. Помимо амплитуды получаемого МРТ-сигнала для построения изображений, также используют его фазовую составляющую, что обеспечивает чувствительность SWT к изменениям в магнитной восприимчивости ткани.
Фазовые изображения позволяют выявлять локальную разницу в магнитной восприимчивости между различными тканями. К фазовым изображениям, после их построения, применяют фильтр верхних частот для избавления от нежелательных низкочастотных артефактов, обусловленных общей неоднородностью магнитного поля томографа и затем нелинейный фильтр интенсивности, в результате чего получают фазовую маску. Затем полученную фазовую маску последовательным перемножением объединяют с изображениями, построенными по амплитуде МРТ-сигнала. МНЧ характеризуются суперпарамагнитными свойствами, в связи с чем их магнетизм индуцируется при приложении внешнего магнитного поля и исчезает после его удаления. Контрастный препарат на основе модифицированных магнитных наночастиц уменьшает значения Т2, Т2* и Т1 времен релаксации, особенно Т2* времени релаксации. Визуализируются наночастицы как зоны гипоинтенсивного сигнала на МРТ-снимках, и поэтому магнитные наночастицы оксида железа носят название негативного контрастного агента.
МРТ исследование опухолеобразования проводят с использованием 7Т магнитно-резонансного томографа (ClinScan, Bruker). Для получения Т2-ВИ в коронарной плоскости используют частотное подавление сигнала жировой ткани со следующими параметрами последовательности Turbo Spin Echo (TSE): TPv/TE=4000/43 мс, толщиной среза 0,5 мм, матрицей 288×320, FOV=40 мм. Для Т2-ВИ в трансверсальной плоскости: TR/TE=5110/57 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для получения Т2*ВИ используют режим SWI со следующими параметрами: TE/TR=19/50 мс, толщина среза 0,5 мм, FOV=30 мм, разрешение 256/176. Для каждого животного получают серию изображений в Т2 взвешенных и SWI режимах до внутривенного введения препарата, полученного с помощью предлагаемого способа, в течение 30 мин после его внутривенного введения, а также через 2 и 24 ч после его введения.
Преимущества предлагаемого способа получения препарата иллюстрируют следующие примеры.
Пример 1.
В трехгорлую круглодонную стеклянную колбу со шлифами, расположенную над электрической плиткой с функцией магнитного перемешивания и регулируемой мощностью нагрева, снабженную обратным холодильником, термометром и трубкой с краном для подачи газа, помещают 220 мл раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте с концентрацией 48 г/л. После этого в колбу подают ток аргона, включают плитку и мешалку, и нагревают содержимое колбы в течение 12 ч до 205°С, после чего выдерживают при достигнутой температуре 205°С в течение 1 мин. Затем убирают плитку и охлаждают содержимое колбы до комнатной температуры на воздухе, осуществляя охлаждение при подаче в колбу тока кислорода. Получают суспензию наночастиц оксида железа, для отделения которых суспензию переносят в химический стакан, в который затем добавляют 176 мл водорастворимого полярного органического растворителя - ацетона, содержимое стакана вначале перемешивают, затем переносят в центрифужную пробирку и проводят отделение наночастиц центрифугированием при 900 g в течение 10 мин.
Осевшие наночастицы трижды промывают порциями по 20 мл ацетона с последующим центрифугированием суспензии, осуществляя указанные стадии очистки наночастиц в течение трех раз. После этого к осадку добавляют 25 мл ацетона, смесь перемешивают, переносят в круглодонную колбу, которую для удаления ацетона присоединяют к роторному испарителю и проводят сушку до постоянной массы осадка. Получают 2200 мг наночастиц оксида железа.
Методом просвечивающей электронной микроскопии было показано, что в примере образуются наночастицы с формой, близкой к сферической, со средним диаметром 3 нм. Методом Месбауэровской спектроскопии было показано, что в примере образуются наночастицы Fe2O3, а образование наночастиц Fe3O4 не происходит.
