RU2720111C1 - Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов - Google Patents

Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов Download PDF

Info

Publication number
RU2720111C1
RU2720111C1 RU2018147420A RU2018147420A RU2720111C1 RU 2720111 C1 RU2720111 C1 RU 2720111C1 RU 2018147420 A RU2018147420 A RU 2018147420A RU 2018147420 A RU2018147420 A RU 2018147420A RU 2720111 C1 RU2720111 C1 RU 2720111C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
dehydration
active substances
relative humidity
biomaterials
dry
Prior art date
Application number
RU2018147420A
Other languages
English (en)
Inventor
Валерий Юрьевич Давыдкин
Игорь Юрьевич Давыдкин
Александра Вадимовна Мелихова
Эльвира Владимировна Климова
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2018147420A priority Critical patent/RU2720111C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2720111C1 publication Critical patent/RU2720111C1/ru

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
    • F26—DRYING
    • F26B—DRYING SOLID MATERIALS OR OBJECTS BY REMOVING LIQUID THEREFROM
    • F26B3/00—Drying solid materials or objects by processes involving the application of heat
    • F26B3/02—Drying solid materials or objects by processes involving the application of heat by convection, i.e. heat being conveyed from a heat source to the materials or objects to be dried by a gas or vapour, e.g. air
    • F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
    • F26—DRYING
    • F26B—DRYING SOLID MATERIALS OR OBJECTS BY REMOVING LIQUID THEREFROM
    • F26B5/00—Drying solid materials or objects by processes not involving the application of heat
    • F26B5/16—Drying solid materials or objects by processes not involving the application of heat by contact with sorbent bodies, e.g. absorbent mould; by admixture with sorbent materials

Abstract

Изобретение относится к медицине и фармацевтической промышленности. При осуществлении способа высокодисперсные биоматериалы, содержащие действующие вещества биологической природы в жидкой фазе, обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, при температуре 20-25°С и относительной влажности воздуха 20-80%. Достигается снижение инактивации и повышение концентрации действующих веществ биологической природы в процессе высушивания высокодисперсных биоматериалов и повышение концентрации действующих веществ. 1 табл., 5 пр.

