RU2712080C1 - Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы - Google Patents

Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы Download PDF

Info

Publication number
RU2712080C1
RU2712080C1 RU2019114418A RU2019114418A RU2712080C1 RU 2712080 C1 RU2712080 C1 RU 2712080C1 RU 2019114418 A RU2019114418 A RU 2019114418A RU 2019114418 A RU2019114418 A RU 2019114418A RU 2712080 C1 RU2712080 C1 RU 2712080C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
centrifuged
punctate
centrifugation
rpm
seconds
Prior art date
Application number
RU2019114418A
Other languages
English (en)
Inventor
Иван Владимирович Рева
Галина Витальевна Рева
Илья Олегович Калинин
Виктория Самвеловна Григорян
Екатерина Вадимовна Цегольник
Владислав Сергеевич Тудаков
Адель Игоревна Гармаш
Роман Александрович Гармаш
Анна Алексеевна Зудина
Ирина Анатольевна Барановская
Дмитрий Петрович Пуга
Екатерина Сергеевна Можилевская
Анна Анатольевна Накоренок
Яна Владимировна Гордзиевская
Original Assignee
Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный федеральный университет" (ДВФУ)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный федеральный университет" (ДВФУ) filed Critical Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Дальневосточный федеральный университет" (ДВФУ)
Priority to RU2019114418A priority Critical patent/RU2712080C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2712080C1 publication Critical patent/RU2712080C1/ru