На Фиг. 1 приведен мессбауэровский спектр МНЧ, полученных в примере 1, записанный при температуре 10K. По оси абсцисс указана скорость в мм/с, по оси ординат указана интенсивность сигнала в относительных единицах. Спектр представляет собой хорошо разрешенный секстет со следующими сверхтонкими параметрами: изомерный сдвиг δ=0,39(1) мм/с, квадрупольное смещение ε=0,00 мм/с, значение магнитного сверхтонкого поля в точке максимума Hmax=51,2(2) Т для ионов Fe3+, занимающих тетраэдрические пустоты в кристаллической структуре шпинели и изомерный сдвиг δ=0,50(1) мм/с, квадрупольное смещение ε=0,00 мм/с, значение магнитного сверхтонкого поля в точке максимума Hmax=52,3(2) Т для ионов Fe3+, занимающих октаэдрические пустоты. Обозначенные на Фиг. цифрами 1 и 2 секстеты относятся к ионам железа в тетраэдрических и октаэдрических пустотах кристаллической структуры шпинели, соответственно. Полученные значения соответствуют справочному высокоспиновому состоянию ионов железа Fe3+ в маггемите γ-Fe2O3. Компонент, соответствующий ионам Fe2+ в Fe3O4, не был обнаружен, следовательно, в МНЧ доминирует фаза γ-Fe2O3.
20 мг полученных наночастиц смешивают с 10 мл дистиллированной воды, затем в полученную смесь добавляют 1М раствор NaOH до получения рН смеси, равного 10,0, и наночастицы ресуспендируют в щелочном растворе под действием УЗ с получением суспензии, содержащей наночастицы в концентрации 2 мг/мл. Полученную суспензию смешивают с 10 мл водного раствора NaOH с рН=10,0, содержащего растворенный ЧСА в концентрации 4 мг/мл, и полученную смесь инкубируют (выдерживают) в течение 10 мин при постоянном перемешивании, затем смесь очищают от крупных агрегатов частиц путем фильтрования на шприцевом фильтре. Получают 20 мл очищенной суспензии наночастиц, содержащей ЧСА и Fe2O3 в концентрациях 2 мг/мл и 1 мг/мл, соответственно, в которую для получения более однородного продукта по каплям добавляют 1,150 мл 5%-ного водного раствора глутарового альдегида, и полученную смесь инкубируют в течение 10 мин при постоянном перемешивании. Затем в полученную смесь добавляют 0,664 мл свежеприготовленного водного раствора NaBH4 с концентрацией 5 мг/мл, смесь инкубируют в течение 1 ч и очищают трехкратной промывкой на центрифужном фильтре с пределом пропускания 100 кДа с введением после каждого центрифугирования 40 мл буферного раствора, имеющего состав 137 мМ NaCl, 2,7 мМ KCl, 10 мМ Na2HPO4 и 1,76 мМ KH2PO4. На заключительном этапе суспензию наночастиц стерилизуют путем фильтрования на шприцевом фильтре с мембраной с диаметром пор 0,2 мкм.
Получают суспензию модифицированных наночастиц Fe2O3, содержащую железо в концентрации 12,5 мг/мл. Методом динамического светорассеяния было показано, что гидродинамический диаметр полученных частиц составляет 42 нм. Полученная суспензия способна храниться без изменения диаметра наночастиц в течение не менее 2 мес.
Препарат, полученный описанным в примере способом, был использован для диагностики онкологического заболевания. В опыте использовали подопытных животных - крыс с привитой опухолью головного мозга - глиобластомой (клеточная линия С6). Диагностику проводят путем внутривенного введения полученной в примере суспензии модифицированных наночастиц Fe2O3, содержащей ионы железа в дозе 10 мг/кг тела подопытного животного, и серии МРТ исследований. МРТ исследования проводят с использованием 7Т томографа (ClinScan, Bruker). Для получения Т2-ВИ в коронарной плоскости использовали частотное подавление сигнала жировой ткани со следующими параметрами последовательности Turbo Spin Echo (TSE): TR/TE=4000/43 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица - 288×320, FOV=40 мм. Для Т2-ВИ в трансверсальной плоскости: TR/TE=5110/57 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для получения Т2*ВИ использовали режим SWI со следующими параметрами: TE/TR=19/50 мс, толщина среза 0,5 мм, FOV=30 мм, разрешение 256/176. Для животного с имплантированной опухолью получают серию МРТ-снимков в Т2 взвешенных и SWI режимах до внутривенного введения полученного в примере контрастного препарата, в течение 30 мин после его внутривенного введения, а также через 2 и 24 ч после его введения. Затем анализируют картину накопления негативного (Т2) контрастного препарата в опухоли, приводящего к возникновению гипоинтенсивных участков на МРТ-снимках изображениях, и делают вывод о наличии злокачественного новообразования у подопытного животного.