Description

Изобретение относится к медицине и фармацевтической промышленности и касается способа обезвоживания конвективным методом биологических материалов, находящихся в высокодисперсном состоянии и содержащих бактерии, вирусы, иммуноглобулины и другие действующие вещества биологической природы.
Известен способ сушки биологических материалов, в соответствии с которым обезвоживание осуществляют в два этапа: на первом этапе частичное обезвоживание материала осуществляют за счет смешивания его с безводной лактозой, при этом лактоза превращается в кристаллогидрат, что в последующем облегчает процесс удаления влаги до требуемой остаточной влажности материала (от 2 до 4%); на втором этапе осуществляют досушивание материала вакуумным испарением влаги при разрежении, исключающем самозамораживание, при подогреве не выше 25°С (1).
Основным недостатком известного аналога является невозможность его использования для обезвоживания высокодисперсных материалов.
Наиболее близким по технической сущности к заявляемому является способ получения сухих бактериальных препаратов, в соответствии с которым суспензию микроорганизмов смешивают с сорбентом - сухим высокодисперсным порошком диоксида кремния, в соотношении 2:1, сушку ведут в термостате при 27-32°С или на воздухе и полученную смесь диспергируют до тонкодисперсного состояния (2).
По сути известный способ предполагает комбинированное обезвоживание суспензии микроорганизмов: на первом этапе удаление части влаги сорбентом - порошком диоксида кремния, на втором - удаление оставшейся влаги из материала (и сорбента) в термостате при 27-32°С или на воздухе.
Основными недостатками прототипа являются большая инактивация действующих веществ биологической природы в процессе обезвоживания биоматериалов и невозможность получения сухих материалов с высокой дисперсностью. Кроме того, способ не учитывает влияние относительной влажности воздуха на результат процесса высушивания.
Общим признаком заявляемого изобретения и прототипа является удаление влаги при атмосферном давлении (на воздухе) за счет конвективного подвода тепла к высушиваемому материалу из окружающей среды.
Технической проблемой, решаемой при создании изобретения, является разработка способа конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов, содержащих действующие вещества биологической природы, позволяющего снизить инактивацию действующих веществ в процессе обезвоживания и повысить концентрацию действующих веществ в полученном материале.
Техническим результатом изобретения является тот факт, что заявленный конвективный способ обезвоживания, по сравнению с прототипом, позволяет снизить инактивацию действующих веществ биологической природы на 16-50%, а высокодисперсные биоматериалы, полученные при реализации заявленного способа, при одинаковом влагосодержании обладают в 2,5-15 раз большей концентрацией действующих веществ по сравнению с препаратами, приготовленными в соответствии с прототипом.
Сущность изобретения заключается в том, что высокодисперсные биоматериалы, содержащие действующие вещества биологической природы в жидкой фазе, обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, при температуре 20-25°С и относительной влажности воздуха 20-80%.
Стабилизация микрокапельного состояния жидкой фазы в препарате достигается при соотношении жидкой фазы и сухого высокодисперсного гидрофобного аэросила от 10:1,5 до 10:6 (3).
Известно, что каплю жидкости в воздухе сжимает лапласовское давление, величина которого возрастает с уменьшением размера капли. Движущей силой процесса обезвоживания капли является разница в давлении пара над поверхностью капли и в окружающем ее газе (воздухе), и чем меньше размер капли, тем выше скорость ее испарения. Схожесть состояния жидкости в аэрозоле и в микрокапельном порошке обусловливает возможность эффективного атмосферного обезвоживания порошка. Однако, в этом случае на биологические компоненты в порошке, как и в аэрозоле, помимо собственно обезвоживания будут оказывать влияние различные действующие факторы, к наиболее существенным из которых следует отнести температуру и относительную влажность окружающего воздуха.
Данные литературы о зависимости инактивации биокомпонентов в аэрозоле от относительной влажности воздуха противоречивы. Так, температура 12-15°С и относительная влажность 50-90% наиболее благоприятны для выживания пастерелл в воздухе (4). Влодавец В.В. обнаружил чрезвычайно быстрое отмирание Е. coli и S. marcescens в аэрозолях при низких показателях относительной влажности (5). Самая высокая выживаемость этих бактерий отмечена при температуре 18,5-21°С и относительной влажности воздуха выше 70%. Он же отмечает, что Staphlococcus albus и Sarcina lutea, адаптированные к условиям внешней среды, хорошо сохраняются в аэрозоле при относительной влажности от 12 до 90% и температуре 18,5-21°С.