Links

Images

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, а именно к эндокринологии, и может быть использовано для проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы. Проводят тонкоигольную аспирационную биопсию узловых образований под контролем УЗИ с последующим цитологическим исследованием полученного пунктата, который центрифугируют и используют для приготовления препарата на предметном стекле. Пунктат центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 30 секунд, отделяют осадок и помещают его в 10% нейтральный формалин так, чтобы фиксирующая жидкость занимала объем не менее чем объем образца. При этом полученную смесь фиксатора и осадка пунктата центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 10 секунд. Осадок, образовавшийся после центрифугирования, наносят на предметное стекло тонким слоем, окрашивают и изучают с помощью фазовоконтрастной микроскопии, выявляя вид, количество и соотношение клеточных ансамблей. Способ обеспечивает повышение оперативности и расширение информативности способа при обеспечении возможности оценки динамики изменения материала обследуемого органа за счет того, что полученный образец дает представление о количестве и соотношении клеточных ансамблей в сгустке клеток, полученных из инфильтрата узловых образований щитовидной железы после центрифугирования. 12 ил.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к эндокринологии, и может использоваться для проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы, а также состава инфильтрата как мелких, так и крупных кист различных органов при патологии молочной железы, яичников, лимфоузлов.
Известен способ дифференциальной диагностики узловых образований щитовидной железы (ЩЖ), включающий тонкоигольную аспирационную биопсию (ТАБ) под контролем УЗИ с последующим цитологическим исследованием пунктата (см. Ветшев П.С., Шкроб О.С., Чилингариди К.Е. и др. Возможности предоперационной морфологической верификации при узловых эутиреоидных образованиях щитовидной железы // Хирургия. - №2, 1998. - С.4-8). В этом способе выявляется клеточный состав узлового образования ЩЖ. Hamburger J.I. считает, что рак щитовидной железы не может быть полностью исключен, если в каждом из двух препаратов, полученных при разных аспирациях, не определяется 6 кластеров, каждый из которых содержит как минимум 10-15 «доброкачественных» фолликулярных клеток.
Недостатками способа являются:
- недостаточная чувствительность (при выявлении коллоидного зоба - 91,3%, при многоузловом поражении чувствительность снижается до 88,3%, а при незначительной пролиферации тиреоцитов - до 77,4%, при выявлении аденом из фолликулярных клеток - 70,5%, при выявлении рака - всего лишь 23,1%, а при наличии папиллярного и фолликулярного рака чувствительность еще уменьшается до 9,1% и 11,1% соответственно);
- при многоузловом поражении не всегда представляется возможным пунктировать все имеющиеся узлы;
- не во всех случаях удается получить достаточное количество клеток (по данным А.Бельфиоре, примерно в 25% случаев информативность ТАБ оказывается недостаточной из-за получения неинформативного материала (низкой клеточности мазков), а также вследствие установления так называемых «неопределенных» диагнозов);
- необходимость высокой квалификации цитолога;
- стандартная ТАБ, по различным оценкам, не может дифференцировать доброкачественные и злокачественные опухоли, имеющие сходную цитоморфологическую картину, в 15-30% случаев. В первую очередь это касается фолликулярных аденом и фолликулярного рака, а также фолликулярного варианта папиллярного рака и гюртлеклеточных опухолей.
Зачастую пунктат содержит жидкость с очень малым количеством клеток, и цитологический анализ провести практически невозможно. Жидкая же часть пунктата (коллоид, содержимое кисты, плазма крови) обычно никак не исследуется. В доступной литературе нам удалось обнаружить лишь указание на то, что коллоид - это жидкость, включающая рибонуклеины, протеиды, тиреоглобулин, йод, цитохромоксидазу и другие ферменты. Методик исследования жидкой части пунктата с целью дифференциальной диагностики узловых образований ЩЖ найдено не было.
Известен способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы, включающий их тонкоигольную аспирационную биопсию под контролем УЗИ с последующим цитологическим исследованием полученного пунктата, который центрифугируют и используют для приготовления препарата на предметном стекле (см. RU №2267997, МПК A61B 10/00, G01N 33/48, 2003).
Недостаток этого способа, недостаточная оперативность и ограниченная информативность способа – позволяет судить о доброкачественной или недоброкачественной природе узла. При этом он не позволяет оценить динамику изменения материала обследуемых органов.
Задача, на решение которой направлено предлагаемое решение, выражается в повышении оперативности и расширении информативности способа при обеспечении возможности оценки динамики изменения материала обследуемых органов.
Технический результат, проявляющийся при решении поставленной задачи, выражается в повышении оперативности и расширении информативности способа при обеспечении возможности оценки динамики изменения материала обследуемых органов.
Для решения поставленной задачи, способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы, включающий их тонкоигольную аспирационную биопсию под контролем УЗИ с последующим цитологическим исследованием полученного пунктата, который центрифугируют и используют для приготовления препарата на предметном стекле, отличается тем, что пунктат центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 30 секунд, отделяют осадок и помещают его в 10% нейтральный формалин так, чтобы фиксирующая жидкость занимала объем не менее чем объем образца, при этом полученную смесь фиксатора и осадка пунктата центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 10 секунд и осадок, образовавшийся после центрифугирования, наносят на предметное стекло тонким слоем, окрашивают и изучают с помощью фазовоконтрастной микроскопии, выявляя вид, количество и соотношение клеточных ансамблей.
Сопоставительный анализ признаков заявленного решения с признаками прототипа и аналогов свидетельствует о соответствии заявленного решения критерию «новизна».
Совокупность признаков формулы изобретения обеспечивает возможность повышения оперативности и расширения информативности способа при обеспечении возможности оценки динамики изменения материала обследуемых органов, при этом признаки отличительной части формулы изобретения решают следующие функциональные задачи.
Признак «пунктат центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 30 секунд» обеспечивает сохранность в исследуемом материале структуры клеток. Осадок при таких условиях центрифугирования представляют только живые клетки, которые в мазке наблюдаются в большом количестве. Морфология клеток соответствует реальной их прижизненной структуре в узловых образованиях.
Признак, указывающий, что из отцентрифугованного пунктата «отделяют осадок и помещают его в 10% нейтральный формалин» обеспечивает впадение клеток в паранекроз, затем в некроз, прекращение гранулообразования. Клетку можно рассмотреть при фазовоконтрастной микроскопии, она сохраняется длительное время, так как произошла денатурация белков в цитоплазме, прекращена активность всех ферментов и эндонуклеаз, расщепляющих ДНК ядра. Все ферменты дезактивированы, поэтому клетка длительно сохраняет размеры, форму, структуру.
Признак, указывающий, что необходимо, «чтобы фиксирующая жидкость занимала объем не менее чем объем образца» обеспечивает эффективность (полноту) консервации материала.
Признаки, указывающие, что «полученную смесь фиксатора и осадка пунктата центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 10 секунд» обеспечивают сохранность в исследуемом материале структуры клеток при повышении эффективности фиксации материала.