На Фиг. 2 приведены МРТ-снимки участка тела крысы с имплантированной опухолью глиобластомой С6 до а) и после б) введения суспензии модифицированных наночастиц Fe2O3. Стрелкой указано расположение новообразования у подопытного животного.
Из примера видно, что предлагаемый препарат позволяет диагностировать новообразование у подопытного животного.
Пример 2
В трехгорлую круглодонную стеклянную колбу со шлифами, расположенную над электрической плиткой с функцией магнитного перемешивания и регулируемой мощностью нагрева, снабженную обратным холодильником, термометром и трубкой с краном для подачи газа, помещают 55 мл раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте с концентрацией 60 г/л. После этого в колбу подают ток азота, включают плитку и мешалку, и нагревают содержимое колбы в течение 5 ч до 160°С, после чего выдерживают при достигнутой температуре 160°С в течение 60 мин. Затем убирают плитку и охлаждают содержимое колбы до комнатной температуры на воздухе, осуществляя охлаждение при подаче в колбу тока воздуха. Получают суспензию наночастиц оксида железа, для отделения которых суспензию переносят в химический стакан, в который затем добавляют 45 мл водорастворимого полярного органического растворителя - этанола, содержимое стакана вначале перемешивают, затем переносят в центрифужную пробирку и проводят отделение наночастиц центрифугированием при 800 g в течение 12 мин.
В пробирку с осевшими наночастицами добавляют 25 мл этанола, содержимое пробирки перемешивают, затем проводят повторное центрифугирование, после чего проводят еще 2 вышеописанные стадии очистки наночастиц. После последнего центрифугирования к осевшим наночастицам добавляют 15 мл этанола, содержимое пробирки перемешивают, затем переносят в круглодонную колбу, соединяют ее с роторным испарителем, включают испаритель и сушат наночастицы до постоянной массы осадка на стенках колбы. Получают 690 мг наночастиц оксида железа.
Методом просвечивающей электронной микроскопии было показано, что в примере образуются наночастицы с формой, близкой к сферической, со средним диаметром 8 нм. Методом Месбауэровской спектроскопии аналогично примеру 1 было показано, что в примере образуются только наночастицы Fe2O3, а образование наночастиц Fe2O4 не происходит.
80 мг полученных наночастиц смешивают с 20 мл дистиллированной воды, затем в полученную смесь добавляют 1М раствор KOH до получения рН смеси, равного 10,4, и наночастицы ресуспендируют в щелочном растворе под действием УЗ с получением суспензии, содержащей наночастицы в концентрации 4 мг/мл. Полученную суспензию смешивают с 20 мл водного раствора KOH с рН=10,4, содержащего растворенный ЧСА в концентрации 8 мг/мл, и полученную смесь инкубируют в течение 15 мин при постоянном перемешивании, затем смесь очищают от крупных агрегатов частиц путем фильтрования на шприцевом фильтре. Получают 40 мл очищенной суспензии наночастиц, содержащей ЧСА и железо в концентрациях 4 мг/мл и 2 мг/мл, соответственно, в которую для получения более однородного продукта по каплям добавляют 0,92 мл 25%-ного водного раствора глутарового альдегида, и полученную смесь инкубируют в течение 15 мин при постоянном перемешивании. Затем в полученную смесь добавляют 1,33 мл свежеприготовленного водного раствора NaBH4 с концентрацией 10 мг/мл, смесь инкубируют в течение 2 ч и очищают трехкратной промывкой на центрифужном фильтре с пределом пропускания 30 кДа с введением после каждого центрифугирования 80 мл буферного раствора, имеющего состав 10 мМ Na2HPO4 и 1,76 мМ KH2PO4. На заключительном этапе суспензию наночастиц стерилизуют путем фильтрования на шприцевом фильтре с мембраной с диаметром пор 0,2 мкм.