Songler J.R. (6), изучая выживаемость при температуре воздуха 23°С некоторых инфекционных агентов, пришел к выводу, что вирус ринотрахеита крупного рогатого скота и бактериофаг Е. coli ВТ3 более устойчивы при относительной влажности 90%, чем при влажности воздуха 10 и 35%, тогда как вирусы болезни Ньюкасла и везикулярного стоматита выживали лучше при относительной влажности более 10%. Изучая выживаемость в аэрозоле вирусов группы Колумбия-SK и Менго-МЕ, авторы (7) установили, что при температуре 16°С скорость инактивации вирусов в первые 5 мин витания в большей степени зависит от влажности воздуха и достигает максимума при высоких (80%) и низких (5%) ее значениях. По данным авторов (8), вирус оспы голубей в аэрозоле устойчив при различных значениях относительной влажности, тогда как вирус саркомы Рауса инактивируется при низкой влажности и довольно стабилен лишь при относительной влажности воздуха выше 70%.
Нашими собственными исследованиями установлено, что наименьшая инактивация ряда биокомпонетов при атмосферном обезвоживнии микрокапельных порошков при температуре 20-25°С происходит в диапазоне относительной влажности воздуха от 20 до 80%.
Согласно изобретению снижение инактивации действующих веществ биологической природы в процессе обезвоживания высокодисперсных биоматериалов и повышение концентрации действующих веществ обеспечивается тем, что жидкую фазу обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, при температуре 20-25°С и относительной влажности воздуха 20-80%.
Заявляемый способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов является новым и в литературе не описан.
Жизнеспособность микроорганизмов после воздействия различных факторов очень часто оценивают по их выживаемости (9), но в данном случае эффективность процесса обезвоживания оценивали по инактивации (10) действующих веществ в биоматериалах. Термин инактивация в данном случае является более уместным и универсальным по сравнению с понятием выживаемость, пригодным для описания живых микроорганизмов, так как не требует смысловой привязки к таким эффектам, как например, потеря активности ферментов растительного происхождения при их переработке и им подобным.
Расчет инактивации действующих веществ осуществляли по формуле
И=100-В,
где И - инактивация действующих веществ, %;
В - выживаемость, %.
Выживаемость микробных клеток в процессе получения микрокапельных порошков рассчитывали по формуле
В=БКмп×(1+γ)×100/БКбс,
где БКмп - концентрация клеток в микрокапельном порошке, КОЕ/г;
БКбс - концентрация живых клеток в биосуспензии, КОЕ/мл;
γ - отношение массы аэросила к массе биосуспензии в микрокапельном порошке.
Выживаемость микроорганизмов при обезвоживании микрокапельного порошка до промежуточной влажности или в отделенном рассевом сухом порошке определяли по выражению
В=БКс(п)×(100-Wмп)×100/БКмп×(100-Wc(п)),
где БКc(п) - концентрация клеток в обезвоженном микрокапельном порошке или отделенном порошке, КОЕ/г;
Wc(п) - остаточная влажность обезвоженного микрокапельного порошка или отделенного рассевом порошка, %;
Wмп - относительная влажность микрокапельного порошка.
Выживаемость микроорганизмов при приготовлении сухого препарата сорбционным обезвоживанием рассчитывали по формуле
В=БКп×Мп×100/БКмп×Ммп,
где БКп - концентрация микробных клеток в сухом препарате, КОЕ/г;
Мп - масса сухого препарата, г;
Ммп - масса микрокапельного порошка, взятого для приготовления сухого препарата, г.
Количество жизнеспособных энтеробактерий рассчитывали по формуле
БК=N×10n-1×V/P,
где БК - биологическая концентрация клеток в материале, КОЕ/г, КОЕ/мл;
N- среднее арифметическое числа колоний в пробирках;
n - степень последнего разведения;
V - объем разводящей жидкости, мл;
Р - навеска сухого (г) или объем жидкого (мл) материала.
Биологическую концентрацию живых аэробных микроорганизмов определяли по выражению
БК=N×10n+1×V/P,
где БК - биологическая концентрация клеток в материале, КОЕ/г, КОЕ/мл;
N - среднее арифметическое числа колоний на чашках;
n - степень разведения;
V - объем разводящей жидкости, мл;
Р - навеска сухого (г) или объем жидкого (мл) материала.
Биологическую активность препаратов иммуноглобулинов характеризовали противосальмонеллезной активностью (в титрах РПГА) (11). Концентрацию вакцинного штамма La-Sota вируса болезни Ньюкасла определяли культивированием в аллантоисной жидкости куриных эмбрионов, а биологическую активность вируса оценивали по эмбриональной инфицирующей дозе (ЭИД50), которую рассчитывали по методу Кербера в модификации Ашмарина (12).
Стерилизацию гидрофобного аэросила проводили в сухо-жаровом шкафу SUP-4 при температуре 120°С с выдержкой в установившемся тепловом режиме не менее 2 часов. Относительную влажность воздуха в помещениях измеряли гигрометром М-19.
Осуществление способа изобретения поясняется на следующих примерах, показывающих снижение инактивации действующих веществ биологической природы в процессе обезвоживания биоматериалов и повышение концентрации действующих веществ при реализации способа.