Признаки, указывающие, что «осадок, образовавшийся после центрифугирования, наносят на предметное стекло тонким слоем, окрашивают» обеспечивают подготовку препарата к фазовоконтрастной микроскопии.
Признаки, указывающие, что «изучают с помощью фазовоконтрастной микроскопии, выявляя вид, количество и соотношение клеточных ансамблей» обеспечивают расширение набора диагностических признаков в отношении щитовидной железы и организма в целом.
На фиг.1 показаны результаты УЗИ обследования щитовидной железы; на фиг.2 показано выполнение ТАБ под контролем УЗИ; на фиг.3 показаны предметные стекла с неокрашенными мазками; на фиг.4-фиг.7 показаны результаты цитологического исследования обычных мазков, полученных методом ТАБ с последующим классическим выполнением окрашивания мазка, при этом на фиг. 4 показаны лейкоциты: нейтрофил и лимфоцит; на фиг. 5 показаны моноцит, лимфоцит и нейтрофил; на фиг. 6 показано, что в мазках идентифицируются единичные нейтрофилы и макрофаги с крупными гранулами; на фиг. 7 видны немногочисленные клетки в поле зрения; на фиг.8-фиг.10 показаны мазки, полученные методом ТАБ щитовидной железы с центрифугированием аспирационного материала; на фиг.11-фиг.12 показаны результаты окраски мазка, изготовленного из экссудата, при этом на фиг.11 показана окраска с применением метиленового синего; на фиг. 12 показана окраска с применением иммунной гистохимии на выявление локализации маркера р53.
Для реализации способа используют известные средства для выполнения ТАБ: лоток, шприцы объемом в зависимости от размеров кист и количества инфильтрата (от 5,0 мл до 20 мл); предметные стекла, пробирки, салфетки, карандаш. Кроме того, для мягкого центрифугирования используют исследовательскую центрифугу, например, К1015. Для изучения препаратов и изготовления иллюстраций используют микроскоп, например, Olympus Bx51 c фотокамерой DP25. Для контроля выполнения ТАБ используют аппарат УЗИ.
Заявленный способ реализуется следующим образом.
Показанием для выполнения тонкоигольной аспирационной биопсии (ТАБ) являются результаты УЗИ обследования пациента.
В процессе ТАБ врач под контролем УЗИ реализует классический метод (ТАБ) у пациентов с узловыми образованиями щитовидной железы. Аналогично отбирают инфильтрат как мелких, так и крупных кист различных органов при патологии молочной железы, яичников, лимфоузлов и т.п. Весь жидкий материал собирают шприцом, после чего помещают содержимое шприца в пробирку и центрифугируют его на скорости 600 оборотов в минуту в течение 30 секунд. Далее сливают жидкую часть материала, а осадок помещают в 10% нейтральный формалин без перемешивания и без образования пены (для большего соприкосновения материала с фиксатором). В случае малого количества материала, как, например, при пункции инфильтрата небольших кист щитовидной железы или жидкости передней камеры глаза, используют пробирку Эппендорф (1,5 мл), содержащую 0,5 мл консервирующей жидкости. Важно, чтобы консервирующая жидкость занимала объем не менее чем объем образца (1:1).
Полученную смесь фиксатора, эпителиоцитов, лейкоцитов, эритроцитов, клеток инфильтрата кист исследуемого органа центрифугируют при скорости 600 оборотов в минуту в течение 10 секунд и осадок, образовавшийся после центрифугирования, наносят на предметное стекло тонким слоем.
После обработки формалином клетки не обладают способностью к вакуолизированию красителя, окрашиваются равномерно, имеют четкие границы, в таком мазке количество клеток в поле зрения максимальное, что облегчает анализ. Окрашивание при этом возможно любыми морфологическими методами, как классическими, так и иммуногистохимическими.
Анализ результатов с помощью фазовоконтрастной микроскопии дает полное представление о составе инфильтрата кисты любого исследуемого органа. При данном способе изготовления мазка можно получить полную картину клеточного состава, содержащегося в инфильтрате как мелких, так и крупных кист различных органов: при патологии молочной и щитовидной желез, яичников, лимфоузлов, жидкости, содержащейся в серозных полостях.
Для изготовления иллюстраций используют микроскоп Olympus Bx51 c фотокамерой DP25. Техника микроскопирования предусматривает анализ препарата без покровного стекла с предварительным высушиванием и нанесением иммерсионного масла для работы с наибольшим увеличением под иммерсионным объективом. В рассматриваемых объектах идентифицируются ядра, фигуры митоза, отростки клеток, содержимое цитоплазмы, включая везикулы и контаминированные организмы.
Комментарии к фотографиям: На фиг.1 стрелкой показана игла для аспирации материала. Выявлен папиллярный рак, выполнена тиреоидэктомия.
На фиг.2 показано выполнение ТАБ под контролем УЗИ. На фиг.3. Материал получен методом ТАБ с последующим нанесением на предметные стекла. На фиг.8-фиг.10 показаны мазки, полученные методом ТАБ щитовидной железы с центрифугированием аспирационного материала для обогащения цитологической картины: видны многоклеточность, атипические микрофолликулы с нагромождением клеток. Папиллярные структуры. Однородная популяция полиморфных фолликулярных клеток. Ядра вариабельны. Определяется 1-2 ядрышка со смещением к периферии. Цитоплазма нежно-структурированная с нечеткими контурами.
Заключение: фолликулярная опухоль, вероятно, атипическая фолликулярная аденома. TBSRTC IV категория – фолликулярная опухоль. На фиг.12 показано большое количество клеток в поле зрения на препарате, изготовленном предлагаемым методом.
При данном способе изготовления мазков избегаем повторных биопсий с помощью ТАБ, так как заключение «неинформативный мазок» полностью исключается. Полученный образец дает представление о количестве и соотношении клеточных ансамблей в сгустке клеток, полученных из инфильтрата кист после центрифугирования, что можно использовать для расширения диагностического спектра в оценке патологического процесса.
Дальнейшие этапы аналогичны таковым при работе с цитологическим материалом. Заключение в бальзам и под покровное стекло возможно как ручное, так и автоматическое. Для автоматической заливки применяют аппарат для заключения гистологических препаратов под покровное стекло TISSUE-TEK® GLAS™ G2 в стандартизированном режиме. Хранить препараты рекомендуется в вертикальном положении в темноте при температуре не выше 10оС. Можно также формировать архив из цифровых цветных фотографий препаратов.
Достоинства способа:
- позволяет получить обогащенную массу клеток и лейкоцитов, входящих в состав кист или полостей различных органов, заполненных жидким содержимым;
- морфологическая картина на стеклах с мазками при таком способе заливки материала максимально информативна и дает представления о количественных и качественных взаимоотношениях клеточных ансамблей, входящих в состав кист;
- окрашивание материала возможно всеми доступными классическими морфологическими и иммуногистохимическими методами;
- полученный осадок также можно исследовать с помощью PCR метода;
- заключенные препараты можно архивировать в течение многих лет и использовать в дальнейшем в динамике клинического наблюдения за пациентом;
- цифровые фотографии препаратов также можно архивировать в течение многих лет, и, кроме того, ими обмениваться между центрами или учеными, занимающимися сходной проблематикой;
- исключается диагноз «неинформативный мазок», что позволяет избежать повторных процедур ТАБ, что важно для пациента;
- исключается излишний расход красителя и предметных стекол для диагностики, сокращается время, требуемое для правильной диагностики, необходимое как для врача, так и для пациента;
- исключается дополнительная стрессовая ситуация для пациента;
- способ дает представление не только о морфологии клеток, изменений ядер, но и позволяет судить о наличии или об отсутствии апоптоза, что характерно для процесса малигнизации.