Получают суспензию модифицированных наночастиц Fe2O3, содержащую железо в концентрации 20 мг/мл. Методом динамического светорассеяния было показано, что гидродинамический диаметр полученных частиц составляет 36 нм. Полученная суспензия способна храниться без изменения диаметра наночастиц в течение не менее 2 мес.
Препарат, полученный описанным в примере способом, был использован для диагностики онкологического заболевания у подопытных животных - мышей с привитой опухолью молочной железы - аденокарциномой (клеточная линия 4Т1). Диагностику проводят путем внутривенного введения полученной в примере суспензии модифицированных наночастиц Fe2O3, содержащей ионы железа в дозе 10 мг/кг тела подопытного животного, и серии МРТ исследований. МРТ исследования проводят с использованием 7Т томографа (ClinScan, Bruker). Для получения Т2-ВИ в коронарной плоскости используют частотное подавление сигнала жировой ткани со следующими параметрами последовательности Turbo Spin Echo (TSE): TR/TE=4000/43 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для Т2-ВИ в трансверсальной плоскости: TR/TE=5110/57 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для получения Т2*ВИ используют режим SWI со следующими параметрами: TE/TR=19/50 мс, толщина среза 0,5 мм, FOV=30 мм, разрешение 256/176. Для животного с имплантированной опухолью получают серию МРТ-снимков в Т2 взвешенных и SWI режимах до внутривенного введения полученного в примере контрастного препарата, в течение 30 мин после его введения, а также через 2 и 24 ч после его введения. Затем анализируют картину накопления негативного (Т2) контрастного препарата в опухоли, приводящего к возникновению гипоинтенсивных участков на МРТ изображениях, и делают вывод о наличии злокачественного новообразования у подопытного животного.
На Фиг. 3 приведены МРТ-снимки участка тела мыши с имплантированной опухолью аденокарциномой молочной железы 4Т1 до а) и после б) введения суспензии предлагаемого препарата. Стрелкой указано расположение новообразования у подопытного животного.
Из примера видно, что предлагаемый препарат позволяет диагностировать новообразование у подопытного животного.
Пример 3
Опыт проводят аналогично примеру 1, однако, используют ПО мл раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте с концентрацией 70 г/л, в колбу подают ток криптона, нагрев содержимого колбы осуществляют в течение 10 ч до 190°С, содержимое колбы выдерживают при 190°С в течение 30 мин, после переноса охлажденной суспензии наночастиц в химический стакан туда добавляют 90 мл ацетонитрила, отделение наночастиц проводят методом магнитной декантации с использованием постоянного магнита с магнитным полем силой 300 мТл с последующими двумя циклами очистки, каждый из которых включает добавление к осевшим наночастицам 50 мл ацетонитрила, перемешивание полученной смеси и отделение наночастиц с помощью последующей магнитной декантации. Затем к осевшим наночастицам добавляют 20 мл ацетонитрила, содержимое пробирки перемешивают, затем переносят в круглодонную колбу, соединяют ее с роторным испарителем, включают испаритель и сушат наночастицы до постоянной массы осадка на стенках колбы. Получают 1430 мг наночастиц оксида железа.
Аналогично примеру 1 было показано, что в опыте образуются наночастиц Fe2O3 со средним диаметром 12 нм.
40 мг полученных наночастиц смешивают с 5 мл дистиллированной воды, затем в полученную смесь добавляют 1М раствор LiOH до получения рН смеси, равного 11,0, и наночастицы ресуспендируют в щелочном растворе под действием УЗ с получением суспензии, содержащей наночастицы в концентрации 8 мг/мл. Полученную суспензию смешивают с 5 мл водного раствора LiOH с рН=11,0, содержащего растворенный ЧСА в концентрации 16 мг/мл, и полученную смесь инкубируют в течение 20 мин при постоянном перемешивании, затем смесь очищают от крупных агрегатов частиц путем фильтрования на шприцевом фильтре. Получают 10 мл очищенной суспензии наночастиц, содержащей ЧСА и железо в концентрациях 8 мг/мл и 4 мг/мл, соответственно, в которую для получения более однородного продукта по каплям добавляют 0,33 мл 35%-ного водного раствора глутарового альдегида, и полученную смесь инкубируют в течение 30 мин при постоянном перемешивании. Затем в полученную смесь добавляют 0,44 мл свежеприготовленного водного раствора NaBH4 с концентрацией 15 мг/мл, смесь инкубируют в течение 3 ч и очищают трехкратной промывкой на центрифужном фильтре с пределом пропускания 100 кДа с введением после каждого центрифугирования 50 мл дистиллированной воды. На следующем этапе суспензию наночастиц стерилизуют путем фильтрования на шприцевом фильтре с мембраной с диаметром пор 0,2 мкм. После этого суспензию лиофильно сушат.
