RU2716819C1 - Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex - Google Patents

Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex Download PDF

Info

Publication number
RU2716819C1
RU2716819C1 RU2018146415A RU2018146415A RU2716819C1 RU 2716819 C1 RU2716819 C1 RU 2716819C1 RU 2018146415 A RU2018146415 A RU 2018146415A RU 2018146415 A RU2018146415 A RU 2018146415A RU 2716819 C1 RU2716819 C1 RU 2716819C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
protein
eye
solution
bod
peptide complex
Prior art date
Application number
RU2018146415A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Анна Павловна Ильина
Михаил Сергеевич Краснов
Виктория Петровна Ямскова
Игорь Александрович Ямсков
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью «Институт проблем биорегуляции»
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью «Институт проблем биорегуляции» filed Critical Общество с ограниченной ответственностью «Институт проблем биорегуляции»
Priority to RU2018146415A priority Critical patent/RU2716819C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2716819C1 publication Critical patent/RU2716819C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/30Nerves; Brain; Eyes; Corneal cells; Cerebrospinal fluid; Neuronal stem cells; Neuronal precursor cells; Glial cells; Oligodendrocytes; Schwann cells; Astroglia; Astrocytes; Choroid plexus; Spinal cord tissue
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/38Albumins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P27/00Drugs for disorders of the senses
    • A61P27/02Ophthalmic agents

Abstract

FIELD: biotechnology; medicine.
SUBSTANCE: invention refers to biotechnology and medicine, namely to a protein-peptide complex and a pharmacological composition for preventing and treating retinal diseases of the human eye and farm animals. Protein-peptide complex is obtained by reacting equimolecular amounts of a mixture of regulatory peptides with molecular weights of 1,000–6,000 Da or a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Da and serum albumin with molecular weights of 66,362–66,898 Da, recovered from pigmented epithelium of the eyes of vertebrates. Pharmacological composition contains a protein-peptide complex and a pharmaceutically acceptable carrier.
EFFECT: protein-peptide complex described above and a pharmacological composition containing a protein-peptide complex have a protective effect on the state of tissues of the posterior sector of the eye - pigment epithelium, neural retina, sclera, choroid, which is manifested in maintaining the adhesion, polypheraphy and differentiation status of pigment cells, as well as in maintaining the viability of bipolar cells and Muller glia in the retina.
2 cl, 6 dwg, 4 tbl, 16 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии и медицине и конкретно - к биологически активному белково-пептидному комплексу (далее - БПК), образованному взаимодействием белка и пептида, выделенных из ткани пигментного эпителия (далее - ПЭ) глаза позвоночного животного, который может быть использован в качестве субстанции лекарственного препарата для профилактики и лечения ретинальных заболеваний глаза у человека и сельскохозяйственных животных.The invention relates to biotechnology and medicine, and specifically to a biologically active protein-peptide complex (hereinafter - BOD), formed by the interaction of a protein and a peptide isolated from the tissue of the pigment epithelium (hereinafter - PE) of the vertebrate eye, which can be used as a drug substance a drug for the prevention and treatment of retinal eye diseases in humans and farm animals.

Несмотря на успехи современной офтальмологии в лечении распространенных глазных заболеваний, их частота в настоящее время продолжает возрастать. Это связано с широким применением теле- и компьютерной техники, которое приводит к значительному увеличению нагрузок на зрительный аппарат, особенно на сетчатку и ретинальный ПЭ - основные ткани глаза, участвующие в формировании зрительного сигнала. В настоящее время в практике офтальмологии препараты, способствующие восстановлению ПЭ, при нарушении его морфофункционального состояния, отсутствуют. Поэтому, целью настоящего изобретения явилось биологически активной субстанции - БПК, обладающего тканеспецифическим, но не видоспецифическим протекторным действием на сетчатку и ПЭ глаза позвоночных животных.Despite the successes of modern ophthalmology in the treatment of common eye diseases, their frequency currently continues to increase. This is due to the widespread use of television and computer equipment, which leads to a significant increase in the load on the visual apparatus, especially on the retina and retinal PE - the main tissues of the eye involved in the formation of the visual signal. Currently, in the practice of ophthalmology, drugs that contribute to the restoration of PE in violation of its morphofunctional state are absent. Therefore, the aim of the present invention was a biologically active substance - BOD, which has a tissue-specific, but not species-specific protective effect on the retina and PE of the eyes of vertebrates.

Известно изобретение по патенту РФ №2073518 - средство, восстанавливающее функцию сетчатой оболочки глаза МКИ6 А61К 35/44, A61F 9/00, приоритет от 17.06.93. В данном изобретении описано средство, представляющее собой комплекс низкомолекулярных полипептидов, выделенных из сетчатки млекопитающих экстракцией 3%-ным раствором уксусной кислоты с добавлением хлористого цинка и осаждением белков надосадочной жидкости ацетоном. Средство способствовало восстановлению функции сетчатой оболочки глаза. Недостатками данного изобретения является использование смеси пептидов с различными молекулярными массами, отсутствие идентификации среди них биологически активных пептидов, проявляющих регенетивную активность.The invention is known according to the patent of the Russian Federation No. 2073518 - a means of restoring the function of the retina of the eye MKI 6 A61K 35/44, A61F 9/00, priority from 06/17/93. The present invention describes an agent that is a complex of low molecular weight polypeptides isolated from mammalian retina by extraction with a 3% solution of acetic acid with the addition of zinc chloride and precipitation of the supernatant protein with acetone. The tool contributed to the restoration of the function of the retina of the eye. The disadvantages of this invention is the use of a mixture of peptides with different molecular weights, the lack of identification among them of biologically active peptides exhibiting regenerative activity.

Известен способ [RU патент РФ №2373904 (2009)] лечения различных патологий заднего отрезка глаза пептидными биорегуляторами ретиналамином и кортексином, которые представляют собой полипептидные фракции сетчатки глаз скота. Недостаток изобретения - внутримышечное применение растворов биорегуляторов в высокой концентрации: 0,1% раствора ретиналамина и 0,2% раствора кортексина. Возможность развития аллергических реакций при применении ретиналамина и возрастные ограничения до 18 лет. При применении также кортексина возможна индивидуальная гиперчувствительность к компонентам препарата.The known method [RU patent of the Russian Federation No. 2373904 (2009)] for the treatment of various pathologies of the posterior segment of the eye with peptide bioregulators retinalamine and cortexin, which are polypeptide fractions of the retina of livestock. The disadvantage of the invention is the intramuscular use of solutions of bioregulators in high concentration: 0.1% retinalamine solution and 0.2% cortexin solution. The possibility of developing allergic reactions with the use of retinalamin and age restrictions up to 18 years. If cortexin is also used, individual hypersensitivity to the components of the drug is possible.

Известен тетрапептид, стимулирующий функцию сетчатой оболочки глаза, фармакологическое средство на его основе и способ его применения [RU патент РФ №2161982 (2001)]. Недостаток данного изобретения - инъекции в область глаза, что может вызывать травматические повреждения, также препарат используется в виде раствора высокой концентрации, за счет чего возможны побочные реакции со стороны организма, в том числе развитие аллергических реакций.Known tetrapeptide that stimulates the function of the retina of the eye, a pharmacological agent based on it and the method of its use [RU patent of the Russian Federation No. 2161982 (2001)]. The disadvantage of this invention is the injection into the eye area, which can cause traumatic injuries, the drug is also used in the form of a high concentration solution, due to which adverse reactions from the body, including the development of allergic reactions, are possible.

Известен также способ получения биологически активного комплекса и биологически активного белково-пептидного комплекса (патент RU2428196), обладающего нейрорегенеративным и нейропротективным действием и стимулирующим физиологическую и репаративную регенерацию нервной ткани, для применения в производстве лекарственных препаратов при заболеваниях центральной и периферической нервной системы и способу его получения. Данный способ позволяет получить смесь белков и полипептидов из головного мозга эмбрионов копытных животных. Недостатками данного изобретения являются незавершенная очистка конечной субстанции, представляющей собой белково-пептидный комплекс, а также использование эмбрионального материала, который может содержать другие биологически активные вещества, способные вызывать побочные неблагоприятные реакции в тканях взрослого организма. Также к недостаткам данного изобретения относится получение только из мозга эмбрионов копытных животных белково-пептидного комплекса, который не оказывает влияние на состояние тканей глаза, в том числе, пигментного эпителия.There is also known a method for producing a biologically active complex and a biologically active protein-peptide complex (patent RU2428196), which has a neuroregenerative and neuroprotective effect and stimulates the physiological and reparative regeneration of nervous tissue, for use in the manufacture of drugs for diseases of the central and peripheral nervous system and the method for its preparation . This method allows to obtain a mixture of proteins and polypeptides from the brain of embryos of ungulates. The disadvantages of this invention are the incomplete purification of the final substance, which is a protein-peptide complex, as well as the use of embryonic material, which may contain other biologically active substances that can cause adverse reactions in the tissues of an adult body. The disadvantages of this invention include obtaining only from the brain of ungulates of ungulates of animals a protein-peptide complex that does not affect the state of the eye tissues, including pigment epithelium.

Из RU 2311915, 10.12.2007 известен способ получения лекарственного средства для лечения заболеваний сетчатки и ПЭ глаза, а также сосудистой оболочки глаза, в результате которого из пигментного эпителия сетчатки позвоночных животных выделяют фракцию, содержащую регуляторные пептиды с молекулярной массой менее 8 Да, которая проявляет активность в дозах, соответствующих концентрациям 10-10 - 10-12 мг/мл (в физиологическом водно-солевом растворе). Изобретение обеспечивает получение препарата, содержащего регуляторные пептиды с небольшой молекулярной массой, которые в низких дозах оказывают протекторное действие на состояние тканей заднего отдела сетчатки глаза. Однако, использование полученного пептид-содержащего препарата не является достаточно эффективным средством для лечения глазных заболеваний, связанных с нарушением функции сетчатки и ПЭ.From RU 2311915, December 10, 2007, a method is known for producing a medicament for treating diseases of the retina and PE of the eye, as well as the choroid, as a result of which a fraction containing regulatory peptides with a molecular weight of less than 8 Da is isolated from pigment epithelium of the vertebral animals, which exhibits activity in doses corresponding to concentrations of 10 -10 - 10 -12 mg / ml (in physiological saline-water solution). The invention provides a preparation containing regulatory peptides with a small molecular weight, which at low doses have a protective effect on the state of the tissues of the posterior retina. However, the use of the obtained peptide-containing preparation is not sufficiently effective for the treatment of eye diseases associated with impaired retinal function and PE.

Из статьи В.П. Ямсковой и др. «Структурно-функциональные особенности нового биорегулятора, выделенного из ткани пигментного эпителия глаза быка» («Биохимия», 2009, том 74, вып. 9, с. 1195-1203) известен биорегулятор, действующий в сверхмалых дозах 10-17 мг белка. Функциональной основой данного биорегулятора являются регуляторный пептид с молекулярной массой 4372 Да и смесь белков с молекулярными массами 14980-66283 Да), которая модулирует активность регуляторного пептида. Отмечено, что регуляторный пептид отвечает за проявление биорегулятором мембранотропной активности, а белок-содержащая фракция - за его биологическое действие в сверхмалых дозах.From the article by V.P. Yamskova et al. “Structural and functional features of a new bioregulator isolated from pigment epithelium tissue of the bull’s eye” (Biochemistry, 2009, vol. 74, issue 9, pp. 1195-1203), a bioregulator operating in ultra-low doses of 10 -17 mg protein. The functional basis of this bioregulator is a regulatory peptide with a molecular mass of 4372 Da and a mixture of proteins with a molecular mass of 14980-66283 Da), which modulates the activity of the regulatory peptide. It was noted that the regulatory peptide is responsible for the manifestation of membrane-active activity by the bioregulator, and the protein-containing fraction is responsible for its biological effect in ultra-low doses.

Техническая задача, решаемая предлагаемым изобретением, заключается в создании БПК путем взаимодействия высокоочищенных препаратов регуляторного пептида и белка, выделенных из неповрежденных, содержащих наибольшее количество физиологически активных белков и пептидов областей ретинального ПЭ глаза позвоночных животных, который может быть использован в качестве субстанции нового лекарственного средства для лечения глазных ретинальных заболеваний.The technical problem solved by the present invention is to create BOD by interacting with highly purified preparations of the regulatory peptide and a protein isolated from intact, containing the largest number of physiologically active proteins and peptides of the regions of the retinal PE of the vertebrate eye, which can be used as a substance of a new drug for treatment of ocular retinal diseases.

Техническим результатом заявленного изобретения является получение биологически активного комплекса путем взаимодействия пептида и белка, выделенных из ткани ПЭ глаза позвоночных животных, оказывающего протекторное действие на состояние тканей заднего сектора глаза - ПЭ, нейральной сетчатки; склеры, хороида, которое выражается в сохранении статуса адгезии, полиферациии и дифференцировки пигментных клеток, а также в поддержании жизнеспособности биполярных клеток и Мюллеровской глии в сетчатке.The technical result of the claimed invention is to obtain a biologically active complex by the interaction of a peptide and a protein isolated from PE tissue of the eye of vertebrate animals, which has a protective effect on the state of the tissues of the posterior sector of the eye - PE, neural retina; sclera, a choroid, which is expressed in maintaining the status of adhesion, polyperation and differentiation of pigment cells, as well as in maintaining the viability of bipolar cells and Mueller glia in the retina.

Поставленная техническая задача и технический результат достигаются группой изобретений, в которую входит белково-пептидный комплекс, полученный взаимодействием эквимолекулярных количеств выделенных из ткани ПЭ (пигментного эпителия) глаза позвоночных животных смеси регуляторных пептидов с молекулярными массами 1000-6000 Да или регуляторного пептида с молекулярной массой 4372 Да и белка - сывороточного альбумина с молекулярными массами 66362-66898 Да.The stated technical problem and the technical result are achieved by a group of inventions, which includes a protein-peptide complex obtained by the interaction of equimolecular amounts of vertebrate animals extracted from tissue PE (pigment epithelium) of a mixture of regulatory peptides with molecular weights of 1000-6000 Da or a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Yes, and protein - serum albumin with molecular weights of 66362-66898 Yes.

Поставленная техническая задача и технический результат достигаются также фармакологической композицией для профилактики и лечения ретинальных заболеваний глаза человека и сельскохозяйственных животных, включающей белково-пептидный комплекс, охарактеризованный в предыдущем абзаце, и фармацевтически приемлемый носитель и проявляющий биологическую активность в дозах, соответствующих 10-3 - 10-19 мг белка/мл.The stated technical problem and the technical result are also achieved by the pharmacological composition for the prevention and treatment of retinal diseases of the human eye and farm animals, including the protein-peptide complex described in the previous paragraph, and a pharmaceutically acceptable carrier and exhibiting biological activity in doses corresponding to 10 -3-10 -19 mg protein / ml.

И в частности, указанный белково-пептидный комплекс получен взаимодействием эквимолекулярных количеств выделенных из ткани пигментного эпителия (ПЭ) глаза позвоночных животных регуляторного пептида, представляющего собой N-концевой фрагмент фосфодиэстразы циклического гуаназин монофосфата с молекулярной массой 4372Да, и бычьего сывороточного альбумина gi|367460260 с молекулярной массой 66367Да.In particular, the indicated protein-peptide complex was obtained by the interaction of equimolecular amounts of the regulatory peptide of the vertebrate eye pigment epithelium (PE) tissue, the regulatory peptide, which is an N-terminal fragment of phosphodiesterase of cyclic guanazine monophosphate with a molecular weight of 4372 Da, and bovine serum albumin g6060602 molecular weight 66367 Yes.