Claims (1)


  1. Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы, включающий их тонкоигольную аспирационную биопсию под контролем УЗИ с последующим цитологическим исследованием полученного пунктата, который центрифугируют и используют для приготовления препарата на предметном стекле, отличающийся тем, что пунктат центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 30 секунд, отделяют осадок и помещают его в 10% нейтральный формалин так, чтобы фиксирующая жидкость занимала объем не менее чем объем образца, при этом полученную смесь фиксатора и осадка пунктата центрифугируют на скорости 600 оборотов в минуту в течение 10 секунд и осадок, образовавшийся после центрифугирования, наносят на предметное стекло тонким слоем, окрашивают и изучают с помощью фазовоконтрастной микроскопии, выявляя вид, количество и соотношение клеточных ансамблей.
RU2019114418A 2019-05-14 2019-05-14 Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы RU2712080C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019114418A RU2712080C1 (ru) 2019-05-14 2019-05-14 Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019114418A RU2712080C1 (ru) 2019-05-14 2019-05-14 Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2712080C1 true RU2712080C1 (ru) 2020-01-24

Family

ID=69184079

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019114418A RU2712080C1 (ru) 2019-05-14 2019-05-14 Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2712080C1 (ru)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2267997C2 (ru) * 2003-07-21 2006-01-20 Нижегородская государственная медицинская академия (НГМА) Способ дифференциальной диагностики узловых образований щитовидной железы
US8541170B2 (en) * 2008-11-17 2013-09-24 Veracyte, Inc. Methods and compositions of molecular profiling for disease diagnostics
CN104937111A (zh) * 2012-11-27 2015-09-23 智利天主教教皇大学 用于诊断甲状腺肿瘤的组合物和方法
WO2017204674A1 (ru) * 2016-05-26 2017-11-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Предприятие "Биочип" Биочип для мультиплексного анализа и способ исследования клеток при диагностике онкологических заболеваний