Получают 43 мг лиофилизата. После ресуспендирования лиофилизата в воде методом динамического светорассеяния было показано, что гидродинамический диаметр полученных частиц после хранения лиофилизата в течение 2 лет не изменился и составляет 55 нм. При этом, полученная из лиофилизата суспензия способна храниться без изменения диаметра наночастиц в течение не менее 2 мес.
Препарат, полученный описанным в примере способом, был использован для диагностики онкологического заболевания у подопытных животны - мышей с привитой опухолью толстой кишки - карциномой (клеточная линия СТ26). Диагностику проводят путем внутривенного введения полученной в примере суспензии модифицированных наночастиц Fe2O3, содержащей ионы железа в дозе 10 мг/кг тела подопытного животного, и серии МРТ исследований. МРТ исследования проводят с использованием 7Т томографа (ClinScan, Bruker). Для получения Т2-ВИ в коронарной плоскости используют частотное подавление сигнала жировой ткани со следующими параметрами последовательности Turbo Spin Echo (TSE): TR/TE=4000/43 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для Т2-ВИ в трансверсальной плоскости: TR/TE=5110/57 мс, толщина среза 0,5 мм, матрица 288×320, FOV=40 мм. Для получения Т2*ВИ используют режим Градиентного Эха со следующими параметрами: TE/TR=10/400 мс, толщина среза 0,5 мм, FOV=31×40 мм, разрешение 200/256. Для животного с имплантированной опухолью получают серию МРТ-снимков в Т2 взвешенных и SWI режимах до внутривенного введения полученного в примере контрастного препарата, в течение 30 мин после его введения, а также через 2 и 24 ч после его введения. Затем анализируют картину накопления негативного (Т2) контрастного препарата в опухоли, приводящего к возникновению гипоинтенсивных участков на МРТ изображениях, и делают вывод о наличии злокачественного новообразования у подопытного животного.
На Фиг. 4 приведены МРТ-снимки участка тела мыши с имплантированной опухолью карциномой толстой кишки СТ26 до а) и после б) введения суспензии предлагаемого препарата. Стрелкой указано расположение новообразования у подопытного животного.
Из примера видно, что предлагаемый препарат позволяет диагностировать новообразование у подопытного животного.
Пример 4 (контрольный, по прототипу)
В трехгорлую круглодонную стеклянную колбу со шлифами, расположенную над электрической плиткой с функцией магнитного перемешивания и регулируемой мощностью нагрева, снабженную обратным холодильником, термометром и трубкой с краном для подачи инертного газа, помещают 220 мл раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте с концентрацией 100 мг/л. После этого в колбу подают ток азота, включают плитку и мешалку и нагревают содержимое колбы в течение 5 ч до температуры кипения бензилового спирта 205,5°С, после чего выдерживают при этой температуре в течение 30 мин. Затем убирают плитку и охлаждают содержимое колбы на воздухе до комнатной температуры, прекращают подачу в колбу инертного газа, полученную суспензию наночастиц оксида железа Fe3O4 переносят в химический стакан и добавляют в суспензию 90 мл ацетона. Полученную смесь вначале перемешивают, затем переносят в центрифужную пробирку и наночастицы отделяют от жидкости центрифугированием при 900 g в течение 10 мин. В пробирку с осевшими наночастицами добавляют 250 мл ацетона, содержимое пробирки перемешивают, затем проводят повторное центрифугирование, после чего проводят еще 2 вышеописанные стадии очистки наночастиц. После последнего центрифугирования к осевшим наночастицам добавляют 50 мл ацетона, содержимое пробирки перемешивают, затем переносят в круглодонную колбу, соединяют ее с роторным испарителем, включают испаритель и сушат наночастицы до постоянной массы осадка наночастиц на стенках колбы. Получают 4700 мг наночастиц Fe3O4.