Полученный комплекс оказывает выраженное протекторное действие в дозах, соответствующих 10-3 - 10-19 мг белка/мл на состояние тканей заднего сектора глаза - ПЭ, нейральной сетчатки, склеры, хороида.The resulting complex has a pronounced protective effect in doses corresponding to 10 -3 - 10 -19 mg of protein / ml on the state of the tissues of the posterior sector of the eye - PE, neural retina, sclera, choroid.

В общем виде способ выделения и очистки БПК по изобретению заключается в том, что из свежеэнуклеированных глаз быка или другого позвоночного животного выделяют макулярную область ретинального ПЭ, промывают ее в физиологическом растворе, выдерживают ткань ПЭ в водно-солевом растворе, центрифугируют тканевой экстракт, собирают надосадочную жидкость, осаждают белки в 100%-ном растворе сульфата аммония, центрифугированием собирают фракцию, флотирующую при 100000 g - 105000 g, диализуют до полного удаления ионов аммония, разделяют высокоэффективной жидкостной хроматографией в градиенте ацетонитрила в 0,1%-ной трифторуксусной кислоте при рН 2,2-3,0, температуре 22-25°С в течение 30-60 минут, собирают фракции гидрофильных пептидов и белка - представителя семейства альбуминов сыворотки крови, из которых удаляют ацетонитрил и смешивают в присутствии 10-3 М CaCl2 в эквимолекулярных количествах.In general terms, the method for isolation and purification of BOD according to the invention consists in isolating the macular region of retinal PE from freshly enucleated eyes of a bull or other vertebrate animal, washing it in physiological saline, keeping the PE tissue in aqueous saline, centrifuging the tissue extract, and collecting the supernatant liquid, precipitated proteins in a 100% solution of ammonium sulfate, centrifuged to collect the fraction floating at 100,000 g - 105,000 g, dialyzed until complete removal of ammonium ions, separated by highly efficient by liquid chromatography in a gradient of acetonitrile in 0.1% trifluoroacetic acid at a pH of 2.2-3.0, a temperature of 22-25 ° C for 30-60 minutes, fractions of hydrophilic peptides and protein, a member of the serum albumin family, are collected, from which acetonitrile is removed and mixed in the presence of 10 -3 M CaCl 2 in equimolecular amounts.

Изобретение обеспечивает получение высокоочищенного БПК, обладающего активностью в дозах, соответствующих 10-3 - 10-19 мг белка/мл.The invention provides a highly purified BOD having activity in doses corresponding to 10 −3 to 10 −19 mg of protein / ml.

Другим объектом заявленного изобретения является фармакологическая композиция для приготовления лекарственного препарата для профилактики и лечения ретинальных заболеваний глаза человека и сельскохозяйственных животных, включающая белково-пептидный комплекс и фармацевтически приемлемый носитель.Another object of the claimed invention is a pharmacological composition for the preparation of a medicament for the prevention and treatment of retinal diseases of the human eye and farm animals, comprising a protein-peptide complex and a pharmaceutically acceptable carrier.

Данный белково-пептидный комплекс (далее - БПК) оказывает протекторное действие на состояние тканей заднего сектора глаза - ПЭ, нейральной сетчатки, склеры, хороида, выражающегося в сохранении статуса адгезии, пролиферации и дифференцировки клеток ПЭ, а также в поддержании жизнеспособности биполярных клеток и Мюллеровской глии в сетчатке.This protein-peptide complex (hereinafter - BOD) has a protective effect on the state of the tissues of the posterior sector of the eye - PE, neural retina, sclera, choroid, which is expressed in maintaining the status of adhesion, proliferation and differentiation of PE cells, as well as in maintaining the viability of bipolar cells and Müller glia in the retina.

Изобретение иллюстрируется приведенными ниже примерами, в которых описан способ получения белково-пептидного комплекса (пример 1) и определение специфической активности (примеры 2-13), а также фиг. 1-6.The invention is illustrated by the following examples, which describe a method for producing a protein-peptide complex (example 1) and determination of specific activity (examples 2-13), as well as FIG. 1-6.

Фиг. 1. Гистологический срез заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, пигментного эпителия, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки (контрольная серия).FIG. 1. A histological section of the posterior part of the eye of the Pleurodeles waltl newt during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, pigment epithelium, choroid, sclera in vitro on the 3rd day (control series).

А-об. 10 × ок. 10;Oh. 10 × approx. ten;

Б-об. 10 × ок. 20.Bean. 10 × approx. 20.

При данном типе культивирования происходит постепенная деградация всех тканей глаза: происходит нарушение адгезии между сетчаткой и ПЭ, в сетчатке наблюдается значительное количество апоптотирующих клеток, а также изменение состояния клеток пигментного эпителия, статуса их дифференцировки, которое оценивают по смещению пигмента на апикальную сторону клеток монослоя, нарушению адгезии между ними и гибелью самих клеток. В склере наблюдаются полости, которые возникли в результате деградации коллагеновых волокон.With this type of cultivation, gradual degradation of all tissues of the eye occurs: there is a violation of adhesion between the retina and PE, a significant number of apoptotic cells are observed in the retina, as well as a change in the state of the pigment epithelium cells, their differentiation status, which is estimated by the pigment displacement on the apical side of the monolayer cells, violation of adhesion between them and the death of the cells themselves. In the sclera, cavities are observed that have arisen as a result of the degradation of collagen fibers.

Фиг. 2. Выявление специфических белков и состояние клеток на гистологических срезах заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, ПЭ, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки (контрольная серия).FIG. 2. Detection of specific proteins and the state of cells on histological sections of the posterior part of the eye of the Pleurodeles waltl newt during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, PE, choroid, sclera in vitro on the 3rd day (control series).

А - иммуногистохимическая окраска на белок фоторецепторов сетчатки рековерин об. × 20 ок. × 10;A - immunohistochemical staining for retina photoreceptor protein reverin vol. × 20 approx. × 10;

Б - иммуногистохимическая окраска на белок клеток Мюллеровской глии в сетчатке GFAP об. × 10 ок. × 10;B - immunohistochemical staining for protein of Mueller glia cells in the retina GFAP vol. × 10 approx. × 10;

В - гистохимическая окраска на фермент сетчатки ацетилхолинэстеразу об. × 20 ок. × 10;B - histochemical staining for the retinal enzyme acetylcholinesterase vol. × 20 approx. × 10;

Г - нормальные и апоптотические ядра биполярных клеток в сетчатке об. × 100, ок. × 10.G - normal and apoptotic nuclei of bipolar cells in the retina about. × 100, approx. × 10.

Фиг. 3. Гистологический срез заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, ПЭ, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки в присутствии выделенного из тканевого экстракта пигментного эпителия глаза быка полипептида с молекулярной массой 4372 Да, представляющего собой N-концевой фрагмент фосфодиэстразы циклического гуанозинмонофосфата (концентрация 10-7 мг белка/мл).FIG. 3. Histological section of the posterior part of the eye of the Triton Pleurodeles waltl during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, PE, choroid, sclera in vitro on the 3rd day in the presence of a polypeptide with a molecular weight of 4372 Da, representing N-, isolated from tissue extract of pigment epithelium of the bull’s eye terminal fragment of phosphodiesterase of cyclic guanosine monophosphate (concentration of 10 -7 mg protein / ml).

А-об. 10 × ок. 10;Oh. 10 × approx. ten;

Б-об. 10 × ок. 20.Bean. 10 × approx. 20.

Фиг. 4. Гистологический срез заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, ПЭ, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки в присутствии выделенного из тканевого экстракта ПЭ глаза быка сывороточного альбумина (gi|367460260) с молекулярной массой 66367 Да, (концентрация 10-7 мг белка/мл). Полное отсутствие протекторного действия данной фракции. Состояние всех тканей глаза заднего отдела глаза не отличается от такового в контрольной серии.FIG. 4. Histological section of the posterior part of the eye of the Triton Pleurodeles waltl during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, PE, choroid, sclera in vitro on the 3rd day in the presence of serum albumin (gi | 367460260) with a molecular weight of 66367 Yes isolated from PE tissue extract of the eye , (concentration of 10 -7 mg protein / ml). The complete lack of protective action of this fraction. The condition of all tissues of the eye of the posterior part of the eye does not differ from that in the control series.

А-об. 10 × ок. 10;Oh. 10 × approx. ten;

Б-об. 10 × ок. 20.Bean. 10 × approx. 20.

Фиг. 5. Гистологический срез заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, ПЭ, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки в присутствии восстановленного белково-пептидного комплекса (концентрация 10-17 мг белка/мл). В данном случае есть наблюдается наибольшая сохранность тканей заднего отдела глаза. Между отростками фоторецепторов, монослоем ПЭ и сосудистой оболочкой отмечены плотные адгезивные взаимодействия. В отличие от других опытных серий в сетчатке наблюдали незначительное количество апоптотирующих клеток. Происходит стабилизация статуса дифференцировки клеток пигментного эпителия, что выражается в равномерном распределении пигмента в данных клетках и в поддержании целостной структуры монослоя. Состояние ткани склеры приближено к состоянию интактной ткани: наблюдается сохранение компактной структуры коллагеновых волокон.FIG. 5. Histological section of the posterior part of the eye of the Triton Pleurodeles waltl during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, PE, choroid, sclera in vitro on the 3rd day in the presence of a restored protein-peptide complex (concentration of 10 -17 mg protein / ml). In this case, there is the greatest safety of the tissues of the posterior part of the eye. Between the processes of photoreceptors, a monolayer of PE and choroid dense adhesive interactions are noted. Unlike other experimental series, a small amount of apoptotic cells was observed in the retina. Stabilization of the status of differentiation of pigment epithelial cells occurs, which is expressed in the uniform distribution of pigment in these cells and in maintaining a holistic monolayer structure. The condition of the sclera tissue is close to the state of intact tissue: the compact structure of collagen fibers is preserved.

А-об. 10 × ок. 10;Oh. 10 × approx. ten;

Б-об. 10 × ок. 20.Bean. 10 × approx. 20.

Фиг. 6. Гистологический срез заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl при органотипическом культивировании тканей нейральной сетчатки, ПЭ, хороида, склеры in vitro на 3-й сутки в присутствии восстановленного белково-пептидного комплекса (концентрация 10-7 мг белка/мл).FIG. 6. Histological section of the posterior part of the eye of the Triton Pleurodeles waltl during organotypic cultivation of tissues of the neural retina, PE, choroid, sclera in vitro on the 3rd day in the presence of a restored protein-peptide complex (concentration of 10-7 mg protein / ml).

А-об. 10 × ок. 10;Oh. 10 × approx. ten;

Б-об. 10 × ок. 20.Bean. 10 × approx. 20.

Протекторное действие восстановленного белково-пептидного комплекса в указанной концентрации выражается в поддержании адгезии между сетчаткой, ПЭ и сосудистой оболочкой на протяженном участке заднего отдела глаза с незначительными нарушениями в некоторых областях. Большая часть клеток сетчатки, как и в контроле, находится в апоптотическом состоянии. Следует отметить, что в монослое клеток ПЭ поддерживались адгезивные взаимодействия. Пигментные гранулы были распределены равномерно в цитоплазме клеток, что свидетельствует о стабильном состоянии дифференцировки данных клеток в указанных условиях по сравнению с контролем. Состояние склеральной оболочки не отличалось от такового в контрольной серии.The protective effect of the reduced protein-peptide complex in the indicated concentration is expressed in maintaining adhesion between the retina, PE and choroid over an extended section of the posterior part of the eye with minor disturbances in some areas. Most of the retinal cells, as in the control, are in an apoptotic state. It should be noted that adhesive interactions were maintained in the monolayer of PE cells. Pigment granules were distributed evenly in the cytoplasm of cells, which indicates a stable state of differentiation of these cells under these conditions compared with the control. The condition of the scleral membrane did not differ from that in the control series.

Пример 1. Выделение из ткани пигментного эпителия глаза быка Bos taurus белково-пептидного комплекса, определение его состава и структурыExample 1. Isolation from the tissue of the pigment epithelium of the eye of a bull of Bos taurus protein-peptide complex, the determination of its composition and structure

Из свежеэнуклеированных глаз быка микрохирургически выделяют макулярную зону ПЭ сетчатки при 20°С, промывают и экстрагируют в водно-солевом физиологическом растворе: 1,5×10-1 М NaCl, 1,0×10-3 М CaCl2, 5×10-3 М KCI, 1×10-3 М HEPES, 4-8°С, 3-4 ч. После центрифугирования при 3000 g в течение 30 мин к полученному тканевому экстракту при постоянном перемешивании добавляют сухой сернокислый аммоний до получения насыщенного раствора (780 г/л), оставляют образовавшуюся суспензию белков при 4-8°С на 120 часов, затем центрифугируют при 105000 g 60 мин. Получают супернатант, осадок и флотирующую фракцию, которые далее диализуют против воды (при соотношении объемов диализируемой фракции и диализирующей жидкости 1:100) при 4-8°С до полного удаления ионов аммония. Присутствие в растворе ионов аммония определяют реакцией с реактивом Несслера. Фракцию супернатанта концентрируют, используя роторный вакуумный испаритель, при температуре ниже 40°С, далее разделяют с методом изоэлектрофокусирования (ИЭФ) в градиенте плотности сахарозы на колонке LKB-440 («LKB», Швеция), используя амфолины диапазона рН 3,5-10,0 (Serva, Германия) (Остерман, 1983). Для разделения готовят следующие растворы: тяжелый электродный раствор - 60% сахарозы в 0,1%-ный р-р H3PO4; легкий электродный раствор - 0,1%-ный NaOH; тяжелый градиентный раствор - 75 г. сахарозы, 100 мл супернатанта, доводят до 200 мл дистиллированной водой; легкий градиентный раствор - 15 г. сахарозы, до 200 мл дистиллированной воды. В колонку наслаивают растворы в следующем порядке: тяжелый электродный раствор, тяжелый и легкий градиентные растворы, которые подают из градиентного смесителя, и затем легкий электродный раствор. ИЭФ проводят при +4°С в течение 96 часов при напряжении 500-1500 В. Собирают фракции объемом 5-10 мл. Детекцию белков осуществляют на любом спектрофотометре при 280 нм, для каждой фракции определяют значение рН с помощью рН-метра. Согласно полученной картине разделения собирают фракцию в интервале значений рН<3,0, которую далее диализуют против дистиллированной воды до удаления сахарозы в соотношении объемов 1:10 с пятикратной сменой воды. Данную фракцию анализируют методом масс-спектрометрии на времяпролетном масс-анализаторе UltraFlex 2 (Bruker Daltonic, Германия) с использованием в качестве матрицы α-циано-4-гидроксикоричной кислоты, обнаруживают ряд пептидов с молекулярными массами в диапазоне 1000-6000 Да. Проводят электрофорез ИЭФ-фракции, собранной в интервале значений рН<3,0 в 15%-ном полиакриламидном геле в денатурирующих условиях. Из геля выделяют Кумасси-окрашиваемую полосу, соответствующую молекулярной массе приблизительно в 66000 Да. Проведенный триптический гидролиз белка в геле с последующим масс-спектрометрическим исследованием продуктов гидролиза показывает, что выделенный белок с молекулярной массой 66367 Да представляет собой белок семейства альбуминов млекопитающих (под номером gi|367460260 в базе данных SwissProt). Методом Эдмана была установлена частичная N-концевая аминокислотная последовательность этого белка (DTHKSEIAHRFKDLGE-), которая имеет 100%-ную гомологию с N-концевой последовательностью зрелой молекулы альбумина сыворотки крови быка.From the freshly enucleated bull’s eyes, the macular zone of the PE retina is microsurgically isolated at 20 ° C, washed and extracted in aqueous saline saline: 1.5 × 10 -1 M NaCl, 1.0 × 10 -3 M CaCl 2 , 5 × 10 - 3 M KCI, 1 × 10 -3 M HEPES, 4-8 ° C, 3-4 hours. After centrifugation at 3000 g for 30 minutes, dry ammonium sulfate was added to the resulting tissue extract with constant stirring to obtain a saturated solution (780 g / l), the resulting protein suspension is left at 4-8 ° C for 120 hours, then centrifuged at 105,000 g for 60 minutes. A supernatant, a precipitate and a float fraction are obtained, which are further dialysed against water (with a volume ratio of the dialyzed fraction and the dialysis fluid 1: 100) at 4-8 ° C. until ammonium ions are completely removed. The presence of ammonium ions in the solution is determined by reaction with the Nessler reagent. The supernatant fraction was concentrated using a rotary vacuum evaporator at a temperature below 40 ° C, then it was separated using the isoelectric focusing method (IEF) in the sucrose density gradient on a LKB-440 column (LKB, Sweden) using ampholines in the pH range 3.5–10 0 (Serva, Germany) (Osterman, 1983). The following solutions are prepared for separation: heavy electrode solution — 60% sucrose in 0.1% solution of H 3 PO 4 ; light electrode solution - 0.1% NaOH; heavy gradient solution - 75 g of sucrose, 100 ml of the supernatant, adjusted to 200 ml with distilled water; light gradient solution - 15 g of sucrose, up to 200 ml of distilled water. The column is layered with solutions in the following order: heavy electrode solution, heavy and light gradient solutions, which are supplied from a gradient mixer, and then a light electrode solution. IEF is carried out at + 4 ° C for 96 hours at a voltage of 500-1500 V. Collect fractions with a volume of 5-10 ml. Protein detection is carried out on any spectrophotometer at 280 nm, the pH value is determined for each fraction using a pH meter. According to the obtained separation pattern, a fraction is collected in the range of pH <3.0, which is then dialyzed against distilled water until sucrose is removed in a volume ratio of 1:10 with a five-fold change of water. This fraction is analyzed by mass spectrometry on an UltraFlex 2 time-of-flight mass analyzer (Bruker Daltonic, Germany) using α-cyano-4-hydroxycinnamic acid as a matrix; a number of peptides with molecular weights in the range of 1000-6000 Da are detected. Electrophoresis of the IEF fraction collected in the range of pH <3.0 in a 15% polyacrylamide gel under denaturing conditions is carried out. A Coomassie-stainable band corresponding to a molecular weight of approximately 66,000 Da was isolated from the gel. The performed tryptic hydrolysis of the protein in a gel followed by a mass spectrometric study of the hydrolysis products shows that the isolated protein with a molecular weight of 66367 Da is a protein of the mammalian albumin family (under the number gi | 367460260 in the SwissProt database). The partial N-terminal amino acid sequence of this protein (DTHKSEIAHRFKDLGE-), which has a 100% homology with the N-terminal sequence of a mature bovine serum albumin molecule, was established by Edman's method.