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2267997C2 (ru) * 2003-07-21 2006-01-20 Нижегородская государственная медицинская академия (НГМА) Способ дифференциальной диагностики узловых образований щитовидной железы
US8541170B2 (en) * 2008-11-17 2013-09-24 Veracyte, Inc. Methods and compositions of molecular profiling for disease diagnostics
CN104937111A (zh) * 2012-11-27 2015-09-23 智利天主教教皇大学 用于诊断甲状腺肿瘤的组合物和方法
WO2017204674A1 (ru) * 2016-05-26 2017-11-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Предприятие "Биочип" Биочип для мультиплексного анализа и способ исследования клеток при диагностике онкологических заболеваний

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CRISTO A.P. et al. Increasing diagnostic effectiveness of thyroid nodule evaluation by implementation of cell block preparation in routine US-FNA analysis. Arch Endocrinol Metab. 2016; 60(4), p.367-373. *
JUNG Y.Y. et al. Application of chemokine CXC motif ligand 12 as a novel diagnostic marker in preoperative fine-needle aspiration biopsy for papillary thyroid carcinoma. Acta Cytol. 2013, 57(5), p.447-454. *
ВОРОБЬЕВ С.Л. Правила проведения патолого-анатомических исследований новообразований щитовидной железы. Клинические рекомендации. Российское общество патологоанатомов. 2018, стр.27 *
ВОРОБЬЕВ С.Л. Правила проведения патолого-анатомических исследований новообразований щитовидной железы. Клинические рекомендации. Российское общество патологоанатомов. 2018, стр.27. CRISTO A.P. et al. Increasing diagnostic effectiveness of thyroid nodule evaluation by implementation of cell block preparation in routine US-FNA analysis. Arch Endocrinol Metab. 2016; 60(4), p.367-373. JUNG Y.Y. et al. Application of chemokine CXC motif ligand 12 as a novel diagnostic marker in preoperative fine-needle aspiration biopsy for papillary thyroid carcinoma. Acta Cytol. 2013, 57(5), p.447-454. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Orell et al. Orell, Orell and Sterrett's Fine Needle Aspiration Cytology E-Book: Expert Consult
EP2694942B1 (en) Method for preparing cytological specimens for analyses
Okuwaki et al. Diagnostic efficacy of white core cutoff lengths obtained by EUS-guided fine-needle biopsy using a novel 22G franseen biopsy needle and sample isolation processing by stereomicroscopy for subepithelial lesions
Ajit et al. Cytopathology: An important aspect of medical diagnosis
Wang et al. Comparison of fine needle aspiration and non-aspiration cytology for diagnosis of thyroid nodules: A prospective, randomized, and controlled trial
JP2004505278A (ja) 乳管洗浄によって回収した乳管上皮細胞の細胞学的評価
RU2740431C1 (ru) Способ приготовления клеточных блоков на основе эксфолиативного материала шейки матки и цервикального канала
Hocke et al. “Clinical” cytology for endoscopists: A practical guide
Schnürer et al. Fine-needle biopsy of the thyroid gland: a cytohistological comparison in cases of goiter
RU2712080C1 (ru) Способ проведения цитологического исследования при дифференциальной диагностике узловых образований щитовидной железы
Notohara et al. Tissue processing of endoscopic ultrasound-guided fine-needle aspiration specimens from solid pancreatic lesions
Williams et al. The diagnosis of prostatic cancer: cytological and biochemical studies using the franzen biopsy needle
Krishnamurthy et al. Feasibility of using digital confocal microscopy for cytopathological examination in clinical practice
Molyneux et al. Cell lysis due to ultrasound gel in fine needle aspirates; an important new artefact in cytology
RU2455937C1 (ru) Способ выявления псевдоэксфолиативного материала на ранних стадиях заболевания глаза
RU2332172C1 (ru) Способ дифференциальной диагностики атипической фолликулярной аденомы и фолликулярного рака щитовидной железы
Rivero et al. Utility of cell block in the cytological preoperative diagnosis of keratocystic odontogenic tumor
Kruajak et al. Comparing cytological adequacy between conventional smear and liquid-based cytology in ultrasound-guided fine needle aspiration of thyroid nodules: A prospective study
Rossi et al. Thin-layer liquid-based preparation of non-gynaecological exfoliative and fine-needle aspiration biopsy cytology
Yang Thyroid fine needle aspiration
RU2730993C2 (ru) Способ дифференциальной диагностики фиброаденомы и рака молочной железы
RU2663926C1 (ru) Способ концентрирования клеточного материала в экссудатах для цитологического исследования злокачественных новообразований
Russell et al. Cytopreparatory techniques
Fine Advanced imaging techniques for the pathologist
Murti et al. THE IMPORTANCE OF ADEQUATE PRE-ANALYTICAL MANAGEMENT FOR HISTOLOGICAL AND MOLECULAR EXAMINATION FOR DIAGNOSTIC PURPOSES