Методом просвечивающей электронной микроскопии было показано, что в данных условиях образуются наночастица со средним размером 10 нм.
20 мг полученных наночастиц смешивают с 10 мл дистиллированной воды, затем в полученную смесь добавляют 1М раствор NaOH до получения рН смеси, равного 10,0, и наночастицы ресуспендируют в полученном растворе под действием УЗ с получением суспензии, содержащей наночастицы в концентрации 2 мг/мл. Полученную суспензию смешивают с 10 мл водного раствора NaOH с рН=10,0, содержащего растворенный ЧСА в концентрации 4 мг/мл, и полученную смесь инкубируют в течение 10 мин при постоянном перемешивании, затем смесь очищают от крупных агрегатов частиц путем фильтрования на шприцевом фильтре. Получают 20 мл очищенной суспензии наночастиц, содержащей ЧСА и железо в концентрациях 2 мг/мл и 1 мг/мл, соответственно, в которую для получения более однородного продукта по каплям добавляют 1,15 мл 5%-ного водного раствора глутарового альдегида, и полученную смесь инкубируют в течение 10 мин при постоянном перемешивании. Затем в полученную смесь добавляют 0,665 мл свежеприготовленного водного раствора NaBH4 с концентрацией 5 мг/мл, смесь инкубируют в течение 1 ч и очищают трехкратной промывкой на центрифужном фильтре с пределом пропускания 100 кДа с введением после каждого центрифугирования 40 мл буферного раствора, имеющего состав 137 мМ NaCl, 2,7 мМ KCl, 10 мМ Na2HPO4 и 1,76 мМ KH2PO4.
Получают суспензию модифицированных наночастиц Fe3O4, содержащую железо в концентрации 5,5 мг/мл. Методом динамического светорассеяния было показано, что гидродинамический диаметр полученных частиц составляет 48 нм. Полученная суспензия способна храниться без изменения диаметра наночастиц в течение 1 мес.
Таким образом, из приведенных примеров видно, что у предложенного препарата действительно в 2 раза повышается продолжительность его хранения как в виде суспензии, так и в виде лиофилизата.

Claims (1)

  1. Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии путем нагрева при перемешивании раствора ацетилацетоната железа (III) в бензиловом спирте и его выдерживания при достигнутой температуре, проводимыми в атмосфере инертного газа, с последующим охлаждением полученной смеси с получением суспензии наночастиц оксида железа, добавлением в суспензию водорастворимого полярного органического растворителя, отделением наночастиц, их ресуспендированием в водном растворе щелочи, смешением полученной суспензии с водным щелочным раствором человеческого сывороточного альбумина, инкубированием смеси и ее очисткой, добавлением в суспензию водного раствора глутарового альдегида, инкубированием смеси, добавлением в смесь раствора боргидрида натрия, инкубированием смеси и ее очисткой, отличающийся тем, что используют раствор ацетилацетоната железа (III) с концентрацией 48-70 г/л, нагрев проводят в течение 5-12 ч до температуры 160-205°С, выдерживание при достигнутой температуре осуществляют в течение 1-60 мин, а охлаждение полученной смеси проводят в присутствии кислорода с получением суспензии наночастиц Fe2O3.