Таким образом, ИЭФ-фракция, собранная в интервале значений рН<3,0 представляет собой БПК, состоящий из белка gi|367460260 - представителя мультисемейства альбуминов сыворотки крови быка с молекулярной массой 66367 Да, значением pl в области рН 3,90-4,00 и смеси небольших пептидов с молекулярной массой 1000-6000 Да.Thus, the IEF fraction collected in the pH range <3.0 is a BOD, consisting of protein gi | 367460260 - a representative of the bovine blood serum albumin family with a molecular weight of 66367 Da, pl in the pH range of 3.90-4, 00 and mixtures of small peptides with a molecular weight of 1000-6000 Da.

Пример 2. Образование белко-пептидного комплекса путем взаимодействия пептида с молекулярной массой 4372 Да и альбумина (qi|367460260) с молекулярной массой 66367Да, выделенных из ткани пигментного эпителия глаза быка В. taurus Example 2. The formation of the protein-peptide complex by the interaction of the peptide with a molecular weight of 4372 Da and albumin (qi | 367460260) with a molecular weight of 66367 Da, isolated from the tissue of the pigment epithelium of the eye of a bull B. taurus

Из свежеэнуклеированных глаз быка микрохирургически выделяют макулярную зону пигментного эпителия сетчатки при 20°С, промывают и экстрагируют в водно-солевом физиологическом растворе: 1,5×10-1 М NaCl, 1,0×10-3 M CaCl2, 5×10-3 М KCI, 1×10-3 М HEPES, 4-8°С, 3-4 ч. После центрифугирования при 3000 g в течение 30 мин к полученному тканевому экстракту при постоянном перемешивании добавляют сухой сернокислый аммоний до получения насыщенного раствора (780 г/л), оставляют образовавшуюся суспензию белков при 4-8°С на 120 часов, затем центрифугируют при 105000 g 60 мин. Получают супернатант, осадок и флотирующую фракцию, которые далее диализуют против воды при 4-8°С до полного удаления ионов аммония.From the freshly enucleated bull’s eyes, the macular zone of the retinal pigment epithelium is microsurgically isolated at 20 ° C, washed and extracted in physiological saline: 1.5 × 10 -1 M NaCl, 1.0 × 10 -3 M CaCl 2 , 5 × 10 -3 M KCI, 1 × 10 -3 M HEPES, 4-8 ° C, 3-4 hours. After centrifugation at 3000 g for 30 minutes, dry ammonium sulfate is added to the resulting tissue extract with constant stirring until a saturated solution is obtained (780 g / l), the resulting protein suspension is left at 4-8 ° C for 120 hours, then centrifuged at 105,000 g for 60 minutes. A supernatant, a precipitate, and a float fraction are obtained, which are further dialysed against water at 4-8 ° C. until ammonium ions are completely removed.

Обессоленную флотирующую фракцию разделяют далее обращенно-фазовой ВЭЖХ на гидрофобной колонке Биохиммак С8 (Россия) (4,6×250 мм) с использованием хроматографа высокого давления Agilent 1200 (США). Элюцию осуществляют в градиенте концентраций ацетонитрила (5-80%) в 0,1%-ном водном растворе трифторуксусной кислоты (рН 2,2) со скоростью 0,5 мл/мин в течение 30 мин при 25°С. Детекцию проводят при 214 нм и 280 нм. Получают ряд фракций с временем удерживания 3-5 мин и 14-17 мин. ВЭЖХ-фракции с временем удерживания 3-5 мин анализируют методом масс-спектрометрии на времяпролетном масс-анализаторе UltraFlex 2 (Bruker Daltonic, Германия) с использованием в качестве матрицы α-циано-4-гидроксикоричной кислоты. Выделяют фракцию, которая характеризуется масс-спектрометрическим сигналом, соответствующим молекулярной массе 4372 Да. Проводят триптический анализ белка в растворе с последующим масс-спектрометрическим исследованием продуктов гидролиза и показывают, что полипептид с молекулярной массой 4372 Да имеет следующую аминокислотную последовательность:The desalted floating fraction was further separated by reverse-phase HPLC on a hydrophobic column Biochemak C 8 (Russia) (4.6 × 250 mm) using an Agilent 1200 high-pressure chromatograph (USA). Elution is carried out in a concentration gradient of acetonitrile (5-80%) in a 0.1% aqueous solution of trifluoroacetic acid (pH 2.2) at a rate of 0.5 ml / min for 30 min at 25 ° C. Detection is carried out at 214 nm and 280 nm. A number of fractions are obtained with a retention time of 3-5 minutes and 14-17 minutes. HPLC fractions with a retention time of 3-5 minutes were analyzed by mass spectrometry on an UltraFlex 2 time-of-flight mass analyzer (Bruker Daltonic, Germany) using α-cyano-4-hydroxycinnamic acid as a matrix. A fraction is isolated which is characterized by a mass spectrometric signal corresponding to a molecular weight of 4372 Da. A tryptic analysis of protein in solution is carried out, followed by a mass spectrometric study of the hydrolysis products and show that the polypeptide with a molecular mass of 4372 Da has the following amino acid sequence:

Ac-MNLEPPKAEIRSATRVMGGPVTPRKGPPKFKQRQTRQF.Ac-MNLEPPKAEIRSATRVMGGPVTPRKGPPKFKQRQTRQF.

Анализ данной последовательности показывает, что это N-концевой фрагмент фосфодиэстеразы циклического ГМФ из сетчатки глаза крупного рогатого скота [Ovchinnikov Yu.A., Lipkin V.M., Kumarev V.P., Gubanov V.V., Khramtsov N.V., Akhmedov N.B., Zagranichny V.E., Muradov K.G. FEBS Letters, 1986, 204, 288-292.].Analysis of this sequence shows that this is the N-terminal fragment of cyclic GMF phosphodiesterase from the retina of cattle [Ovchinnikov Yu.A., Lipkin V.M., Kumarev V.P., Gubanov V.V., Khramtsov N.V., Akhmedov N.B., Zagranichny V.E., Muradov K.G. FEBS Letters, 1986, 204, 288-292.].

ВЭЖХ-фракцию с временем удерживания 14-17 мин исследуют в 15%-ном полиакриламидном геле в денатурирующих условиях. Выделяют фракцию, которая характеризуется Кумасси-окрашиваемой полосой, соответствующей молекулярной массе приблизительно 66000 Да. Проведенный триптический анализ белка данной фракции с последующим масс-спектрометрическим исследованием продуктов гидролиза проводят масс-спектрометрически на времяпролетном масс-анализаторе UltraFlex 2 (Bruker Daltonic, Германия) с использованием в качестве матрицы α-циано-4-гидроксикоричной кислоты Полученные результаты показывают, что данная фракция представляет собой бычий сывороточный альбумин (под номером gi|367460260 в базе данных SwissProt) с молекулярной массой 66367 Да. Методом Эдмана устанавливают частичную N-концевую аминокислотную последовательность этого белка (DTHKSEIAHRFKDLGE-), которая имеет 100%-ную гомологию с N-концевой последовательностью зрелой молекулы альбумина сыворотки крови быка. Из раствора ВЭЖХ-фракций пептида и альбумина удаляют ацетонитрил и трифторуксусную кислоту и растворяют в физиологическом водно-солевом растворе.The HPLC fraction with a retention time of 14-17 minutes was examined in a 15% polyacrylamide gel under denaturing conditions. A fraction is obtained which is characterized by a Coomassie-dye band corresponding to a molecular weight of approximately 66,000 Da. The carried out tryptic analysis of the protein of this fraction followed by mass spectrometric analysis of the hydrolysis products is carried out mass spectrometrically using an UltraFlex 2 time-of-flight mass analyzer (Bruker Daltonic, Germany) using α-cyano-4-hydroxycinnamic acid as the matrix. The results obtained show that this the fraction is bovine serum albumin (gi | 367460260 in the SwissProt database) with a molecular weight of 66367 Da. The partial N-terminal amino acid sequence of this protein (DTHKSEIAHRFKDLGE-), which has 100% homology with the N-terminal sequence of the mature bovine serum albumin molecule, is determined by the Edman method. Acetonitrile and trifluoroacetic acid are removed from the solution of the HPLC fractions of the peptide and albumin and dissolved in physiological saline.

Пример 3. Получение белково-пептидного комплекса взаимодействием выделенных из пигментного эпителия глаза быка пептида с молекулярной массой 4372 Да и альбумина сыворотки крови (qi|367460260) с молекулярной массой 66898 Да его растворов в различных концентрацияхExample 3. Obtaining a protein-peptide complex by the interaction of a peptide with a molecular weight of 4372 Da and serum albumin (qi | 367460260) with a molecular weight of 66898 Yes of its solutions in various concentrations isolated from pigment epithelium of a bull’s eye

ВЭЖХ-фракцию (время удерживания 3-5 мин), содержащую N-концевой фрагмент фосфодиэстеразы циклического ГМФ с концентрацией белка 90 мкг/мл, и ВЭЖХ-фракцию (время удерживания 14-17 мин), содержащую бычий сывороточный альбумин gi|367460260 с концентрацией белка 200 мкг/мл, смешивают в соотношении 1:10 в присутствии 10-3 М CaCl2. Получают таким образом БПК, который используют в качестве биологически активной субстанции, проявляющей морфофункциональную активность в отношение пигментного эпителия и сетчатки глаза.An HPLC fraction (retention time 3-5 min) containing an N-terminal cyclic GMF phosphodiesterase fragment with a protein concentration of 90 μg / ml and an HPLC fraction (retention time 14-17 min) containing bovine serum albumin gi | 367460260 with a concentration protein 200 μg / ml, mixed in a ratio of 1:10 in the presence of 10 -3 M CaCl 2 . Thus, BOD is obtained, which is used as a biologically active substance exhibiting morphofunctional activity in relation to the pigment epithelium and retina.

Пример 4. Выделение белково-пептидного комплекса из ткани пигментного эпителия глаза мыши, определение его состава и структурыExample 4. The selection of the protein-peptide complex from the tissue of the pigment epithelium of the mouse eye, the determination of its composition and structure

Эксперимент проводят на мышах C57BI/6 обоего пола, весом 18-22 г.The experiment was performed on C57BI / 6 mice of both sexes, weighing 18-22 g.