Пример 1. Объект обезвоживания готовили смешиванием суспензии микроорганизмов Serratia marcescens шт. ВКМ-851 с лактозной защитной средой в соотношении 2:1 и переводом его в микрокапельное состояние в электромагнитном диспергаторе. Микрокапельный порошок тест-культуры для проверки фильтров очистки воздуха с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 47,5×109 КОЕ/г высушивали при атмосферном давлении при температуре 20°С и относительной влажности воздуха 20%.
Влагосодержание сухого препарата тест-культуры для проверки фильтров очистки воздуха, биологическая концентрация действующего вещества и его инактивация в процессе обезвоживания представлены в таблице.
Пример 2. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Bifidobacterium bifidum шт. 1С с сахарозо-молочной защитной средой в соотношений 2:1 и переводили его в микрокапельное состояние в дисковом диспергаторе. Микрокапельный порошок пробиотического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 1,2×109 КОЕ/г высушивали при атмосферном давлении при температуре 20°С и относительной влажности воздуха 80%.
Влагосодержание сухого пробиотического препарата, биологическая концентрация действующего вещества и его инактивация в процессе обезвоживания представлены в таблице.
Пример 3. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии микроорганизмов Lactobacillus acidophilus штаммов 100аш, NK1 и К3Ш24 с сахарозо-молочной защитной средой в соотношении 2:1 и переводили его в микрокапельное состояние в дисковом диспергаторе. Микрокапельный порошок пробиотического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, с концентрацией жизнеспособных микроорганизмов 0,9×109 КОЕ/г высушивали при атмосферном давлении при температуре 25°С и относительной влажности воздуха 20%.
Влагосодержание сухого пробиотического препарата, биологическая концентрация действующего вещества и его инактивация в процессе обезвоживания представлены в таблице.
Пример 4. Объект обезвоживания готовили смешением раствора иммуноглобулинов IgG, IgA, IgM с глицином (2%) в качестве защитной среды и переводили его в микрокапельное состояние в дисковом диспергаторе. Микрокапельный порошок иммунобиологического препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, с концентраций белка 38 мг/г и противосальмонеллезной активностью 1:640 в титрах РПГА высушивали при атмосферном давлении при температуре 25°С и относительной влажности воздуха 80%.
Влагосодержание сухого иммунобиологического препарата, биологическая концентрация действующего вещества и его инактивация в процессе обезвоживания представлены в таблице.
Пример 5. Объект обезвоживания готовили смешением суспензии вакцинного штамма La-Sota вируса болезни Ньюкасла с защитной средой на основе обезжиренного молока в соотношении 2:1 и переводили его в микрокапельное состояние в дисковом диспергаторе. Микрокапельный порошок вакцинного препарата с жидкой фазой в микрокапельном состоянии, стабилизированном сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, с содержанием жизнеспособных вирусов 10,5 lg ЭИД50/г высушивали при атмосферном давлении при температуре 23°С и относительной влажности воздуха 50%.
Влагосодержание сухого вакцинного препарата, биологическая концентрация действующего вещества и его инактивация в процессе обезвоживания представлены в таблице.
Figure 00000001
Figure 00000002
Как следует из анализа данных, представленных в таблице, инактивация действующих веществ биологической природы в результате процесса по заявленному способу обезвоживания снизилась на 16-50%. Кроме того, высокодисперсные биоматериалы, полученные при реализации заявленного конвективного способа обезвоживания, при одинаковом влагосодержании обладают в 2,5-15 раз большей концентрацией действующих веществ по сравнению с препаратами, приготовленными в соответствии с прототипом. Указанное обеспечивается обезвоживаем жидкой фазы из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, при температуре 20-25°С и относительной влажности воздуха 20-80%.
Источники информации
1. RU, заявка 93027480 A, F26B 5/16, 27.10.1996.
2. RU 2104299 С1.
3. RU 2440105 С2.
4. Ярных B.C. Применение аэрозолей в ветеринарии. - М.: Сельхозиздат, 1962.- 240 с.
5. Влодавец В.В. Определение жизнеспособности бактерий в аэрозоле // Журнал микробиологии. - 1963. - №4. - С. 46-50.
6. Songler J.R. Influence of relative humidity on the survival of some air-borne viruses // Appl. Microbiol. - 1967. - Vol. 15, №1. - P.35-42.
7. Akers T.I., Bond S.N., Goldberg L.J. Effect of temperature and relative humidity on survival of air-born Columbia-SK group viruses // Appl. Microbiol. - 1966. -Vol. 14, №3.-P.361-364.
8. Webb S.J., Bather R., Hodges R.W. The effect relative humidity and inositol on airborne viruses // Canad. J. Microbiol. - 1963. - Vol. 9, №1. - P.87-92.
9. Кинетика измельчения биопрепаратов в аппарате на базе плоского двухстореннего индуктора / И.Ю. Давыдкин, В.Ю. Давыдкин, Ю.П. Давыдкин и др. // Медицинская промышленность и биотехнология. Наука-производство-маркетинг.1992. Вып. 5-6. С. 51-58.
10. RU 2440098 С2.
11. ФС 42-3347-97.
12. Сюрин В.Н., Белоусов Р.В., Фомина Н.В. Ветеринарная вирусология. - М.: Колос, 1986.