RU2019123980A 2019-07-30 2019-07-30 Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии RU2723894C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019123980A RU2723894C1 (ru) 2019-07-30 2019-07-30 Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019123980A RU2723894C1 (ru) 2019-07-30 2019-07-30 Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2723894C1 true RU2723894C1 (ru) 2020-06-18

Family

ID=71096228

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019123980A RU2723894C1 (ru) 2019-07-30 2019-07-30 Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2723894C1 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20080206146A1 (en) * 2005-03-21 2008-08-28 Massoud Akhtari Functionalized Magnetic Nanoparticles and Methods of Use Thereof
RU2465010C1 (ru) * 2011-06-08 2012-10-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства Контрастное средство для магнитно-резонансной томографии
RU2659949C1 (ru) * 2017-11-09 2018-07-04 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" Способ получения препарата на основе магнитных наночастиц (МНЧ) оксида железа для МРТ-диагностики новообразований

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20080206146A1 (en) * 2005-03-21 2008-08-28 Massoud Akhtari Functionalized Magnetic Nanoparticles and Methods of Use Thereof
RU2465010C1 (ru) * 2011-06-08 2012-10-27 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт особо чистых биопрепаратов" Федерального медико-биологического агентства Контрастное средство для магнитно-резонансной томографии
RU2659949C1 (ru) * 2017-11-09 2018-07-04 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСиС" Способ получения препарата на основе магнитных наночастиц (МНЧ) оксида железа для МРТ-диагностики новообразований

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
INGRID HILGER et al. Iron oxide-based nanostructures for MRI and magnetic hyperthermia // Nanomedicine (2012) 7(9), p. 1443-1459. *
ШИМАНОВСКИЙ Н.Л. и др. Наноразмерные частицы оксида железа для диагностики и гипертермической терапии в онкологии" Российский биотерапевтический журнал, vol. 10, no. 2, 2011, pp. 25-32. *
ШИМАНОВСКИЙ Н.Л. и др. Наноразмерные частицы оксида железа для диагностики и гипертермической терапии в онкологии" Российский биотерапевтический журнал, vol. 10, no. 2, 2011, pp. 25-32. INGRID HILGER et al. Iron oxide-based nanostructures for MRI and magnetic hyperthermia // Nanomedicine (2012) 7(9), p. 1443-1459. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Shevtsov et al. Targeting experimental orthotopic glioblastoma with chitosan-based superparamagnetic iron oxide nanoparticles (CS-DX-SPIONs)
Li et al. Enhancing the magnetic relaxivity of MRI contrast agents via the localized superacid microenvironment of graphene quantum dots
Ding et al. Furin‐controlled Fe3O4 nanoparticle aggregation and 19F signal “Turn‐On” for precise MR imaging of tumors
RU2186405C2 (ru) Усиление ядерного магнитного резонанса (ямр) и магниторезонансной визуализации (мрв) в присутствии гиперполяризованных благородных газов
US6311086B1 (en) Overhauser magnetic resonance imaging (ORMI) method comprising ex vivo polarization of a magnetic resonance (MR) imaging agent
CN100571787C (zh) 仲氢标记剂及其在磁共振成像中的应用
US6008644A (en) Nuclear Polarization Enhanced Nuclear Magnetic Resonance Imaaging
Sulek et al. Peptide functionalized superparamagnetic iron oxide nanoparticles as MRI contrast agents
US20070059775A1 (en) Synthesis and conjugation of iron oxide nanoparticles to antibodies for targeting specific cells using fluorescence and MR imaging techniques
Lee et al. PEGylated bilirubin-coated iron oxide nanoparticles as a biosensor for magnetic relaxation switching-based ROS detection in whole blood
US20120114564A1 (en) Mri t1 contrasting agent comprising manganese oxide nanoparticle
TW205006B (ru)
Erdal et al. A comparative study of receptor-targeted magnetosome and HSA-coated iron oxide nanoparticles as MRI contrast-enhancing agent in animal cancer model
RU2659949C1 (ru) Способ получения препарата на основе магнитных наночастиц (МНЧ) оксида железа для МРТ-диагностики новообразований
US20110182815A1 (en) Method for the detection of enzymatic activity with magnetically functionalized substrates
JP2003530927A (ja) 超分極化造影剤を用いた温度またはpH値の生体内測定のためのMR法
Pudakalakatti et al. Hyperpolarized MRI with silicon micro and nanoparticles: Principles and applications
Gong et al. A dual ligand targeted nanoprobe with high MRI sensitivity for diagnosis of breast cancer
Wei et al. Small functionalized iron oxide nanoparticles for dual brain magnetic resonance imaging and fluorescence imaging
RU2723894C1 (ru) Способ получения препарата для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии
RU2723932C1 (ru) Препарат для диагностики новообразований методом магнитно-резонансной томографии
Wang et al. Relaxation behavior study of ultrasmall superparamagnetic iron oxide nanoparticles at ultralow and ultrahigh magnetic fields
Khaniabadi et al. Study the Anti-MUC1 antibody-based iron oxide nanoparticles on three-dimension spheroid and breast cancer (MCF-7) cell imaging
Chaabane et al. In vivo MR imaging of fibrin in a Neuroblastoma tumor model by means of a targeting Gd-containing peptide
RU2530762C2 (ru) Способ диагностики мультиформной глиобластомы с помощью мрт