Из свежеэнуклеированных глаз мышей микрохирургически выделяют ПЭ, промывают ткань в водно-солевом физиологическом растворе (1,5×10-1 М NaCl; 1,0×10-3 М CaCl2; 5×10-3 М KCI; 1×10-3 М HEPES) и далее экстрагируют в свежем растворе при 4-5°С в течение 5 ч. Полученный тканевой экстракт центрифугируют (3000 g, 30 мин), постепенно при перемешивании добавляют сухой сернокислый аммоний до образования насыщенного раствора (780 г/л), добавляют азид натрия (10 мкг/л) и оставляют суспензию белков на 72 часа при 4-5°С. Центрифугированием (10000 g, 4-5°С, 30 мин) собирают фракцию супернатанта, диализуют против воды (при соотношении объемов диализируемой фракции и диализирующей жидкости 1:100). Присутствие в растворе ионов аммония определяют реакцией с реактивом Несслера. Фракцию супернатанта концентрируют, используя роторный вакуумный испаритель, при температуре ниже 40°С, далее разделяют с методом изоэлектрофокусирования (ИЭФ) в градиенте плотности сахарозы на колонке LKB-440 («LKB», Швеция), используя амфолины диапазона рН 3,5-10,0 (Serva, Германия) (Остерман, 1983). Для разделения готовят следующие растворы: тяжелый электродный раствор - 60% сахарозы в 0,1%-ный р-р H3PO4; легкий электродный раствор - 0,1%-ный NaOH; тяжелый градиентный раствор - 75 г. сахарозы, 100 мл супернатанта, доводят до 200 мл дистиллированной водой; легкий градиентный раствор - 15 г. сахарозы, до 200 мл дистиллированной воды. В колонку наслаивают растворы в следующем порядке: тяжелый электродный раствор, тяжелый и легкий градиентные растворы, которые подают из градиентного смесителя, и затем легкий электродный раствор. ИЭФ проводят при +4°С в течение 96 часов при напряжении 500-1500 В. Собирают фракции объемом 5 мл. Детекцию белков осуществляют на любом спектрофотометре при 280 нм, для каждой фракции определяют значение рН с помощью рН-метра. Согласно полученной картине разделения собирают фракцию в интервале значений рН<3,0, которую далее диализуют против дистиллированной воды до удаления сахарозы в соотношении объемов 1:10 с пятикратной сменой воды. Данную фракцию анализируют методом масс-спектрометрии на времяпролетном масс-анализаторе UltraFlex 2 (Bruker Daltonic, Германия) с использованием в качестве матрицы α-циано-4-гидроксикоричной кислоты, обнаруживают ряд пептидов с молекулярными массами в диапазоне 1000-6000 Да, а также белок с молекулярной массой 66472 Да. Проводят электрофорез в 15%-ном полиакриламидном геле в денатурирующих условиях ИЭФ-фракции, собранной в интервале значений рН<3,0. Из геля вырезают полосу, соответствующую молекулярной массе приблизительно в 66000 Да. Проведенный триптический гидролиз белка в геле с последующим масс-спектрометрическим исследованием продуктов гидролиза показывает, что выделенный белок с молекулярной массой 66472 Да представляет собой белок семейства альбуминов мыши (под номером qi|163310765 в базе данных SwissProt). Таким образом, ИЭФ-фракция, собранная в интервале значений рН<3,0 представляет собой БПК, состоящий из альбумина сыворотки крови мыши со значением pi в области рН 4,0-4,1 и смеси небольших пептидов с молекулярной массой 1000-6000 Да.PE is extracted microsurgically from freshly enucleated eyes of mice, tissue is washed in physiological saline (1.5 × 10 -1 M NaCl; 1.0 × 10 -3 M CaCl 2 ; 5 × 10 -3 M KCI; 1 × 10 - 3 M HEPES) and then extracted in a fresh solution at 4-5 ° C for 5 hours. The resulting tissue extract was centrifuged (3000 g, 30 min), dry ammonium sulfate was gradually added with stirring until a saturated solution was formed (780 g / l) , add sodium azide (10 μg / l) and leave the suspension of proteins for 72 hours at 4-5 ° C. By centrifugation (10000 g, 4-5 ° C, 30 min), the supernatant fraction is collected, dialyzed against water (with a volume ratio of dialyzed fraction and dialysis fluid of 1: 100). The presence of ammonium ions in the solution is determined by reaction with the Nessler reagent. The supernatant fraction was concentrated using a rotary vacuum evaporator at a temperature below 40 ° C, then it was separated using the isoelectric focusing method (IEF) in the sucrose density gradient on a LKB-440 column (LKB, Sweden) using ampholines in the pH range 3.5–10 0 (Serva, Germany) (Osterman, 1983). The following solutions are prepared for separation: heavy electrode solution — 60% sucrose in 0.1% solution of H 3 PO 4 ; light electrode solution - 0.1% NaOH; heavy gradient solution - 75 g of sucrose, 100 ml of the supernatant, adjusted to 200 ml with distilled water; light gradient solution - 15 g of sucrose, up to 200 ml of distilled water. The column is layered with solutions in the following order: heavy electrode solution, heavy and light gradient solutions, which are supplied from a gradient mixer, and then a light electrode solution. IEF is carried out at + 4 ° C for 96 hours at a voltage of 500-1500 V. Collect fractions with a volume of 5 ml. Protein detection is carried out on any spectrophotometer at 280 nm, the pH value is determined for each fraction using a pH meter. According to the obtained separation pattern, a fraction is collected in the range of pH <3.0, which is then dialyzed against distilled water until sucrose is removed in a volume ratio of 1:10 with a five-fold change of water. This fraction is analyzed by mass spectrometry on an UltraFlex 2 time-of-flight mass analyzer (Bruker Daltonic, Germany) using α-cyano-4-hydroxycinnamic acid as a matrix, a number of peptides with molecular weights in the range of 1000-6000 Da, as well as protein are detected with a molecular weight of 66472 Yes. Electrophoresis is carried out in a 15% polyacrylamide gel under denaturing conditions of the IEF fraction collected in the range of pH <3.0. A strip corresponding to a molecular weight of approximately 66,000 Da is cut out from the gel. The performed tryptic hydrolysis of the protein in a gel followed by a mass spectrometric study of the hydrolysis products shows that the isolated protein with a molecular weight of 66472 Da is a protein of the mouse albumin family (under qi | 163310765 in the SwissProt database). Thus, the IEF fraction collected in the pH range <3.0 is a BOD consisting of mouse serum albumin with a pi value in the range of pH 4.0-4.1 and a mixture of small peptides with a molecular weight of 1000-6000 Yes .

Пример 5. Выделение белков-пептидного комплекса из ткани пигментного эпителия глаза курExample 5. Isolation of the protein-peptide complex from the tissue of pigment epithelium of the chicken eye

Эксперимент проводят на цыплятах породы Леггорн обоего пола, весом 400-500 г.The experiment is carried out on chickens of the Leggorn breed of both sexes, weighing 400-500 g.

Из свежеэнуклеированных глаз цыплят микрохирургически выделяют ткань пигментного эпителия, промывают в водно-солевом физиологическом растворе (1,5×10-1 М NaCl; 1,0×10-3 М CaCl2; 5×10-3 М KCI; 1×10-3 М HEPES) и далее экстрагируют в свежем растворе при 4-5°С в течение 5 ч. Полученный тканевой экстракт центрифугируют (3000 g, 30 мин), постепенно при перемешивании добавляют сухой сернокислый аммоний до образования насыщенного раствора (780 г/л), добавляют азид натрия (10 мкг/л) и оставляют суспензию белков на 72 часа при 4-5°С. Центрифугированием (10000 g, 4-5°С, 30 мин) собирают фракцию супернатанта, диализуют против воды (при соотношении объемов диализируемой фракции и диализирующей жидкости 1:100). Присутствие в растворе ионов аммония определяют реакцией с реактивом Несслера. Фракцию супернатанта концентрируют, используя роторный вакуумный испаритель, при температуре ниже 40°С, далее разделяют с методом изоэлектрофокусирования (ИЭФ) в градиенте плотности сахарозы на колонке LKB-440 («LKB», Швеция), используя амфолины диапазона рН 3,5-10,0 (Serva, Германия) (Остерман, 1983). Для разделения готовят следующие растворы: тяжелый электродный раствор - 60% сахарозы в 0,1%-ный р-р H3PO4; легкий электродный раствор - 0,1%-ный NaOH; тяжелый градиентный раствор - 75 г. сахарозы, 100 мл супернатанта, доводят до 200 мл дистиллированной водой; легкий градиентный раствор - 15 г. сахарозы, до 200 мл дистиллированной воды. В колонку наслаивают растворы в следующем порядке: тяжелый электродный раствор, тяжелый и легкий градиентные растворы, которые подают из градиентного смесителя, и затем легкий электродный раствор. ИЭФ проводят при +4°С в течение 96 часов при напряжении 500-1500 В. Собирают фракции объемом 5 мл. Детекцию белков осуществляют на любом спектрофотометре при 280 нм, для каждой фракции определяют значение рН с помощью рН-метра. Согласно полученной картине разделения собирают фракцию в интервале значений рН<3,0, которую далее диализуют против дистиллированной воды до удаления сахарозы в соотношении объемов 1:10 с пятикратной сменой воды. Данную фракцию анализируют методом масс-спектрометрии на времяпролетном масс-анализаторе UltraFlex 2 (Bruker Daltonic, Германия) с использованием в качестве матрицы α-циано-4-гидроксикоричной кислоты, обнаруживают ряд пептидов с молекулярными массами в диапазоне 800-5000 Да, а также белок с молекулярной массой 67155 Да Проводят электрофорез в 15%-ном полиакриламидном геле в денатурирующих условиях ИЭФ-фракции, собранной в интервале значений рН<3,0. Из геля вырезают полосу, соответствующую молекулярной массе приблизительно в 68000 Да. Проведенный триптический гидролиз белка в геле с последующим масс-спектрометрическим исследованием продуктов гидролиза показывает, что выделенный белок представляет собой белок семейства альбуминов кур (под номером gi|766944282 в базе данных SwissProt). Таким образом, ИЭФ-фракция, собранная в интервале значений рН<3,0 представляет собой БПК, состоящий из альбумина сыворотки крови кур со значением pi в области рН 3,9-4,0 и смеси небольших пептидов с молекулярной массой 800-5000 Да.From freshly enucleated eyes of chickens, pigment epithelial tissue is microsurgically isolated, washed in saline (1.5 × 10 -1 M NaCl; 1.0 × 10 -3 M CaCl 2 ; 5 × 10 -3 M KCI; 1 × 10 -3 M HEPES) and then extracted in a fresh solution at 4-5 ° C for 5 hours. The resulting tissue extract is centrifuged (3000 g, 30 min), dry ammonium sulfate is gradually added with stirring until a saturated solution is formed (780 g / l ), add sodium azide (10 μg / L) and leave the suspension of proteins for 72 hours at 4-5 ° C. By centrifugation (10000 g, 4-5 ° C, 30 min), the supernatant fraction is collected, dialyzed against water (with a volume ratio of dialyzed fraction and dialysis fluid of 1: 100). The presence of ammonium ions in the solution is determined by reaction with the Nessler reagent. The supernatant fraction was concentrated using a rotary vacuum evaporator at a temperature below 40 ° C, then it was separated using the isoelectric focusing method (IEF) in the sucrose density gradient on a LKB-440 column (LKB, Sweden) using ampholines in the pH range 3.5–10 0 (Serva, Germany) (Osterman, 1983). The following solutions are prepared for separation: heavy electrode solution — 60% sucrose in 0.1% solution of H 3 PO 4 ; light electrode solution - 0.1% NaOH; heavy gradient solution - 75 g of sucrose, 100 ml of the supernatant, adjusted to 200 ml with distilled water; light gradient solution - 15 g of sucrose, up to 200 ml of distilled water. The column is layered with solutions in the following order: heavy electrode solution, heavy and light gradient solutions, which are supplied from a gradient mixer, and then a light electrode solution. IEF is carried out at + 4 ° C for 96 hours at a voltage of 500-1500 V. Collect fractions with a volume of 5 ml. Protein detection is carried out on any spectrophotometer at 280 nm, the pH value is determined for each fraction using a pH meter. According to the obtained separation pattern, a fraction is collected in the range of pH <3.0, which is then dialyzed against distilled water until sucrose is removed in a volume ratio of 1:10 with a five-fold change of water. This fraction is analyzed by mass spectrometry on an UltraFlex 2 time-of-flight mass analyzer (Bruker Daltonic, Germany) using α-cyano-4-hydroxycinnamic acid as a matrix, a number of peptides with molecular weights in the range 800-5000 Da, as well as protein are detected with a molecular weight of 67155 Yes. Electrophoresis is carried out in a 15% polyacrylamide gel under denaturing conditions of the IEF fraction collected in the pH range <3.0. A strip corresponding to a molecular weight of approximately 68,000 Da is cut out from the gel. The performed tryptic hydrolysis of the protein in a gel followed by mass spectrometric analysis of the hydrolysis products shows that the isolated protein is a protein of the chicken albumin family (under the number gi | 766944282 in the SwissProt database). Thus, the IEF fraction collected in the pH range <3.0 is a BOD consisting of chicken serum albumin with a pi in the pH range of 3.9-4.0 and a mixture of small peptides with a molecular weight of 800-5000 Yes .

Пример 6. Получение растворов БПК в различных концентрациях его растворов в различных концентрацияхExample 6. Obtaining solutions of BOD in various concentrations of its solutions in various concentrations

В качестве исходного раствора БПК, обнаруженного в ткани пигментного эпителия глаза быка используют два препарата: БПК1 - ИЭФ-фракция, собранная в области рН<3,0, (Пример 1) с концентрацией по белку 100±10 мкг/мл и БПК2, образованный взаимодействием эквимолекулярных количеств регуляторного пептида с молекулярной массой 4372 Да и белка (gi|367460260) с мол. массой 66367 Да, в присутствии ионов 10-3 М CaCl2 (Пример2), в виде раствора с концентрацией по белку 100±10 мкг/мл.Two preparations are used as the initial solution of BOD found in the tissue of the pigment epithelium of the bull’s eye: BOD1 — IEF fraction collected in the region of pH <3.0 (Example 1) with a protein concentration of 100 ± 10 μg / ml and BOD2 formed the interaction of equimolecular amounts of a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Da and protein (gi | 367460260) with mol. mass 66367 Yes, in the presence of ions 10-3 M CaCl2 (Example 2), in the form of a solution with a protein concentration of 100 ± 10 μg / ml.

Во флакон, содержащий 0,1 мл раствора БПК добавляют 0,9 мл дистиллированной воды и интенсивно встряхивают 15 раз. Отбирают 0,1 мл образовавшегося раствора во флакон н добавляют 0,9 мл дистиллированной воды, встряхивают 15 раз. Данную процедуру повторяют, получая таким образом растворы БПК.In a vial containing 0.1 ml of BOD solution, 0.9 ml of distilled water is added and vigorously shaken 15 times. 0.1 ml of the resulting solution was taken into a vial, 0.9 ml of distilled water was added, and shaken 15 times. This procedure is repeated, thus obtaining solutions of BOD.

Аналогично получают растворы БПК с 10-кратным последовательным разбавлением от 1 до 20 степени в физиологическом растворе состава 0,15 М NaCl; 10-3 М CaCl2. В экспериментах по изучению специфической активности на модели культивирования тканей глаза в составе заднего сектора глаза исследовали растворы с концентрациями, соответствующими 10-3; 10-7 - 10-17; 10-19 мг белка/мл.Similarly receive solutions of BOD with 10-fold sequential dilution from 1 to 20 degrees in physiological saline with a composition of 0.15 M NaCl; 10 -3 M CaCl 2 . In experiments on the study of specific activity on the model of culturing eye tissues in the posterior sector of the eye, solutions with concentrations corresponding to 10 -3 were studied; 10 -7 - 10 -17 ; 10 -19 mg protein / ml.

Пример 7. Влияние растворов белково-пептидного комплекса, обнаруженного в пигментном эпителии глаза быка, в различных концентрациях, а также отдельных его компонентов - регуляторного пептида и белка-модулятора, на состояние тканей глаза заднего отдела глаза тритона Pleurodeles waltl. при органотипическом культивировании in vitroExample 7. The effect of solutions of the protein-peptide complex found in pigment epithelium of the bull’s eye, in various concentrations, as well as its individual components — the regulatory peptide and the modulator protein, on the state of the eye tissue of the posterior part of the Pleurdeles waltl newt eye. with organotypic in vitro cultivation

Действие БПК, обнаруженного в ткани пигментного эпителия глаза быка в различных дозах, а также отдельных его компонентов, на состояние сетчатки, ПЭ, склеры, изучали на модели органотипического культивирования заднего сектора глаза тритона in vitro, поскольку активность БПК характеризуется наличием тканевой, но не видовой специфичности.The effect of BOD, found in the pigment epithelium tissue of the bull’s eye in various doses, as well as its individual components, on the state of the retina, PE, and sclera, was studied on the model of organotypic cultivation of the posterior sector of the newt eye in vitro, since the activity of BOD is characterized by the presence of tissue, but not specific specificity.

Исследование проводили на взрослых половозрелых особях тритона Pleurodeles waltl, содержащихся в аквариальной Института биологии развития им. Н.К. Кольцова РАН.The study was conducted on adult sexually mature individuals of the Pleurodeles waltl newt contained in the aquarium Institute of Development Biology. N.K. Koltsova RAS.