Claims (1)

  1. Способ конвективного обезвоживания при атмосферном давлении высокодисперсных биоматериалов, содержащих действующие вещества биологической природы в жидкой фазе, отличающийся тем, что жидкую фазу обезвоживают из микрокапельного состояния, стабилизированного сухим высокодисперсным гидрофобным аэросилом, при температуре 20-25°С и относительной влажности воздуха 20-80%.
RU2018147420A 2018-12-28 2018-12-28 Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов RU2720111C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018147420A RU2720111C1 (ru) 2018-12-28 2018-12-28 Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018147420A RU2720111C1 (ru) 2018-12-28 2018-12-28 Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2720111C1 true RU2720111C1 (ru) 2020-04-24

Family

ID=70415594

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018147420A RU2720111C1 (ru) 2018-12-28 2018-12-28 Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2720111C1 (ru)

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2043587C1 (ru) * 1992-10-22 1995-09-10 Вирусологический центр научно-исследовательского института микробиологии Министерства обороны РФ Способ сушки биологических материалов
RU2104299C1 (ru) * 1996-05-24 1998-02-10 Валентина Ивановна Ходак Способ получения сухих бактериальных препаратов
RU2268608C2 (ru) * 2003-11-05 2006-01-27 ОНО "Загорское ЭПХ ВНИТИП" ГНУ ВНИТИП Россельхозакадемии Сухой препарат куриной желчи (бад-"стикфел") и способ его получения
RU2268926C2 (ru) * 2003-07-10 2006-01-27 Вирусологический центр НИИ Микробиологии Министерства обороны Российской Федерации Сухой пробиотический препарат и способ его получения
RU2278141C2 (ru) * 2000-08-09 2006-06-20 Хенкель КГАА Водные клеящие системы, способ их получения и их применение
RU2440105C2 (ru) * 2009-01-15 2012-01-20 Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" (ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора) Способ получения высокодисперсных биологически активных материалов
RU2538109C1 (ru) * 2013-07-04 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный технологический университет" (ФГБОУ ВПО "КубГТУ") Вафельные хлебцы

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2043587C1 (ru) * 1992-10-22 1995-09-10 Вирусологический центр научно-исследовательского института микробиологии Министерства обороны РФ Способ сушки биологических материалов
RU2104299C1 (ru) * 1996-05-24 1998-02-10 Валентина Ивановна Ходак Способ получения сухих бактериальных препаратов
RU2278141C2 (ru) * 2000-08-09 2006-06-20 Хенкель КГАА Водные клеящие системы, способ их получения и их применение
RU2268926C2 (ru) * 2003-07-10 2006-01-27 Вирусологический центр НИИ Микробиологии Министерства обороны Российской Федерации Сухой пробиотический препарат и способ его получения
RU2268608C2 (ru) * 2003-11-05 2006-01-27 ОНО "Загорское ЭПХ ВНИТИП" ГНУ ВНИТИП Россельхозакадемии Сухой препарат куриной желчи (бад-"стикфел") и способ его получения
RU2440105C2 (ru) * 2009-01-15 2012-01-20 Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" (ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора) Способ получения высокодисперсных биологически активных материалов
RU2538109C1 (ru) * 2013-07-04 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный технологический университет" (ФГБОУ ВПО "КубГТУ") Вафельные хлебцы

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cox Stability of airborne microbes and allergens
JP4557311B2 (ja) 乾燥粉末細胞および細胞培養試薬ならびにこれらの生成方法
US9255251B2 (en) Purified bacteriophage, its preparation and application
AU701024B2 (en) Method for preparing an influenza virus, antigens obtained and applications thereof
Fraser et al. Increased tendency to spontaneous in-vitro lymphocyte transformation in clinically active multiple sclerosis
CS276472B6 (en) Method of vital viral cultures maintenance
Kleinerman et al. Depression of human monocyte chemotaxis by herpes simplex and influenza viruses
US20020015999A1 (en) Methods for reducing adventitious agents and toxins and cell culture reagents produced thereby
Manchee et al. Utilization of neuraminic acid receptors by mycoplasmas
Demazeau et al. High hydrostatic pressure and biology: a brief history
Ahmadi et al. Thermal-stability and reconstitution ability of Listeria phages P100 and A511
AU2008264233A1 (en) Cell culture media
Bucknall et al. Studies with human coronaviruses II. Some properties of strains 229E and OC43
Shen et al. Commercially produced spray-dried porcine plasma contains increased concentrations of porcine circovirus type 2 DNA but does not transmit porcine circovirus type 2 when fed to naive pigs
RU2720111C1 (ru) Способ конвективного обезвоживания высокодисперсных биоматериалов
RU2720175C1 (ru) Способ конвективного высушивания высокодисперсных биоматериалов
Petricciani et al. Bacteriophages in live virus vaccines
RU2440099C2 (ru) Способ комбинированного обезвоживания высокодисперсных биологически активных материалов
RU2583136C1 (ru) Способ комбинированного обезвоживания высокодисперсных биологически активных материалов
Moody et al. Bacteriophages and endotoxin in licensed live-virus vaccines
Schmidt et al. Inhibitors of Echovirus and Reovirus Hemagglutination: II. Serum and Phospholipid Inhibitors
US3847737A (en) Inactivation of myxoviruses and method of preparing a vaccine therefrom
DK147889B (da) Fremgangsmaade til dyrkning af virus
Schmidt et al. Inhibitors of Echovirus and Reovirus Hemagglutination: I. Inhibitors in Tissue Culture Fluids
Shen et al. Commercially produced spray dried porcine plasma contains high levels of porcine circovirus type 2 (PCV2) DNA but did not transmit PCV2 when fed to naïve pigs