Микрохирургическим путем выделяют глаза у предварительно наркотизированных в 0,1%-ном растворе MS-222, и культивируют в среде, содержащей 350 мл среды 199, 150 мл бидистилированной воды, 0,15 мл 1М Hepes и 1 мл 4%-ного раствора сульфата гентамицина. Перед культивированием проводят холодную стерилизацию среды через мембранные фильтры GV с диаметром пор 0,22 мкм («Millipore», США). Ткани глаза тритона изолируют с помощью бинокуляра. Сначала освобождают глаз от кожных покровов и жира, затем разрезают по окружности проксимальнее лимба. Отбрасывают ростовую область сетчатки вместе с радужкой, роговицей и хрусталиком. Для последующего культивирования используют задние секторы глаз, в состав каждого из которого входит сетчатка, ПЭ, сосудистая оболочка и склера. Полученные задние отделы глаз помещают в пенициллиновые флаконы, заполненные бессывороточной средой, на целлюлозные фильтры типа А/Е («Gelman», США), отмытые в 70%-ном этаноле и ополоснутые в культуральной среде. Во флаконы опытной серии перед началом культивирования добавляют белково-пептидный комплекс, очищенный после обращенно-фазовой ВЭЖХ в различных концентрациях. В контрольной серии в культуральную среду добавляют соответствующее количество физиологического раствора. Все флаконы закрывают стерильными крышками, пленкой Parafilm М, алюминиевой фольгой и культивируют без смены культуральной среды в термостате в темноте при 20-22°С в течение 72 часов.Microsurgically excrete eyes from pre-anesthetized in 0.1% solution of MS-222, and cultivate in medium containing 350 ml of 199 medium, 150 ml of bidistilled water, 0.15 ml of 1M Hepes and 1 ml of 4% sulfate solution gentamicin. Before cultivation, cold sterilization of the medium is carried out through GV membrane filters with a pore diameter of 0.22 μm (Millipore, USA). Triton eye tissue is isolated with a binocular. First, the eye is exempted from skin and fat, and then cut along the circumference proximal to the limb. The growth region of the retina is discarded along with the iris, cornea and lens. For subsequent cultivation, the posterior sectors of the eyes are used, each of which includes the retina, PE, choroid and sclera. The obtained posterior parts of the eyes are placed in penicillin vials filled with serum-free medium on A / E type cellulose filters (Gelman, USA), washed in 70% ethanol and rinsed in culture medium. Before the cultivation, the protein-peptide complex purified after reverse-phase HPLC in various concentrations is added to the bottles of the experimental series. In the control series, the appropriate amount of saline is added to the culture medium. All vials are closed with sterile caps, Parafilm M film, aluminum foil and cultured without changing the culture medium in an incubator in the dark at 20-22 ° C for 72 hours.

Культуры заднего сектора глаза погружают в 4%-ный раствор формалина, приготовленный на фосфатном буфере (0,1 М PBS, рН 7.4) и фиксируют в течение 6 ч. Помимо формалиновой используют фиксацию переохлажденным в жидком азоте 96%-ным этанолом. После фиксации материал отмывают в 0,1 М PBS 2 раза по 24 ч при 4°С, дегидратируют и заливают в парафин. Для исследования методом непрямого иммуноокрашивания (Энгельгардт, 1968) готовят срезы толщиной 6-7 мкм. Перед инкубацией с антителами срезы освобождают от парафина, дегидратируют и отмывают в холодном 0,1 М PBS буфере в течение 30 мин. Для изучения фоторецепторов используют рекомбинантные поликлональные моноспецифические антитела против фоторецепторного белка рековерина в разведении 1:20 (конечная концентрация 0,011 мг/мл) в PBS, содержащем тритон Х-100 (0.3%) и бычий сывороточный альбумин (0.5%). Для исследования глиальных клеток сетчатки применяют коммерческие поликлональные антитела против кислого глиального фибриллярного белка (GFAP, «Sigma», США) в разведении 1:50.Cultures of the posterior sector of the eye are immersed in a 4% formalin solution prepared on phosphate buffer (0.1 M PBS, pH 7.4) and fixed for 6 hours. In addition to formalin fixation, 96% ethanol supercooled in liquid nitrogen is used. After fixation, the material is washed in 0.1 M PBS 2 times for 24 hours at 4 ° C, dehydrated and embedded in paraffin. For research by the method of indirect immunostaining (Engelhardt, 1968), sections with a thickness of 6-7 microns are prepared. Before incubation with antibodies, the sections were freed from paraffin, dehydrated and washed in cold 0.1 M PBS buffer for 30 minutes. To study photoreceptors, recombinant polyclonal monospecific anti-Reverin photoreceptor protein antibodies are diluted 1:20 (final concentration 0.011 mg / ml) in PBS containing X-100 Triton (0.3%) and bovine serum albumin (0.5%). To study retinal glial cells, commercial polyclonal antibodies against acidic glial fibrillar protein (GFAP, Sigma, USA) at a 1:50 dilution are used.

После инкубации с первыми антителами срезы отмывают трижды по 5 мин в 0,1 М PBS буфере, а затем обрабатывают вторыми, конъюгированными с пероксидазой (lgG, полная молекула, «Sigma», США), антикроличьими (для рековерина и GFAP) антителами в разведении 1:50. В реакциях окрашивания антителами используют срезы культивированных фрагментов, а также срезы нормальных глаз тритона. Кроме этого, для контроля используют срезы, окрашенные только вторыми антителами. Изучение иммунореакции и приготовление изображений проводят с помощью микроскопа «Olympus» (VANOX, АНВТ3, Япония), цифровой камеры «Olympus» (U-PMTVC, Япония) и компьютерной приставки, оснащенной программами (ViewfinderLite, StudioLite).After incubation with the first antibodies, the sections are washed three times for 5 min in 0.1 M PBS buffer, and then treated with the second, conjugated with peroxidase (IgG, complete molecule, Sigma, USA), diluted anti-rabbit (for reverin and GFAP) antibodies 1:50. Sections of cultured fragments, as well as sections of the normal eyes of the newt, are used in antibody staining reactions. In addition, sections stained with only second antibodies are used for control. Immunoreaction studies and imaging are performed using an Olympus microscope (VANOX, ANVT3, Japan), an Olympus digital camera (U-PMTVC, Japan) and a computer console equipped with programs (ViewfinderLite, StudioLite).

Анализ контрольных препаратов во всех случаях показывает отсутствие специфического окрашивания. Описание состояния эксплантатов проводят на сериях обычных и полутонких срезов. Для приготовления серий обычных срезов эксплантаты задней стенки глаза, содержащих сетчатку, сразу после культивирования помещают в фиксатор Буэна. Парафиновые срезы толщиной 7 мкм окрашивают гематоксилин-эозином. Для приготовления полутонких срезов эксплантатов используют метод (Григорян Э.Н., Иванов И.П., Поплинская В.А Изв. РАН. Сер. биол., 1996, 3, 319). Серии полутонких срезов, делают максимально строго вдоль длинных осей наружных сегментов фоторецепторов, приклеивают на стекла, окрашивают толуидиновым синим и анализируют при увеличении 1000х микроскопа «Jenaval» (Carl Zeiss, JENA, Германия). Для морфологического исследования используют фрагменты глаз тритона, культивированные только в бессывороточной среде (контроль) и в той же среде, но с добавлением фракций, выделенных из ПЭ глаза быка.Analysis of control preparations in all cases shows the absence of specific staining. Explants are described on a series of conventional and semi-thin sections. To prepare a series of conventional sections, explants of the posterior wall of the eye containing the retina, immediately after cultivation, are placed in the Buena fixative. Paraffin sections 7 μm thick are stained with hematoxylin-eosin. To prepare semi-thin sections of explants, the method is used (Grigoryan E.N., Ivanov I.P., Poplinskaya V.A. Izv. RAS. Ser. Biol., 1996, 3, 319). Series of semi-thin sections are made as strictly as possible along the long axes of the outer segments of the photoreceptors, glued to glass, stained with toluidine blue and analyzed with a 1000x magnification of the Jenaval microscope (Carl Zeiss, JENA, Germany). For morphological studies using fragments of the eyes of the newt, cultivated only in serum-free medium (control) and in the same medium, but with the addition of fractions isolated from PE of the bull’s eye.

Для определения жизнеспособности клеток культивированной сетчатки, обработанной и необработанной изучаемыми фракциями, применяют прямой подсчет жизнеспособных клеток и общего числа клеток на полутонких срезах. Используют четкие морфологические критерии: форма и плотность окрашивания тел биполярных клеток. На сериях полутонких срезов с помощью окулярной линейки выбирают равновеликие участки слоя. И определяют отношение не изменившихся, морфологически нормальных клеток к общему числу клеток и проводят статистическую обработку полученных данных по программе Origin 6.0 Professional. Также определяют число глиальных клеток Мюллера после окраски антителами против GFAP на 7 мкм срезах эксплантатов. При подсчетах используют описанный выше подход и окулярная сетка. Так как тела Мюллеровских клеток трудно различимы на срезах в 7 мкм, то считают число их окрашенных длинных волокон, хорошо заметных даже при смещении основной ориентации среза. Число этих отростков дополнительно оценивается на плоскостных срезах сетчатки. В количественных исследованиях используют задние фрагменты глаз тритонов, культивированные только в бессывороточной среде и в той же среде, но с добавлением фракций, выделенных из ПЭ глаза быка. Для гистохимического окрашивания применяют криосрезы толщиной 14 мкм. Культивированные эксплантаты сетчатки фиксируют в переохлажденном спирте. Культивирование ткани глаза тритона в бессывороточной среде приводит к постепенной деградации всех тканей глаза (фиг. 1). В сетчатке присутствует значительное количество апоптотирующих клеток, происходит нарушение адгезии между сетчаткой и ПЭ, а также наблюдается изменение состояния клеток ПЭ: статуса дифференцировки клеток ПЭ, которое оценивается по смещению пигмента на апикальную сторону клеток монослоя, нарушению адгезии между ними и гибелью самих клеток. В склере наблюдают полости, которые возникли в результате деградации коллагеновых волокон. Однако при данном типе культивирования в составе задней стенки глаза, клетки сетчатки демонстрируют как жизнеспособность, так и экспрессию специфических белков глиальных клеток и нейронов (глиального кислого фибриллярного белка), белка фоторецепторов - рековерина и фермента модулятора холинэргической трансмиссии - ацетилхолинэстеразы (Фиг. 2А-Г).To determine the viability of the cells of the cultured retina, processed and untreated by the studied fractions, direct counting of viable cells and the total number of cells in semi-thin sections is used. Clear morphological criteria are used: the shape and density of the staining of the bodies of bipolar cells. On a series of semi-thin sections using an eyepiece ruler, select equal sections of the layer. And they determine the ratio of unchanged, morphologically normal cells to the total number of cells and conduct statistical processing of the data obtained using the Origin 6.0 Professional program. Muller glial cell counts were also determined after staining with anti-GFAP antibodies on 7 μm sections of explants. In the calculations, the approach described above and the ocular mesh are used. Since the bodies of Müller cells are difficult to distinguish on sections of 7 μm, we consider the number of their stained long fibers, clearly visible even when the main orientation of the section is shifted. The number of these processes is additionally estimated on planar sections of the retina. In quantitative studies, posterior fragments of the eyes of newts, cultured only in serum-free medium and in the same medium, but with the addition of fractions isolated from PE of the bull’s eye, are used. For histochemical staining, cryosections 14 μm thick are used. Cultured retinal explants are fixed in supercooled alcohol. The cultivation of newt eye tissue in serum-free medium leads to a gradual degradation of all eye tissues (Fig. 1). A significant number of apoptotic cells are present in the retina, there is a violation of adhesion between the retina and PE, and a change in the state of PE cells is observed: the status of differentiation of PE cells, which is estimated by the shift of the pigment to the apical side of the monolayer cells, the violation of adhesion between them and the death of the cells themselves. In the sclera, cavities that arise as a result of the degradation of collagen fibers are observed. However, with this type of cultivation as part of the posterior wall of the eye, the retinal cells demonstrate both viability and expression of specific proteins of glial cells and neurons (glial acidic fibrillar protein), photoreceptor protein - reverin and the enzyme of the cholinergic transmission modulator - acetylcholinesterase (Fig. 2A-D )

Культивирование заднего отдела глаза тритона в среде, содержащей фракцию пептида с мол. массой 4372 Да в дозах, соответствующих 10-7; 10-9; 10-11; 10-13; 10-15; 10-17 мг белка, не приводит к изменению состояния тканей глаза тритона по сравнению с культурой заднего сектора глаза, инкубируемой в бессывороточной среде (фиг. 3).The cultivation of the posterior part of the eye of the newt in a medium containing a fraction of the peptide mol. mass of 4372 Yes in doses corresponding to 10 -7 ; 10 -9 ; 10-11 ; 10 -13 ; 10-15 ; 10-17 mg of protein does not lead to a change in the state of the tissues of the eye of the newt compared with the culture of the posterior sector of the eye, incubated in serum-free medium (Fig. 3).

Культивирование заднего отдела глаза тритона в среде, содержащей фракцию белка с молекулярной массой 66367 Да в дозах, соответствующих 10-7; 10-9; 10-11; 10-13; 10-15; 10-17 мг белка, не приводит к изменению состояния тканей глаза тритона по сравнению с культурой заднего сектора, инкубируемой в бессывороточной среде (фиг. 4).The cultivation of the posterior part of the eye of the newt in a medium containing a protein fraction with a molecular weight of 66367 Da in doses corresponding to 10 -7 ; 10 -9 ; 10-11 ; 10 -13 ; 10-15 ; 10-17 mg of protein does not lead to a change in the state of the tissues of the eye of the newt compared with the culture of the posterior sector, incubated in serum-free medium (Fig. 4).

На модели культуры заднего отдела глаза тритона изучали комплекс, образованный взаимодействием эквимолекулярных количеств пептида с мол. массой 4372 Да и белка с молекулярной массой 66367 Да в присутствии ионов 10-3 М CaCl2 (Пример 2). Добавление в питательную среду БПК в дозе, соответствующей 10-17 мг белка, при органотипическом культивировании тканей заднего отдела глаза тритона in vitro способствует поддержанию в них адгезии, статуса пролиферации и дифференцировки клеток, обеспечивает наибольшую сохранность тканей глаза (Фиг. 5). Между отростками фоторецепторов, монослоем ПЭ и сосудистой оболочкой отмечают плотные адгезивные взаимодействия, наблюдают незначительное количество апоптотирующих клеток. Происходит стабилизация статуса дифференцировки клеток ПЭ, что выражается в равномерном распределении пигмента в данных клетках и в поддержании целостной структуры монослоя. Состояние ткани склеры приближено к состоянию интактной ткани: наблюдают сохранение компактной структуры коллагеновых волокон, а также жизнеспособные фибробласты.A complex formed by the interaction of equimolecular amounts of the peptide with a mol. weight of 4372 Yes and protein with a molecular weight of 66367 Yes in the presence of ions of 10 -3 M CaCl 2 (Example 2). The addition of BOD to the nutrient medium at a dose corresponding to 10-17 mg of protein during organotypic cultivation of the tissues of the posterior part of the eye of the newt in vitro helps to maintain adhesion, the status of proliferation and differentiation of cells, and ensures the highest preservation of eye tissue (Fig. 5). Between the processes of photoreceptors, a monolayer of PE and the choroid, dense adhesive interactions are noted, a small number of apoptotic cells are observed. The differentiation status of PE cells is stabilized, which is expressed in the uniform distribution of pigment in these cells and in maintaining the integral structure of the monolayer. The condition of the scleral tissue is close to the state of intact tissue: the conservation of the compact structure of collagen fibers, as well as viable fibroblasts are observed.

Раствор БПК добавляют в питательную среду в дозе, соответствующей 10-7 мг белка, при органотипическом культивировании тканей заднего сектора глаза in vitro как указано в Примере 5. Культуры фиксируют и приготавливают гистологические срезы. Раствор БПК в данной дозе оказывает влияние на состояние тканей заднего отдела глаза тритона, которое выражается в поддержании адгезивных взаимодействий между сетчаткой, ПЭ и сосудистой оболочкой на протяженном участке заднего сектора глаза с незначительными нарушениями в некоторых областях (фиг. 6). Большая часть клеток сетчатки, находится в состоянии апоптоза. В монослое клеток ПЭ поддерживаются адгезионные межклеточные взаимодействия, пигментные гранулы распределены равномерно в цитоплазме клеток, что свидетельствует о стабильном состоянии дифференцировки данных клеток в указанных условиях по сравнению с контролем. Состояние склеральной оболочки не отличается от такового в контрольной серии.The BOD solution is added to the nutrient medium at a dose corresponding to 10 -7 mg of protein during organotypic cultivation of the tissues of the posterior sector of the eye in vitro as described in Example 5. Cultures are fixed and histological sections are prepared. A solution of BOD in this dose affects the condition of the tissues of the posterior part of the eye of the newt, which is expressed in maintaining adhesive interactions between the retina, PE and choroid over an extended section of the posterior sector of the eye with minor disturbances in some areas (Fig. 6). Most of the retinal cells are in a state of apoptosis. In the monolayer of PE cells, adhesive intercellular interactions are supported, pigment granules are distributed evenly in the cell cytoplasm, which indicates a stable state of differentiation of these cells under these conditions compared to the control. The condition of the scleral membrane does not differ from that in the control series.

Таким образом, БПК в дозе, соответствующей 10-17 мг белка/мл оказывает выраженное протекторное действие на ткань сетчатки и ПЭ глаза: БПК поддерживает не только состояние клеток самого ПЭ, но и влияет на состояние биполярных и Мюллеровских клеток нейральной сетчатки (клеточные источники регенерации), а также на состояние склеральной оболочки и хороида.Thus, BOD at a dose corresponding to 10-17 mg of protein / ml has a pronounced protective effect on the retinal tissue and PE of the eye: BOD not only supports the state of the PE cells itself, but also affects the state of the bipolar and Muller cells of the neural retina (cellular sources of regeneration ), as well as the state of the scleral membrane and choroid.

Полученный БПК может быть использован в качестве фармакологической композиции для лечения глазных заболеваний. В далее приведенных примерах 10-18 представлены результаты изучения безопасности раствора БПК, выделенного из глаза быка.The obtained BOD can be used as a pharmacological composition for the treatment of eye diseases. The following examples 10-18 present the results of a safety study of a BOD solution isolated from a bull’s eye.

Пример 8. Оценка раздражающего действия раствора БПК на глаз кролика in vivoExample 8. Assessment of the irritating effect of the BOD solution on the rabbit eye in vivo

Изучали биологическое действие БПК, образованного взаимодействием эквимолекулярных количеств выделенных из ПЭ глаза быка регуляторного пептида с мол. массой 4372 Да и белка с мол. массой 66367 Да, в присутствии ионов Са2+ (10-3 М), в виде раствора в концентрации, соответствующей 10-12 мг белка/мл, приготовленного на физ. р-ре состава - 0,9% NaCl и 0,01% CaCl2.We studied the biological effect of BOD, formed by the interaction of equimolecular amounts of the regulatory peptide isolated from PE of the bull’s eye with a mol. weighing 4372 Yes, and protein with mol. weight 66367 Yes, in the presence of Ca 2+ ions (10 -3 M), in the form of a solution in a concentration corresponding to 10 -12 mg of protein / ml prepared for physical. the solution of the composition is 0.9% NaCl and 0.01% CaCl 2 .

Исследование проводили на половозрелых кроликах породы Шиншилла весом 2500 г. Инстилляцию р-ром БПК производили ежедневно 3 раза в день в течение 4 месяцев. Животных разделяли на 2 группы по 6 кроликов. Вторая группа контрольная. Для кормления использовали гранулированный комбинированный корм и свежие овощи. Доступ к воде и корму свободный. Освещение вивария искусственное, температура воздуха 18-22°С. До начала испытаний все животные прошли двухнедельный карантин.The study was carried out on sexually mature Chinchilla rabbits weighing 2500 g. The instillation of BOD was performed daily 3 times a day for 4 months. Animals were divided into 2 groups of 6 rabbits. The second group is control. For feeding, granular combined feed and fresh vegetables were used. Access to water and feed is free. Vivarium artificial lighting, air temperature 18-22 ° С. Prior to testing, all animals were quarantined for two weeks.

Проводили клинические наблюдения за глазами кроликов методом биомикроскопии. Состояние глаза оценивали по степени выраженности реакции радужки, состоянию эпителия, прозрачности влаги передней камеры, покраснению конъюнктивы, зрачковому рефлексу, сосудистой оболочке глаза.Conducted clinical observations of the eyes of rabbits by biomicroscopy. The condition of the eye was evaluated by the severity of the iris reaction, the state of the epithelium, the transparency of the anterior chamber moisture, conjunctival redness, the pupillary reflex, and the choroid.

Животных выводили из эксперимента гексеналовым наркозом. Глаза энуклеировали, фиксировали в 10%-ном растворе нейтрального формалина, заливали в целлоидин, изготовляли серийные срезы толщиной 15 мкм и окрашивали их гематоксилин-эозином. Кроме того, роговицы глаз каждой серии опытов изучали под сканирующим электронным микроскопом. Для чего роговицы фиксировали 2,5%-ном растворе глютаральдегида, напыляли золотом и изучали под сканирующим электронным микроскопом.Animals were removed from the experiment by hexenal anesthesia. The eyes were enucleated, fixed in a 10% solution of neutral formalin, poured into celloidin, serial sections were made with a thickness of 15 μm and stained with hematoxylin-eosin. In addition, the cornea of each eye was tested under a scanning electron microscope. For this, the corneas were fixed with a 2.5% solution of glutaraldehyde, sprayed with gold and examined under a scanning electron microscope.

Данные каждого наблюдения животных, которым инстиллировали раствор БПК, сравнивали с данными контрольных животных.The data of each observation of animals that instilled the BOD solution were compared with the data of control animals.

Прижизненные биомикроскопические исследования глазаIntravital biomicroscopic examination of the eye

На протяжении всего срока наблюдения глаза испытуемых животных подвергались биомикроскопическому исследованию. Оно заключалось в осмотре глаз с помощью офтальмоскопа и щелевой лампы.Throughout the observation period, the eyes of the test animals were subjected to biomicroscopic examination. It consisted in examining the eyes with an ophthalmoscope and a slit lamp.

Контрольная группа. Конъюнктива бледно-розового цвета, без отеков и выделений. Роговая оболочка прозрачна. При щелевом наблюдение с флюоресциином изъяны в эпителии не обнаруживаются. Жидкие среды глаза прозрачны. Рефлексы соответствовали физиологической норме. Сосуды глазного дна умеренного кровенаполнения, без узлов. Сетчатка прилежит по всей поверхности. Control group. The conjunctiva is pale pink in color, without swelling and discharge. The cornea is transparent. When crevice observation with fluorescein flaws in the epithelium are not detected. Liquid media of the eye are transparent. Reflexes corresponded to physiological norm. The fundus vessels of moderate blood supply, without nodes. The retina lies over the entire surface.

Опытная группа (БПК) глаза оставались спокойными. Конъюнктива слабо-розовая, без выделений. Роговица прозрачна, отеков не наблюдалось. Среды глаза прозрачны. Зрачковый рефлекс в норме. Сосуды ретинальной оболочки не изменены. Состояние роговицы глаз исследовали с помощью флюоресцеина на щелевом освещение. Ни в одном случае кератопатических изменений не выявлено. При наблюдение через линзу отмечен более четко по сравнению с контролем сосудистый рисунок сетчатки глаза. The experimental group (BOD) eyes remained calm. The conjunctiva is slightly pink, without secretions. The cornea is transparent, no edema was observed. The medium of the eye is transparent. The pupillary reflex is normal. The vessels of the retinal membrane are not changed. The condition of the cornea of the eyes was examined using fluorescein in crevice lighting. In no case have keratopathic changes been detected. When observing through the lens, a vascular pattern of the retina was noted more clearly compared to the control.

Оценка сенсибилизирующего действия БПКAssessment of the sensitizing effect of BOD

Изучали биологическое действие БПК, образованного взаимодействием эквимолекулярных количеств выделенных из ПЭ глаза быка регуляторного пептида с молекулярной массой 4372 Да и белка с мол. массой 66367 Да, в присутствии ионов Са2+ (10-3 М), в виде раствора в концентрации, соответствующей 10-12 мг белка/мл, приготовленного на физиологическом растворе состава - 0,9% NaCl и 0,01% CaCl2.We studied the biological effect of BOD, formed by the interaction of equimolecular amounts of a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Da and a protein of mol. weighing 66367 Yes, in the presence of Ca 2+ ions (10 -3 M), in the form of a solution in a concentration corresponding to 10 -12 mg of protein / ml prepared in physiological saline with a composition of 0.9% NaCl and 0.01% CaCl 2 .

Исследования проводили на морских свинках, белых крысах и белых мышах. Животные получены из питомника "Крюково", согласно паспорту молодые, половозрелые. Их содержали в стандартных металлических клетках по 5 особей. Для кормления использовали гранулированный комбинированный корм и свежие овощи. Доступ к воде и корму свободный. Освещение вивария искусственное, температура воздуха 18-22°С. До начала испытаний все животные прошли двухнедельный карантин.Studies were performed on guinea pigs, white rats, and white mice. The animals were obtained from the Kryukovo nursery, according to the passport they are young and mature. They were kept in standard metal cages of 5 individuals. For feeding, granular combined feed and fresh vegetables were used. Access to water and feed is free. Vivarium artificial lighting, air temperature 18-22 ° С. Prior to testing, all animals were quarantined for two weeks.

В целях стандартизации, перед началом опыта, животных не кормили в течение суток.In order to standardize, before the start of the experiment, the animals were not fed for a day.

Результаты эксперимента обрабатывали методами вариационной статистики по критерию t Стьюдента.The results of the experiment were processed by methods of variation statistics according to student criterion t.

Пример 9. Оценка способности БПК. вызывать активную кожную анафилаксию у морских свинок in vivoExample 9. Evaluation of the ability of BOD. cause active cutaneous anaphylaxis in guinea pigs in vivo

Исследование проводили на морских свинках в количестве по 10 голов в группе, всего 2 группы. Сенсибилизировали животных по схеме: первая инъекция подкожно, две последующие внутримышечно через день в область бедра в концентрациях 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл. На 14 день на выстриженных участках спины морским свинкам вводили внутрикожно препарат. Для контроля реактивности кожи вводили физиологический раствор тому же животному на другой выстриженный участок кожи. Контрольным животным вводили разрешающую инъекцию препарата (равную сенсибилизирующей дозе). Затем животным вводили внутривенно по 0,5 мл 1%-ного раствора синего Эванса. Через 30 минут животных выводили из эксперимента эфирным наркозом и определяли размер синего пятна на внутренней стороне кожи в месте введения. Положительной считается реакция при размере пятна выше 6 мм, не более 3 мм в контроле.The study was conducted on guinea pigs in an amount of 10 animals per group, a total of 2 groups. The animals were sensitized according to the scheme: the first injection was subcutaneous, the next two intramuscularly every other day into the thigh area at concentrations of 10 -7 , 10 -9 , 10 -10 , 10 -17 mg / ml. On day 14, intracutaneously, the drug was administered to guinea pigs on clipped back areas. To control the reactivity of the skin, saline was injected with the same animal on another clipped skin area. The control animals were given a permissible injection of the drug (equal to a sensitizing dose). Then animals were injected intravenously with 0.5 ml of a 1% solution of blue Evans. After 30 minutes, the animals were removed from the experiment by ether anesthesia and the size of the blue spot on the inner side of the skin at the injection site was determined. A reaction is considered positive if the spot size is above 6 mm, not more than 3 mm in the control.

Результаты измерения размеров окрашенного кожного пятна приведены таблице 1.The results of measuring the size of the stained skin spot are shown in table 1.

Результаты статистически не достоверны.The results are not statistically reliable.

Figure 00000001
Figure 00000001

Пример 10. Влияние БПК, на реакцию гиперчувствительности замедленного типа у мышейExample 10. The effect of BOD on the delayed-type hypersensitivity reaction in mice

Опыты проводили на нелинейных мышах, массой 18-20 г, по 10 животных в группе. Общее количество животных в опыте - 30. Животных однократно сенсибилизировали внутрикожно в основании хвоста эмульсией препарата в концентрации 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл в НАФ (1:1). Доза введения составила 60 мкл. Контрольных животных сенсибилизировали эмульсией НАФ с раствором Хенкса (1:1). Для выявления сенсибилизации через 5 суток мышам в подушечку задней лапы ввели 40 мкл раствора тест - препарата в растворе Хенкса. Через 24 часа после тестирования измеряли величину отека с помощью инженерного микрометра МК-0-25.The experiments were performed on nonlinear mice weighing 18-20 g, 10 animals per group. The total number of animals in the experiment was 30. Animals were sensitized once intradermally at the base of the tail with the emulsion of the drug at a concentration of 10 -7 , 10 -9 , 10 -10 , 10 -17 mg / ml in NAF (1: 1). The dose of administration was 60 μl. Control animals were sensitized with NAF emulsion with Hanks solution (1: 1). To detect sensitization after 5 days, mice were injected with 40 μl of the test drug solution in the Hanks solution in the paw pad of the hind paw. 24 hours after testing, the edema was measured using an MK-0-25 engineering micrometer.

Результаты измерения толщины лапы у испытуемых животных сведены в таблице 2.The results of measuring the thickness of the paws in the test animals are summarized in table 2.

При статистической обработке полученных результатов не обнаружена достоверная разница в толщине лапок опытных групп и контрольной (Р>0,05).When statistical processing of the obtained results was not found significant difference in the thickness of the paws of the experimental groups and the control (P> 0.05).

Введение р-ра БПК не вызывает реакции гиперчувствительности замедленного типа.The introduction of a solution of BOD does not cause a delayed-type hypersensitivity reaction.

Figure 00000002
Figure 00000002

Пример 11. Влияние БПК, на реакцию дегрануляции тучных клеток у крыс in vitroExample 11. The effect of BOD on the mast cell degranulation reaction in rats in vitro

Постановку эксперимента проводили на крысах Wistar, массой 180-200 г, самках. Общее количество животных в опыте - 30. Вводили р-р БПК внутрибрюшинно в концентрациях 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл, контролем служила интактная группа.The experiment was carried out on Wistar rats weighing 180-200 g, females. The total number of animals in the experiment was 30. The BOD solution was administered intraperitoneally at concentrations of 10 -7 , 10 -9 , 10 -10 , 10 -17 mg / ml, the intact group served as a control.

Для получения взвеси тучных клеток животных декапитировали, в брюшную полость вводили буфер; после массажа передней брюшной стенки взвесь тучных клеток собирали в центрифугированием (3000 g, 30 мин) в пробирки.To obtain a suspension of mast cells, animals were decapitated, a buffer was introduced into the abdominal cavity; after massage of the anterior abdominal wall, the mast cell suspension was collected by centrifugation (3000 g, 30 min) in test tubes.

Препараты готовили на предметных стеклах, окрашенных 0,3%-ным спиртовым раствором нейтрального красного. К 0,03 мл взвеси тучных клеток добавляли 0,03 мл сыворотки опытного животного и 0,03 мл исследуемого р-ра БПК в разведении 1:100. В контроле дегрануляция не превышала 5%. Препараты накрывали покровным стеклом, края которого герметизировали парафином. Затем инкубировали 15 минут в термостате при 37°С. Препараты исследовали микроскопически при увеличении × 40, подсчитывая тучные клетки, подвергшиеся дегрануляции и нормальные, в сумме 100. Реакцию считали положительной, если степень дегрануляции превышала 20%.The preparations were prepared on slides stained with a 0.3% alcohol solution of neutral red. To 0.03 ml of mast cell suspension was added 0.03 ml of the serum of the experimental animal and 0.03 ml of the test solution of BOD in a dilution of 1: 100. In the control, degranulation did not exceed 5%. The preparations were covered with a coverslip, the edges of which were sealed with paraffin. Then incubated for 15 minutes in a thermostat at 37 ° C. The preparations were examined microscopically at a magnification of × 40, counting mast cells that underwent degranulation and normal, in the amount of 100. The reaction was considered positive if the degree of degranulation exceeded 20%.

Процент дегрануляции тучных клеток в опытной группе (БПК) составляет 4%, а в контрольной группе - 3%. Результаты статистически не имели достоверных отличий (р>0,05).The percentage of mast cell degranulation in the experimental group (BOD) is 4%, and in the control group - 3%. The results were not statistically significant differences (p> 0.05).

Таким образом, введение р-ра БПК не вызывает дегрануляции тучных клеток: значения параметра дегрануляции не отличались от контроля и не превысили порогового значения 5%.Thus, the introduction of the BOD solution does not cause mast cell degranulation: the degranulation parameter values did not differ from the control and did not exceed the threshold value of 5%.

Пример 12. Влияние БПК. на Фагоцитарную активность макрофагов крысы in vitroExample 12. The influence of BOD. Phagocytic activity of rat macrophages in vitro

Постановку экспериментов проводили на белых крысах массой 180-200 г. Общее число животных в опыте 20, по 10 в каждой группе.The experiments were carried out on white rats weighing 180-200 g. The total number of animals in the experiment was 20, 10 in each group.

Метод основан на определение оптической плотности лизирующего раствора после разрушения фагоцитов, поглотивших частицы нейтрального красного. Крыс, подвергнутых воздействию исследуемого препарата, декапитировали. Асептически внутрибрюшинно вводили 5 мл среды 199, содержащей 20% эмбриональной телячьей сыворотки. После массажа брюшной полости среду отбирали шприцем. Порции клеточной суспензии, полученные от всей группы животных, объединяли в общий пул. Концентрацию живых клеток доводили до 1,5×103 клеток/мл. Суспензию клеток стерильно разливали по 2 мл в пластиковые чашки Петри диаметром 40 мм. Чашки инкубировали 2 часа при 37°С. Надосадочную фракцию, содержащую не адгезировавшие к пластику клетки, сливали, а фиксированный на пластике монослой дважды промывали средой 199. В слегка подсушенные чашки наливали раствор, содержащий нейтральный красный, и выдерживали при 37°С в течение 1 часа, затем раствор сливали, клетки промывали средой 199. В каждую чашку вносили по 3 мл лизирующего раствора, которым обрабатывали тщательно клетки, совершая вращательное движение чашки. Раствор сливали в пробирки и на спектрофотометре при длине волны 540 нм измеряли оптическую плотность. Результаты исследования светопропускания лизирующего раствора сведены в таблицу 3.The method is based on determining the optical density of a lysing solution after the destruction of phagocytes that have absorbed neutral red particles. Rats exposed to the study drug were decapitated. 5 ml of 199 medium containing 20% fetal calf serum was administered aseptically intraperitoneally. After massage of the abdominal cavity, the medium was taken with a syringe. Portions of cell suspension obtained from the entire group of animals were combined into a common pool. The concentration of living cells was adjusted to 1.5 × 10 3 cells / ml. The cell suspension was sterilely poured into 2 ml into plastic Petri dishes with a diameter of 40 mm. The plates were incubated for 2 hours at 37 ° C. The supernatant fraction containing cells that did not adhere to the plastic was discarded, and the monolayer fixed on the plastic was washed twice with medium 199. A solution containing neutral red was poured into slightly dried plates and kept at 37 ° C for 1 hour, then the solution was drained and the cells were washed medium 199. In each dish 3 ml of lysing solution were added, which was carefully treated with cells, making a rotational movement of the dish. The solution was poured into test tubes and the optical density was measured on a spectrophotometer at a wavelength of 540 nm. The results of the study of light transmission of the lysing solution are summarized in table 3.

При введении БПК в концентрациях 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл не было отмечено изменения фагоцитарной активности макрофагов по сравнению с контрольной серией. Статистически достоверных различий между показателями в опытной и контрольной группах нет (р>0,05).When administered at concentrations of BOD 10- 7, 10 -9, 10 -10, 10 -17 mg / ml there were no changes in macrophage phagocytic activity compared to the control series. There are no statistically significant differences between the indicators in the experimental and control groups (p> 0.05).

Выводы . Результаты проведенных исследований позволяют сделать вывод об отсутствии аллергенных, сенсибилизирующих и иммунотоксических свойств р-ра БПК. conclusions . The results of the studies allow us to conclude that there are no allergenic, sensitizing and immunotoxic properties of the BOD solution.

Раствор БПК можно рекомендовать для испытаний в клинике.The BOD solution can be recommended for clinical trials.

Figure 00000003
Figure 00000003

Пример 13. Исследования влияния БПК. инстиллированного в глаз кролика, на состояние тканей глазаExample 13. Studies of the influence of BOD. instilled into the eye of a rabbit, on the state of the eye tissue

Раствор БПК в концентрациях 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл инстиллировали 6 раз в сутки в глаза кроликов (порода Шиншилла, обоего пола, 2300-2500 г) в течение 4-х месяцев. В контрольной группе (10 кроликов) аналогично инстиллировали в глаза физиологический раствор. Кроликов выводили из эксперимента эмболией, микрохирургически выделяли глаза. Гистологические срезы произведены по экваториальной части. Анализу были подвергнуты все структуры глаза. A solution of BOD in concentrations of 10 -7 , 10 -9 , 10 -10 , 10 -17 mg / ml was instilled 6 times a day into the eyes of rabbits (Chinchilla breed, both sexes, 2300-2500 g) for 4 months. In the control group (10 rabbits), saline was similarly instilled into the eyes. Rabbits were taken out of the experiment by embolism, eyes were microsurgically excreted. Histological sections were made along the equatorial part. All eye structures were analyzed.

Контрольная группа. Роговица имеет пять слоев: плоский неороговевающий эпителий (наружный слой); Боуменову пограничную мембрану; собственное вещество, которое представлено правильно расположенными коллагеновыми пластинками и уплощенными фибробластами; заднюю пограничную мембрану (десцеметову оболочку), состоящую из коллагеновых волокон и эндотелий, имеющий один слой правильных шестигранных клеток, между которыми находятся уплощенной формы фибробласты. Control group. The cornea has five layers: flat non-keratinizing epithelium (outer layer); Bowman's boundary membrane; its own substance, which is represented by properly located collagen plates and flattened fibroblasts; posterior border membrane (Descemet's membrane), consisting of collagen fibers and endothelium, having one layer of regular hexagonal cells, between which there are flattened fibroblasts.

Радужка представляет собой передний вырост сосудистой оболочки. Она разделяет переднюю и заднюю камеры глаза. Гистологически она представлена со стороны передней камеры однослойным плоским эпителием; передним пограничным слоем; сосудистым слоем; задним пограничным и пигментным слоями. В толще радужке прослеживаются пигментные клетки.The iris is the anterior outgrowth of the choroid. It separates the front and rear cameras of the eye. Histologically, it is presented from the anterior chamber by a single-layered squamous epithelium; front boundary layer; vascular layer; posterior border and pigment layers. In the thickness of the iris pigment cells are traced.

Хрусталик имеет вид двояковыпуклого тела. Его передняя стенка состоит из однослойного кубического эпителия, который по направлению к экватору становится выше. Эпителиальные клетки связаны щелевыми контактами. Основную часть хрусталика занимают хрусталиковые волокна. Капсулу хрусталика составляет толстая базальная мембрана.The lens has the appearance of a biconvex body. Its front wall consists of a single-layer cubic epithelium, which becomes higher towards the equator. Epithelial cells are connected by gap junctions. The main part of the lens is occupied by lens fibers. The lens capsule is a thick basement membrane.

Склера построена из плотных тяжей коллагеновых волокон, между склерой и роговицей находится сеть сообщающихся полостей для оттока внутриглазной жидкости (шлеммов канал). Со стороны задней стенки глаза можно грубо разделить три слоя: сетчатка, сосудистая оболочка и склера. Под склерой и внутренним ядерным слоем лежит слой пигментного эпителия, далее зона палочек и колбочек, прикрытых наружной пограничной мембраной. Далее располагаются слои наружный ядерный, наружный ретикулярный, внутренний ядерный, внутренний ретикулярный, ганглиозный, нервных волокон и завершается внутренней пограничной мембраной.The sclera is built of dense cords of collagen fibers, between the sclera and the cornea there is a network of communicating cavities for the outflow of intraocular fluid (Schlemm's canal). From the side of the posterior wall of the eye, three layers can be roughly divided: the retina, choroid, and sclera. Under the sclera and the inner nuclear layer lies a layer of pigment epithelium, then the area of the rods and cones, covered by the outer boundary membrane. Further, the outer nuclear, outer reticular, inner nuclear, inner reticular, ganglionic, nerve fiber layers are located and terminated by the inner border membrane.

Место входа зрительного нерва - слепое пятно. The entry point of the optic nerve is a blind spot.

Опытная группа - БПК. Гистологические исследования: роговица, строма и эндотелий без изменения. Угол передней камеры открыт. Сосудистый рисунок радужной оболочки и ее отростков не изменен, отека стромы нет. Цилиарное тело без особенностей. Структура хрусталика в норме. Четко выраженные ядерные слои сетчатки, каких-либо дистрофических и или воспалительных явлений не обнаружено. Хориоидея без особенностей. The experimental group is BOD. Histological examination: cornea, stroma and endothelium unchanged. The angle of the front camera is open. The vascular pattern of the iris and its processes is not changed, there is no edema of the stroma. Ciliary body without features. The structure of the lens is normal. Clearly pronounced nuclear layers of the retina, no dystrophic and or inflammatory phenomena were found. Choroid without features.

Электронно-микроскопическое исследование.Electron microscopic examination.

В контрольных группах животных в образцах роговицы вся внутренняя поверхность покрыта эндотелием. Клетки имеют правильную шестигранную форму и округлое ядро, плотно прилегают друг к другу. In control groups of animals in corneal samples, the entire inner surface is covered with endothelium. The cells have a regular hexagonal shape and a rounded core, tightly adjacent to each other.

В группах животных, получавших БПК, не отмечали каких-либо дистрофических процессов. Состояния эндотелия не отличалось от контроля. In the groups of animals treated with BOD, no dystrophic processes were noted. The state of the endothelium did not differ from the control.

Таким образом, клинические и патоморфологические, в том числе и ультраструктурные исследования оболочек глаз, после введения БПК половозрелым животным в течение 4 месяцев, свидетельствуют об отсутствие повреждающего воздействия на ткани глаза.Thus, clinical and pathomorphological, including ultrastructural studies of the membranes of the eyes, after administration of BOD to sexually mature animals for 4 months, indicate the absence of a damaging effect on eye tissue.

Пример 14. Изучение мутагенного и канцерогенного действия р-ра БПК на соматических клетках млекопитающих in vivoExample 14. The study of the mutagenic and carcinogenic effects of the solution of BOD on somatic mammalian cells in vivo

Исследование потенциальной мутагенной активности БПК было проведено на млекопитающих в условиях in vivo с помощью методов, входящих в стандартную систему испытаний в соответствии с утвержденными Фармакологическим комитетом МЗ СССР «Методическими рекомендациями по проверке мутагенных свойств у новых лекарственных препаратов», 1981 год.The study of the potential mutagenic activity of BOD was carried out on mammals in vivo using methods included in the standard test system in accordance with the Methodological Recommendations for the Verification of Mutagenic Properties of New Medicines approved by the Pharmacological Committee of the USSR Ministry of Health, 1981.

Эксперимент проводили на мышах линии C57BI/6J (самцы, весом 20-22 г), в каждой группе было 5 животных. The experiment was carried out on C57BI / 6J mice (males weighing 20-22 g), in each group there were 5 animals.

Мышам опытной группы №1 в течение пяти дней ежедневно внутрибрюшинно вводили по 0,1 мл препарата р-р БПК в концентрациях 10-7, 10-9, 10-10, 10-17 мг/мл;Mice of the experimental group No. 1 for five days daily were injected intraperitoneally with 0.1 ml of the drug solution BOD in concentrations of 10 -7 , 10 -9 , 10 -10 , 10 -17 mg / ml;

животным контрольной группы №2 внутрибрюшинно в течение 5 дней вводили по 0,1 мл физ. р-ра;animals of the control group No. 2 were injected intraperitoneally for 5 days with 0.1 ml of physical. solution;

группа №3 - интактные животные, которые не получали ни БПК, ни физ. р-р.group No. 3 - intact animals that received neither BOD nor physical. rr

Через 7 дней животных всех групп выводили из эксперимента эфирным наркозом, из бедренных костей извлекали мозг и приготавливали цитогенетические препараты по общепринятой методике, включающей предварительное введение колхицина, гипотоническую обработку 0,6%-ным KCI, фиксацию в смеси метанол: уксусная кислота (1:3). Результаты обрабатывали с помощью критерия Стьюдента.After 7 days, animals of all groups were removed from the experiment by ether anesthesia, the brain was removed from the thigh bones and cytogenetic preparations were prepared according to the generally accepted technique, including preliminary administration of colchicine, hypotonic treatment with 0.6% KCI, fixation in a mixture of methanol: acetic acid (1: 3). The results were processed using Student's criterion.

Мутагенный эффект изучали по микроядерному тесту и тесту частоты хромосомных аберраций в клетках костного мозга (таблица 4).The mutagenic effect was studied by micronucleus test and test the frequency of chromosomal aberrations in bone marrow cells (table 4).

Figure 00000004
Figure 00000004

Выводы . В результате проведенных исследований установлено, что при воздействии БПК доля поврежденных клеток и количество аберраций на клетку в костном мозге мышей были такими же, как у интактных и контрольных животных, получавших физиологический раствор. conclusions . As a result of the studies, it was found that when exposed to BOD, the proportion of damaged cells and the number of aberrations per cell in the bone marrow of mice were the same as in intact and control animals treated with saline.

Экспериментальные данные, полученные в ходе проведенной оценки генетической активности БПК свидетельствуют об отсутствии мутагенного действия исследованного раствора в соматических и генеративных клетках млекопитающих и отсутствии потенциальной канцерогенной активности исследованного препарата. The experimental data obtained in the course of the assessment of the BOD genetic activity indicate the absence of the mutagenic effect of the studied solution in somatic and generative cells of mammals and the absence of potential carcinogenic activity of the studied drug.

Пример 15. Изучение иммунотоксических и аллергизируюших свойств раствора БПКExample 15. The study of the immunotoxic and allergenic properties of a solution of BOD

Исследование иммунотоксических и аллергизирующих свойств р-ра БПК было проведено на морских свинках. Раствор БПК наносили на кожу экспериментальным животным в дозе 0,1 мл в концентрации 10-12 мг белка/мл в течение 5 дней. Действие препарата определяли, оценивая такие параметры:The study of the immunotoxic and allergenic properties of the BOD solution was carried out on guinea pigs. The BOD solution was applied to the skin of experimental animals at a dose of 0.1 ml at a concentration of 10 -12 mg protein / ml for 5 days. The effect of the drug was determined by evaluating the following parameters:

• состояние кожных покровов в области нанесения препаратов,• condition of the skin in the field of application of drugs,

• реакцию специфического лизиса лейкоцитов,• reaction of specific lysis of leukocytes,

• реакцию специфической агломерации лейкоцитов при накожном применении,• the reaction of specific agglomeration of leukocytes during cutaneous use,

• реакцию бласттрансформации клеток тимуса,• thymus cell blast transformation reaction,

• реакцию бласттрансформации клеток селезенки. • reaction of blast transformation of spleen cells.

Анализируя результаты проведенных экспериментов по изучению иммунотоксических и аллергенных свойств р-ра БПК можно сделать следующее заключение:Analyzing the results of experiments to study the immunotoxic and allergenic properties of the BOD solution, the following conclusion can be made:

Раствор БПК:BOD solution:

• Не вызывает каких-либо изменений кожных покровов морских свинок.• Does not cause any changes in the skin of guinea pigs.

• При накожном применении не влияет на реакцию специфического лизиса лейкоцитов.• For cutaneous use, it does not affect the reaction of specific leukocyte lysis.

• Не влияет на реакцию специфической агломерации лейкоцитов при накожном применении (опыт 3,3±1,3%, контроль 3,4±1,7%).• Does not affect the reaction of specific agglomeration of leukocytes during cutaneous use (experiment 3.3 ± 1.3%, control 3.4 ± 1.7%).

• Не оказывает влияния на бласттрансформацию клеток тимуса (индекс стимуляции - опыт 138,9±6,7; контроль 141,0±5,7).• Does not affect the blasttransformation of thymus cells (stimulation index - experience 138.9 ± 6.7; control 141.0 ± 5.7).

• Не влияет на бласттрансформацию клеток селезенки (индекс стимуляции - опыт 267,1±3,7, контроль 275,3±4,3).• Does not affect the blasttransformation of spleen cells (stimulation index - experiment 267.1 ± 3.7, control 275.3 ± 4.3).

Учитывая, что р-р БПК не обладает иммунотоксическим и аллергизирующим действиями можно в качестве близких аналогов отметить такие офтальмологические препараты, также основанные на биологически активных веществах, которые выделяют из тканей животных (сыворотка крови, глаза бычков) как Солкосерил (регистрационное удостоверение Р.П. №013887/01-2002) и Офталамин (Цитамины - биологически активные добавки к пище, Санкт-Петербург, 2004). Как было установлено, данные препараты, Солкосерил и Офталамин, которые применяются в существенно более высоких дозах, соответственно, 8,3 мг/г и 10 мг три раза в сутки, чем р-р БПК, не обладают иммунотоксической и аллергизирующей активностями.Considering that the BOD solution does not have immunotoxic and allergenic effects, one can note as close analogues such ophthalmic preparations also based on biologically active substances that are isolated from animal tissues (blood serum, bull-calf eyes) as Solcoseryl (registration certificate P. P. No. 013887 / 01-2002) and Oftalamine (Cytamines - dietary supplements, St. Petersburg, 2004). It was found that these drugs, Solcoseryl and Oftalamin, which are used in significantly higher doses, respectively, 8.3 mg / g and 10 mg three times a day than the BOD solution, do not have immunotoxic and allergenic activities.

Вывод . Раствор БПК не проявляет иммунотоксических и аллергизирующих свойств. Output . The BOD solution does not exhibit immunotoxic and allergenic properties.

Пример 16. Исследование эмбриотоксичности и тератогенности БПКExample 16. The study of embryotoxicity and teratogenicity of BOD

Экспериментальная оценка токсического действия БПК на эмбриональное развитие зародышей, а также выявление нарушений эмбрионального развития, проявляющихся только в постнатальном периоде жизни, была проведена на крысах Wistar. Исследование препарата проводили в течение всего периода беременности - 20 дней. Животным вводили р-р БПК (0,1 мл) внутримышечно ежедневно. Исследование эмбриотоксических и тератогенных свойств р-ра БПК проводили в два этапа: 1-ый - исследовали влияние препарата на эмбриональное развитие в пренатальном периоде, во 2-ом - обследовали потомство в постнатальном периоде. Для оценки влияния р-ра БПК на эмбриотоксичность и тератогенность определяли количество выкидышей у крыс, количество крысят в помете, количество выживших крысят, оценивали физическое и эмоциональное состояние потомства, двигательную функцию и скорость созревания сенсорно-двигательных рефлексов. Кроме того, проводили изучение изменения половых органов у крыс после введения р-ра БПК.An experimental assessment of the toxic effect of BOD on embryonic development of embryos, as well as the identification of disorders of embryonic development, manifested only in the postnatal period of life, was carried out on Wistar rats. The study of the drug was carried out during the entire period of pregnancy - 20 days. The animals were injected with a BOD solution (0.1 ml) intramuscularly daily. The study of the embryotoxic and teratogenic properties of the BOD solution was carried out in two stages: the first - the effect of the drug on embryonic development in the prenatal period was examined, in the second - the offspring in the postnatal period were examined. To assess the effect of BOD on embryotoxicity and teratogenicity, the number of miscarriages in rats, the number of rat pups in the litter, the number of surviving rat pups were determined, the physical and emotional state of the offspring, the motor function, and the maturation rate of sensory-motor reflexes were evaluated. In addition, we studied the changes in the genital organs in rats after administration of the BOD solution.

Было показано, что при воздействии р-ра БПК у опытных животных не наблюдали выкидышей, потомство рождалось в срок, количество крысят в пометах не отличалось от количества крысят контрольной группы. Крысята опытной группы имели тот же вес, что и потомство контрольной группы, выживаемость крысят, испытавших влияние р-ра БПК была полной. Их двигательная и эмоциональная активности не отличались от крысят контрольной группы. У экспериментальных животных, получавших р-р БПК, не было обнаружено изменений в половых органах. Таким образом, проведенными исследованиями не установлено отсутствие каких-либо патологических нарушений в ходе эмбрионального и постэмбрионального развития потомства экспериментальных животных после приема р-ра БПК.It was shown that under the influence of the BOD solution, miscarriages were not observed in the experimental animals, offspring were born on time, the number of rat pups in litters did not differ from the number of rat pups in the control group. The pups of the experimental group had the same weight as the offspring of the control group, the survival rate of the pups who experienced the influence of the BOD solution was complete. Their motor and emotional activity did not differ from the rat pups in the control group. In experimental animals treated with a solution of BOD, no changes were found in the genitals. Thus, the conducted studies did not establish the absence of any pathological disorders during embryonic and postembryonic development of the offspring of experimental animals after taking the BOD solution.

Вывод . БПК, исследуемый в виде раствора не обладает эмбриотоксическим и тератогенным действием, не оказывает влияния на общее физическое развитие потомства, его двигательную активность и эмоциональное состояние, а также на скорость созревания сенсорно-двигательных рефлексов. Output . BOD, studied in the form of a solution does not have embryotoxic and teratogenic effects, does not affect the general physical development of the offspring, its motor activity and emotional state, as well as the maturation rate of sensory-motor reflexes.

Заключение о безопасности БПКBOD Safety Conclusion

Подводя итоги токсикологического изучения БПК, предназначенного в глазную практику в качестве биорегулятора метаболических процессов в тканях заднего сектора глаза, оказывающего стабилизирующее воздействие на клеточную дифференцировку в пигментном эпителии, на состояние биполярных и Мюллеровских клеток нейральной сетчатки (клеточные источники регенерации), а также на состояние склеральной оболочки и хороида глаза, следует отметить, что БПК является малотоксичным веществом при инстилляции в конъюнктивальный мешок в течение 4-х месяцев.Summing up the results of a toxicological study of BOD, intended for ocular practice as a bioregulator of metabolic processes in the tissues of the posterior sector of the eye, which has a stabilizing effect on cell differentiation in pigment epithelium, on the state of bipolar and Muller cells of the neural retina (cellular sources of regeneration), as well as on the state of scleral shell and choroid of the eye, it should be noted that BOD is a low-toxic substance when instilled into the conjunctival sac for 4 months s.

В связи с предполагаемым клиническим использованием р-ра БПК было проведено исследование в условиях хронического эксперимента. Исследования выполнены на кроликах породы шиншилла, которым 6 раз в день в течение 4 месяцев вводили р-р БПК. Как показали исследования, данный р-р хорошо переносится животными и не влияет на их общее состояние, на гематологические показатели и систем организма (по данным использованных биохимических тестов). По результатам исследований р-р БПК можно рекомендовать для исследования в клинике.In connection with the alleged clinical use of the BOD solution, a study was conducted in a chronic experiment. The studies were performed on chinchilla rabbits, which were administered BOD solution 6 times a day for 4 months. As studies have shown, this solution is well tolerated by animals and does not affect their general condition, hematological parameters and body systems (according to the biochemical tests used). According to the research results, the BOD solution can be recommended for research in the clinic.

Таким образом, БПК, образованный взаимодействием эквимолекулярных количеств выделенных из ПЭ глаза быка, например, регуляторного пептида с молекулярной массой 4372 Да и сывороточного альбумина белка с мол. массой 66367 Да, в присутствии ионов Са2+ (10-3 М), в виде р-ра в концентрации, соответствующей, например, 10-12 мг белка/мл, приготовленного на физ. р-ре состава - 0,9% NaCl и 0,01% CaCl2 может быть применен как биорегулятор метаболических процессов, протекающих в ПЭ, в сетчатке, склере и хороиде глаза, который оказывает стабилизирующее воздействие на клеточную пролиферацию и дифференцировку в ПЭ.Thus, BOD, formed by the interaction of equimolecular amounts of bovine eye isolated from PE, for example, a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Da and serum albumin protein with a mol. weight 66367 Yes, in the presence of Ca 2+ ions (10 -3 M), in the form of a solution in a concentration corresponding to, for example, 10-12 mg of protein / ml prepared for physical. a solution of composition - 0.9% NaCl and 0.01% CaCl 2 can be used as a bioregulator of metabolic processes in PE, in the retina, sclera and choroid of the eye, which has a stabilizing effect on cell proliferation and differentiation in PE.

Claims (2)

1. Белково-пептидный комплекс для профилактики и лечения ретинальных заболеваний глаза человека и сельскохозяйственных животных, представляющий собой биологически активную субстанцию, и полученный взаимодействием эквимолекулярных количеств смеси регуляторных пептидов с молекулярными массами 1000-6000 Да или регуляторного пептида с молекулярной массой 4372 Да и сывороточного альбумина с молекулярными массами 66362-66898 Да, выделенных из пигментного эпителия глаза позвоночных животных.1. Protein-peptide complex for the prevention and treatment of retinal diseases of the human eye and farm animals, which is a biologically active substance, and obtained by the interaction of equimolecular amounts of a mixture of regulatory peptides with molecular weights of 1000-6000 Da or a regulatory peptide with a molecular weight of 4372 Da and serum albumin with molecular weights 66362-66898 Yes, isolated from pigment epithelium of the eye of vertebrate animals. 2. Фармакологическая композиция для профилактики и лечения ретинальных заболеваний глаза человека и сельскохозяйственных животных, включающая белково-пептидный комплекс по п. 1 и фармацевтически приемлемый носитель.2. A pharmacological composition for the prevention and treatment of retinal diseases of the human eye and farm animals, comprising a protein-peptide complex according to claim 1 and a pharmaceutically acceptable carrier.
RU2018146415A 2018-12-26 2018-12-26 Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex RU2716819C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018146415A RU2716819C1 (en) 2018-12-26 2018-12-26 Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2018146415A RU2716819C1 (en) 2018-12-26 2018-12-26 Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2716819C1 true RU2716819C1 (en) 2020-03-17

Family

ID=69898559

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2018146415A RU2716819C1 (en) 2018-12-26 2018-12-26 Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2716819C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2787479C1 (en) * 2021-12-15 2023-01-09 Общество с ограниченной ответственностью "Институт проблем биорегуляции" Kit of a pharmacological agent intended for improving the blood flow in the cerebral cortex and restoring motor and cognitive functions of the body

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2161982C1 (en) * 2000-01-20 2001-01-20 Общество с ограниченной ответственностью "Клиника Института биорегуляции и геронтологии" Tetrapeptide stimulating eye retina function, pharmacological agent based on thereof and method of its using
RU2232586C1 (en) * 2003-04-23 2004-07-20 Закрытое Акционерное Общество Производственное Предприятие "Эндо-Фарм-А" Ophthalmological medicinal agent and method for treatment of retina disease, pathological state and injury
RU2311915C2 (en) * 2005-05-30 2007-12-10 Игорь Александрович Ямсков Method for preparing medicinal agent for treatment of eye retina and pigment epithelium and eye vascular envelope

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2161982C1 (en) * 2000-01-20 2001-01-20 Общество с ограниченной ответственностью "Клиника Института биорегуляции и геронтологии" Tetrapeptide stimulating eye retina function, pharmacological agent based on thereof and method of its using
RU2232586C1 (en) * 2003-04-23 2004-07-20 Закрытое Акционерное Общество Производственное Предприятие "Эндо-Фарм-А" Ophthalmological medicinal agent and method for treatment of retina disease, pathological state and injury
RU2311915C2 (en) * 2005-05-30 2007-12-10 Игорь Александрович Ямсков Method for preparing medicinal agent for treatment of eye retina and pigment epithelium and eye vascular envelope

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОНСТАНТИНОВСКИЙ А.А. и др. Исследование ранозаживляющего действия биорегуляторов, выделенных из тканей глаза и сыворотки крови быка, на модели экспериментальной травмы роговицы у кроликов in vivo// ФАРМАКОЛОГИЯ И ТОКСИКОЛОГИЯ. - 2012. - Т 153. - N 2. - С. 177-182. *
ЯМСКОВА В. П. и др. Модуляторы активности регуляторных белков, действующих в микродозах// Цитология и генетика. - 2009. - N 6. - С. 28-39. *
ЯМСКОВА В. П. и др. Структурно-функциональные особенности нового биорегулятора, выделенного из ткани пигментного эпителия глаз быка//Биохимия. - 2009. - T 74. - N9. - С. 1195-1203. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2787479C1 (en) * 2021-12-15 2023-01-09 Общество с ограниченной ответственностью "Институт проблем биорегуляции" Kit of a pharmacological agent intended for improving the blood flow in the cerebral cortex and restoring motor and cognitive functions of the body
RU2797514C1 (en) * 2021-12-15 2023-06-06 Общество с ограниченной ответственностью "Институт проблем биорегуляции" Pharmacological substance of membranotropic homeostatic tissue-specific bioregulators isolated from various tissues and biological fluids of animals

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fischer et al. Cataractogenic lens injury prevents traumatic ganglion cell death and promotes axonal regeneration both in vivo and in culture
CN105267240B (en) The purposes of the excretion body of source for mesenchymal stem cells
CN1744913B (en) Use of the cathelicidin LL-37 and derivatives thereof for wound healing
Seiler et al. Vision recovery and connectivity by fetal retinal sheet transplantation in an immunodeficient retinal degenerate rat model
CN108503690A (en) Tissue repair and regenerated reparation peptide and its application after a kind of promotion wound
US6262024B1 (en) Neuron regulatory factor for promoting neuron survival
CN110025765B (en) Extracellular matrix-derived peptide of chondrocyte
CN110857434A (en) Methods and compositions for promoting cell growth and tissue repair
Sung et al. Treatment of traumatic optic neuropathy using human placenta-derived mesenchymal stem cells in Asian patients
Božanić et al. Role of apoptosis and mitosis during human eye development
RU2716819C1 (en) Protein-peptide complex and drug preparation agent, which is protein-peptide complex
RU2477637C2 (en) Method of treating acute ischemic and hemorrhagic cerebrovascular disease
CN109468280B (en) Neural stem cell exosome of over-expression circScmh1 gene and preparation method and application thereof
RU2275924C2 (en) Method for preparing complex of biologically active polypeptides for normalization of brain function and pharmaceutical agent based on thereof
Hashem Regenerative and antioxidant properties of autologous platelet-rich plasma can reserve the aging process of the cornea in the rat model
RU2766083C1 (en) Biologically active substance in the form of a bioregulatory composition, exhibiting a supportive and restorative effect on tissues and organs, and pharmacological composition
RU2701566C1 (en) Protein-peptide complex having a protective action on the state of tissues of the posterior eye - scleral shell, retina, pigment epithelium, choroid
RU2771678C1 (en) Biologically active substance and pharmaceutical composition in the form of sterile aqueous dispersion for conjunctival in the form of drops and subjunctival, para -, retrobulbar injection administration in the conducted therapies of vascular and dysmetabolic ophthalmological diseases
O'MALLEY et al. Experimentally induced adverse effects of alpha-chymotrypsin
RU2315606C2 (en) Method for preparing medicinal agent for treatment of myopia and eye scleral envelope diseases and vitreoretonopathy
Trofimova Molecular Mechanisms of Retina Pathology and Ways of Its Correction
Ezzell et al. Thermal injury-induced changes in the rat intestine brush border cytoskeleton
Yamashita et al. Tissue culture of the organ of Corti and the isolated hair cells from the newborn guinea pig
CN109627341B (en) Hormone-induced zinc finger protein polypeptide, preparation method thereof and application thereof in pharmacy
RU2311915C2 (en) Method for preparing medicinal agent for treatment of eye retina and pigment epithelium and eye vascular envelope